林业科学  2019, Vol. 55 Issue (4): 122-128   PDF    
DOI: 10.11707/j.1001-7488.20190412
0

文章信息

尹淑艳, 李波, 周成刚, 张卫光, 谢丽霞, 刘永杰.
Yin Shuyan, Li Bo, Zhou Chenggang, Zhang Weiguang, Xie Lixia, Liu Yongjie.
基于28S rDNA分析板栗和杉木上针叶小爪螨物种分化原因
Analysis on Species Differentiation of Oligonychus ununguis on Castanea mollissima and Cunninghamia lanceolata based on 28S rDNA Gene Sequences
林业科学, 2019, 55(4): 122-128.
Scientia Silvae Sinicae, 2019, 55(4): 122-128.
DOI: 10.11707/j.1001-7488.20190412

文章历史

收稿日期:2017-09-04
修回日期:2018-02-08

作者相关文章

尹淑艳
李波
周成刚
张卫光
谢丽霞
刘永杰

基于28S rDNA分析板栗和杉木上针叶小爪螨物种分化原因
尹淑艳1,2, 李波3, 周成刚1,2, 张卫光1, 谢丽霞1, 刘永杰1     
1. 山东农业大学植物保护学院 泰安 271018;
2. 山东省林业有害生物防控工程技术研究中心 泰安 271018;
3. 泰安市林业局 泰安 271000
摘要:【目的】我国经济林树种板栗和杉木上的重要害螨一直被认为是同一种螨——针叶小爪螨,但针叶小爪螨的山东板栗种群和浙江杉木种群间存在生殖隔离,且生殖隔离并非由地理隔离和能调控寄主生殖的内共生菌引起,似乎二者已分化为2个独立的种。本研究目的是明确其成种原因,丰富物种形成理论。【方法】从之前做杂交试验时所采集的针叶小爪螨板栗和杉木种群中各随机取3头雌成螨,提取单头雌成螨的总DNA,使用根据其他小爪螨28S rDNA两端保守序列设计的引物扩增28S rDNA,扩增产物纯化后测序。比较2种群的28S rDNA序列,并基于28S rDNA序列构建小爪螨属系统发育树,结合已有研究分析两种群分化原因。【结果】每个种群的3个个体的28S rDNA序列完全一致,无种群内变异。2种群的28S rDNA序列一致性为98.3%,遗传距离为1.7%。在基于28S rDNA序列构建的小爪螨属系统发育树上,浙江杉木种群与采自日本的日本柳杉上的本岛小爪螨亲缘关系最近,山东板栗种群与采自日本的日本栗上的栗小爪螨的亲缘关系最近。【结论】板栗和杉木上的叶螨并非由同一种叶螨因适应不同寄主植物分化而成,很可能是2个独立的物种。
关键词:针叶小爪螨    28S rDNA    板栗种群    杉木种群    物种分化    
Analysis on Species Differentiation of Oligonychus ununguis on Castanea mollissima and Cunninghamia lanceolata based on 28S rDNA Gene Sequences
Yin Shuyan1,2, Li Bo3, Zhou Chenggang1,2, Zhang Weiguang1, Xie Lixia1, Liu Yongjie1     
1. College of Plant Protection, Shandong Agricultural University Tai'an 271018;
2. Engineering Research Center of Forest Pest Management of Shandong Province Tai'an 271018;
3. Forestry Bureau of Taian City Tai'an 271000
Abstract: 【Objective】The important pest mites that infest Castanea mollissima, an economic forest species, and Cunninghamia lanceolata, have been considered to be the same mites, Oligonychus ununguis. However, previous studies have shown that reproductive isolation exists between the C. mollissima population from Shandong Province(TSBL) and the C. lanceolata population from Zhejiang Province(ZJSM) of O. ununguis and the reproductive isolation is not caused by geographic isolation and the endosymbionts that can manipulate the reproduction of their hosts. The two populations have been differentiated into two independent species, but whether the differentiation is related to adaptation to different host plants has not been determined. This study was carried out to clarify the differentiation reasons and enrich the speciation theory.【Method】Three female adult mites were randomly selected from the C. mollissima population and the C. lanceolata population respectively which collected previously to be used to hybridization experiment. The genomic DNA was extracted from a single female adult. The 28S rDNA sequences were amplified used the primers designed according to the conserved sequences of the 28S rDNA of other mites in Oligonychus. The amplified products were purified and sequenced. The 28S rDNA sequences of the two populations were compared and the phylogenetic tree of Oligonychus was constructed based on the 28S rDNA sequences. The differentiation reasons of these two populations were analyzed combined with previous studies.【Result】The 28S rDNA sequences of three individuals in each population were identical, without intraspecific variation. The interpopulation sequence identity and the genetic distance between the C. mollissima population and the C. lanceolata population based on 28S rDNA sequences were 98.3% and 1.7% respectively. The phylogenetic tree of Oligonychus based on 28S rDNA sequences showed that O. hondoensis collected from Cryptomeria japonica in Japan was the closest relative of the C. lanceolata population, while O. castaneae collected from Castanea crenata in Japan was the closest relative of the C. mollissima population.【Conclusion】The spider mites on C. mollissima and C. lanceolata are probably two independent species rather than differentiated from the same kind of spider mite because of adaptation to different host plants.
Key words: Oligonychus ununguis    28S rDNA    Castanea mollissima population    Cunninghamia lanceolata population    species differentiation    

针叶小爪螨(Oligonychus ununguis)俗称板栗红蜘蛛、杉木红蜘蛛,属叶螨科(Tetranychidae)小爪螨属(Oligonychus),广泛分布于亚洲、欧洲、澳洲、美洲的众多国家。该螨食性广,寄主植物包括松科(Pinaceae)、柏科(Cupressaceae)、杉科(Taxodiaceae)等针叶树和壳斗科(Fagaceae)、黄杨科(Buxaceae)、胡桃科(Juglandaceae)、桃金娘科(Myrtaceae)、蔷薇科(Rosaceae)等阔叶树(Bolland et al., 1998; Migeon et al., 2017)。我国重要树种杉木(Cunninghamia lanceolata)和板栗(Castanea mollissima)上的重要害螨一直被认为是针叶小爪螨(王慧芙,1981张时敏,1982孙绪艮等,1990),但研究发现,该螨的浙江杉木种群不能在板栗、麻栎(Quencus acutissima)等阔叶树上存活,山东板栗种群也不能在杉木、黑松(Pinus thunbergii)、赤松(P.densiflora)等针叶树上存活(孙绪艮等,2000),2种群在形态上也有一定差异(尹淑艳等,2010a),在线粒体COⅠ基因和核糖体ITS2基因核苷酸组成上也存在较明显差异,并且2种群间存在双向的生殖不亲和(尹淑艳等,2010b),而且这种不亲和可以排除地理隔离的影响,因为浙江板栗种群与山东板栗种群间的杂交是完全亲和的(孙绪艮等,2000)。

根据生物学物种的概念,生殖上完全隔离的2个群体应该是2个不同的种,但对内共生菌WolbachiaCardinium等的研究使得生物学物种的概念受到挑战。内共生菌WolbachiaCardinium对其宿主的生殖具有调控作用,能引起胞质不亲和等生殖异常现象(Groot et al., 2006; Xie et al., 2006; Gotoh et al., 2007; Werren et al., 2008; 刘颖等,2010Xie et al., 2010; 陆明红等,2011Zhu et al., 2012; 张艳凯等,2014)。为了解内共生菌在针叶小爪螨山东板栗种群(TSBL)和浙江杉木种群(ZJSM)间生殖不亲和中的可能作用,笔者检测了这2个种群内共生菌的感染情况,结果表明,2个种群均未感染WolbachiaCardinium,排除了WolbachiaCardinium引起2种群生殖不亲和的可能性(孙菲等,2017),说明板栗和杉木上的叶螨为2个不同的种。

许多有关昆虫与植物间关系的研究发现,植食性昆虫具有缩小或扩大其寄主范围或转移到新寄主上的进化潜力,这种现象可使种群间产生完全的生殖隔离进而导致与寄主有关的物种形成(Via, 1990)。对取食不同寄主植物的柑橘全爪螨(Panonychus citri)的研究,发现了一个新的姊妹种P. osmanthi(Ehara et al., 2011)。

大多数螨类体型微小(< 0.5 mm),可用于鉴定的特征有限,加之同一物种的个体差异、雌雄差异以及形态的可塑性等,使得螨类的形态鉴定比较困难,以致于单靠外部形态鉴定的物种有时不准确,如世界范围分布的二斑叶螨(Tetranychus urticae)有44个异名(Bolland et al., 1998)。分子生物型学技术在螨类中的应用,解决了不少传统分类难以鉴定或同物异名与异物同名的问题,如Vargas等(2005)将形态特征与分子数据结合分析,认为3种不同寄主上的Geomylichus texanus应该为3个不同的物种;Kanouh等(2010)证明Neoseiulella tiliarumN. formosaN. squamigerN. aceri是同物异名等。28S rDNA是编码细胞质核糖体大亚基中28S rRNA的基因,由于其重要的生物学功能,在进化过程中比较保守,同时在保守序列中也含有12个高变区,适合于从种级到科级水平上的系统发育关系研究,在昆虫许多类群的分类研究中已得到验证(江世宏等,2009),在螨类中也有应用(李国庆等,2010Skoracka et al., 2010; Matsuda et al., 20122014; Lehmitz et al., 2017)。

已有研究表明,山东板栗和浙江杉木上的“针叶小爪螨”为2个不同的种,且已排除地理隔离、内共生菌的影响。那么,这2个种是由于长期适应不同寄主植物分化而成还是由于错误鉴定造成?为了明确这个问题,本研究测定比较了其28S rDNA的部分片段,并基于28S rDNA序列构建了小爪螨属多个物种的系统发育树。

1 材料与方法 1.1 供试叶螨

供试针叶小爪螨与尹淑艳等(2010b)所用的针叶小爪螨为同一批次采集的,为叙述方便,杉木和板栗上的叶螨仍分别称为杉木种群(ZJSM)和板栗种群(TSBL),其雌成螨分别采自浙江省富阳市(119°97′E,30°05′N)和山东省泰安市(117°09′E,36°20′N),置于无水乙醇中,在-20 ℃保存备用。

1.2 DNA提取及质量检测

DNA提取方法参照O’Neill等(1992):将用酒精保存的单头雌成螨浸入蒸馏水中除去酒精,移入TE缓冲液(10 mmol·L-1 Tris-HCl,1 mmol·L-1 EDTA,pH 8.0)中浸泡1 h,然后将虫体转移至25 μL STE buffer(100 mmol·L-1 NaCl,10 mmol·L-1 Tris-HCl,1 mmol·L-1 EDTA,pH 8.0)中充分研磨,研磨后将离心管置于冰上并向离心管内加2 μL蛋白酶K(10 mg·mL-1)。简单离心后,37 ℃下孵育30 min。95 ℃初始变性5 min。简单离心后,-20 ℃保存或立即取上清(2 μL)作为模板进行PCR。

DNA质量检测  使用线粒体细胞色素C氧化酶亚基Ⅰ基因(COⅠ)片段进行检测,所用引物为5′-TGGGTTTGGAATAGTTTCTCA-3′和5′-CTGTAAATC CTCCAATGGAAA-3′,PCR反应体系和反应条件参照尹淑艳等(2010b)。只有得到阳性PCR产物的模板继续用于下一步28S rDNA扩增。

1.3 28S rDNA基因扩增

所用引物为5′-GGTGTAGCATAAGTGGGAGY-3′与5′-TCGCAATGAAGGAAGAGCC-3′(根据小爪螨属其他叶螨的28S rDNA两端的保守序列设计)。PCR反应总体系为25 μL,其中含有2 μL DNA溶液,2×Es Taq MasterMix(康为世纪)12.5 μL,上下游引物(10 μmol·L-1)各1 μL,超纯水8.5 μL。反应条件为:94 ℃预变性2 min;94 ℃变性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 min,30个循环后72 ℃保温10 min。扩增产物用含有溴化乙锭的1%琼脂糖凝胶电泳检测。

1.4 测序及序列分析

电泳检测为阳性的PCR产物送上海桑尼生物科技有限公司纯化、双向测序。将所测得序列在NCBI网站上进行BLAST,以确定所得到的是否为目的序列。所得序列用BioEdit(Version 7.0)软件中的ClustalW进行比对,辅以人工校正,计算序列一致性。

从NCBI网站上下载小爪螨属其他种的28S rDNA序列,用MEGA5.2软件中的ClustalW进行序列比对,并基于Tamura-Nei模型,计算遗传距离,采用邻接法(neighbor-joining,NJ)、最大似然法(maximum likelihood,ML)、最小进化法(minimum-evolution,ME)构建系统发育树,系统树各分支的置信度(Bootstrap)均进行1 000次的重复检验,发育树各分支上只显示高于50%的Bootstrap值。

2 结果与分析 2.1 板栗和杉木种群28S rDNA比较

从板栗和杉木种群中各随机取了3个个体扩增了28S rDNA的部分片段,扩增产物送上海桑尼生物科技有限公司纯化、双向测序。所得序列经BLAST比对确定为目的序列,且每个种群的3个样本的序列完全一致,无种群内变异。2种群的28S rDNA在Genbank中的登录号分别是KU886557(板栗种群)和KU886556(杉木种群),序列比对见图 1,比对长度为606个碱基。606个位点中没有插入/缺失,共有10个变异位点,2种群间序列一致性为98.3%,遗传距离为1.7%(表 1)。

图 1 板栗和杉木种群的28S rDNA序列比对 Fig. 1 Alignment of 28S rDNA sequences of the chestnut population and the Chinese fir population
表 1 种间或种群间28S rDNA序列一致性(下三角)及遗传距离(上三角) Tab.1 Interspecific or interpopulation identity (lower triangle) and genetic distance (upper triangle) of 28S rDNA sequences
2.2 基于28S rDNA构建小爪螨属系统发育树

从NCBI网站上下载小爪螨属其他种(表 2)及外群微小牛蜱(Rhipicephalus microplus)的28S rDNA序列(KC769636),运用MEGA5.2软件,基于Tamura-Nei模型,构建了NJ树、ML树和UPGMA树,3种系统树的拓扑结构相似,NJ树和ML树几乎完全一致,在此只展示NJ树(图 2)。NJ树显示,杉木种群(KU886556)与采自日本的日本柳杉(Cryptomeria japonica)上的本岛小爪螨(O. hondoensis)(AB683722)亲缘关系最近,板栗种群(KU886557)与采自日本的日本栗(Castanea crenata)上的栗小爪螨(O. castaneae)(AB683731)的亲缘关系最近。杉木种群(KU886556)首先与本岛小爪螨(AB683722)聚在一起,再与采自日本的日本柳杉上的针叶小爪螨(AB683728)相聚,然后与板栗种群(KU886557)和栗小爪螨(AB683731)聚在一起。

表 2 构建系统发育树时所引用的GenBank中小爪螨属物种的28S rDNA序列 Tab.2 28 S rDNA sequences of Oligonychus in GenBank quoted for constructing phylogenetic tree
图 2 基于28S rDNA序列构建的小爪螨属NJ树 Fig. 2 NJ tree of the genus Oligonychus based on 28S rDNA sequences
3 讨论

已有研究表明,针叶小爪螨的山东板栗种群与浙江杉木种群很可能由于长期适应不同寄主植物分化成了2个种,但也不能排除误定,将原本就是不同的2个种误认为是同一个种。由于大多数螨类体型微小,可用于鉴定的特征有限,因此,容易出现误定,如世界范围分布的二斑叶螨就有40多个异名。为了明确板栗和杉木上叶螨出现分化的原因,笔者测定比较了这2种寄主上叶螨的28S rDNA,并基于28S rDNA构建了小爪螨属的系统发育树。如果板栗和杉木上的叶螨是由同一种叶螨因长期适应不同寄主植物分化而成,那么二者间的亲缘关系应该较与其他物种间的亲缘关系近。但由系统发育树的拓扑结构看,我国板栗上的叶螨与日本的栗小爪螨亲缘关系最近,而杉木上的叶螨与日本的本岛小爪螨亲缘关系最近,虽然Bootstrap值较低,但在所构建的NJ树和ML树中,这几个物种的关系完全一致,这一结果应该是可靠的。鉴于板栗和杉木上的小爪螨两者亲缘关系并非最近,笔者认为我国板栗和杉木上的叶螨并非由同一种叶螨分化而成,很可能是错误鉴定造成。

Matsuda等(2012)基于COⅠ、ITS和28S rDNA对日本17种小爪螨属叶螨的研究表明,这些基因序列的种内差异与种间差异不重叠,可有效鉴别小爪螨属叶螨,其中,28S rDNA的种内遗传距离是0~0.1%,种间遗传距离是0.4%~10.7%。从系统发育树来看,虽然我国板栗上的叶螨与日本的栗小爪螨亲缘关系最近,杉木上的叶螨与日本的本岛小爪螨亲缘关系最近,但基于28S rDNA序列计算的我国板栗上小爪螨与日本栗小爪螨的遗传距离为1.3%,杉木上叶螨与日本本岛小爪螨的遗传距离为1.5%,板栗和杉木上的叶螨与采自日本的日本柳杉上的针叶小爪螨的遗传距离分别是2.4%和2.0%(表 1),远超过Matsuda等(2012)测定的种内遗传距离(0~0.1%),由此推断,我国板栗和杉木上的叶螨不同于日本的栗小爪螨、本岛小爪螨和针叶小爪螨,其分类地位还需进一步确定。

Ehara(2011)指出,针叶小爪螨不同种群和同一种群的不同个体之间在足的毛序上存在变异,Pritchard和Baker也指出,针叶小爪螨可能是一个复合种,但在形态上还不能清楚地区分开(王慧芙,1981)。基于COⅠ基因序列计算的采自我国板栗和杉木上的针叶小爪螨与采自法国意大利柏(Cupressus sempervirens)上的针叶小爪螨的遗传距离分别是11.6%和9.8%,采自法国意大利柏上的针叶小爪螨与采自日本的日本柳杉上的针叶小爪螨的遗传距离为7.9%(表 3),都远超过Matsuda等(2012)测定的小爪螨属COⅠ基因序列的种内遗传距离(0~2.9%)。目前有关针叶小爪螨的分子数据只有中国、法国和日本的,从有限的分子数据比较来看,这3个国家的针叶小爪螨差异较大,很可能分属于不同的种。因此,世界范围的针叶小爪螨的分类鉴定尚需进一步研究。

表 3 基于COⅠ基因序列的针叶小爪螨种群间遗传距离 Tab.3 Interpopulation genetic distance of O. ununguis based COⅠ gene sequences

传统上螨类分类应用的是形态特征,但大多数螨类体型微小,可用于鉴定的特征有限,相对于其他体型较大的动物,螨类的形态鉴定比较难。分子方法能够解决一些传统分类学难于解决的问题,可以验证物种鉴定的准确性,应用序列差异阈值能够提高发现新种的机会(Hebert et al., 2003; Moritz et al., 2004),同时,普遍认为分子分类代替不了传统的形态分类。DNA barcoding必须依赖传统的形态分类学,在条形码数据库建立之前,取样必须建立在形态分类学研究的基础上;建库后验证要以形态分类学结果作为参照标准。DNA条形码鉴定只有在形态学分类研究的基础上,在取样准确、涵盖分布区包括所有变异的情况下才能保证结果的可靠性。因此DNA条形码鉴定和传统的形态分类学研究是相辅相成的,需要将两者紧密地结合在一起(任保青等,2010)。目前,只有为数不多的分类学家专门从事螨类的形态鉴定,而且人员的数量正在减少,这给叶螨的准确鉴定增加了困难(Ros et al., 2007)。另外,螨类中,DNA条形码的选择及其评价还没有统一标准。存放DNA序列的数据库中,可用于螨类鉴定的物种、序列不多,且序列位置不同或只有部分重叠。因此,螨类鉴定中,目前急需形态分类专家与分子生物学技术人员合作,将螨类种名与标准的一个或多个基因序列准确对应起来,这样,非分类专业的螨类研究者通过形态无法识别某一种螨类时,可以通过基因序列比对来确认其身份。

4 结论

基于28S rDNA分析表明,我国板栗和杉木上的叶螨并非由同一种叶螨因长期适应不同寄主植物分化而成,很可能是2个独立的物种,这还需进一步研究其形态特征上的差异,以明确其分类地位。

参考文献(References)
江世宏, 陈晓琴, 吴深健, 等. 2009. 基于28S rDNA的叩甲科分子系统发育关系研究. 昆虫学报, 52(1): 74-83. DOI:10.3321/j.issn:0454-6296.2009.01.011
Jiang S H, Chen X Q, Wu S J, et al. 2009. Molecular phylogenetic analysis of Elateridae (Insecta:Coleoptera) based on 28S rDNA gene fragments. Acta Entomologica Sinica, 52(1): 74-83.
李国庆, 于明志, 洪晓月. 2010. 基于核糖体28S rRNA对叶螨的鉴定及其系统发育分析. 南京农业大学学报, 33(5): 49-54.
Li G Q, Yu M Z, Hong X Y. 2010. Identification and phylogenetic analysis of spider mites based on 28S rRNA sequences. Journal of Nanjing Agricultural University, 33(5): 49-54.
刘颖, 谢蓉蓉, 洪晓月. 2010. 共生菌Cardinium对朱砂叶螨的生殖调控作用. 昆虫学报, 53(11): 1233-1240.
Liu Y, Xie R R, Hong X Y. 2010. Manipulation of symbiont Cardinium on the reproduction of the carmine spider mite, Tetranychus cinnabarinus (Boisduval) (Acari:Tetranychidae). Acta Entomologica Sinica, 53(11): 1233-1240.
陆明红, 谢蓉蓉, 赵臻君, 等. 2011. 二斑叶螨两种群中Wolbachia诱导的胞质不亲和作用的影响因子比较研究. 昆虫学报, 54(9): 1018-1026.
Lu M H, Xie R R, Zhao Z J, et al. 2011. A comparative study of factors influencing the expression of Wolbachia-induced cytoplasmic incompatibility in two populations of the two-spotted spider mite, Tetranychus urticae Koch (Acari:Tetranychidae). Acta Entomologica Sinica, 54(9): 1018-1026.
任保青, 陈之端. 2010. 植物DNA条形码技术. 植物学报, 5(1): 1-12.
Ren B Q, Chen Z D. 2010. DNA barcoding plant life. Chinese Bulletin of Botany, 45(1): 1-12.
孙菲, 杨春红, 李波, 等. 2017. 针叶小爪螨不同种群内共生菌WolbachiaCardinium的检测及系统发育分析. 林业科学, 53(12): 12-19. DOI:10.11707/j.1001-7488.20171202
Sun F, Yang C H, Li B, et al. 2017. Detection of Wolbachia and Cardinium endosymbionts in different Oligonychus ununguis populations and phylogenetic analysis of Cardinium. Scientia Silvae Sinicae, 53(12): 12-19.
孙绪艮, 苗良. 1990. 针叶小爪螨研究初报. 山东农业大学学报, 21(3): 41-46.
Sun X G, Miao L. 1990. Studies on Oligonychus ununguis (Jacobi). Journal of Shandong Agricultural University, 21(3): 41-46.
孙绪艮, 徐常青, 周成刚, 等. 2000. 针叶小爪螨不同种群在针叶树和阔叶树上的生长发育和繁殖及其生殖隔离. 昆虫学报, 43(1): 52-57. DOI:10.3321/j.issn:0454-6296.2000.01.008
Sun X G, Xu C Q, Zhou C G, et al. 2000. Performances and reproductive isolation of different populations of Oligonychus ununguis (Jacobi) on conifer and broadleaf trees. Acta Entomologica Sinica, 43(1): 52-57.
王慧芙. 1981. 中国经济昆虫志.第二十三册.螨目叶螨总科. 北京: 科学出版社.
Wang H F. 1981. Economic insect fauna of China, Fasc. 23, Acariformes:Tetranychoidea. Beijing: Science Press.
尹淑艳, 徐常青, 崔孝平, 等. 2010a. 针叶小爪螨板栗和杉木种群的形态差异. 林业科学, 46(6): 166-170.
Yin S Y, Xu C Q, Cui X P, et al. 2010a. Morphological differences of Oligonychus ununguis populations from Castanea mollissima and Cunninghamia lanceolata. Scientia Silvae Sinicae, 46(6): 166-170.
尹淑艳, 于新社, 郭慧玲, 等. 2010b. 针叶小爪螨板栗和杉木种群间的遗传分化和杂交试验. 昆虫学报, 53(5): 555-563.
Yin S Y, Yu X S, Guo H L, et al. 2010b. Genetic differentiation and cross-breeding experiments between Oligonychus ununguis (Acari:Tetranychidae) populations from host plants Castanea mollissima and Cunninghamia lanceolata. Acta Entomologica Sinica, 53(5): 555-563.
张时敏. 1982. 针叶小爪螨初步观察. 林业科技通讯, (3): 30-32.
Zhang S M. 1982. Preliminary observation on Oligonychus ununguis. Forest Science and Technology, (3): 30-32.
张艳凯, 孙兵, 洪晓月. 2014. Wolbachia在山楂双叶螨中的感染及对寄主生殖的影响. 昆虫学报, 57(8): 914-920.
Zhang Y K, Sun B, Hong X Y. 2014. Infection and reproductive effects of Wolbachia in the hawthorn spider mite, Amphitetranychus viennensis (Acarina:Tetranychidae). Acta Entomologica Sinica, 57(8): 914-920.
Bolland H R, Gutierrez J, Flechtmann C H W. 1998. World catalogue of the spider mites family Acari:Tetranychidae with references to taxonomy, synonymy, host pests and distribution. Leiden: Academic Publ Brill.
Ehara S, Gotoh T. 2011. Two new species of spider mites occuring in Japan (Acari, Tetranychidae). J Acarol Soc Jpn, 5(1): 17-25.
Gotoh T, Noda H, Ito S. 2007. Cardinium symbionts cause cytoplasmic incompatibility in spider mites. Heredity, 98(1): 13-20. DOI:10.1038/sj.hdy.6800881
Groot T V M, Breeuwer J A J. 2006. Cardinium symbionts induce haploid thelytoky in most clones of three closely related Brevipalpus species. Exp Appl Acarol, 39(3/4): 257-271.
Hebert P D N, Cywinska A, Ball S L, et al. 2003. Biological identifications through DNA barcodes. Proc R Soc B, 270(1512): 313-321. DOI:10.1098/rspb.2002.2218
Kanouh M, Tixier M S, Guichou S, et al. 2010. Two synonymy cases within the genus Neoseiulella. Biological Journal of the Linnean Society, 101(2): 323-344. DOI:10.1111/bij.2010.101.issue-2
Lehmitz R, Decker P. 2017. The nuclear 28S gene fragment D3 as species marker in oribatid mites (Acari, Oribatida) from German peatlands. Experimental & Applied Acarology, 71(3): 259-276.
Matsuda T, Hinomoto N, Singh R N, et al. 2012. Molecular-based identification and phylogeny of Oligonychus species (Acari:Tetranychidae). Journal of Economic Entomology, 105(3): 1043-1050. DOI:10.1603/EC11404
Matsuda T, Morishita M, Hinomoto N, et al. 2014. Phylogenetic Analysis of the spider mite sub-Family Tetranychinae (Acari:Tetranychidae) based on the mitochondrial COI gene and the 18S and the 5' end of the 28S rRNA genes indicates that several genera are polyphyletic. PLoS ONE, 9(10): e108672. DOI:10.1371/journal.pone.0108672
Migeon A, Dorkeld F.[2017-08-25]. Spider Mites Web: a comprehensive database for the Tetranychidae. http://www.montpellier.inra.Fr/CBGP/spmweb.
Moritz C, Cicero C. 2004. DNA barcoding:promise and pitfalls. PLoS Biol, 2(10): e354. DOI:10.1371/journal.pbio.0020354
O'Neill S L, Giordano R, Colbert A M, et al. 1992. 16S rRNA phylogenetic analysis of the bacterial endosymbionts associated with cytoplasmic incompatibility in insects. Proc Natl Acad Sci USA, 89(7): 2699-702. DOI:10.1073/pnas.89.7.2699
Ros V I D, Breeuwer J A J. 2007. Spider mite (Acari:Tetranychidae) mitochondrial COI phylogeny reviewed:host plant relationships, phylogeography, reproductive parasites and barcoding. Exp Appl Acarol, 42(4): 239-262. DOI:10.1007/s10493-007-9092-z
Skoracka A, Dabert M. 2010. The cereal rust mite Abacarus hystrix (Acari:Eriophyoidea) is a complex of species evidence from mitochondrial and nuclear DNA sequences. Bulletin of Entomological Research, 100(3): 263-272. DOI:10.1017/S0007485309990216
Vargas M, Garcia-Varela M, Laclette J P, et al. 2005. Application of ITS-2 sequences as markers for identification and phylogenetic inference within the genus Geomylichus (Acari:Listrophoridae). Exp Appl Acarol, 35(3): 223-238. DOI:10.1007/s10493-004-2761-2
Via S. 1990. Ecological genetics and host adaptation in herbivorous insects:the experimental study of evolution in natural and agricultural systems. Annual Review of Entomology, 35(35): 421-446.
Werren J H, Baldo L, Clark M E. 2008. Wolbachia: master manipulators of invertebrate biology. Nat Rev Microbiol, 6(10): 741-751. DOI:10.1038/nrmicro1969
Xie R R, Liu Y, Hong X Y, et al. 2006. Effect of infection rate of Wolbachia on the reproduction in Tetranychus kanzawai Kishida (Acari:Tetranychidae) in China. Int J Acarol, 32(4): 407-415. DOI:10.1080/01647950608684489
Xie R R, Zhou L L, Zhao Z J, et al. 2010. Male age influences the strength of Cardinium-induced cytoplasmic incompatibility expression in the carmine spider mite Tetranychus cinnabarinus. Appl Entomol Zool, 45(3): 417-423. DOI:10.1303/aez.2010.417
Zhu L Y, Zhang K J, Zhang Y K, et al. 2012. Wolbachia strengthens cardinium-induced cytoplasmic incompatibility in the spider mite Tetranychus piercei McGregor. Curr Microbiol, 65(5): 516-523. DOI:10.1007/s00284-012-0190-8