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文章信息
- 姚亚林, 罗强, 董梦书, 陈祥盛, 杨琳
- YAO Yalin, LUO Qiang, DONG Mengshu, CHEN Xiangsheng, YANG Lin
- 慈竹叶蝉类害虫DNA条形码分析
- DNA Barcoding of Bambusa emeiensis-Feeding Leafhoppers in China for Species Identification
- 四川动物, 2018, 37(2): 127-138
- Sichuan Journal of Zoology, 2018, 37(2): 127-138
- 10.11984/j.issn.1000-7083.20170294
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文章历史
- 收稿日期: 2017-09-23
- 接受日期: 2018-02-09
2. 贵州大学昆虫资源开发利用省级特色重点实验室, 贵阳 550025;
3. 贵州大学昆虫研究所, 贵阳 550025;
4. 贵州大学贵州山地农业病虫害省级重点实验室, 贵阳 550025
2. Special Key Laboratory for Development and Utilization of Insect Resources of Guizhou University, Guiyang 550025, China;
3. Institute of Entomology, Guizhou University, Guiyang 550025, China;
4. Key Laboratory for Plant Pests Management of Mountainous Region in Guizhou Province, Guiyang 550025, China
叶蝉是半翅目Hemiptera叶蝉科Cicadellidae物种的统称,其种类多、数量大,是农林害虫中的重要类群。西南地区是我国也是世界竹类生产和分布中心区域之一。近年调查发现,西南地区慈竹Bambusa emeiensis叶蝉类害虫种类多、数量大且分布广,危害严重。对该地区竹林叶蝉类害虫进行多样性研究是林业生态系统保护和林业资源管理的共同需求,但叶蝉类害虫的物种鉴定一直是多样性研究的难点,主要原因有:(1)叶蝉类昆虫体型和体色等鉴别特征的形态性状复杂多变,易随发育阶段或生境的改变而产生较大变化,如额垠叶蝉属Mukaria种类(Yang & Chen,2011),传统形态鉴定容易造成同种异名或异种同名等错误;(2)由于缺乏对竹类叶蝉整个生活史的了解,不同虫态叶蝉物种的鉴定较困难。近年来,随着分子生物学技术的发展,分子鉴定技术为物种分类与鉴定研究提供了有效手段。
DNA条形码技术的出现极大方便了物种鉴定工作(Hebert et al., 2003, 2004a)。在大多数动物类群中,线粒体细胞色素C氧化酶第一亚基(COⅠ)基因被广泛采纳为通用的标准条形码基因片段(Hebert et al., 2004b;Ward et al., 2005;Hajibabaei et al., 2006;Ratnasingham et al., 2007)。然而在有些动物类群中,COⅠ基因并不是唯一适合的条形码片段,如Sinniger等(2008)对六放珊瑚目Zoanthidea及Stampar等(2012)对角海葵目Cerianthidea的研究发现,COⅠ和16S rRNA基因均可准确区分近缘种,实现物种的准确鉴定;亦有研究表明,一些类群(如角顶叶蝉类Deltocephalus-like、弯钩叶蝉属Flexamia、黄翅叶蝉属Dalbulus)的16S rRNA基因序列片段可用于区分近缘种(Fang et al., 1993;Dietrich,1997),可见不同动物类群的最适条形码并非一致。在叶蝉类昆虫的DNA条形码研究中,相比于COⅠ基因,16S rRNA基因序列片段较易扩增,常被作为一种有效的分子标记,用于区分形态近似种或描述新发现的种类(Schuchert,2006;Miglietta et al., 2009;Miranda et al., 2010;Moura et al., 2011a, 2011b),然而,我国西南地区竹林叶蝉科昆虫DNA条形码的相关研究尚未有报道。
本文以中国常见竹种慈竹为寄主的叶蝉类昆虫为研究对象,扩增其COⅠ和16S rRNA基因序列片段,比较两者作为标准条形码基因片段的适用性和潜力,同时,结合构建系统发育树和矢量分析法评估这2个基因序列片段在竹子叶蝉分子鉴定中的应用前景,为竹林叶蝉类昆虫的准确快速鉴定提供一定的参考。
1 材料与方法 1.1 供试叶蝉实验叶蝉于2014年5月—2016年11月采集于贵州、四川、云南、重庆4个省市的26个地区,传统形态分类方法鉴定,采集及物种鉴定信息如表 1所示。采集的成虫浸泡于1.5 mL离心管中,第一个月更换无水乙醇3~4次(Sun et al., 2013),后放置于-70 ℃超低温冰箱中长期保存待用(Zhang & Kang,2001;Zhang et al., 2004),其余未经酒精浸泡的标本干燥处理后保存于贵州大学昆虫研究所标本馆。
物种 Species |
采集地 Sampling location |
采集人 Collector |
黄面单突叶蝉Olidiana huangmina | 贵州榕江、荔波、习水,云南绿春 | 姚亚林 |
斑翅额垠叶蝉Mukaria maculata | 四川成都,重庆缙云山,贵州道真、沿河、赤水 | 董梦书、罗强 |
白斑额垠叶蝉Mukaria albinotata | 贵州贵阳、荔波、沿河、长顺 | 董梦书、罗强 |
白足额垠叶蝉Mukaria pallipes | 贵州榕江、罗甸、望谟、安龙,云南绿春 | 姚亚林、罗强 |
竹额垠叶蝉Mukaria bambusana | 贵州贵阳、绥阳、榕江、安龙,重庆缙云山 | 姚亚林、罗强等 |
叉突平额叶蝉Flatfronta pronga | 四川峨眉山、雅安,贵州贵阳 | 姚亚林 |
峨眉条背叶蝉Tiaobeinia emaiensis | 贵州贵阳、荔波、长顺 | 董梦书、姚亚林 |
双带痕叶蝉Mohunia bifasciana | 贵州贵阳、道真、务川、望谟、绥阳 | 罗强、姚亚林 |
二点颜脊叶蝉Xenovarta acuta | 贵州贵阳、荔波、道真、望谟、平坝 | 姚亚林 |
点翅斑大叶蝉Anatkina illustris | 贵州荔波、道真 | 姚亚林 |
片茎网脉叶蝉Dryodurgades lamellaris | 贵州绥阳、道真 | 姚亚林 |
缅甸安小叶蝉Anaka burmensis | 贵州、云南、重庆、四川 | 姚亚林、董梦书 |
Anaka burmensis BB3 | 重庆北碚 | 姚亚林、董梦书 |
Anaka burmensis LC7 | 云南绿春 | 姚亚林 |
Anaka burmensis LD1 | 贵州黔南罗甸 | 姚亚林、董梦书 |
Anaka burmensis LS2 | 四川乐山 | 姚亚林、董梦书 |
Anaka burmensis PD4 | 贵州安顺普定 | 姚亚林、董梦书 |
Anaka burmensis WS4 | 云南文山 | 董梦书 |
Anaka burmensis YB3 | 四川宜宾 | 姚亚林、董梦书 |
注:BB3.重庆北碚,LC7.云南绿春,LD1.贵州黔南罗甸,LS2.四川乐山,PD4.贵州安顺普定,WS4.云南文山,YB3.四川宜宾 Notes:BB3. Beibei district of Chongqing,LC7. Lvchun county,Yunnan province,LD1. Luodian county,Guizhou province,LS2. Leshan city,Sichuan province,PD4. Puding county,Guizhou province,WS4. Wenshan city,Yunnan province,YB3. Yibin city,Sichuan province |
昆虫DNA提取试剂盒购于Omega BioTek(D0926-01);引物由生物工程(上海)股份有限公司合成;Olympus SZ2-ILST型光学体视显微镜(德国Leica);T100TM Thermal Cycler型PCR扩增仪(美国Bio-Rad);170-8170型UVP凝胶成像系统(美国Bio-Rad);Power PacTM HV Power Supply型电泳仪(美国Bio-Rad);Mini-10K微型高速离心机(珠海黑马医学仪器有限公司);HVE-50型自动高压灭菌器(日本HIRAYAMA)。
1.3 DNA提取及PCR扩增标本解冻后,将腹部放入甘油中保存,剩余的虫体取头、胸、足等部分研磨至粉末状,然后用Omega BioTek生产的E.Z.N.A.TM Insect DNA kit试剂盒提取总DNA,产物-20 ℃保存。
以提取的总DNA为模板进行序列的PCR扩增,反应程序参照Folmer等(1994),扩增引物分别为:16S rRNA -F:5'-CCGGTYTGAACTCARATCAWGT-3',16S rRNA -R:5'-CTGTTTAWCAAAAACATTTC-3';COⅠ -F:5'-GGTCAACAAATCATAAAGATATTG-3',COⅠ -R:5'-TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAAT-3'。PCR反应体系为30 μL:模板DNA 3 μL,上下游引物各1 μL,Taq PCR Master Mix 15 μL,ddH2O补至30 μL。PCR扩增程序:94 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,50 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,33个循环;最后72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。PCR产物取3 μL采用1%琼脂糖凝胶电泳检测,纯化步骤参照DNA凝胶回收试剂盒Omega BioTek(D0926-01)程序。回收产物送生工生物工程(上海)股份有限公司双向测序。
1.4 数据分析将获得的测序峰图利用DNAstar 5.0进行正反链校对和编辑,手动去除序列两端的引物区,获得有效片段的样本序列。Meglign进行排序后利用Clustal X进行多序列比对,采用DnaSP v5计算信息位点、变异位点数,通过MEGA 6.06分析碱基组成、变异位点,基于Kimura-2-parameter(K2P)模型进行遗传距离分析,采用邻接法(Neighbor-Joining,NJ)构建系统发育树,节点支持率采用自展值进行估计,重复检验1 000次。选取蝉总科蝉科Cicadoidea的日本寒蝉Meimuna opalifera(16S rRNA基因序列GenBank登录号为AY139968.1)及蜡蝉总科Fulgoroidea飞虱科Delphacidae的四刺小头飞虱Malaxella tetracantha (COⅠ基因和16S rRNA基因序列GenBank登录号分别为HM233883.1和HM233744.1)和黄小头飞虱Malaxella flava(COⅠ基因和16S rRNA基因序列GenBank登录号分别为HM233896.1和HM233772.1)共6条序列作为外群。参照Sirovich等(2009, 2010)的矢量分析方法,构建中国慈竹常见叶蝉科昆虫条形码Klee-diagram矢量图。
2 结果与分析 2.1 序列分析经通用引物PCR扩增、序列测定,共获得COⅠ和16S rRNA基因序列45条,其中,COⅠ基因序列4科5属8种21条,GenBank登录号为MG376677~MG376697;16S rRNA基因序列3科7属9种24条,GenBank登录号为MG376698~MG376721。利用MEGA 6.06对21条竹类叶蝉COⅠ基因序列进行比对后保留了590个的同源性序列,分析表明,在590个位点中没有插入和缺失,总体序列的T、C、A、G平均含量分别为36.20%、12.70%、41.10%、10.00%,A+T含量较高,为77.30%;保守位点、变异位点和简约信息位点分别为310个、280个和237个,在590个位点中分别占52.54%、47.46%和40.17%。对24条16S rRNA基因序列进行比对后保留了463 bp的同源性序列,分析表明,在463个位点中存在59个插入/缺失位点,总体序列的T、C、A、G平均含量分别为35.60%、15.10%、41.20%、8.10%,A+T含量较高,为76.80%;保守位点、变异位点和简约信息位点分别为235个、221个和192个,在463个位点中分别占50.76%、47.73%和41.47%。COⅠ基因和16S rRNA基因的T、C、A、G含量不同,但均呈现出明显的A+T偏向性,特别是COⅠ基因密码子第三位C、G平均含量在不同物种间差异很大。
2.2 遗传差异以K2P模型计算序列间遗传距离,并按照分类阶元进行统计分析(表 2~表 4)。结果显示,16S rRNA基因序列的种内遗传距离为0~0.010(均值为0.003),而同科不同种间的遗传距离为0.151~0.396(均值为0.257),其中,斑翅额垠叶蝉M. maculata和白斑额垠叶蝉Mukaria albinotata间的遗传距离最小,为0.151,叉突平额叶蝉Flatfronta pronga和缅甸安小叶蝉Anaka burmensis间的遗传距离最大,为0.396。COⅠ基因的种内遗传距离为0~0.013(均值为0.004),其中84%的种内遗传距离小于0.003(图 2),这可能与扩增的叶蝉样本中缅甸安小叶蝉和额垠叶蝉群体的序列所占比重大,而其他叶蝉只有单条序列有关;缅甸安小叶蝉云南绿春种群(LC7)与其他种群间出现种内遗传距离的最大值(0.013);COⅠ基因的种间遗传距离为0.159~0.341(均值为0.283),斑翅额垠叶蝉和白斑额垠叶蝉间的遗传距离最小(0.159);2个基因序列在所调查种类中,种内遗传差异均小于种间遗传差异,存在明显的条形码间隔(图 1,图 2)。
分类组别 Taxonomy group |
COⅠ基因 | 16S rRNA基因 | |||||||
最小 Min | 最大 Max | 平均值 Mean | 中值 Median | 最小 Min | 最大 Max | 平均值 Mean | 中值 Median | ||
种内遗传距离 | 0 | 0.013 0 | 0.004 5 | 0.003 2 | 0 | 0.010 0 | 0.003 1 | 0.002 1 | |
种间遗传距离 | 0.159 0 | 0.341 0 | 0.283 3 | 0.299 5 | 0.151 0 | 0.396 0 | 0.257 6 | 0.273 7 |
物种(编号) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 | 22 | 23 | 24 |
Anaka burmensi |BB3-16S(1) | 0.000 | 0.003 | 0.000 | 0.000 | 0.003 | 0.003 | 0.000 | 0.041 | 0.041 | 0.042 | 0.042 | 0.043 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.037 | 0.050 | 0.045 | 0.047 | 0.044 | |
Anaka burmensi |FL3-16S(2) | 0.000 | 0.003 | 0.000 | 0.000 | 0.003 | 0.003 | 0.000 | 0.041 | 0.041 | 0.042 | 0.042 | 0.043 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.037 | 0.050 | 0.045 | 0.047 | 0.044 | |
Anaka burmensi |LC7-16S(3) | 0.005 | 0.005 | 0.003 | 0.003 | 0.005 | 0.000 | 0.003 | 0.042 | 0.042 | 0.044 | 0.044 | 0.044 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.037 | 0.050 | 0.046 | 0.047 | 0.045 | |
Anaka burmensi |LD1-16S(4) | 0.000 | 0.000 | 0.005 | 0.000 | 0.003 | 0.003 | 0.000 | 0.041 | 0.041 | 0.042 | 0.042 | 0.043 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.037 | 0.050 | 0.045 | 0.047 | 0.044 | |
Anaka burmensi |LS2-16S(5) | 0.000 | 0.000 | 0.005 | 0.000 | 0.003 | 0.003 | 0.000 | 0.041 | 0.041 | 0.042 | 0.042 | 0.043 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.037 | 0.050 | 0.045 | 0.047 | 0.044 | |
Anaka burmensi |PD4-16S(6) | 0.005 | 0.005 | 0.010 | 0.005 | 0.005 | 0.005 | 0.003 | 0.042 | 0.042 | 0.044 | 0.044 | 0.044 | 0.049 | 0.049 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.037 | 0.049 | 0.045 | 0.047 | 0.045 | |
Anaka burmensi |WS4-16S(7) | 0.005 | 0.005 | 0.000 | 0.005 | 0.005 | 0.010 | 0.003 | 0.042 | 0.042 | 0.044 | 0.044 | 0.044 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.050 | 0.037 | 0.050 | 0.046 | 0.047 | 0.045 | |
Anaka burmensi |YB3-16S(8) | 0.000 | 0.000 | 0.005 | 0.000 | 0.000 | 0.005 | 0.005 | 0.041 | 0.041 | 0.042 | 0.042 | 0.043 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.049 | 0.037 | 0.050 | 0.045 | 0.047 | 0.044 | |
Mukaria albinotata |9-16S(9) | 0.326 | 0.326 | 0.331 | 0.326 | 0.326 | 0.337 | 0.331 | 0.326 | 0.000 | 0.023 | 0.023 | 0.024 | 0.029 | 0.029 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.036 | 0.035 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | |
Mukaria albinotata |10-16S(10) | 0.326 | 0.326 | 0.331 | 0.326 | 0.326 | 0.337 | 0.331 | 0.326 | 0.000 | 0.023 | 0.023 | 0.024 | 0.029 | 0.029 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.036 | 0.035 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | |
Mukaria maculata |1-16S(11) | 0.321 | 0.321 | 0.331 | 0.321 | 0.321 | 0.331 | 0.331 | 0.321 | 0.151 | 0.151 | 0.000 | 0.002 | 0.030 | 0.030 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.035 | 0.036 | 0.033 | 0.034 | 0.034 | |
Mukaria maculata |2-16S(12) | 0.321 | 0.321 | 0.331 | 0.321 | 0.321 | 0.331 | 0.331 | 0.321 | 0.151 | 0.151 | 0.000 | 0.002 | 0.030 | 0.030 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.035 | 0.036 | 0.033 | 0.034 | 0.034 | |
Mukaria maculata |3-16S(13) | 0.326 | 0.326 | 0.336 | 0.326 | 0.326 | 0.336 | 0.336 | 0.326 | 0.155 | 0.155 | 0.002 | 0.002 | 0.030 | 0.030 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.036 | 0.036 | 0.033 | 0.034 | 0.033 | |
Flatfronta pronga |1-16S(14) | 0.391 | 0.391 | 0.396 | 0.391 | 0.391 | 0.390 | 0.396 | 0.391 | 0.209 | 0.209 | 0.212 | 0.212 | 0.216 | 0.000 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.040 | 0.032 | 0.026 | 0.026 | 0.030 | |
Flatfronta pronga |2-16(15) | 0.391 | 0.391 | 0.396 | 0.391 | 0.391 | 0.390 | 0.396 | 0.391 | 0.209 | 0.209 | 0.212 | 0.212 | 0.216 | 0.000 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.040 | 0.032 | 0.026 | 0.026 | 0.030 | |
Mukaria bambusana |1-16S(16) | 0.374 | 0.374 | 0.380 | 0.374 | 0.374 | 0.385 | 0.380 | 0.374 | 0.196 | 0.196 | 0.185 | 0.185 | 0.188 | 0.221 | 0.221 | 0.000 | 0.000 | 0.000 | 0.041 | 0.037 | 0.034 | 0.033 | 0.029 | |
Mukaria bambusana |3-16S(17) | 0.374 | 0.374 | 0.380 | 0.374 | 0.374 | 0.385 | 0.380 | 0.374 | 0.196 | 0.196 | 0.185 | 0.185 | 0.188 | 0.221 | 0.221 | 0.000 | 0.000 | 0.000 | 0.041 | 0.037 | 0.034 | 0.033 | 0.029 | |
Mukaria bambusana |4-16S(18) | 0.374 | 0.374 | 0.380 | 0.374 | 0.374 | 0.385 | 0.380 | 0.374 | 0.196 | 0.196 | 0.185 | 0.185 | 0.188 | 0.221 | 0.221 | 0.000 | 0.000 | 0.000 | 0.041 | 0.037 | 0.034 | 0.033 | 0.029 | |
Mukaria bambusana |2-16S(19) | 0.374 | 0.374 | 0.380 | 0.374 | 0.374 | 0.385 | 0.380 | 0.374 | 0.196 | 0.196 | 0.185 | 0.185 | 0.188 | 0.221 | 0.221 | 0.000 | 0.000 | 0.000 | 0.041 | 0.037 | 0.034 | 0.033 | 0.029 | |
Anatkina illustris |-16S(20) | 0.269 | 0.269 | 0.269 | 0.269 | 0.269 | 0.265 | 0.269 | 0.269 | 0.287 | 0.287 | 0.268 | 0.268 | 0.273 | 0.311 | 0.311 | 0.321 | 0.321 | 0.321 | 0.321 | 0.043 | 0.040 | 0.039 | 0.036 | |
Tiaobeinia emaiensis |1-16S(21) | 0.375 | 0.375 | 0.380 | 0.375 | 0.375 | 0.375 | 0.380 | 0.375 | 0.247 | 0.247 | 0.273 | 0.273 | 0.273 | 0.233 | 0.233 | 0.277 | 0.277 | 0.277 | 0.277 | 0.312 | 0.038 | 0.039 | 0.037 | |
Mohunia bifasciana |1-16S(22) | 0.357 | 0.357 | 0.363 | 0.357 | 0.357 | 0.357 | 0.363 | 0.357 | 0.225 | 0.225 | 0.237 | 0.237 | 0.237 | 0.181 | 0.181 | 0.246 | 0.246 | 0.246 | 0.246 | 0.306 | 0.287 | 0.008 | 0.033 | |
Mohunia bifasciana |2-16S(23) | 0.374 | 0.374 | 0.379 | 0.374 | 0.374 | 0.374 | 0.379 | 0.374 | 0.225 | 0.225 | 0.242 | 0.242 | 0.246 | 0.185 | 0.185 | 0.250 | 0.250 | 0.250 | 0.250 | 0.302 | 0.292 | 0.028 | 0.033 | |
Xenovarta acuta |-16S(24) | 0.341 | 0.341 | 0.341 | 0.341 | 0.341 | 0.352 | 0.341 | 0.341 | 0.212 | 0.212 | 0.250 | 0.250 | 0.246 | 0.221 | 0.221 | 0.204 | 0.204 | 0.204 | 0.204 | 0.287 | 0.269 | 0.246 | 0.250 |
物种(编号) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 | 11 | 12 | 13 | 14 | 15 | 16 | 17 | 18 | 19 | 20 | 21 |
Mukaria albinotata |-1-COⅠ(1) | 0.002 | 0.025 | 0.020 | 0.020 | 0.020 | 0.027 | 0.028 | 0.023 | 0.024 | 0.024 | 0.024 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.026 | |
Mukaria albinotata |-2-COⅠ(2) | 0.002 | 0.025 | 0.020 | 0.019 | 0.019 | 0.026 | 0.028 | 0.023 | 0.023 | 0.023 | 0.023 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.026 | |
Mukaria pallipes |-COⅠ(3) | 0.227 | 0.224 | 0.024 | 0.024 | 0.024 | 0.030 | 0.030 | 0.025 | 0.025 | 0.025 | 0.025 | 0.031 | 0.031 | 0.032 | 0.032 | 0.031 | 0.032 | 0.031 | 0.031 | 0.028 | |
Mukaria maculata |-1-COⅠ(4) | 0.165 | 0.162 | 0.225 | 0.002 | 0.002 | 0.026 | 0.029 | 0.021 | 0.022 | 0.022 | 0.022 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | 0.030 | 0.026 | |
Mukaria maculata |-2-COⅠ(5) | 0.162 | 0.159 | 0.222 | 0.002 | 0.000 | 0.025 | 0.029 | 0.021 | 0.022 | 0.022 | 0.022 | 0.029 | 0.029 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | 0.030 | 0.029 | 0.029 | 0.025 | |
Mukaria maculata |-3-COⅠ(6) | 0.162 | 0.159 | 0.222 | 0.002 | 0.000 | 0.025 | 0.029 | 0.021 | 0.022 | 0.022 | 0.022 | 0.029 | 0.029 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | 0.030 | 0.029 | 0.029 | 0.025 | |
Tiaobeinia emaiensis |-COⅠ(7) | 0.254 | 0.251 | 0.280 | 0.247 | 0.244 | 0.244 | 0.027 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.028 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.026 | 0.024 | |
Olidiana huangmina |-COⅠ(8) | 0.289 | 0.286 | 0.299 | 0.296 | 0.296 | 0.296 | 0.255 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.030 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.029 | 0.027 | |
Mukaria bambusana |-1-COⅠ(9) | 0.208 | 0.205 | 0.234 | 0.190 | 0.187 | 0.187 | 0.261 | 0.297 | 0.002 | 0.002 | 0.002 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.031 | 0.024 | |
Mukaria bambusana |-2-COⅠ(10) | 0.211 | 0.208 | 0.237 | 0.193 | 0.190 | 0.190 | 0.265 | 0.301 | 0.002 | 0.000 | 0.000 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.031 | 0.032 | 0.024 | |
Mukaria bambusana |-3-COⅠ(11) | 0.211 | 0.208 | 0.237 | 0.193 | 0.190 | 0.190 | 0.265 | 0.301 | 0.002 | 0.000 | 0.000 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.031 | 0.032 | 0.024 | |
Mukaria bambusana |-4-COⅠ(12) | 0.211 | 0.208 | 0.237 | 0.193 | 0.190 | 0.190 | 0.265 | 0.301 | 0.002 | 0.000 | 0.000 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.032 | 0.031 | 0.032 | 0.024 | |
Anaka burmensi |BB3-COⅠ(13) | 0.333 | 0.329 | 0.317 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.267 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.000 | 0.005 | 0.004 | 0.000 | 0.004 | 0.003 | 0.000 | 0.027 | |
Anaka burmensi |FL3-COⅠ(14) | 0.333 | 0.329 | 0.317 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.267 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.000 | 0.005 | 0.004 | 0.000 | 0.004 | 0.003 | 0.000 | 0.027 | |
Anaka burmensi |LC7-COⅠ(15) | 0.326 | 0.322 | 0.327 | 0.317 | 0.313 | 0.313 | 0.267 | 0.299 | 0.337 | 0.341 | 0.341 | 0.341 | 0.013 | 0.013 | 0.005 | 0.005 | 0.005 | 0.004 | 0.005 | 0.027 | |
Anaka burmensi |LD1-COⅠ(16) | 0.333 | 0.329 | 0.320 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.264 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.007 | 0.007 | 0.011 | 0.004 | 0.000 | 0.002 | 0.004 | 0.027 | |
Anaka burmensi |LS2-COⅠ(17) | 0.333 | 0.329 | 0.317 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.267 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.000 | 0.000 | 0.013 | 0.007 | 0.004 | 0.003 | 0.000 | 0.027 | |
Anaka burmensi |PD4-COⅠ(18) | 0.333 | 0.329 | 0.320 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.264 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.007 | 0.007 | 0.011 | 0.000 | 0.007 | 0.002 | 0.004 | 0.027 | |
Anaka burmensi |WS4-COⅠ(19) | 0.329 | 0.326 | 0.317 | 0.306 | 0.303 | 0.303 | 0.264 | 0.293 | 0.333 | 0.337 | 0.337 | 0.337 | 0.004 | 0.004 | 0.009 | 0.002 | 0.004 | 0.002 | 0.003 | 0.027 | |
Anaka burmensi |YB3-COⅠ(20) | 0.333 | 0.329 | 0.317 | 0.310 | 0.306 | 0.306 | 0.267 | 0.296 | 0.337 | 0.340 | 0.340 | 0.340 | 0.000 | 0.000 | 0.013 | 0.007 | 0.000 | 0.007 | 0.004 | 0.027 | |
Dryodurgades lamellaris |-COⅠ(21) | 0.256 | 0.253 | 0.286 | 0.255 | 0.252 | 0.252 | 0.228 | 0.258 | 0.216 | 0.219 | 0.219 | 0.219 | 0.273 | 0.273 | 0.273 | 0.270 | 0.273 | 0.270 | 0.270 | 0.273 |
2.3 基于系统发育树的物种鉴定
基于COⅠ和16S rRNA基因序列的系统发育NJ树中,2个基因片段所有同种的序列都能形成具有较高支持度的单分支(图 3,图 4)。小叶蝉亚科Typhlocybinae、圆痕叶蝉亚科Megophthalminae、离脉叶蝉亚科Coelidiinae和角顶叶蝉亚科Deltocephalinae的分支证明COⅠ和16S rRNA基因序列均能很好地区分物种。在更高的分类阶元中,16S rRNA基因序列可将额垠叶蝉族Mukariini中的额垠叶蝉属(斑翅额垠叶蝉、白斑额垠叶蝉、白足额垠叶蝉M. pallipes、竹额垠叶蝉Mukaria bambusana)成功分为单性孔组和双性孔组两大支,二点颜脊叶蝉Xenovarta acuta与(叉突平额叶蝉+峨眉条背叶蝉Tiaobeinia emaiensis+双带痕叶蝉Mohunia bifasciana)这一支系也能较好分开(图 3);而COⅠ基因序列在额垠叶蝉族的系统发育关系中(图 4),额垠叶蝉属与叉突平额叶蝉、峨眉条背叶蝉、双带痕叶蝉也能很好分开,且也成功分为单性孔组和双性孔组两大支,证明COⅠ基因序列亦能有效区分物种。
2.4 基于Klee-diagram的矢量分析
基于西南地区常见慈竹叶蝉的矢量分析发现,COⅠ和16S rRNA基因片段均显示明显的种内序列比对“热区”,即种内序列相似程度明显高于种间序列,直观显示出种内、种间遗传距离差异;2个片段的缅甸安小叶蝉序列均表现为独立的“热区”,显示出其与角顶叶蝉亚科额垠叶蝉族、大叶蝉亚科Cicadellinae序列的明显差别,这与NJ树分析结果一致(图 5,图 6)。
3 讨论
理想的条形码种内遗传差异会小于近缘物种种间差异(Del-Prado et al., 2010),即种内、种间遗传差异的幅度确定了物种的界限(Köhler,2007)。若种内、种间遗传差异存在重叠,则说明该分子标记无法准确区分物种。理论上,有效的DNA条形码应存在条形码间隔,即种内、种间遗传距离差异明显。Hebert等(2003)提出,种间遗传差异应达到种内遗传差异的10倍。有研究证实,水螅纲Hydrozoa多个类群的COⅠ基因序列片段种内、种间遗传距离并不重叠(Zemlak et al., 2009;Ortman et al., 2010;Sun et al., 2012)。本研究所涉及种类的COⅠ和16S rRNA基因序列片段均有明显条形码间隔,未出现种内、种间遗传差异存在重叠的种群。2个片段同属种间的遗传距离均比种内高出30倍,证实了它们作为慈竹叶蝉类昆虫DNA条形码标准基因的可行性。结果出现高30倍的主要原因可能是本研究是对寄主慈竹上有分布的叶蝉科昆虫标本进行采样扩增,而叶蝉科昆虫还有其他寄主,因受寄主范围的限制致使出现这一结果。
本研究针对西南地区慈竹常见叶蝉类昆虫,基于K2P遗传距离和NJ树的方法证明了COⅠ和16S rRNA基因序列片段均可有效运用于DNA条形码研究,这一结果可促进叶蝉类的生物多样性研究。但基于NJ树鉴定物种时,应考虑该方法是基于距离类的建树方法,在序列分歧较大的数据中估计的序列间遗传距离方差较大,这将对系统发育树拓扑分支结构和支长估计带来影响(Yang & Rannala,2010),而本文研究对象类群跨度也较大,可能存在类似的影响。自Sirovich等(2009, 2010)引入矢量分析后,Klee-diagram有效地促进了DNA条形码的应用,但Klee-diagram矢量分析只将未知序列划归到确定的种、属等动物类群,并未对序列的演化状态做出推断(Sirovich et al., 2009;Stoeckle & Coffran,2013),因此,不能从系统发育与演化的角度来评价和讨论Klee-diagram矢量分析的鉴定效率。依本研究中Klee-diagram矢量分析结果,16S rRNA基因序列的鉴定效率较优于COⅠ基因,因样本量限制等原因,这种结果可能不具有普遍性,下一步还需竹类叶蝉科昆虫大样本数据验证。尽管该方法并未给出明晰的谱系关系,但因适宜大样本数据和可视化界面等,其在农林昆虫的准确鉴定中仍有较大的应用潜力。
尽管如此,基于种内种间遗传差异、矢量分析的类群划分和系统发育树分析等方法在农林叶蝉类昆虫的多样性研究中还将发挥更大的作用。由于本研究获取的基因片段数量和寄主范围局限,未能在更广泛的地理范围内讨论竹类叶蝉科昆虫的遗传差异和隐种分化对这2个片段鉴定效率的影响。今后随着调查和采集的深入,竹类叶蝉科昆虫标本的增加以及其他候选条形码基因片段的加入,可能呈现出不同遗传差异,出现种内、种间遗传差异存在重叠的种群,因此,使用种内种间遗传差异达到10倍阈值鉴定不同物种的方法受到限制;若利用不同候选条形码基因片段构建系统发育树鉴定物种,有可能出现基因树冲突问题,因此,应当考虑多种方法整合分析和评价不同候选条形码基因片段的鉴定功效。
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