2. 贵州省烟草科学研究院,贵阳 550081;
3. 长江大学 农学院,湖北 荆州 434025;
4. 贵州省农业科学院 植物保护研究所,贵阳 550006
2. Guizhou Academy of Tobacco Science, Guiyang 550081, China;
3. College of Agriculture, Yangtze University, Jingzhou 434025, Hubei Province, China;
4. Institute of Plant Protection, Guizhou Academy of Agricultural Sciences, Guiyang 550006, China
由链格孢Alternaria alternata (Frises) Keissler引起的烟草赤星病 (tobacco brown spot) 是危害烟草品质的主要真菌性病害,通常在烟株生长的中后期发生,具有传染快、难防治等特点[1],一旦环境适宜不仅直接导致产量损失,而且严重影响烟叶品质,降低烘烤价值,威胁烟草生产[2-6]。长期以来,使用化学药剂是防治赤星病的主要手段,常用药剂有菌核净 (dimetachlone) 及代森锰锌 (mancozeb) 等[7]。然而,长期高频率使用这些农药已使得烟草赤星病菌群体出现了严重的抗药性[8-11],因此亟待寻找高效的替代药剂。
近年来,甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂陆续在中国取得登记,嘧菌酯 (azoxystrobin) 是其中的典型代表。嘧菌酯主要作用于真菌线粒体呼吸链中复合物 Ⅲ (细胞色素bc1复合物) cyt b的Qo结合部位,阻断电子由cyt bc1复合物流向cyt c,破坏能量合成,干扰呼吸作用[12-14]。嘧菌酯对多种植物病原菌具有较高的生物活性,已被用于防治包括链格孢属真菌病害在内的多种植物病害[8-12]。该药剂被认为是具有中-高等抗药性风险的杀菌剂[15]。目前,被报道已对甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂产生抗性的链格孢属病原菌有链格孢A. alternata、极细链格孢A. tenuissima、茄链格孢A. solani和苹果褐斑病菌A. mali[8,12,16]。已有研究表明,链格孢属真菌对嘧菌酯产生抗性的机理是cyt b基因的突变,已报道的突变位点包括143 位的甘氨酸突变为丙氨酸 (G143A)、129 位的亮氨酸突变为苯丙氨酸 (F129L) 以及137 位的精氨酸突变为甘氨酸 (G137R) [11,17-18]。笔者等前期研究发现,嘧菌酯对链格孢具有较强的生物活性,且田间对赤星病也有较好的防治效果[19]。嘧菌酯在欧美已被用于烟草赤星病的防治,但目前尚未在中国烟草上正式登记使用。此外,也未发现烟草赤星病菌对甲氧基丙烯酸酯类杀菌剂产生抗性的报道,其对嘧菌酯的抗性风险目前尚不清楚。为此,本研究以烟草赤星病菌敏感性菌株为对象,对其进行了嘧菌酯抗性突变体的诱导,并对突变体的生物学特性进行了研究,以期为嘧菌酯在烟草赤星病防治上应用提供参考。
1 材料与方法 1.1 病原菌及培养条件烟草赤星病菌A. alternata敏感菌株J6 (MK922251) 和C2 (MK803324),由贵州省烟草科学研究院微生物实验室分离并鉴定。其中,J6用于嘧菌酯抗性突变体诱导,J6和C2均用于烟草赤星病菌细胞色素b基因 (cyt b) cDNA的分析。马铃薯葡萄糖琼脂培养基 (PDA培养基:去皮马铃薯200 g、葡萄糖20 g、琼脂20 g、蒸馏水1 000 mL) 用于病原菌对嘧菌酯敏感性测定、分生孢子的诱导及病原菌的保存;马铃薯葡萄糖液体培养基 (PD培养基:去皮马铃薯200 g、葡萄糖20 g、蒸馏水1 000 mL) 用于病原菌的液体培养。
1.2 药剂及试剂99.9%嘧菌酯(azoxystrobin) 原药购自美国Sigma-Aldrich公司,溶于甲醇配成1.0 × 104 mg/L的母液;旁路氧化途径抑制剂水杨肟酸 (SHAM,99%) 购自美国Acros Organics公司,溶于甲醇配成1.0 × 105 mg/L的母液。用无菌水将上述母液稀释成系列浓度的药液,于4 ℃黑暗条件下保存,备用。药液中甲醇的体积分数小于0.5%,此浓度的甲醇不影响烟草赤星病菌分生孢子的萌发 (数据略)。以加入相同体积分数甲醇的处理作为空白对照。Fungal RAN Kit (D3390-01) 真菌RNA提取试剂盒,购自美国Omega Biotek Inc公司;FastQuant cDNA第一链合成试剂盒 (KR106),购自天根生化科技(北京)有限公司;PrimeSTAR® GXL Premix (Code No.R051) 酶,购自宝生物工程 (大连) 有限公司。
1.3 抗性突变体的诱导紫外诱变[20]:将敏感菌株J6于PDA平板上预培养4 d,在菌落边缘制取直径5 mm的菌碟,置于PDA平板上,25 ℃培养10 d后。用无菌水洗涤孢子,制成浓度为每毫升含1.0 × 105个分生孢子的悬浮液,备用。制备含100 mg/L嘧菌酯的PDA平板,吸取100 µL分生孢子悬浮液涂布于平板上,预培养2 h后,置于紫外灯下 (40 W,垂直距离15 cm) 照射20 min,照射后的平板置于25 ℃恒温培养箱中黑暗培养7 d。从长出的菌落边缘挑取少量菌丝继续培养,直至产孢,收集分生孢子并将其涂布于含100 mg/L嘧菌酯的PDA平板上进行萌发生长验证,能够正常生长的即为抗性突变体。
药剂驯化:在预培养4 d的菌落边缘打取直径 5 mm 的菌饼,接种于含500 mg/L嘧菌酯的 PDA 平板上,25 ℃恒温培养,直至扇形突变菌落出现。共处理 200 个菌饼,将获得的突变体在含500 mg/L嘧菌酯的平板上进行生长验证,能够正常生长的即为抗性突变体。
1.4 室内敏感性测定采用孢子萌发法[21]测定烟草赤星病菌敏感和抗性突变体对嘧菌酯的敏感性。分别将0.50 mL各浓度药液与0.50 mL孢子悬浮液混合均匀,取100 μL各浓度混合液滴于载玻片上,置于保湿培养皿中,28 ℃、黑暗条件下培养12 h。嘧菌酯单独作用时的最终供试质量浓度分别为0、6.25、12.5、25、50和100 mg/L;在100 mg/L水杨肟酸协同下,嘧菌酯的最终供试质量浓度分别为0、3.125、6.25、12.5、25、50和100 mg/L。当空白对照孢子萌发率达到90%以上时,检查各处理孢子萌发情况,以孢子芽管长度大于孢子的短半径时视为萌发。每处理重复3次,随机观察3个视野,调查孢子总数不少于200个,记录孢子萌发数及孢子总数,根据公式 (1) 和 (2) 分别计算药剂各浓度处理下的孢子萌发率及抑制率。
$ R/{\text{%}} = {N_{\rm{g}}}/{N_{\rm{t}}} \times 100 $ | (1) |
$ I/{\text{%}} = \left( {{R_0} - {R_{\rm{t}}}} \right)/{R_0} \times 100 $ | (2) |
式 (1) 中,R为孢子萌发率,Ng为孢子萌发数,Nt为检查孢子总数;式 (2) 中I为孢子萌发相对抑制率,R0为对照孢子萌发率,Rt为处理孢子萌发率。
1.5 适合度测定以敏感亲本菌株为对照,分别测定各抗药性突变体的菌丝生长能力、离体平板上的分生孢子产生量、分生孢子的萌发率及其对烟叶的致病力。
1.5.1 菌丝生长能力测定从预培养4 d的菌落边缘制取直径5 mm的菌饼,置于无药PDA平板中央,25 ℃黑暗条件下培养,6 d后按照“十字交叉法”量取菌落直径。每个菌株3次重复。
1.5.2 分生孢子产量与萌发率测定参照Caten等报道的孢子产量测定方法[21],测定各抗药性突变体在平板上的产孢子能力。在同一平板内,用5 mm直径打孔器分别在距菌落边缘2 mm处和距接菌饼2 mm处制取菌饼;从两处各随机挑取3个菌饼,合并置于2 mL离心管中。向离心管中加入1 mL无菌水,涡旋20 s洗下分生孢子,置于显微镜下检查孢子数量,计算单位面积上的产孢量。每菌株3次重复。分生孢子萌发能力测定按1.4节方法进行。
1.5.3 致病力测定采用离体叶片法[22 ]测定各抗药性突变体的致病力。每菌株选取3片无病的成熟期烟叶,于每叶片同一部位刺制相同的伤口,在伤口处接种直径5 mm的菌饼,置于28 ℃、相对湿度 > 80%、每天12 h光照/12黑暗条件下培养,5 d后观察各处理的发病情况。十字交叉法量取病斑直径,计算各突变菌株的致病面积,以发病面积评价其致病力 [23]。
1.6 cyt b基因cDNA扩增与序列分析将敏感菌株和突变体于PDA平板上预培养4 d后,在菌落边缘分别制取5个直径5 mm的菌碟,加入150 mL PD液体培养基中摇培4 d,无菌条件下过滤获得各菌株菌丝。采用Fungal RAN Kit,参照试剂盒使用说明提取亲本菌株和抗性突变体的RNA。利用FastQuant cDNA第一链合成试剂盒,将突变体和敏感菌株的RNA反转录成cDNA。利用全长引物 (RC205):RC205-UF (5′-ATGAGAATATTAAAAAGTCATTCAATT -3′) 和RC205-DR (5′-TATCATGATATATTAAAAAAAAGTTCG-3′) 对细胞色素b基因的cDNA全长序列进行PCR扩增,扩增条件为:PrimeSTAR® GXL Premix酶25 µL,RC205-UF及RC205-DR各1 µL,Template 2 µL,加重蒸水 21 µL 补足至50 µL体系。PCR循环条件为:95 ℃预变性3 min;94 ℃变性30 s,55 ℃退火90 s,72 ℃延伸60 s,共35个循环;最终于72 ℃延伸10 min。PCR产物经纯化后,参照质粒pMD19-T (TaKaRa,D102A) 的连接方法将其连至载体上,将验证后的转化子送生工生物工程上海 (股份) 有限公司测序,分析突变体cyt b的cDNA碱基及氨基酸变化情况。
1.7 数据分析采用Microsoft Excel 2010软件进行数据处理,以药剂浓度的对数值为横坐标,以对病原菌分生孢子萌发抑制率的对数值为纵坐标,建立线形回归方程,并进行相关性分析,计算嘧菌酯抑制孢子萌发的EC50值。通过DPS (7.05) 软件进行统计分析。根据公式 (3) 计算抗性突变体的抗性倍数 (RF) 。
$ {R_{\rm{F}}} = {\rm{E}}{{\rm{C}}_{{50}\left( {\rm{x}} \right)}}/{\rm{E}}{{\rm{C}}_{50}}{_{\left( {\rm{S}} \right)}} $ | (3) |
式中,EC50 (X)为被测菌株X的EC50值,EC50 (S)为敏感菌株的EC50值[23]。采用NCBI BLAST软件分析突变体与亲本菌株之间发生突变的碱基及氨基酸。
2 结果与分析 2.1 抗药性突变体的诱导结果表明,通过室内药剂驯化方式并未获得烟草赤星病菌对嘧菌酯的抗性突变体,而含药平板上的紫外诱导共获得7株抗性突变体,分别命名为6-1、6-3、6-5、6-7、6-8、6-9及6-11,诱变率为0.007%。
2.2 室内敏感性测定在0~100 mg/L测试质量浓度范围内,随着嘧菌酯处理浓度升高,对分生孢子萌发的抑制作用均逐渐增强 (表1)。其中,嘧菌酯100 mg/L单独作用时,亲本菌株J6分生孢子不能萌发,而突变体的均能萌发;在100 mg/L水杨肟酸的协同下,亲本菌株J6分生孢子在嘧菌酯质量浓度为6.25 mg/L时即不能萌发,而突变体除6-8外均能在嘧菌酯最高测试质量浓度 (100 mg/L) 下萌发。
研究表明,所有抗药性突变体对嘧菌酯的敏感性均有所降低:嘧菌酯单独作用时,抑制亲本菌株孢子萌发的EC50值为5.66 mg/L,而对突变体的EC50值均 > 50 mg/L;在100 mg/L水杨肟酸的协同下,对敏感菌株J6孢子萌发的EC 50值为0.22 mg/L,而突变体的EC50值均 > 1 mg/L ( 表2)。
2.3 抗药性突变体的生物学特性
测定结果表明,各突变体在菌丝生长速率、产孢量、孢子萌发能力及致病力上与亲本菌株相比均存在较大差异:除6-1外,其余6株突变体的菌丝生长速率均较亲本菌株快,其中最快的为6-5,其次分别 为6-3、6-9和6-8;各突变体产孢量均高于亲本菌株;各突变体的孢子萌发率均与亲本菌株相当;在致病力方面,所有突变体均能成功侵染烟草叶片,使其发病 (表3)。
2.4 抗性突变体和亲本菌株cyt b基因的cDNA序列分析
利用特异性引物RC205-UF和RC205-DR对敏感菌株和抗性突变体的cyt b基因进行PCR扩增,其扩增片段长度均在1 200 bp左右,产物经纯化、链接pMD19-T载体及测序,成功获得了亲本菌株J6 (MK922251) 和突变体cyt b基因的cDNA全长序列。比对分析表明:烟草赤星病菌敏感菌株J6和C2的cyt b基因cDNA序列完全相同;3株抗性突变体 (6-1、6-3和6-5) 与亲本菌株在cyt b基因上完全一致,未出现核苷酸突变;其余4株抗性突变体 (6-7、6-8、6-9和6-11) 的cyt b基因cDNA则在不同位点上产生了变异。其中,突变体6-7在249位和871位、6-8在734位均发生了点突变,由核苷酸T突变为C;突变体6-9在510位由核苷酸T突变为A;菌株6-11在732位由核苷酸T突变为A,在776位由核苷酸T突变为C,在1 156位由核苷酸A突变为G (表4)。
cDNA编码氨基酸差异性分析表明:与亲本菌株相比,突变体6-8在245位由缬氨酸V突变为丙氨酸A;6-9在170位由丝氨酸S突变为精氨酸R (S170R);6-11在244位由苯丙氨酸F替代了亮氨酸L,在259位由丙氨酸A替代了缬氨酸V;突变体6-1、6-3、6-5及6-7则均未发生氨基酸突变 (表4)。
3 讨论与结论烟草赤星病发生历史悠久,造成的经济损失严重,在基础病理学方面的研究已经取得一定进展,但由于受其病原菌生理小种多变及防治技术落后等诸多因素影响,赤星病至今仍严重威胁着中国的烟草生产[24-25]。嘧菌酯作为一种高效、广谱的杀菌剂,可抑制多种真菌 (子囊菌、担子菌和卵菌) 孢子的萌发及产生,也可抑制菌丝体的生长[26],目前已在70余个国家的80多种作物上获准登记,广泛应用于多种植物上由链格孢属 (Alternaria spp.) 真菌所致病害的防治。嘧菌酯于2001年开始在中国登记,主要用于链格孢属所引起的番茄早疫病等病害的防治。虽然嘧菌酯在欧美等国已被用于赤星病的防治,但目前在中国尚未在烟草上正式登记,其原因可能与经济成本及烟草行业监管政策等有关。
关于病原菌对嘧菌酯抗性的问题已有大量报道。程玉峰报道马铃薯晚疫病菌Phytophthora infestans对嘧菌酯的抗性已达52.87倍[27]。中国境内草莓灰霉病菌Botrytis cinerea对嘧菌酯的抗性较为普遍,抗性倍数可达100倍以上,且大部分为中等抗性水平[26]。孟润杰等报道,河北省黄瓜霜霉病菌Pseudoperonospora cubensis对嘧菌酯的抗性倍数已高达354倍[28]。本研究通过分生孢子紫外诱变获得了7株烟草赤星病菌对嘧菌酯的抗性突变体,突变几率低,抗性水平也不高,其中抗性倍数在3~15的有5株,> 25倍的有2株。生物适合度测定发现,抗性菌株的分生孢子萌发能力和致病力与敏感菌株差异不明显,其菌丝生长速率及产孢量与亲本菌株之间则存在差异,这可能与赤星病菌的遗传变异能力较强有关。由此推测,在大田药剂选择压力条件下,烟草赤星病菌群体有可能出现适应能力较强的抗嘧菌酯突变体。但本研究中通过紫外诱导获得的突变体在田间环境条件下的实际适应能力及其与野生敏感菌株在田间的竞争力等还有待于进一步研究。
据报道,真菌对嘧菌酯的抗性与细胞色素b基因 (cyt b) 的突变有关,主要包括G143A[11]、F129L和G137R[17-18] 3种突变类型,且G143A突变的抗性倍数一般在100以上,F129L和G137R突变的抗性倍数通常在5~15之间,少数可能大于50[29]。本研究检测突变体的cyt b基因潜在位点均未见发生突变,而是出现了其他突变位点:V245A、S170R、L244 F和V 259A。本研究首次发现了新的cyt b基因突变位点,这可能与紫外诱变的随机性有关,也可能与链格孢的遗传变异能力有关,也或者是由于烟草赤星病菌对嘧菌酯确实存在靶标基因以外的突变位点。为此,下一步仍需继续研究烟草赤星病菌对嘧菌酯产生抗药性的潜在分子机理。
目前国际杀菌剂抗性行动委员会 (FRAC) 尚未对烟草赤星病菌进行抗药性风险评价。本研究采用药剂驯化方式未获得抗嘧菌酯的烟草赤星病菌突变体,仅通过紫外诱导获得了部分抗性突变体,其田间的实际突变情况还有待进一步考证,紫外诱导所获抗性突变体的抗药性能否稳定遗传等也还有待研究。
烟草赤星病菌在一个生产季可造成多次再侵染,同时产生大量的分生孢子,这些孢子通过刮风、降雨等途径可以很容易地相互融合,从而进行遗传物质的交换与重组。虽然目前尚未发现田间烟草赤星病菌对嘧菌酯产生抗药性的报道,但在使用该类药剂防治烟草赤星病时也不应忽视其抗性风险管理,应同样加强田间抗药性监测,制定合理的抗性治理策略,在早期监测预报的基础上,交替或混合施用作用机理不同的杀菌剂,并实施精准用药,在发病前或发病初期施药,避免在发病较重时进行铲除性施药等。
本研究通过紫外诱导获得了烟草赤星病菌抗嘧菌酯的突变体,考查了突变体的生物学性状,并初步探究了其抗性机理。由于研究尚处于初级室内试验阶段,所得相关结果仅可为烟草赤星病菌对嘧菌酯的抗性风险评估提供参考,后续还将继续深入开展研究。
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