文章信息
- 宋志华, 程康, 张婧菲, 王超, 钟翔, 张莉莉, 王恬
- SONG Zhihua, CHENG Kang, ZHANG Jingfei, WANG Chao, ZHONG Xiang, ZHANG Lili, WANG Tian
- 酶解青蒿对热应激肉鸡消化功能的影响
- Effects of dietary enzymatically treated Artemisia annua supplementation on digestion function of the heat-stressed broilers
- 南京农业大学学报, 2018, 41(1): 126-131
- Journal of Nanjing Agricultural University, 2018, 41(1): 126-131.
- http://dx.doi.org/10.7685/jnau.201612017
-
文章历史
- 收稿日期: 2016-12-11
在诸多环境因素中, 高温是影响家禽生产的主要应激源之一[1]。由于鸡体表覆盖浓密的羽毛, 且汗腺不发达, 高温时会引起动物体代谢紊乱, 持续的高温还会导致家禽发生热应激。小肠是动物营养物质消化吸收的主要场所, 也是在热应激过程中最容易遭受损伤的器官。热应激会显著降低肉鸡对营养物质的利用率和小肠消化酶活性, 从而导致生产性能的下降[2]。因此, 缓解热应激对肉鸡肠道消化功能的不良影响对提高家禽生产水平具有重要意义。
青蒿(EA)属于菊科蒿属一年生草本植物[3], 含有黄酮、维生素、酚类和香豆素类等活性成分, 具有抗疟、抗球虫、抗炎及抗菌等功效[3-5]。在日粮中添加青蒿叶或青蒿提取物可提高肉鸡的生产性能[6]、免疫功能[7]及肠黏膜中消化酶活性[8]。植物青蒿的细胞壁阻碍了细胞内活性成分的释放。酶解技术可促进植物细胞内活性成分的释放, 目前已在食品行业及果汁生产中得到应用[9]。因此, 人们开始探究酶解技术在动物饲料研究方面的应用[10-11], 而关于酶解青蒿在家禽生产中的应用鲜有报道。笔者所在实验室已有研究表明, 在肉鸡日粮中添加1 000 mg·kg-1 EA可显著提高肉品质, 缓解脂质氧化, 增强其抗氧化能力[12-13]。关于EA对肉鸡肠道发育、营养物质利用及肠黏膜中二糖酶活性等方面的研究尤其是在热应激状态下的研究尚未见报道。因此, 本试验以爱拔益加(AA)肉鸡为研究对象, 研究日粮中添加EA对热应激环境中肉鸡肠道发育、养分表观利用率以及肠黏膜中二糖酶活性的影响, 为EA在肉鸡生产中的应用提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 试验材料酶解青蒿由广州科虎生物技术研究开发中心提供, 其主要活性成分是多酚和黄酮类化合物。作为其中酶解底物的青蒿全株产于重庆, 于生长盛期至花蕾期收割。
1.2 主要仪器和设备ACS (系列)电子称(永康市永州衡器有限公司); Model PRO 200 double insulated匀浆机(美国ProScience公司); Kjltec 8400全自动凯式定氮仪(丹麦Foss); L-100XP超速冷冻离心机(Beckman Coulter公司); BIO-RAD680酶标仪(美国Bio-Rad公司); GZX-9240 MBE数显鼓风干燥箱(上海博讯实业有限公司医疗设备厂)。
1.3 试验动物及日粮选用21日龄健康的雄性AA肉鸡(购自安徽和威集团种禽有限公司)144只, 体质量(706±6) g。基础日粮以玉米-豆粕为主(表 1), 其配制按照中华人民共和国农业行业标准《鸡饲养标准:NY/T 33—2004》。
| % | |
| 组成Composition | 水平Level |
| 原料组成Ingredient composition | |
| 玉米Corn | 61.00 |
| 大豆粕Soybean meal | 28.30 |
| 玉米蛋白粉Corn gluten meal | 1.70 |
| 豆油Soybean oil | 4.00 |
| 磷酸氢钙CaHPO4 | 1.60 |
| 石粉Limestone powder | 1.30 |
| L-赖氨酸L-lysine | 0.31 |
| DL-蛋氨酸DL-methionine | 0.13 |
| 复合预混料1 Premix | 1.00 |
| 食盐NaCl | 0.30 |
| 载体Sodium chloride | 0.36 |
| 营养组成2 Nutrient composition | |
| 粗蛋白Crude protein | 19.20 |
| 赖氨酸Lysine (Lys) | 1.10 |
| 蛋氨酸Methionine (Met) | 0.44 |
| 钙Calcium | 0.93 |
| 有效磷Available phosphorus | 0.39 |
| 精氨酸Arginine | 1.15 |
| 蛋氨酸+半胱氨酸Met+Cys | 0.77 |
| 代谢能3 Metabolic energy | 12.91 |
| 注:1)复合预混料可为每千克全价料提供:维生素A 4 500 IU, 维生素D31 000 IU, 维生素K 1.3 mg, 维生素B1 2.2 mg, 维生素B2(核黄素)10 mg, 维生素B3(烟酸)10 mg, 氯化胆碱400 mg, 维生素B5 50 mg, 维生素B6(吡哆素)4 mg, 维生素H 0.04 mg, 维生素B11 1 mg, 维生素B12 1.013 mg, 铁60 mg, 铜7.5 mg, 锌65 mg, 锰110 mg, 碘1.1 mg, 硒0.4 mg; 2)营养组成的水平为计算值; 3)代谢能单位为MJ·kg-1。 Note:1) The premix provided per kg of die:vitamin A 4 500 IU, vitamin D3 1 000 IU, vitamin K 1.3 mg, vitamin B1 2.2 mg, vitamin B2 10 mg, vitamin B3 10 mg, choline chiride 400 mg, vitamin B5 50 mg, vitamin B6 4mg, vitamin H 0.04 mg, vitamin B11 1 mg, vitamin B12 1.013 mg, iron 60 mg, copper 7.5 mg, zinc 65 mg, manganese 110 mg, iodine 1.1 mg, selenium 0.4 mg; 2) Nutrients levels are calculated values; 3) The unit of metabolic energy is MJ·kg-1. | |
本试验在南京康欣禽业有限公司进行。选取144只健康且体质量相近的21日龄雄性AA肉鸡, 随机分成3组, 每组6个重复, 每个重复8只鸡。对照组(CON组)控制温度在(22±1) ℃并饲喂基础日粮; 热应激组(HS组)和酶解青蒿组(HS-EA组)控制温度在(34±1) ℃, 每日8 h (09:00—17:00), 其余时间保持温度在(22±1) ℃, 并分别在基础日粮中添加0和1 000 mg·kg-1 EA。试验期21 d, 其中热应激处理连续20 d。各处理组环境相对湿度50%~60%。饲养期间自由饮水、采食, 保持24 h连续光照, 并按常规程序进行严格免疫。
1.5 样品的采集与处理 1.5.1 肠段的采集42日龄时每个重复选取1只接近平均体质量的鸡, 3个处理组共选取18只鸡, 放血后, 屠宰, 分离出胰腺、十二指肠、空肠和回肠。取样部位:十二指肠, 从肌胃底部起10 cm; 空肠, 从十二指肠的结肠韧带起10 cm; 回肠, 从回盲结合部起10 cm。
1.5.2 粪样的收集参照寇涛等[14]的方法。在39日龄时, 从每个重复中选取1只鸡, 单笼饲养, 笼子下面放置托盘, 收集粪便3 d。收粪前, 肉鸡饥饿12 h, 以便排空粪便, 然后自由采食3 d, 再饥饿12 h。在此期间, 自由饮水。收粪时, 尽量捡出托盘中的羽毛和皮屑。将收集的鲜粪称质量, 按100 g粪样加5%(体积分数)的硫酸10 mL搅拌后密封, 然后带回实验室, 冷冻待测。
1.5.3 肠黏膜的采集取出空肠和回肠组织后, 挤出食糜, 用生理盐水冲洗肠壁内容物, 然后将肠段剪开, 铺平, 用载玻片轻轻刮取空肠和回肠黏膜放入塑料冻存管中, 立刻放入液氮罐中, 运回实验室, 备用。
1.6 测定指标及方法 1.6.1 肠道质量绝对质量:屠宰后分离胰腺、十二指肠、空肠和回肠, 称质量; 相对质量=器官质量(g)/活体质量(kg)。
1.6.2 营养物质利用率测量前, 将样品在烘箱中以65 ℃干燥至恒质量, 回潮后称质量, 粉碎后过40目筛制成风干样。粗脂肪、粗蛋白和粗灰分含量的测定分别采用残余法、凯氏定氮法和灼烧法[15]。有机物的量则是指除去粗灰分后的质量。
1.6.3 小肠黏膜二糖酶活性称取空肠和回肠黏膜样品约0.2 g, 按照质量体积比为1:9的比例加入生理盐水, 在冰水浴中机械匀浆, 并在4 ℃条件下4 450 g离心15 min, 取上清液测二糖酶活性。麦芽糖酶、蔗糖酶和乳糖酶活性的测定均按照南京建成生物工程研究所试剂盒说明书进行。
1.7 数据处理与分析采用Excel 2010对数据进行初步整理, 用SPSS 16.0软件进行统计, 并用单因素方差法(ANOVA)进行差异显著性分析, 采用Duncan′s法进行多重比较。结果均以平均值±标准误(x±SE)表示。
2 结果与分析 2.1 日粮中添加酶解青蒿对热应激肉鸡胰腺和肠道质量的影响由表 2可知:与CON组相比, 热应激使肉鸡空肠和回肠的绝对质量显著降低(P < 0.05), 却对胰腺和小肠的相对质量没有显著影响(P>0.05)。与HS组相比, 日粮中添加EA显著提高了胰腺、空肠和回肠的绝对质量, 却对胰腺和小肠的相对质量没有显著影响。
| 器官Organ | 项目Item | 对照组CON | 热应激组HS | 酶解青蒿组HS-EA |
| 胰腺Pancreas | 绝对质量/g Absolute weight | 3.66±0.33ab | 3.01±0.18b | 4.05±0.60a |
| 相对质量/(g·kg-1) Relative weight | 1.84±0.14 | 1.61±0.23 | 1.80±0.18 | |
| 十二指肠Duodenum | 绝对质量/g Absolute weight | 9.32±0.70 | 8.48±0.78 | 10.64±0.65 |
| 相对质量/(g·kg-1) Relative weight | 4.65±0.22 | 4.15±0.45 | 5.23±0.51 | |
| 空肠Jejunum | 绝对质量/g Absolute weight | 13.21±0.98a | 10.24±1.07b | 14.94±0.72a |
| 相对质量/(g·kg-1) Relative weight | 6.45±0.84 | 6.48±0.61 | 7.64±0.59 | |
| 回肠Ileum | 绝对质量/g Absolute weight | 11.83±1.14a | 8.15±0.88b | 11.63±1.19a |
| 相对质量/(g·kg-1) Relative weight | 6.65±0.68 | 5.45±0.72 | 6.16±0.52 | |
| 注:1) CON:Control group; HS:Heat stress group; HS-EA:Heat stress and enzymatically treated Artemisia annua group. 2)同行数据肩注不同小写字母表示差异显著(P < 0.05)。Means within a row without a common superscripts differ significantly (P < 0.05). The same as follows. | ||||
如表 3所示:各处理组肉鸡对粗灰分的表观利用率没有显著差异。与CON组相比, 热处理显著降低了肉鸡对粗脂肪(EE)、粗蛋白(CP)和有机物(OM)的表观利用率。与HS组相比, 日粮中添加EA显著提高了肉鸡对EE、CP和OM的表观利用率, 并且与对照相比差异不显著, 说明日粮中添加1 000 mg·kg-1 EA抑制了热应激对肉鸡养分利用的不利影响。
| % | |||
| 项目Item | 对照组CON | 热应激组HS | 酶解青蒿组HS-EA |
| 粗脂肪Ether extract | 69.17±1.89a | 60.31±3.57b | 72.41±1.88a |
| 粗蛋白Crude protein | 63.70±0.24a | 56.90±2.45b | 62.56±1.46a |
| 粗灰分Crude ash | 25.92±1.10 | 22.62±1.42 | 27.19±1.72 |
| 有机物Organic matter | 60.90±1.97a | 53.25±2.53b | 62.66±2.21a |
由表 4可见:与CON组相比, HS显著降低了肉鸡空肠和回肠中麦芽糖酶和蔗糖酶以及回肠中的乳糖酶活性。与HS组相比, 日粮中添加EA可明显改善热应激对空、回肠中麦芽糖酶和蔗糖酶以及回肠中乳糖酶活性的抑制作用(P < 0.05)。各处理组间肉鸡空肠黏膜的乳糖酶活性没有显著差异。
| U·mg-1 | ||||
| 器官Organ | 项目Item | 对照组CON | 热应激组HS | 酶解青蒿组HS-EA |
| 麦芽糖酶Maltase | 272.21±16.34a | 197.35±9.78b | 259.29±23.08a | |
| 空肠Jejunum | 蔗糖酶Sucrase | 4 297.09±102.66a | 3 402.33±192.43b | 4 172.51±340.77a |
| 乳糖酶Lactase | 110.04±6.03 | 94.99±4.45 | 109.43±7.97 | |
| 麦芽糖酶Maltase | 450.52±43.34a | 312.37±13.57b | 463.38±37.80a | |
| 回肠Ileum | 蔗糖酶Sucrase | 462.81±32.18a | 354.36±30.43b | 481.33±29.79a |
| 乳糖酶Lactase | 65.28±4.65a | 49.83±3.41b | 64.42±3.78a | |
动物的健康成长在很大程度上取决于消化器官的发育程度, 胰腺和小肠都是主要的消化器官, 其能否正常发育与机体的各种生理反应息息相关[16]。器官质量是反映器官发育程度的一个重要指标[17]。本试验中, 热处理明显降低了空肠和回肠的绝对质量, 各处理组间相对质量却没有差异, 可能是因为热应激处理导致肉鸡活体质量变化从而使肉鸡的器官绝对质量发生变化, 但相对质量不变。我们过去的研究结果(未发表)显示热应激显著降低了肉鸡的体增质量, 然而EA使热应激条件下肉鸡的体质量显著增加。热应激和EA对肉鸡体质量的影响趋势与对消化器官绝对质量的影响趋势一致。这解释了热应激和EA对肉鸡消化器官相对质量没有显著影响的原因。有研究指出, 肉鸡在经历慢性热应激后, 小肠单位长度的干质量和湿质量均下降[18], 十二指肠、空肠和回肠的长度也显著降低[19]。我们发现日粮中添加1 000 mg·kg-1的EA显著提高了热应激组肉鸡胰腺、空肠和回肠的绝对质量, 表明EA能够缓解热应激对消化器官发育的负面影响。Khaligh等[20]研究表明日粮中添加药用植物(苜蓿、甘草根、牛蒡和肉桂)混合物可提高肉鸡胰腺质量, 本研究也得到类似的结果。Cherian等[21]研究发现, 日粮中添加2%或4%(质量分数)的青蒿叶可降低肉鸡小肠pH, 而较低的pH可抑制肠道内食源性病菌, 进而保持肠道健康。健康的肠道环境有利于肠道细胞的增殖, 并增加了单位面积细胞的数量。细胞数量的增加可提高对氨基酸的摄入量, 进而促进蛋白质合成并沉积在肠黏膜中, 增加肠道质量[22]。EA通过酶解处理破坏植物细胞壁来提高植物活性成分在体内的有效利用率, 因此我们猜测EA增加小肠质量可能是因为酶解青蒿具有和青蒿叶一样的活性成分和功能, 能够改善肠道内环境, 促进细胞增殖。关于EA对胰腺质量增加的机制, 仍需要进一步验证。
3.2 日粮中添加酶解青蒿对热应激肉鸡养分表观利用率的影响动物对饲料中营养物质利用率的高低直接影响动物的生长发育和消化道健康[23]。热应激会降低肉鸡对营养物质的利用率, 降低肉鸡对干物质、氮和总能等营养物质的吸收, 从而一定程度上降低生产性能[24]。与前人的研究结果相似[24-25], 本试验结果也表明, 热应激显著降低了肉鸡对饲料中粗蛋白、粗脂肪和有机物的表观利用率。热应激降低肉鸡营养物质表观利用率可能是因为高温条件下, 肉鸡散热较为困难, 饮水量增加, 活动量减少, 胃肠蠕动降低, 使饲料养分无法被充分吸收利用。在本试验中, 日粮中添加1 000 mg·kg-1 EA显著提高了热应激条件下肉鸡饲料营养物质的表观利用率。另有研究发现, 来源于中草药的植物性添加剂如连翘和黄芩等能够提高肉鸡对营养物质的利用率, 这是因为这些植物性添加剂富含黄酮、多酚和植物精油等活性成分[26-27]。这些活性成分能够促进肠道有益菌群的数量, 抑制有害菌的数量, 还能促进肠道消化酶的分泌, 从而促进了营养物质的吸收利用[28]。青蒿是一种中草药植物且含有丰富的黄酮、多酚和植物精油等活性成分[3-4], 而且酶解处理技术能够促进这些活性成分在机体内消化、吸收和利用[13]。因此, 我们推测, 与其他药食同源性植物添加剂相似, EA中的黄酮、多酚和植物精油等活性成分发挥协同作用缓解了热应激对肉鸡营养物质利用率的负面影响[3-4]。此外, 我们未发表的研究数据表明EA还可以提高热应激状态下肉鸡小肠黏膜的绒毛高度, 增加了小肠黏膜与饲料的接触面积, 可使肉鸡充分吸收饲料中的养分, 进而增加了肉鸡对饲料中营养物质的消化吸收。总之, EA可缓解热应激对肉鸡营养物质表观利用率的不良影响, 有利于提高肉鸡对饲料中养分的吸收利用。
3.3 日粮中添加酶解青蒿对热应激肉鸡小肠黏膜中二糖酶活性的影响大分子糖类不能被动物直接吸收, 需要经过肠黏膜二糖酶水解成单糖才能被小肠吸收利用。如果二糖酶缺乏则会抑制碳水化合物的分解、单糖的吸收及能量的转化利用[29], 因此二糖酶在碳水化合物利用方面起着不可替代的作用。另外, 麦芽糖酶的热稳定性较差, 高温应激条件下更容易失活[30]。本试验研究结果表明, 热应激显著降低了空肠和回肠黏膜中麦芽糖酶、蔗糖酶以及回肠黏膜中乳糖酶活性, 这一结果与前人的研究结果一致[31-32]。日粮中添加EA显著提高了热应激肉鸡小肠黏膜二糖酶(除空肠乳糖酶)活性。Duarte等[33]报道饲喂蜂胶(富含黄酮和多酚)日粮能够提高21日龄肉鸡空肠的蔗糖酶和回肠的麦芽糖酶活性。总之, EA可缓解热应激对肉鸡小肠黏膜二糖酶活性的抑制, 进而提高肉鸡对营养物质的利用率, 但是EA对热应激肉鸡肠黏膜内二糖酶活性提高的机制还有待进一步研究。
| [1] | Meehl G A, Tebaldi C. More intense, more frequent, and longer lasting heat waves in the 21st century[J]. Science, 2004, 305(5686): 994-997. DOI: 10.1126/science.1098704 |
| [2] |
阮晖, 牛冬. 热应激降低肉鸡小肠消化酶活性的研究[J].
中国畜牧杂志, 2001, 37(3): 16-17.
Ruan H, Niu D. Study on hot stress reducing activities of digestive enzymes in broilers intestine[J]. Chinese Journal of Animal Science, 2001, 37(3): 16-17. (in Chinese with English abstract) |
| [3] | Brisibe E A, Umoren U E, Brisibe F, et al. Nutritional charact-erisation and antioxidant capacity of different tissues of Artemisia annual[J]. Food Chemistry, 2009, 115(4): 1240-1246. DOI: 10.1016/j.foodchem.2009.01.033 |
| [4] | Bhakuni R S, Jain D C, Sharma R P, et al. Secondary metabolites of Artemisia annua and their biological activity[J]. Current Science, 2001, 80(1): 35-48. |
| [5] |
耿飒, 叶和春, 李国凤, 等. 中药青蒿的生理生化特征及其研究发展[J].
应用与环境生物学报, 2002, 8(1): 90-97.
Geng S, Ye H C, Li G F, et al. Physiological and biochemical characteristics of Artemisia annua L. and its research progress[J]. Chinese Journal of Applied and Environmental Biology, 2002, 8(1): 90-97. (in Chinese with English abstract) |
| [6] | Brisibe E A, Umoren U E, Owail P U, et al. Dietary inclusion of dried Artemisia annua leaves for management of coccidiosis and growth enhancement in chickens[J]. African Journal of Biotechnology, 2008, 7(22): 4083-4092. |
| [7] | Gholamrezaie S L, Mohammadi M, Jalali S J, et al. Extract and leaf powder effect of Artemisia annua on performance, cellular and humoral immunity in broilers[J]. Iranian Journal of Veterinary Research, 2013, 14(1): 15-20. |
| [8] |
宋志华, 程康, 万晓莉, 等. 青蒿叶对肉鸡生产性能和血清生化指标及消化酶活性的影响[J].
中国畜牧杂志, 2016, 52(21): 45-49.
Song Z H, Cheng K, Wan X L, et al. Effects of Artemisia annua leaves on growth performance, serum biochemical indices and digestive enzyme activities of broilers[J]. Chinese Journal of Animal Science, 2016, 52(21): 45-49. DOI: 10.3969/j.issn.0258-7033.2016.21.011 (in Chinese with English abstract) |
| [9] | Puri M, Sharma D, Barrow C J. Enzyme-assisted extraction of bioactives from plants[J]. Trends in Biotechnology, 2012, 30(1): 37-44. DOI: 10.1016/j.tibtech.2011.06.014 |
| [10] | Liu N, Ru Y J, Tang D F, et al. Effects of corn distillers dried grains with solubles and xylanase on growth performance and digestibility of diet components in broilers[J]. Animal Feed Science and Technology, 2011, 163(2): 260-266. |
| [11] | Wang J P, Liu N, Song M Y, et al. Effect of enzymolytic soybean meal on growth performance, nutrient digestibility and immune function of growing broilers[J]. Animal Feed Science and Technology, 2011, 169(3): 224-229. |
| [12] | Wan X L, Song Z H, Niu Y, et al. Evaluation of enzymatically treated Artemisia annua L. on growth performance, meat quality, and oxidative stability of breast and thigh muscles in broilers[J]. Poultry Science, 2016. DOI: 10.3382/ps/pew307 |
| [13] | Wan X L, Niu Y, Zheng X C, et al. Antioxidant capacities of Artemisia annua L. leaves and enzymatically treated Artemisia annua L. in vitro and in broilers[J]. Animal Feed Science and Technology, 2016, 221: 27-34. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2016.08.017 |
| [14] |
寇涛, 胡志萍, 张莉莉, 等. 二甲基甘氨酸钠对肉鸡生产性能、养分表观利用率及内源消化酶活性的影响[J].
南京农业大学学报, 2015, 38(1): 140-145.
Kou T, Hu Z P, Zhang L L, et al. Effects of N, N-dimethylglycine sodium salt on growth performance, nutrient apparent availability and digestive enzyme activities of broilers[J]. Journal of Nanjing Agricultural University, 2015, 38(1): 140-145. DOI: 10.7685/j.issn.1000-2030.2015.01.021 (in Chinese with English abstract) |
| [15] |
张丽英.
饲料分析及饲料质量检测技术[M]. 北京: 中国农业大学出版社, 2003, 45-79.
Zhang L Y. Feed Analysis and Quality Testing Technology[M]. Beijing: China Agricultural University Press, 2003, 45-79. (in Chinese with English abstract) |
| [16] |
谷春梅. 生大豆及过量蛋白日粮致小鼠消化器官氧化应激的研究[D]. 无锡: 江南大学, 2008.
Gu C M. Study of raw soybean and excessive protein diet inducing oxidative stress in digestive organs of mice[D]. Wuxi:Jiangnan University, 2008(in Chinese with English abstract). http://cdmd.cnki.com.cn/Article/CDMD-10295-2009014627.htm |
| [17] | Fluharty F L, Mcclure K E. Effects of dietary energy intake and protein concentration on performance and visceral organ mass in lambs[J]. Journal of Animal Science, 1997, 75(3): 604-610. DOI: 10.2527/1997.753604x |
| [18] | Mitchell M A, Carlisle A J. The effects of chronic exposure to elevated environmental temperature on intestinal morphology and nutrient absorption in the domestic fowl (Gallus domesticus)[J]. Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Physiology, 1992, 101(1): 137-142. DOI: 10.1016/0300-9629(92)90641-3 |
| [19] |
赵向红. 有效温度与日粮能量及蛋白水平对肉鸡消化功能的影响[D]. 北京: 中国农业大学, 2005.
Zhao X H. Effects of effective temperature and dietary energy and protein level on the digestive function of broilers[D]. Beijing:China Agricultural University, 2005(in Chinese with English abstract). http://www.wanfangdata.com.cn/details/detail.do?_type=degree&id=Y834884 |
| [20] | Khaligh F, Sedghi G, Karimi A, et al. Evaluation of different medicinal plants blends in diets for broiler chickens[J]. Journal of Medicinal Plant Research, 2011, 5(10): 1971-1977. |
| [21] | Cherian G, Orr A, Burke I C, et al. Feeding Artemisia annua alters digesta pH and muscle lipid oxidation products in broiler chickens[J]. Poultry Science, 2013, 92(4): 1085-1090. DOI: 10.3382/ps.2012-02752 |
| [22] |
程鹏辉, 吴洪云, 陈艳. 日粮纤维对猪肠道生长发育的影响[J].
养殖与饲料, 2011(3): 56-58.
Cheng P H, Wu H Y, Chen Y. Effect of dietary fiber on intestinal tract growth[J]. Animal Breeding and Feed, 2011(3): 56-58. (in Chinese with English abstract) |
| [23] |
王庆云, 杨维仁, 杨在宾, 等. 不同无机磷水平日粮中添加植酸酶对肉鸡生长性能及养分利用率的影响[J].
南京农业大学学报, 2009, 32(2): 124-129.
Wang Q Y, Yang W R, Yang Z B, et al. Effects of phytase supplementation on growth performance and nutrients utilization rate in broiler chicks fed diets with different levels of inorganic phosphorus[J]. Journal of Nanjing Agricultural University, 2009, 32(2): 124-129. DOI: 10.7085/j.issn.1000-2030.2009.02.026 (in Chinese with English abstract) |
| [24] | Bonnet S, Geraert P A, Lessire M, et al. Effect of high ambient temperature on feed digestibility in broilers[J]. Poultry Science, 1997, 76(6): 857-863. DOI: 10.1093/ps/76.6.857 |
| [25] |
吴长德, 崔亚利, 常现雨, 等. 热应激对肉仔鸡增重和饲料蛋白质利用率的影响[J].
中国畜牧兽医, 2005, 32(4): 41-42.
Wu C D, Cui Y L, Chang X Y, et al. Effects of heat stress on body weight and protein utilization in broilers[J]. China Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2005, 32(4): 41-42. (in Chinese with English abstract) |
| [26] | Wang L, Piao X L, Kim W, et al. Effects of Forsythia suspense extract on growth performance, nutrient digestibility, and antioxidant activities in broilers chickens under high ambient temperature[J]. Poultry Science, 2008, 87(7): 1287-1294. DOI: 10.3382/ps.2008-00023 |
| [27] |
梁英, 任成才, 钱丽丽, 等. 黄岑黄酮对肉仔鸡营养物质消化率和生长性能的影响[J].
中兽医医药杂志, 2012(1): 19-22.
Liang Y, Ren C C, Qian L L, et al. Effects of flavonoids from Scutellaria baicalensis Georgi on broilers' nutrient digestibility and growth performance[J]. Journal of Traditional Chinese Veterinary Medicine, 2012(1): 19-22. (in Chinese with English abstract) |
| [28] | Windisch W, Schedle K, Plitzner C, et al. Use of phytogenic products as feed additives for swine and poultry[J]. Journal of Animal Science, 2008, 86(Suppl): 140-148. |
| [29] | Ghalehkandi J G, Karamouz H, Nazhad H Z A, et al. Effect of different levels of zinc oxide supplement on mucosal sucrase enzyme activity in small intestine of male broiler chicks[J]. International Journal of Animal and Veterinary Advances, 2011, 3(2): 54-57. |
| [30] | Song X Z, Xu J Q, Wang T, et al. Chinese medicine granule affects the absorption and transport of glucose in porcine small intestinal brush border membrane vesicles under heat stress[J]. Asian-Australasian Journal of Animal Science, 2009, 22(2): 246-253. DOI: 10.5713/ajas.2009.80358 |
| [31] | Chen Z, Xie J, Wang B, et al. Effect of γ-aminobutyric acid on digestive enzymes, absorption function, and immune function of intestinal mucosa in heat-stressed chicken[J]. Poultry Science, 2014, 93(10): 2490-2500. DOI: 10.3382/ps.2013-03398 |
| [32] |
晓何. 小肠黏膜二糖酶的研究进展[J].
当代畜禽养殖业, 2007(6): 20-22.
Xiao H. Research progress of small intestinal mucosa[J]. Modern Animal Husbandry, 2007(6): 20-22. (in Chinese with English abstract) |
| [33] | Duarte C R A, Eyng C, Murkami A E, et al. Intestinal morphology and activity of digestive enzymes in broilers fed crude propolis[J]. Canadian Journal of Animal Science, 2014, 94(1): 105-114. DOI: 10.4141/cjas2013-059 |