南京农业大学学报  2018, Vol. 41 Issue (2): 308-320   PDF    
http://dx.doi.org/10.7685/jnau.201703026
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向亚男, 黄蕊蕊, 顾婷婷, 甘立军
XIANG Yanan, HUANG Ruirui, GU Tingting, GAN Lijun
基于RNA-Seq的拟南芥不定芽再生过程的基因表达谱分析
Analysis of RNA-Seq-based expression profiles during adventitious shoot regeneration in Arabidopsis thaliana
南京农业大学学报, 2018, 41(2): 308-320
Journal of Nanjing Agricultural University, 2018, 41(2): 308-320.
http://dx.doi.org/10.7685/jnau.201703026

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收稿日期: 2017-03-21
基于RNA-Seq的拟南芥不定芽再生过程的基因表达谱分析
向亚男1 , 黄蕊蕊2 , 顾婷婷2 , 甘立军1     
1. 南京农业大学生命科学学院, 江苏 南京 210095;
2. 南京农业大学园艺学院, 江苏 南京 210095
摘要[目的]本研究旨在分析拟南芥愈伤组织形成和不定芽再生2个阶段基因的差异表达情况,探究不定芽再生背后的相关基因调控机制。[方法]采用拟南芥不定芽再生两步培养法培养根外植体,利用RNA-Seq高通量测序技术分别对愈伤组织诱导培养基(CIM)培养0 d根外植体(C0)、CIM培养4 d根外植体(C4)、芽诱导培养基(SIM)培养3 d根外植体(S3)进行基因测序,利用软件分析基因表达情况。[结果]将C4的基因表达量和C0进行比对,共检测到4 332个差异表达基因,其中1 399个基因表达上调,2 933个基因表达下调;在不定芽再生阶段(S3与C4的基因表达量进行比对)检测到2 910个差异表达的基因,其中2 231个基因表达上调,679个基因表达下调。对差异表达基因进行转录物功能注释分析发现:明显富集的功能分类多与激素合成、代谢等生物过程有关。在愈伤组织形成阶段一些与细胞分裂素分解代谢相关的CKX基因和与生长素活性相关的GH3家族基因表达量明显增加,而与细胞分裂素合成相关的多个基因表达量却明显降低。在不定芽再生阶段与细胞分裂素合成相关基因表达量明显增加,CKX家族部分成员表达量则明显降低。同时,还发现多个转录因子基因表达量在不同阶段发生显著变化,比如AP2/EREBP家族的部分成员。[结论]对拟南芥不定芽再生过程基因表达谱进行检测和对比分析,获得了大量基因表达谱分析数据,为揭示不定芽再生过程的基因调控机制提供了有效的数据和理论依据。
关键词拟南芥   不定芽再生   两步培养法   RNA-Seq   基因表达   植物激素   
Analysis of RNA-Seq-based expression profiles during adventitious shoot regeneration in Arabidopsis thaliana
XIANG Yanan1, HUANG Ruirui2, GU Tingting2, GAN Lijun1    
1. College of Life Sciences, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China;
2. College of Horticulture, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China
Abstract: [Objectives] To study the underlying regulation mechanisms of adventitious shoot regeneration, we analyzed the dynamic transcriptome profiles of two step procedure during Arabidopsis thaliana adventitious shoot regeneration. [Methods] In this study, adventitious shoots were regenerated from root explants through the two-step process which means preincubation on an auxin-rich callus induction medium(CIM) before transferred to a cytokinin-rich shoot induction medium(SIM). We obtained the transcriptome data from three developmental time-points(0, 4 d on CIM and 3 d on SIM in vitro culture). [Results] To identify the differentially expressed genes(DEGs) during callus formation, we compared the expression profiles of 4 d CIM to 0 d CIM and detected 4 332 DEGs in total, among which 1 399 genes were upregulated and 2 933 were downregulated. Moreover, we identified DEGs during adventitious shoot regeneration by comparing expression profiles of 3 d SIM to 4 d CIM. Finally, we identified a total of 2 910 DEGs including 2 231 up-regulated and 679 down-regulated genes. We performed the Gene Ontology(GO) enrichment analysis of the DEGs and our suggested that those genes with highly enriched GO terms were associated with phytohormone biosynthesis and degradation. During callus formation, some genes involved in cytokinin oxidase CKX and indole-3-acetic acid amido synthetase GH3 gene family were highly expressed, while some members of cytokinin synthetase were downregulated. During adventitious shoot regeneration, some genes related to cytokinin synthetase were upregulated, and member genes of CKX family were downregulated. Additionally, we investigated the expression changes of some transcription factor during the two different stages, including AP2/EREBP family members. [Conclusions] Here, we compared and analyzed the transcriptome profiles of two stages during adventitious shoot regeneration of Arabidopsis by RNA sequencing technology. The transcriptome data will provide a valuable reference for future research on regulatory mechanisms underlying plant adventitious shoot regeneration.
Key words: Arabidopsis thaliana    adventitious shoot regeneration    two-step process    RNA-Seq    gene expression    phytohormone   

植物不定芽的再生是一个多级发育过程, 其中包括体细胞对于植物激素信号的感知与传递、启动细胞分裂增殖、获得具有器官再生能力的去分化以及形成器官的再分化过程[1-3]。1986年, Feldmann等[4]建立了拟南芥不定芽再生的高效培养体系。首先将拟南芥外植体预培养在富含生长素的愈伤组织诱导培养基(callus induction medium, CIM)上, 再将外植体移至富含细胞分裂素的芽诱导培养基(shoot induction medium, SIM)[5-6]。不定芽再生被广泛运用于植物快速繁殖和作物遗传改良等生物技术过程中[1, 7]。因此, 深入研究两步培养法中不定芽发生的机制具有重要的理论和应用价值。

拟南芥过量表达细胞分裂素的hoc突变体在不含植物激素的培养基上能由根外植体发育形成完整植株[8], 而过量表达细胞分裂素负调控因子A型ARR则会抑制不定芽的形成[9]。对生长素应答启动子DR5的研究发现, 在诱导愈伤组织阶段生长素响应被显著促进[10]。不定芽再生过程早期生长素相关基因如AUX/IAA在CIM预培养时表达量上调[11]。细胞分裂素调节基因在SIM上培养时表达量上调[12], SIM培养基上芽的形成会促进芽顶端分生组织细胞分裂素响应信号的再分布[13]。此外, 生长素和细胞分裂素信号途径还会调节芽感应能力, 诱导其他基因的表达。CUC2(CUP-SHAPED COTYLEDON2)基因的表达在增殖的愈伤组织中明显上调[14]。而一些与分生组织形成相关的基因比如WUS(WUSCHEL)、CLV3(CLAVATA3)等基因则不在愈伤组织中表达[13]。还有研究表明在芽出现之前许多编码信号和转录元件的基因显著上调, 在这些阶段有大量基因调节活动在发生改变[15], 因此深入探讨在愈伤组织形成及离体芽再生阶段相关基因的表达及其与植物激素的关系, 对于研究不定芽再生的分子机制具有重要意义。

Xu等[16]利用基因芯片技术对愈伤组织形成阶段的根外植体和地上部外植体进行了动态转录组分析, 发现过量表达转录因子HB52CRF3的外植体在不添加生长素的培养基上也能产生愈伤组织。Che等[11]利用基因芯片技术研究了拟南芥3种再生途径的基因表达情况, 发现了一系列可以作为不同发育过程分子标签的基因。这些研究在一定程度上揭示了部分发育过程的基因调控机制, 但所使用基因探针数目有限, 只能检测到有限基因的改变。我们采用了RNA-Seq技术对两步培养法中愈伤组织形成阶段及不定芽再生阶段基因的表达情况进行了测序、比较和分析, 发现两个阶段众多差异表达的基因及转录物功能单位, 并对显著富集的生长素与细胞分裂素合成代谢途径相关基因进行了分析, 为揭示不定芽发生的分子和激素调控机制提供理论依据。

1 材料与方法 1.1 试验材料

植物材料拟南芥为Columbia生态型(Col-0)。1/2 MS培养基为自配。RNA提取试剂盒、反转录试剂盒等均购自TaKaRa公司。

1.2 愈伤组织生成及不定芽再生培养

拟南芥种子经春化、消毒后直线播撒在含1/2 MS培养基的培养皿上, 置于22 ℃、16 h光照/8 h黑暗的条件下培养。培养7 d后, 随机切取根尖5 mm的根段, 将切取的根段外植体放在富含生长素的愈伤组织诱导培养基(CIM, 含2.2 μmol·L-1 2, 4-氯化苯氧乙酸, 0.2 μmol·L-1激动素的B5培养基)上培养4 d后, 再将外植体转移至芽诱导培养基(SIM, 含5.0 μmol·L-1异戊烯基腺嘌呤, 0.9 μmol·L-1 3-吲哚乙酸的B5培养基)上继续培养, 培养温度为21 ℃, 光照24 h。

1.3 总RNA的提取

分别取CIM培养基上培养0 d(C0), CIM培养4 d(C4)和SIM培养3 d(S3)的拟南芥根外植体提取总RNA, 每个样本点进行3个生物学重复。为了保证提取RNA的质量, 每个时间点选取150个根外植体。采用RNeasy Plant Mini Kit(Tiagen, China)提取总RNA。利用DNase Ⅰ(Qiagen, UK)对样品中DNA进行消化处理。所有RNA样本用10 g·L-1琼脂糖凝胶电泳检查RNA样本的完整性, 然后用紫外分光光度计测量RNA浓度, 分析D260/D280D260/D230值, 检验RNA样品的浓度和纯度。

1.4 建立cDNA文库和Illumina测序

通过带有Oligo(dT)的磁珠富集mRNA, 富集的mRNA利用Oligo(dT)引物和反转录酶合成cDNA的第1、2条链。经限制性内切酶NlaⅢ剪切后, 对所得的cDNA片段进行纯化, 末端修复及3′末端加‘A’碱基, 并将DNA片段两端连接上特定的测序接头。电泳回收105 bp大小的DNA片段, PCR扩增富集测序样本。以上具体试验操作步骤均按照Illumina Gene Expression Sample Prep Kit说明书进行。随后将已加入接头的DNA片段绑定在流通池(flow cell)上进行反应, 扩增不同片段。在下一步反应中, 4种荧光标记的染料采用边合成边测序(sequencing by synthesis)的原理, 使用Illumina HiSeqTM 2000 system对文库进行测序。

1.5 数据分析

拟南芥参考基因序列来自Illumina iGenomes网站(http://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/igenome.html;Arabidopsis_thaliana_Ensembl_TAIR10.tar.gz), 使用TopHat 2.0.6(http://ccb.jhu.edu/software/tophat/index.shtml)将得到的有效读段(clean reads)分别比对到拟南芥参考基因序列(TAIR10)。利用Bowtie 2(http://bowtie bio.sourceforge.net/index.shtml)将所得的clean reads对应到拼接好的转录物上, 比较不同样品间基因的表达差异, 使用FPKM法来计算基因表达量。通过比较不同时间点的转录水平(FPKM)来计算差异倍数(fold change, FC)。将错误发现率(false discovery rate, FDR)≤0.05, 且差异倍数不低于2倍(即log2[FC]的绝对值≥1)的基因确定为差异表达基因, 并比较了与细胞分裂素、生长素以及芽顶端分生组织相关基因的差异表达情况。通过DAVID(https://david.ncifcrf.gov/home.jsp)工具对转录物序列进行GO(Gene Ontology)功能注释和GO功能分类统计。在GO功能注释及分类统计时, 将P≤0.05的GO定义为显著富集。

2 结果与分析 2.1 RNA-Seq测序和评估

本研究采用两步培养体系来再生不定芽, 首先在富含生长素的CIM上对外植体进行预培养诱导其伤口形成愈伤组织, 然后转至富含细胞分裂素的SIM上诱导不定芽的形成(图 1-A)[17]。拟南芥在CIM上预培养4 d(C4)后, 在根外植体端点部分出现膨大, 逐渐形成愈伤组织。再将其移至SIM培养基, 培养3 d(S3)外植体膨大更明显, 培养至6 d(S6)后根外植体上可见绿点, 继续培养绿点颜色逐渐加深。在SIM上培养至20 d(S20)明显可见不定芽的形成(图 1-B)。分别提取C0、C4和S3时间点的总RNA, 构建cDNA文库, 进行RNA-Seq试验。

图 1 拟南芥芽再生培养体系 Figure 1 The in vitro shoot regeneration system with root explants in Arabidopsis thaliana A.拟南芥不定芽再生培养体系, 红色箭头所指为提取RNA的3个时间点; C0、C4、S3、S6、S20分别代表CIM培养0 d、CIM培养4 d、SIM培养3 d、SIM培养6 d、SIM培养20 d。下同。
B.5个不同时期拟南芥根外植体的生长状态, 标尺=500 μm。
A.The in vitro shoot regeneration system using root as explants in Arabidopsis thaliana, red arrows show times during development when RNA samples were taken; C0, C4, S3, S6 and S20 presented 0 d on CIM, 4 d CIM, 3 d SIM, 6 d SIM, 20 d SIM, respectively. The same as follows.
B.The pictures of Arabidopsis thaliana root explants in different stages of de novo shoot regeneration, bar=500 μm.

采取C0、C4和S3三个时间点样本进行RNA-Seq分析, 将3个时间点样本分别与拟南芥参考基因进行比对, 统计所得有效读段数及其有效读段的比例(表 1)。

表 1 样品C0、C4和S3分别与拟南芥参考基因的比对结果 Table 1 Alignment statistics of C0, C4, S3 to A.thaliana reference genes
指标Index C0-Ⅰ C0-Ⅱ C0-Ⅲ C4-Ⅰ C4-Ⅱ C4-Ⅲ S3-Ⅰ S3-Ⅱ S3-Ⅲ
匹配读段数/106 Total number of mapped reads 34.6 34.6 36.0 36.0 37.9 36.0 37.0 36.1 35.4
匹配读段所占比例/% Mapped reads percentage 81.7 84.8 85.3 86.3 85.5 85.1 85.6 85.4 84.8
Read-1*/106 21.2 20.4 21.1 20.9 22.1 21.1 21.6 21.1 20.9
Read-2*/106 21.2 20.4 21.1 20.9 22.1 21.1 21.6 21.1 20.9
未匹配读段数/106 Total number of unmapped reads 7.7 6.2 6.2 5.7 6.4 6.3 6.2 6.1 6.3
注: Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ代表不同取样时间点的3个生物学重复; Read-1*和Read-2*分别表示正义链和反义链的有效读段(clean reads)数。
Note: Ⅰ, Ⅱ and Ⅲ presented 3 biological repeats of different sampling points; Read-1* and Read-2* showed forward and reverse primer derived reads, respectively.
2.2 拟南芥愈伤组织形成阶段差异表达的基因及转录物功能注释与分类

为了检测在愈伤组织形成阶段基因的差异表达情况, 我们将C4时间点的基因表达量和C0时间点的进行了比对。FDR≤0.05且差异倍数不低于2倍(|log2FC(C4/C0)|≥1)的基因确定为差异表达基因。依据这些标准, 我们共检测到4 332个差异表达基因, 有1 399个基因上调, 2 933个基因下调。表 2为C4与C0(愈伤组织形成阶段)比较前50个差异基因。最显著上调的基因AT3G59580编码转录因子Nin-like家族蛋白。另有编码转录因子TCP家族蛋白的基因AT3G18550、LBD19基因AT2G45410和WRKY 63基因AT1G66600显著上调。另外, 一些与胚胎形成相关的基因如晚期胚胎富集蛋白基因(late embryogenesis abundant protein genes, LEA):AT4G21020、AT2G03740、AT2G03850也明显上调。编码与生长素相关的GH3.12(AT5G13320)、GH3.3(AT2G23170)及编码细胞分裂素氧化酶2(cytokinin oxidase 2, CKX2, AT2G19500)的基因也发生了变化。

表 2 拟南芥愈伤组织形成阶段前50个差异表达的基因 Table 2 Top 50 differentially expressed genes during callus formation of A.thaliana
基因ID
Gene ID
差异倍数
log2FC(C4/C0)
P
P-value
错误发现率
FDR
功能注释
Descriptions
表达量增加的基因 Up-regulated genes
 AT3G59580 10.960 600 1.12E-141 3.63E-140 转录因子 NLP9 Transcription factor NLP9
 AT3G45760 10.493 980 2.43E-64 2.63E-63 核苷酸转移酶家族蛋白 Nucleotidyltransferase family protein
 AT1G33960 10.167 820 3.17E-71 3.82E-70 核苷三磷酸水解酶 AIG1 Nucleoside triphosphate hydrolases AIG1
 AT5G58390 9.407 965 7.10E-120 1.78E-118 过氧化物酶 67 Peroxidase 67
 AT3G13630 9.350 780 9.41E-71 1.12E-69 未知蛋白 Unknown protein
 AT5G52730 9.234 108 1.08E-45 7.93E-45 铜运输蛋白 Copper transport protein
 AT1G74140 9.121 313 3.13E-51 2.61E-50 膜内丝氨酸蛋白酶家族蛋白 Intramembrane serine protease family protein
 AT3G60420 9.011 520 1.33E-137 4.06E-136 磷酸甘油酸变位酶家族蛋白 Phosphoglycerate mutase family protein
 AT5G24210 8.997 218 3.08E-40 1.99E-39 α/β水解酶超家族蛋白 Alpha/beta-Hydrolases superfamily protein
 AT1G56710 8.900 146 1.11E-104 2.23E-103 果胶裂解酶类似物家族蛋白 Pectin lyase-like family protein
 AT5G59810 8.823 784 1.69E-33 9.25E-33 亚麻酶家族蛋白 SBT5.4 Subtilase family protein SBT5.4
 AT3G28510 8.771 441 2.28E-124 5.98E-123 含有P环的核苷三磷酸水解酶超家族蛋白 P-loop containing nucleoside triphosphate hydrolases superfamily protein
 AT2G26400 8.652 720 2.31E-184 1.20E-182 顺式还原酮加双氧酶 3 Acireductone dioxygenase 3
 AT5G24200 8.607 502 1.95E-78 2.65E-77 α/β水解酶超家族蛋白 Alpha/beta-Hydrolases superfamily protein
 AT5G56810 8.589 908 1.93E-30 9.63E-30 含有F-box结构域的蛋白 F-box domains-containing protein
 AT4G31870 8.231 147 1.83E-26 8.11E-26 谷胱甘肽过氧化物酶 7 Glutathione peroxidase 7
 AT4G21020 8.200 845 2.23E-58 2.18E-57 晚期胚胎富集蛋白 Late embryogenesis abundant protein(LEA)family protein
 AT5G13320 8.177 742 1.62E-157 6.25E-156 生长素响应家族蛋白GH3.12 Auxin-responsive GH3 family protein GH3.12
 AT2G19500 8.126 221 4.74E-23 1.88E-22 细胞分裂素脱氢酶2 Cytokinin dehydrogenase 2
 AT4G31380 8.014 105 2.28E-168 1.00E-166 FPF1类似蛋白 FPF1-like protein 1
 AT5G24160 7.987 202 1.41E-17 4.65E-17 鲨烯环氧酶6 Squalene epoxidase 6 SQE6
 AT2G03740 7.985 489 1.71E-22 6.64E-22 含有LEA结构域的蛋白 LEA domain-containing protein
 AT2G03850 7.984 408 8.52E-246 8.10E-244 晚期胚胎富集蛋白 LEA family protein
 AT2G23170 7.966 611 0 0 生长素响应家族蛋白GH3.3 Auxin-responsive GH3 family protein GH3.3
 AT5G59390 7.916 237 4.03E-81 5.69E-80 含有XH/XS结构域的蛋白 XH/XS domain-containing protein
 AT2G18140 7.868 948 9.43E-113 2.14E-111 过氧化物酶14 Peroxidase 14
 AT3G18550 7.853 049 1.16E-20 4.23E-20 转录因子TCP18 Transcription factor TCP18
 AT5G09970 7.833 744 3.43E-69 4.01E-68 细胞色素CYP78A7 Cytochrome CYP78A7
 AT5G59330 7.779 557 1.60E-21 6.03E-21 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
 AT2G05380 7.755 803 7.09E-155 2.66E-153 富含甘氨酸蛋白S3 Glycine-rich protein S3
 AT4G11890 7.743 940 1.46E-15 4.46E-15 蛋白激酶超家族蛋白ARCK1 Protein kinase superfamily protein ARCK1
 AT1G71150 7.670 446 1.42E-121 3.63E-120 未知蛋白 Unknown protein
 AT2G45410 7.666 772 8.77E-155 3.28E-153 转录因子LBD19 Transcription factor LBD19
 AT5G16980 7.654 911 8.60E-76 1.12E-74 锌结合脱氢酶家族蛋白 Zinc-binding dehydrogenase family protein
 AT1G66600 7.645 328 2.87E-89 4.65E-88 转录因子WRKY63 Transcription factor WRKY63
 AT1G22090 7.643 044 8.84E-20 3.14E-19 蛋白质EMB2204 Protein EMB2204
 AT1G52130 7.624 207 3.62E-38 2.23E-37 甘露糖结合凝集素超家族蛋白 Mannose-binding lectin superfamily protein
 AT3G57260 7.608 860 6.66E-19 2.29E-18 葡聚糖酶BGL2 Glucanase BGL2
 AT5G52700 7.588 621 7.04E-16 2.18E-15 铜转运蛋白 Copper transport protein
 AT1G65680 7.583 108 3.95E-30 1.95E-29 扩张蛋白B2 Expansin-B2
 AT2G05540 7.544 622 7.93E-142 2.57E-140 富含甘氨酸蛋白 Glycine-rich protein
 AT4G24000 7.488 220 6.86E-18 2.28E-17 纤维素合酶类似蛋白G2 Cellulose synthase-like protein G2
 AT2G02320 7.447 018 3.97E-15 1.19E-14 韧皮部蛋白PP2-B7 Phloem protein PP2-B7
 AT1G29100 7.445 327 2.33E-17 7.59E-17 重金属转运蛋白 Heavy metal transport protein
 AT5G22980 7.442 985 1.10E-13 3.12E-13 丝氨酸羧肽酶类似物47 Serine carboxypeptidase-like 47
 AT1G67770 7.408 316 1.16E-145 3.93E-144 末端EAR1类似物2 Terminal EAR1-like 2
 AT3G12900 7.404 723 2.10E-15 6.38E-15 亚铁依赖型加氧酶超家族蛋白 Fe(Ⅱ)-dependent oxygenase superfamily protein
 AT1G11600 7.401 719 9.83E-293 1.40E-290 细胞色素CYP77B1 Cytochrome CYP77B1
 AT2G41850 7.339 567 0 0 聚半乳糖醛酸酶ADPG2 Polygalacturonase ADPG2
 AT5G25040 7.326 759 2.99E-41 1.98E-40 未知蛋白 Unknown protein
表达量减少的基因 Down-regulated genes
 AT3G19710 -14.741 6 8.85E-201 5.31E-199 蛋氨酸转氨酶BCAT4 Methionine aminotransferase BCAT4
 AT3G01190 -13.907 7 4.31E-310 6.93E-308 过氧化物酶27 Peroxidase 27
 AT4G22666 -13.640 5 1.35E-224 1.05E-222 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
 AT1G54970 -13.421 1 2.24E-157 8.61E-156 富含脯氨酸蛋白1(PRP1)Proline-rich protein 1
 AT5G42180 -13.291 5 0 0 过氧化物酶64 Peroxidase 64
 AT2G39510 -12.923 8 2.77E-59 2.75E-58 WAT1相关蛋白 WAT1-related protein
 AT3G18200 -12.893 6 3.43E-284 4.65E-282 EamA转运类似物家族蛋白 EamA-like transporter family protein
 AT5G57625 -12.716 7 1.21E-98 2.26E-97 CAP超家族蛋白 CAP superfamily protein
 AT4G13770 -12.617 1 2.31E-225 1.82E-223 细胞色素P45083A1 Cytochrome P45083A1
 AT2G36100 -12.584 0 0 0 凯式带膜蛋白1 Casparian strip membrane protein 1
 AT3G01260 -12.524 1 2.96E-198 1.74E-196 半乳糖变旋酶类似物超家族蛋白 Galactose mutarotase-like superfamily protein
 AT1G31050 -12.513 2 2.41E-242 2.25E-240 bHLH DNA结合超家族蛋白 bHLH DNA-binding superfamily protein
 AT3G05920 -12.501 0 3.29E-233 2.77E-231 重金属转运蛋白 Heavy metal transport protein
 AT1G14220 -12.416 1 8.55E-172 3.90E-170 核糖核酸酶T2家族蛋白 Ribonuclease T2 family protein
 AT1G19900 -12.396 0 3.35E-127 9.10E-126 乙二醛氧化酶相关蛋白 Glyoxal oxidase-related protein
 AT1G64780 -12.393 6 0 0 铵基转运物1 Ammonium transporter 1
 AT1G12090 -12.347 8 1.57E-148 5.45E-147 伸展蛋白类似蛋白Extensin-like protein
 AT2G43880 -12.244 8 1.67E-149 5.86E-148 果胶裂解酶类似物超家族蛋白 Pectin lyase-like superfamily protein
 AT3G06460 -12.233 0 2.78E-221 2.08E-219 GNS1/SUR4膜蛋白家族GNS1/SUR4 membrane protein family
 AT5G36140 -12.206 3 2.14E-53 1.86E-52 细胞色素CYP716A2 Cytochrome CYP716A2
 AT3G55230 -12.021 2 0 0 抗病响应家族蛋白 Disease resistance-responsive family protein
 AT1G73330 -11.963 0 0 0 干旱抑制蛋白4(DR4)Drought-repressed 4
 AT2G15370 -11.876 6 2.94E-126 7.86E-125 岩藻糖转移酶5 Fucosyltransferase 5
 AT1G14160 -11.805 8 4.32E-165 1.80E-163 CASP类似蛋白1A1 CASP-like protein 1A1
 AT5G46900 -11.785 4 3.66E-214 2.60E-212 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
 AT4G25250 -11.731 8 1.32E-99 2.50E-98 果胶甲酯酶抑制物家族蛋白 Pectin methylesterase inhibitor family protein
 AT1G65310 -11.695 1 1.59E-189 8.52E-188 木葡聚糖水解酶17 Xyloglucan hydrolase 17
 AT5G44130 -11.684 0 8.69E-38 5.29E-37 类似FASCICLIN的阿拉伯半乳聚糖蛋白13前体FASCICLIN-like arabinogalactan protein 13 precursor
 AT4G08410 -11.624 3 2.33E-120 5.86E-119 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT5G15150 -11.616 2 3.84E-168 1.67E-166 转录因子HB-3 Transcription factor HB-3
 AT5G06630 -11.585 3 7.84E-89 1.26E-87 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT3G45680 -11.555 5 5.06E-193 2.78E-191 蛋白NRT1/PTR家族2.3 Protein NRT1/PTR FAMILY 2.3
 AT5G61420 -11.541 6 1.63E-241 1.50E-239 转录因子MYB28 Transcription factor MYB28
 AT4G14060 -11.498 0 4.71E-89 7.58E-88 多聚乙酰环化酶和脂质转运物超家族蛋白Polyketide cyclase and lipid transport superfamily protein
 AT3G21180 -11.492 8 1.47E-113 3.38E-112 钙离子运输ATP酶9 Calcium-transporting ATPase 9
 AT2G28780 -11.472 3 1.60E-126 4.29E-125 未知蛋白 Unknown protein
 AT3G28290 -11.443 1 3.10E-90 5.10E-89 跨膜蛋白AT14A Transmembrane protein AT14A
 AT1G47600 -11.420 4 0 0 芥子酶4 Myrosinase 4
 AT4G13390 -11.419 6 2.97E-125 7.84E-124 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT5G04960 -11.419 2 1.69E-151 6.07E-150 果胶酯酶抑制物Pectinesterase inhibitor
 AT4G22217 -11.394 7 8.19E-144 2.72E-142 防御素类似物蛋白100 Defensin-like protein 100
 AT4G15290 -11.387 7 2.43E-60 2.46E-59 纤维素合酶类似物蛋白B5 Cellulose synthase-like protein B5
 AT4G30170 -11.358 9 0 0 过氧化物酶45 Peroxidase 45
 AT2G34910 -11.303 8 5.65E-161 2.26E-159 未知蛋白 Unknown protein
 AT1G20190 -11.291 9 1.61E-208 1.06E-206 扩张蛋白A11 Expansin-A11
 AT3G60280 -11.268 6 6.47E-90 1.06E-88 蛋白质UCC3 Protein UCC3
 AT4G11320 -11.216 6 0 0 半胱氨酸蛋白酶Cysteine proteinase
 AT2G37700 -11.192 9 1.34E-132 3.90E-131 蛋白CER1类似物2 Protein CER1-like 2
 AT3G53980 -11.176 4 3.17E-155 1.19E-153 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
AT5G14330 -11.157 5 3.52E-149 1.23E-147 跨膜蛋白 Transmembrane protein
Note:FDR:False discovery rate. The same as follows.

同时, 我们也分析了愈伤组织形成阶段下调的基因, 发现下调倍数最高的基因AT3G19710编码蛋氨酸转氨酶BCAT4。BCAT4转录物可由伤害诱导在韧皮部大量积累[18]。另几个明显下调的基因AT3G01190、AT5G42180和AT4G30170, 它们都编码第三类过氧化物酶, 这一类酶与生长素的分解代谢、创伤愈合、木质化等功能相关。编码凯氏带膜域蛋白1(casparian strip membrane domain protein 1, CASP1)的基因AT2G36100表达量也出现下降。CASPs在细胞壁的修饰方面具有重要的指导作用, 它通过与分泌型过氧化物酶的相互作用来调节木质素的沉积和凯氏带的形成[19]。另外编码转录因子bHLH DNA结合家族蛋白(AT1G31050)、HD-ZIP homeobox 3(AT5G15150)、MYB28(AT5G61420)的基因明显表达下调。

此外, 我们还利用Gene Ontology(GO)功能注释分类体系分别对2个阶段差异基因进行功能注释和分析。在GO功能分类体系中, 我们发现愈伤组织形成阶段差异表达的4 332个基因中有4 137条转录物具有具体功能定义。它们分别富集在3个功能范畴, 这3个功能可被划分为更详细的446个类别, 其中生物学过程有282个功能亚类, 细胞组分有29个功能亚类, 分子功能有135个。图 2为愈伤组织形成阶段前20个显著富集的差异基因功能条目, 从图 2可以看出:核转录因子活性、激素刺激响应、生长素刺激响应、生长素信号调节通路、激素水平调节等是显著富集的功能条目。

图 2 拟南芥愈伤组织形成阶段前20个显著富集的转录物GO功能 Figure 2 TOP 20 highly enriched GO(Gene Ontology)terms during the callus formation of A.thaliana A.显著上调的富集转录物功能条目。The upregulated gene subsets with annotated GO terms. 1.转录调节 Regulation of transcription; 2.有机物质反应 Response to organic substance; 3.激素刺激响应 Response to hormone stimulus; 4.内源刺激响应 Response to endogenous stimulus; 5.转录 Transcription; 6.依赖DNA的转录调节 Regulation of transcription, DNA-dependent; 7.RNA代谢调节 Regulation of RNA metabolic process; 8.激素刺激细胞反应 Cellular response to hormone stimulus; 9.激素信号 Hormone-mediated signaling; 10.生长素刺激响应 Response to auxin stimulus; 11.乙烯刺激响应 Response to ethylene stimulus; 12.子叶发育 Cotyledon development; 13.生长素信号调节通路 Auxin mediated signaling pathway; 14.激素水平调节 Regulation of hormone levels; 15.乙烯调节的信号通路 Ethylene mediated signaling pathway; 16.转录因子活性 Transcription factor activity; 17.转录调节活性 Transcription regulator activity; 18.DNA结合 DNA binding; 19.固有膜 Intrinsic to membrane; 20.膜完整性 Integral to membrane.
B.显著下调的富集转录物功能。The downregulated gene subsets with annotated GO terms. 21.氧化还原 Oxidation reduction; 22.次级代谢过程 Secondary metabolic process; 23.外部封装结构 External encapsulating structure organization; 24.细胞壁 Cell wall organization; 25.过氧化氢分解代谢 Hydrogen peroxide catabolic process; 26.过氧化氢细胞响应 Cellular response to hydrogen peroxide; 27.四吡咯结合 Tetrapyrrole binding; 28.亚铁血红素结合 Heme binding; 29.铁离子结合 Iron ion binding; 30.电子载体活性 Electron carrier activity; 31.氧化还原酶活性 Oxidoreductase activity; 32.过氧化物酶活性 Peroxidase activity; 33.离子结合 Ion binding; 34.阳离子结合 Cation binding; 35.氧气结合 Oxygen binding; 36.内膜系统 Endomembrane system; 37.膜外区 Extracellular region; 38.质外体 Apoplast; 39.固有膜 Intrinsic to membrane; 40.固定于膜 Anchored to membrane.
2.3 拟南芥不定芽再生阶段差异表达的基因及转录物功能注释与分类

将S3时间点的基因表达量和C4时间点的进行了比对(FDR≤0.05且|log2FC(S3/C4)|≥1)。发现在不定芽再生阶段有2 910个差异表达的基因, 其中上调的基因有2 231个, 下调的基因有679个。表 3列出了本阶段前50个差异表达的基因。其中有多个基因在愈伤组织形成阶段表达量降低, 而在不定芽再生阶段却显著增加, 如编码CAP家族蛋白的AT5G57625和编码CASP1的AT2G36100, 编码过氧化物酶64的AT5G42180和编码过氧化物酶27的AT3G01190也在不定芽再生阶段出现明显上调。在生长素信号下游起作用并影响侧根形成的转录因子PUCHI以及其共同作用元件LBD16在本阶段出现了明显的下调。

表 3 拟南芥不定芽再生阶段前50个差异表达的基因 Table 3 Top 50 differentially expressed genes during shoot regeneration of A.thaliana
基因ID
Gene ID
差异倍数
log2FC(S3/C4)
P
P-value
错误发现率
FDR
功能注释
Descriptions
表达量增加的基因 UP-regulated genes
 AT5G57625 13.561 87 7.84E-116 3.62E-114 CAP超家族蛋白 CAP superfamily protein
 AT3G45680 13.350 20 0 0 未知蛋白 Unknown protein
 AT1G54970 12.790 29 2.00E-137 1.20E-135 富含脯氨酸蛋白 PRP1 Proline-rich protein 1
 AT4G08410 12.592 97 1.85E-142 1.20E-140 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT3G19270 12.496 03 4.11E-220 6.57E-218 脱落酸羟化酶Abscisic acid 8′-hydroxylase 4
 AT5G42180 12.139 10 3.45E-256 8.21E-254 过氧化物酶64 Peroxidase 64
 AT1G62540 12.117 13 4.16E-109 1.75E-107 含有黄素的单氧酶FMO GS-OX2 Flavin-containing monooxygenase GS-OX2
 AT5G06630 11.927 27 3.26E-94 1.07E-92 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT4G13390 11.906 70 7.43E-136 4.42E-134 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT1G29660 11.739 98 8.44E-161 6.95E-159 GDSL脂肪酶GDSL lipase
 AT3G60280 11.670 82 3.76E-101 1.37E-99 蛋白质UCC3 Protein UCC3
 AT3G62680 11.647 08 1.50E-124 7.83E-123 富含脯氨酸蛋白PRP 3 Proline-rich protein 3
 AT3G01190 11.611 29 7.95E-158 6.30E-156 过氧化物酶27 Peroxidase 27
 AT2G36100 11.606 82 0 0 凯氏带膜蛋白1 Casparian strip membrane protein 1
 AT5G06640 11.578 06 1.23E-113 5.52E-112 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT3G55230 11.457 04 1.78E-313 7.80E-311 抗病响应家族蛋白Disease resistance-responsive family protein
 AT2G16005 11.441 89 2.44E-74 5.65E-73 含有MD-2相关脂质识别域蛋白MD-2-related lipid recognition domain-containing protein
 AT4G22666 11.377 19 3.03E-120 1.49E-118 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
 AT2G20520 11.347 54 1.20E-57 2.02E-56 类似成束蛋白的阿拉伯半乳聚糖蛋白6 Fasciclin-like arabinogalactan protein 6
 AT5G04960 11.276 25 2.73E-147 1.87E-145 果胶酯酶抑制物46 Pectinesterase inhibitor 46
 AT2G24980 11.273 30 8.62E-122 4.32E-120 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白Proline-rich extensin-like family protein
 AT1G14220 11.252 01 1.94E-118 9.28E-117 核糖核酸酶T2家族蛋白Ribonuclease T2 family protein
 AT1G27740 11.246 73 7.54E-172 6.97E-170 转录因子bHLH54 Transcription factor bHLH54
 AT1G30870 11.205 71 1.65E-272 4.59E-270 过氧化物酶7 Peroxidase 7
 AT2G34910 11.157 99 2.19E-151 1.60E-149 未知蛋白 Unknown protein
 AT1G47600 11.038 63 7.12E-315 3.28E-312 芥子酶4 Myrosinase 4
 AT3G54580 11.014 35 4.36E-231 8.02E-229 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT3G54590 10.996 14 1.79E-165 1.59E-163 富含羟脯氨酸糖蛋白 Hydroxyproline-rich glycoprotein
 AT5G14330 10.762 64 1.65E-138 1.02E-136 未知蛋白 Unknown protein
 AT1G13710 10.561 70 3.02E-63 5.70E-62 细胞色素P450 78A5 Cytochrome P450 78A5
 AT5G61350 10.559 36 5.34E-82 1.43E-80 受体类似物蛋白激酶Receptor-like protein kinase
 AT5G14340 10.553 26 4.60E-81 1.21E-79 转录因子MYB40 Transcription factor MYB40
 AT2G45180 10.526 65 1.76E-66 3.52E-65 脂质转移蛋白 Lipid-transfer protein
 AT5G35190 10.516 67 8.25E-101 2.99E-99 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT5G22410 10.445 95 4.47E-130 2.51E-128 过氧化物酶60 Peroxidase 60
 AT4G15680 10.441 70 4.56E-95 1.51E-93 单巯基谷氧还蛋白S4 Monothiol glutaredoxin-S4
 AT5G03960 10.407 19 9.01E-91 2.79E-89 IQ结构域12 IQ-domain 12
 AT2G34490 10.380 47 2.46E-186 2.74E-184 细胞色素450 710A2 Cytochrome P450 710A2
 AT1G62980 10.372 33 2.19E-156 1.69E-154 扩张蛋白A18 Expansin-A18
 AT3G05920 10.361 89 7.02E-99 2.47E-97 重金属运输蛋白 Heavy metal transport protein
 AT4G11210 10.288 31 0 0 抗病响应家族蛋白Disease resistance-responsive family protein
 AT3G06460 10.261 96 3.97E-96 1.34E-94 GNS1/SUR4膜蛋白家族GNS1/SUR4 membrane protein family
 AT3G05770 10.247 59 0 0 未知蛋白 Unknown protein
 AT2G21140 10.228 64 1.75E-118 8.42E-117 富含脯氨酸蛋白2(PRP2)Proline-rich protein 2
 AT1G23720 10.225 68 0 0 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT2G44110 10.216 31 6.29E-71 1.37E-69 MLO类似蛋白15 MLO-like protein 15
 AT3G18200 10.207 22 4.16E-95 1.38E-93 EamA转运类似物家族蛋白EamA-like transporter family protein
 AT3G28550 10.143 51 0 0 富含脯氨酸的伸展蛋白类似物家族蛋白 Proline-rich extensin-like family protein
 AT2G05100 10.112 77 4.84E-71 1.06E-69 光合系统Ⅱ集光复合体Photosystem Ⅱ light harvesting complex
 AT2G20750 10.090 03 2.34E-139 1.47E-137 扩张蛋白B1 Expansin-B1
表达量减少的基因 Down-regulated genes
 AT2G41850 -13.341 20 0 0 聚半乳糖醛酸酶ADPG2 Polygalacturonase ADPG2
 AT5G22430 -8.722 50 1.16E-31 1.02E-30 伸展蛋白家族蛋白 Extensin family protein
 AT2G15590 -8.675 76 1.29E-40 1.49E-39 未知功能蛋白 Protein of unknown function
 AT1G18100 -8.299 30 5.41E-58 9.22E-57 PEBP家族蛋白 PEBP family protein
 AT2G03740 -8.000 38 1.12E-22 7.10E-22 含有LEA结构域蛋白 LEA domain-containing protein
 AT4G12500 -7.957 78 1.74E-08 5.24E-08 pEARLI1相似脂质转运蛋白3 pEARLI1-like lipid transfer protein 3
 AT4G30140 -7.865 81 3.42E-251 7.87E-249 GDSL脂肪酶GDSL lipase
 AT5G58390 -7.762 65 2.88E-117 1.36E-115 过氧化物酶67 Peroxidase 67
 AT1G76610 -7.747 30 4.32E-19 2.35E-18 未知功能蛋白 Protein of unknown function
 AT1G03790 -7.351 61 1.96E-28 1.53E-27 转录因子C3H家族蛋白 C3H family protein
 AT2G18130 -7.324 10 1.24E-11 4.58E-11 酸性磷酸酶11(PAP11)Purple acid phosphatase 11
 AT1G67770 -7.191 10 1.40E-146 9.50E-145 末端EAR1类似物2 Terminal EAR1-like 2
 AT5G10500 -7.119 56 1.53E-13 6.30E-13 未知蛋白 Unknown protein
 AT3G48300 -7.113 78 7.79E-12 2.90E-11 细胞色素P450 71A23 Cytochrome P450 71A23
 AT1G21970 -7.031 63 5.41E-14 2.28E-13 转录因子NF-YB家族蛋白 NF-YB family protein
 AT4G12480 -6.962 85 1.32E-21 7.99E-21 脂质转运蛋白EARLI1 Lipid transfer protein EARLI 1
 AT1G25310 -6.942 29 1.17E-11 4.33E-11 转录因子MEE8 Transcription factor MEE8
 AT1G04150 -6.918 41 3.29E-94 1.08E-92 磷酸核糖基转移酶家族蛋白 Phosphoribosyltransferase family protein
 AT2G46990 -6.639 95 1.50E-207 2.03E-205 生长素响应蛋白IAA20 Auxin-responsive protein IAA20
 AT1G62421 -6.629 93 1.52E-10 5.26E-10 未知蛋白 Unknown protein
 AT3G02670 -6.623 97 6.72E-39 7.37E-38 富含甘氨酸蛋白 Glycine-rich protein
 AT2G45410 -6.604 74 1.54E-143 1.01E-141 转录因子LBD19 Transcription factor LBD 19
 AT1G21990 -6.588 18 4.51E-84 1.26E-82 F-box蛋白 F-box protein
 AT1G56360 -6.564 52 1.48E-29 1.20E-28 酸性磷酸酶6(PAP6)Purple acid phosphatase 6
 AT1G68320 -6.553 62 2.47E-114 1.12E-112 转录因子MYB62 Transcription factor MYB62
 AT2G41225 -6.552 37 1.02E-09 3.35E-09 未知蛋白 Unknown protein
 AT1G29600 -6.545 06 3.84E-18 1.99E-17 转录因子C3H家族蛋白 C3H family protein
 AT4G18190 -6.508 33 7.18E-10 2.38E-09 嘌呤透性酶6 Purine permease 6
 AT3G03670 -6.466 89 2.92E-09 9.32E-09 过氧化物酶28 Peroxidase 28
 AT4G37850 -6.449 27 1.96E-57 3.29E-56 转录因子bHLH25 Transcription factor bHLH25
 AT2G03850 -6.320 60 1.95E-231 3.61E-229 晚期胚胎富集蛋白 LEA family protein
 AT5G47440 -6.264 57 5.60E-245 1.22E-242 未知功能植物蛋白 Plant protein of unknown function
 AT5G18560 -6.261 66 0 0 转录因子PUCHI Transcription factor PUCHI
 AT4G03950 -6.210 38 8.56E-05 0.0001953 磷酸盐转运物类似蛋白1 Phosphate-translocator-like protein 1
 AT1G48325 -6.197 16 6.03E-22 3.71E-21 未知蛋白 Unknown protein
 AT4G09940 -6.171 98 2.11E-265 5.57E-263 含有P环的核苷三磷酸水解酶超家族蛋白 P-loop containing nucleoside triphosphate hydrolases superfamily protein
 AT5G13670 -6.079 33 5.66E-06 1.43E-05 WAT1相关蛋白WAT1-related protein
 AT3G27590 -6.069 53 2.34E-07 6.53E-07 未知蛋白 Unknown protein
 AT3G15534 -6.016 10 1.40E-06 3.71E-06 未知蛋白 Unknown protein
 AT3G60650 -6.006 11 1.12E-208 1.56E-206 未知蛋白 Unknown protein
 AT5G56960 -5.944 23 8.95E-73 2.02E-71 转录因子bHLH041 Transcription factor bHLH041
 AT5G42223 -5.906 75 1.04E-19 5.83E-19 防御素类似蛋白114 Defensin-like protein 114
 AT1G44542 -5.902 20 2.22E-46 2.95E-45 环化酶家族蛋白 Cyclase family protein
 AT2G42430 -5.901 55 2.27E-316 1.06E-313 转录因子LBD16 Transcription factor LBD16
 AT1G61750 -5.891 57 2.42E-06 6.29E-06 分泌蛋白 Secretory protein
 AT2G14960 -5.876 69 0 0 生长素响应家族蛋白GH3.1 Auxin-responsive GH3 family protein GH3.1
 AT4G12490 -5.874 92 1.09E-14 4.79E-14 pEARLI1相似脂质转运蛋白2 pEARLI1-like lipid transfer protein 2
 AT3G62610 -5.850 46 3.27E-184 3.55E-182 转录因子MYB11 Transcription factor MYB 11
 AT5G02900 -5.846 07 7.03E-31 5.98E-30 细胞色素P450 96A13 Cytochrome P450 96A13
AT4G08300 -5.832 71 3.63E-10 1.23E-09 WAT1相关蛋白 WAT1-related protein

此外, 转录因子RSL4(AT1G27740)和MYB40(AT5G14340)的基因表达量增加, 编码转录因子TZF4 (AT1G03790), NF-YB家族蛋白(AT1G21970), bHLH家族蛋白(AT1G25310、AT4G37850、AT5G56960), LBD19 (AT2G45410), MYB62 (AT1G68320), C3H家族蛋白(AT1G29600)的基因表达量降低。

在不定芽再生阶段, 比较S3与C4表达量所得2 910个差异基因中有2 804条转录物具有具体功能定义, 共得到403个功能注释, 分别包含234个生物学过程亚类、42个细胞组分亚类, 127个分子功能亚类。图 3为不定芽再生阶段前20个显著富集(P < 0.05)的功能条目。其中激素刺激响应、生长素刺激响应、乙烯刺激响应、生长素内稳态和转录因子活性等是显著下调的富集功能条目。

图 3 拟南芥不定芽再生阶段培养前20个显著富集的转录物GO功能条目 Figure 3 TOP 20 highly enriched GO terms during shoot regeneration of A.thaliana A.显著上调的富集转录物功能条目。The upregulated gene subsets with annotated GO terms. 1.氧化还原 Oxidation reduction; 2.次级代谢 Secondary metabolic process; 3.过氧化氢分解 Hydrogen peroxide catabolic process; 4.过氧化氢细胞响应 Cellular response to hydrogen peroxide; 5.光合作用 Photosynthesis; 6.过氧化氢代谢过程 Hydrogen peroxide metabolic process; 7.糖苷代谢过程 Glycoside metabolic process; 8.四吡咯结合 Tetrapyrrole binding; 9.电子载体结合 Electron carrier activity; 10.亚铁血红素结合 Heme binding; 11.过氧化物酶活性 Peroxidase activity; 12.氧化还原酶活性 Oxidoreductase activity; 13.抗氧化活性 Antioxidant activity; 14.铁离子结合 Iron ion binding; 15.胞外区 Extracellular region; 16.内膜系统 Endomembrane system; 17.质外体 apoplast; 18.叶绿体类囊体膜 Chloroplast thylakoid membrane; 19.质体类囊体膜 Plastid thylakoid membrane; 20.类囊体膜 Thylakoid membrane.
B.显著下调的富集转录物功能条目。The downregulated gene subsets with annotated GO terms. 21.有机物质响应 Response to organic substance; 22.激素刺激响应 Response to hormone stimulus; 23.转录调节 Regulation of transcription; 24.内源刺激响应 Response to endogenous stimulus; 25.转录 Rranscription; 26.生长素刺激响应 Response to auxin stimulus; 27.乙烯刺激响应 Response to ethylene stimulus; 28.依赖DNA的转录调节 Regulation of transcription, DNA-dependent; 29.生长素内稳态 Auxin homeostasis; 30.RNA代谢调节 Regulation of RNA metabolic process; 31.脂质定位 Lipid localization; 32.生长素调节信号 Hrmone-mediated signaling; 33.激素刺激的细胞响应 Cellular response to hormone stimulus; 34.脂质运输 Lipid transport; 35.生长素信号调节通路 Auxin mediated signaling pathway; 36.转录因子活性 Transcription factor activity; 37.转录调节子活性 Transcription regulator activity; 38.DNA结合 DNA binding; 39.脂质结合 Lipid binding; 40.胞外区 Extracellular region.
2.4 生长素和细胞分裂素相关基因的表达量分析

通过对比生长素、细胞分裂素相关基因在2个阶段的表达量变化(图 4)。可知在愈伤组织形成阶段4个生长素合成相关家族基因YUC(YUCCA)表达量显著降低, 其中YUC5下调最明显, 但在不定芽再生阶段它们的变化并不明显; 5个生长素相关家族基因GH3(GH3.2、GH3.3GH3.5GH3.6GH3.12)表达量增加, 其中GH3.3增加了约250倍, GH3.12增加了288倍, 但在不定芽再生阶段它们的表达量减少; 7个生长素响应基因表达量在愈伤组织形成阶段增加, 其中IAA19增加了21倍, IAA20增加了25倍, IAA30增加了64倍。另外, SAUR(SMALL AUXIN-UP RNAs)基因的表达达量在愈伤组织形成阶段都明显减少, 但在不定芽再生阶段表达量都明显增加。

图 4 拟南芥愈伤组织形成阶段及不定芽再生阶段与生长素(A)和细胞分裂素(B)相关基因的表达量 Figure 4 Transcript levels of genes related to auxin(A)and cytokinin(B)during callus formation and shoot regeneration of A.thaliana

异戊烯基转移酶(isopentenyltransferase, IPT)是细胞分裂素合成的关键酶, 在愈伤组织形成阶段IPT基因的表达量发生明显下降。另一个细胞分裂素合成的重要酶类细胞色素单氧酶P450(CYP735A1和CYP735A2)以及催化细胞分裂素从无活性向活性形式转化的LOG家族基因均出现了一定程度的下调。与此同时CKX2CKX3CKX5CKX6等4个细胞分裂素氧化酶基因的表达量在愈伤组织形成阶段都出现了一定程度的上调, 其中CKX2CKX3上调倍数最多:CKX2上调了约278倍, CKX3上调约40倍。当外植体移至SIM培养基后IPT1IPT3CYP735A1CYP735A2LOG1LOG2的表达量出现明显增加, 特别是CYP735A1CYP735A2, 分别上调了879和440倍。另外, CKX2CKX3CKX6表达量减少。A型ARR基因能被细胞分裂素快速诱导, 从图 4也可以看出A型ARR基因表达量在不定芽再生阶段均有所增加, 且ARR15ARR16最为显著。

2.5 拟南芥芽顶端分生组织相关基因的表达

芽顶端分生组织(shoot apical meristem, SAM)在植物的生长发育过程中具有重要的功能。在离体芽的再生过程中一些与SAM相关基因的表达也发生了改变(表 4)。其中:WUS(AT2G17950)的表达在不定芽再生阶段最为明显, 在愈伤组织形成阶段未检测到其表达。其次是RAP2.6, 它在不定芽再生阶段显著表达, 同时在愈伤组织形成过程中表达量显著降低。另外, CUC1CUC2CUC3在不定芽再生阶段均有表达, 但CUC2在2个阶段均出现表达上调, 且在愈伤组织形成阶段表达显著。ESR1(ENHANCER OF SHOOT REGENERATION 1)和PUCHI在愈伤组织形成阶段均显著表达。

表 4 拟南芥芽顶端分生组织相关基因的表达 Table 4 The expression levels of shoot apical meristem related genes of A.thaliana
基因名称
Gene short name
基因ID
Gene ID
愈伤组织形成阶段
Callus formation
不定芽再生阶段
Shoot regeneration
差异倍数
log2FC(C4/C0)
错误出现率
FDR
差异倍数
log2FC(S3/C4)
错误出现率
FDR
WUS AT2G17950 7.188 693 1.84E-13
CUC1  AT3G15170 2.687 777 4.84E-22
CUC2  AT5G53950 6.003 334 1.75E-128 1.119 877 4.46E-27
CUC3  AT1G76420 1.231 715 0.074 954 61
ESR1  AT1G12980 5.019 877 0.000 542 341 1.956 636 0.000 030 8
RAP2.6  AT1G43160 -7.508 208 2.79E-67 5.187 398 7.63E-31
RAP2.6L  AT5G13330 2.028 171 9.51E-105 2.045 683 3.66E-159
BBM  AT5G17430 3.806 910 6.08E-251 -3.687 839 3.87E-238
PUCHI  AT5G18560 5.372 501 0 -6.261 660 0
CLE2  AT4G18510 -2.271 201 1.19E-69 2.428 083 1.83E-78
AGL24  AT4G24540 5.238 352 2.49E-11
CLE41  AT3G24770 2.306 391 3.42E-64
WOX4  AT1G46480 2.431 537 7.21E-96
NAC2  AT3G15510 2.808 793 8.01E-101 -3.950 705 4.85E-146
WOX5  AT3G11260 5.976 016 0 -4.630 332 6.53E-253
AGL20 AT2G45660 -7.286 607 3.48E-27
注:“—”未测出。“—”indicates no detection.
3 讨论

愈伤组织形成和不定芽再生阶段是不定芽形成的2个关键阶段, 许多基因的表达情况在这2个阶段发生显著改变并决定了细胞去分化和再分化的命运, 因此我们对这2个阶段基因的差异表达情况进行了分析。王兴春等[20]曾利用RNA-Seq技术研究了以下胚轴为外植体的不定芽再生早期的基因表达情况, 选用的是CIM培养7 d和SIM培养2 d的材料。CIM培养4 d时外植体即可见愈伤组织的膨大, 我们利用CIM培养4 d和SIM培养3 d的根外植体材料可以更好地研究愈伤组织形成和不定芽再生阶段的基因表达情况。Che等[11]利用22 810个基因探针对拟南芥根外植体不同再生途径中的基因进行分析, 检测到不定芽形成途径中478个上调表达基因和397个下调表达基因。Xu等[16]利用22 746个基因探针对地上部外植体和根外植体在愈伤组织形成阶段的基因表达情况进行了分析, 检测到1 342个差异表达基因。由于基因芯片的局限性, 检测到的基因数目有限。我们利用RNA-Seq技术检测到愈伤组织形成阶段的4 332个差异表达基因与不定芽再生阶段的2 910个差异表达基因, 为研究不定芽再生过程的基因表达情况提供更有效的数据依据。我们还利用GO功能注释分类体系分别对2个阶段差异表达基因进行功能分析, 发现生长素和细胞分裂素的合成、代谢相关途径的差异表达基因最为丰富。

在愈伤组织形成阶段细胞分裂素分解代谢途径显著富集, CKX家族部分基因显著表达。与此同时, 我们发现细胞分裂素合成相关家族基因IPT, CYP735A1CYP735A2以及LOG家族基因均出现了一定程度的表达下调。Takei等[21]通过RT-PCR发现用生长素处理拟南芥1 h CYP735A的表达量即明显下调。Werner等[22]发现生长素不仅影响细胞分裂素的生物合成, 而且还通过调节CKX家族基因来影响细胞分裂素的降解。因此, 我们认为这一现象与CIM中高浓度的生长素有关。在愈伤组织形成阶段, Che等[12]发现生长素响应基因AUX/IAA表达量增加, 我们对AUX/IAA家族基因进行了全面分析也发现多个IAA家族基因表达量增加。我们还发现与生长素合成相关的YUC家族基因表达量出现了一定程度的下调, 同时GH3家族部分基因表达量出现了显著增加。GH3家族基因编码吲哚乙酸氨基酸合成酶催化IAA与氨基酸的结合, 从而改变IAA的活性[23]。这些基因表达量的改变可能也与CIM培养基中高浓度生长素有关。这些变化可能是CIM培养基上高浓度生长素负反馈调节的结果, 从而维持愈伤组织形成阶段细胞分裂素和生长素的动态平衡。

Che等[11]研究发现, ARR15ARR16在不定芽再生途径中表达量增加。我们在不定芽再生阶段也检测到它们表达量增加。王兴春等[20]检测到在不定芽再生阶段IPT5的表达量下降, 但并未发现其他IPT基因的变化。我们除检测到IPT5IPT7的表达量减少, 还发现与细胞分裂素合成及活性有关的CYP735A1CYP735A2LOG家族基因在该阶段出现了明显的表达量增加, 与细胞分裂素代谢相关的CKX家族部分基因表达量减少。虽然有研究表明细胞分裂素在4 h内即可抑制IPT1IPT3IPT5IPT7基因的表达[24], 但随着在SIM上培养时间的增加, 外源细胞分裂素的含量可能逐渐减少。为了维持促进不定芽形成的细胞分裂素水平, 其他一些与细胞分裂素合成相关的基因表达量开始增加。

SAM的发育与不定芽的再生关系密切, 我们发现有多个基因在愈伤组织形成阶段表达量增加, 可见在第4天虽然外植体还只是处于愈伤组织阶段, 但与芽顶端分生组织相关的多个基因已经开始表达, 外植体已经获得形成芽的能力。CUC2作为根外植体获得芽再生形成能力的标志基因[14], 在愈伤组织形成阶段表达量显著上调。在不定芽再生阶段有10个与SAM相关的基因表达上调, 4个基因表达下调。其中WUSRAP2.6AGL24上调幅度较大, 可以看出WUS在芽分生组织形成的基因调控过程中具有重要地位[25]

转录因子AP2/EREBP家族基因参与多个生长发育过程, 该家族有144个成员[26], 研究表明多个AP2家族成员参与了不定芽再生过程, 如ESR1[27]。Banno等[27]认为在外植体获得器官形成能力后ESR1可以促进芽的形成, 我们在愈伤组织形成和不定芽再生阶段均检测到ESR1的表达, 且ESR1的表达在愈伤组织形成阶段更显著。Che等[11]研究发现转录因子RAP2.6L在不定芽形成过程出现了上调。我们也检测到RAP2.6L的上调表达, 但不同的是我们在愈伤组织形成阶段和不定芽再生早期阶段均检测到RAP2.6L上调表达。同时, 还发现另一个AP2转录因子家族成员RAP 2.6在愈伤组织形成阶段表达量显著减少, 而在不定芽再生阶段表达量显著增加。我们推测可能RAP2.6更特异性地参与芽再生的调控过程。在不定芽再生阶段另一个AP2转录因子PUCHI及其共同作用元件LBD16表达量明显减少。PUCHI会限制早期侧根原基的细胞增殖, 并与LBD16LBD18共同作用来调控侧根原基的发育及侧根的形成[28]。Yadav等[29]认为器官形成早期的主要调控过程和愈伤组织形成过程是一个和侧根形成类似的过程。因此PUCHI的表达量减少可能解除了对侧根原基增殖的限制, 从一方面促进了不定芽的再生。

除了与不定芽再生有关的转录因子编码基因ESR1PUCHIRAP2.6LBD16外, 我们还发现多个转录因子基因表达量发生改变, 它们属于不同转录因子家族, 如Nin-like家族、LBD家族、bHLH家族、MYB家族和C3 H家族等。拟南芥编码1 500个转录因子[15]且芽的再生是一个非常复杂的过程。因此, 在愈伤组织形成阶段和不定芽再生阶段必然还蕴含大量的转录因子调度调节以及各生理信号的交互作用有待我们进一步去发掘, 以期解释其内部的分子生物学机制。

参考文献(References)
[1] Deklerk G J, Amholdt-Schmitt B, Lieberei R, et al. Regeneration of roots, shoots and embryos:physiological, biochemical and molecular aspects[J]. Biologia Plantarum, 1997, 39(1): 53-66. DOI: 10.1023/A:1000304922507
[2] Sangwan R S, Harada H. Chemical regulation of callus growth, organogenesis, plant regeneration, and somatic embryogenesis in Antirrhinum majus tissue and cell cultures[J]. Journal of Experimental Botany, 1975, 26(6): 868-881. DOI: 10.1093/jxb/26.6.868
[3] Dhaliwal H S, Ramesar-Fortner N S, Yeung E C, et al. Competence, determination, and meristemoid plasticity in tobacco organogenesis in vitro[J]. Canadian Journal of Botany, 2003, 81(6): 611-621. DOI: 10.1139/b03-047
[4] Feldmann K A, Marks M D. Rapid and efficient regeneration of plants from explants of Arabidopsis thaliana[J]. Plant Science, 1986, 47(1): 63-69.
[5] Sangwan R S, Bourgeois Y, Brown S, et al. Characterization of competent cells and early events of Agrobacterium-mediated genetic transformation in Arabidopsis thaliana[J]. Planta, 1992, 188(3): 439-456.
[6] Valvekens D, Montagu M V, Lijsebettens M V, et al. Agrobacterium tumefaciens mediated transformation of Arabidopsis thaliana root explants using kanamycin selection[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1988, 85(15): 5536-5540. DOI: 10.1073/pnas.85.15.5536
[7] Sangwan R S, Sangwan-Norreel B S, Harada H, et al. In vitro techniques and plant morphogenesis:fundamental aspects and practical applications[J]. Plant Biotechnology, 1997, 14(2): 93-100.
[8] Catterou M, Dubois F, Smets R, et al. hoc:an Arabidopsis mutant overproducing cytokinins and expressing high in vitro organogenic capacity[J]. The Plant Journal, 2002, 30(3): 273-287. DOI: 10.1046/j.1365-313X.2002.01286.x
[9] Ren B, Liang Y, Deng Y, et al. Genome-wide comparative analysis of type-A Arabidopsis response regulator genes by overexpression studies reveals their diverse roles and regulatory mechanisms in cytokinin signaling[J]. Cell Research, 2009, 19(10): 1178-1190. DOI: 10.1038/cr.2009.88
[10] Gordon S P, Heisler M G, Reddy G V, et al. Pattern formation during de novo assembly of the Arabidopsis shoot meristem[J]. Development, 2007, 134(19): 3539-3548. DOI: 10.1242/dev.010298
[11] Che P, Lall S, Nettleton D, et al. Gene expression programs during shoot, root, and callus development in Arabidopsis tissue culture[J]. Plant Physiology, 2006, 141(2): 620-637.
[12] Che P, Gingerich D J, Lall S, et al. Global and hormone-induced gene expression changes during shoot development in Arabidopsis[J]. Plant Cell, 2002, 14(11): 2771-2785. DOI: 10.1105/tpc.006668
[13] Su Y H, Chen Z J, Su Y X, et al. Pattern analysis of stem cell differentiation during in vitro Arabidopsis organogenesis[J]. Frontiers of Biology, 2010, 5(5): 464-470. DOI: 10.1007/s11515-010-0820-0
[14] Motte H, Verstraeten I, Werbrouck S, et al. CUC2 as an early marker for regeneration competence in Arabidopsis root explants[J]. Journal of Plant Physiology, 2011, 168(13): 1598-1601. DOI: 10.1016/j.jplph.2011.02.014
[15] Riechmann J L, Heard J, Martin G, et al. Arabidopsis transcription factors:genome-wide comparative analysis among eukaryotes[J]. Science, 2000, 290(5499): 2105-2110. DOI: 10.1126/science.290.5499.2105
[16] Xu K, Liu J, Fan M, et al. A genome-wide transcriptome profiling reveals the early molecular events during callus initiation in Arabidopsis multiple organs[J]. Genomics, 2012, 100(2): 116-124.
[17] Cary A J, Che P, Howell S H. Development events and shoot meristem gene expression patterns during shoot development in Arabidopsis thaliana[J]. The Plant Journal, 2002, 32(6): 867-877. DOI: 10.1046/j.1365-313X.2002.01479.x
[18] Schuster J, Knill T, Reichelt M, et al. BRANCHED-CHAIN AMINOTRANSFERASE4 is part of the chain elongation pathway in the biosynthesis of methionine-derived glucosinolates in Arabidopsis[J]. The Plant Cell, 2006, 18(10): 2664-2679. DOI: 10.1105/tpc.105.039339
[19] Naseer S, Lee Y, Lapierre C, et al. Casparian strip diffusion barrier in Arabidopsis is made of a lignin polymer without suberin[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2012, 109(25): 10101-10106. DOI: 10.1073/pnas.1205726109
[20] 王兴春, 杨致荣, 张树伟, 等. 拟南芥不定芽发生早期的数字基因表达谱分析[J]. 生物工程学报, 2013, 29(2): 189-202.
Wang X C, Yang Z R, Zhang S W, et al. Digital gene expression profiling analysis of the early adventitious shoot formation in Arabidopsis thaliana[J]. Chinese Journal of Biotechnology, 2013, 29(2): 189-202. (in Chinese with English abstract)
[21] Takei K, Yamaya T, Sakakibara H. Arabidopsis CYP735A1 and CYP735A2 encode cytokinin hydroxylases that catalyze the biosynthesis of trans-zeatin[J]. Journal of Biological Chemistry, 2004, 279(40): 41866-41872. DOI: 10.1074/jbc.M406337200
[22] Werner T, Köllmer I, Bartrina I, et al. New insights into the biology of cytokinin degradation[J]. Plant Biology, 2006, 8: 371-381. DOI: 10.1055/s-2006-923928
[23] Hagen G, Kleinschmidt A, Guilfoyle T. Auxin-regulated gene expression in intact soybean hypocotyl and excised hypocotyl sections[J]. Planta, 1984, 162(2): 147-153.
[24] Miyawaki K, Matsumoto-Kitano M, Kakimoto T. Expression of cytokinin biosynthetic isopentenyltransferase genes in Arabidopsis:tissue specificity and regulation by auxin, cytokinin, and nitrate[J]. The Plant Journal, 2004, 37(1): 128-138. DOI: 10.1046/j.1365-313X.2003.01945.x
[25] Traas J, Monéger F. Systems biology of organ initiation at the shoot apex[J]. Plant Physiology, 2010, 152(2): 420-427. DOI: 10.1104/pp.109.150409
[26] Riechmann J L, Meyerowitz E M. The AP2/EREBP family of plant transcription factors[J]. Biological Chemistry, 1998, 379(6): 633-646.
[27] Banno, H, Ikeda Y, Niu Q W, et al. Overexpression of Arabidopsis ESR1 induces initiation of shoot regeneration[J]. The Plant Cell, 2001, 13(12): 2609-2618. DOI: 10.1105/tpc.13.12.2609
[28] Kang N Y, Lee H W, Kim J. The AP2/EREBP gene PUCHI co-acts with LBD16/ASL18 and LBD18/ASL20 downstream of ARF7 and ARF19 to regulate lateral root development in Arabidopsis[J]. Plant and Cell Physiology, 2013, 54(8): 1326-1334. DOI: 10.1093/pcp/pct081
[29] Yadav S R, Bishopp A, Helariutta Y, et al. Plant development:early events in lateral root initiation[J]. Current Biology, 2010, 20(19): R843-R845. DOI: 10.1016/j.cub.2010.09.010