近年来，过敏性疾病已经成为许多国家和地区季节性的流行病 (吕相征等，2005)，受到社会各界的广泛关注，被世界卫生组织列为21世纪重点防治的三大疾病之一。在众多的过敏原之中，花粉是自然界中最常见的吸入型过敏原，容易造成过敏患者出现支气管哮喘、季节性鼻炎、枯草热及皮炎等症状 (陈绍宁等，2008)。新的统计结果表明，几乎所有工业化国家的花粉过敏病人口都在剧增，例如美国、日本、意大利、西班牙、奥地利等国家花粉过敏症的人数占总人口的15%左右，而挪威、瑞典、比利时、英国和法国花粉过敏患者高达30%左右。在我国，花粉过敏的发病率为0.5%~1%，高发病区达5%，虽然没有上述一些国家那么严重，但近年来发病率也呈现逐年增高趋势 (杨琼梁等，2015)。

木本植物花粉过敏现象在许多国家都有报道，花粉飘散具有明显的季节性和地域性，不同国家和地区在不同季节有不同的致敏花粉。Lin等 (2002)调查了引起花粉过敏症主要的过敏原，结果发现引起过敏 (患病率) 的花粉树种主要是美国白栎 (Quercus alba)(34.3%)、垂枝桦 (Betula pendula)(32.9%) 和梣叶槭 (Acer negundo)(32.9%)，其次为山毛榉 (Fagus grandifolia)(29.6%)、美国白梣 (Fraxinus americana)(26.0%)、美国榆 (Ulmus americana)(24.6%) 和美洲黑杨 (Populus deltoides)(20.6%)。根据土耳其锡夫里希萨尔气传致敏花粉浓度的调查结果显示，松科 (Pinaceae)、柏科 (Cupressaceae)、白蜡树属 (Fraxinus)、杨属 (Populus) 是主要的气传致敏花粉 (Erkara，2008)。Mardones等 (2013)研究了塔卡尔2007年5月—2008年4月期间大气花粉粒数，发现空气中花粉数量最多的树种是二球悬铃木 (Platanus acerifolia)，其花粉浓度达到每周平均每日高达203粒·m^-3；其次是埃及榕 (Acer pseudoplatanus)(116粒·m^-3)，杨属 (103粒·m^-3) 和木犀榄 (Olea europaea)(19粒·m^-3) 相对较少。在我国，由于南北地理、海拔、气温等差异大，花粉致敏种类不尽相同。我国南方花粉致敏树种主要有悬铃木属 (Platanus)、松属 (Pinus)、构属 (Broussonetia) 等，而北方主要以悬铃木属、杨属、柳属 (Salix)、桦木属 (Betula) 为代表 (辛嘉楠等，2007；杨琼梁等，2015)。花粉能引起人过敏是因为花粉中含有能剌激机体发生过敏反应的物质，其主要成分是蛋白质。迄今为止，关于木本植物花粉过敏原的研究报道主要有悬铃木属 (Pla a 1和Pla a 2)(Asturias et al., 2002；Ibarrola et al., 2004)、桦木属 (Bet v 1, Bet v 2和Bet v 4等)(Ebner et al., 1995；Twardosz et al., 1997)、榆属 (Ulmus) (Car b 1)(Hirahara et al., 2001)、日本柳杉 (Cryptomeria japonica)(Cry j 1, Cry j 2和Jun a 1)(Larsen et al., 1992；Midoro et al., 1999) 等。

我国是世界上杨树人工林面积最大的国家，面积已超666.7万hm²(贾黎明等，2013)。杨树不仅是速生丰产林、防护林的主要造林树种，也是我国城市绿化常用的树种，杨树的花期3—4月，雄株产生大量的花粉，具有过敏的潜能。为了解杨树花粉致敏原，本实验室建立了杨树花粉蛋白提取和分离技术体系，并对美洲黑杨36号杨 (P. deltoides ‘2KEN8’) 花粉进行了蛋白分离和致敏蛋白预测 (Zhang et al., 2015)，为研究其他杨树种质花粉致敏性奠定了基础。杨树种类繁多，不同种质间的花粉致敏性可能存在差异。为了探索不同杨树种质间花粉致敏蛋白的表达特性差异，本文选用目前生产上常见的6份杨树种质为研究材料，开展了杨树不同种质花粉萌发率、花粉管长度等基本特性研究；并利用差异蛋白质组技术，以36号杨成熟花粉预测的28个致敏蛋白为基础，对其他5份杨树种质间花粉致敏蛋白的表达水平进行了比较，为探索杨树不同种质的花粉致敏性差异、选育低致敏杨树品种以及控制植物过敏性疾病等研究提供理论依据。

6份杨树种质[36号杨 (Populus deltoides ‘2KEN8’)、南杨 (P. deltoides ‘Nanyang’)、110杨 (P. deltoides ×P. maximowiczii ‘Eridano’)、森海2号杨 (P. deltoides × P. cathayana ‘Senhai 2’)、小叶杨 (P. simonii) 和钻天杨 (P. nigra var. italica)]花枝于2015年3月采自北京、河北和河南 (表 1)。将花枝适当修剪，在室内进行隔离水培，室温 (20±2) ℃。待雄花成熟散粉时，用培养皿收集花粉，室温晾干后，装于50 mL离心管中，在-20 ℃冰箱中保存。

表 1 试验材料基本情况 Tab.1 The background of experimental materials

表 1 试验材料基本情况 Tab.1 The background of experimental materials 杨树种质 Poplar germplasms 简称 Abbreviation 遗传背景 Genetic background 倍性 Ploidy 采集地 Sampling sites 36号杨 Populus deltoides ‘2KEN8’ ‘2KEN8’ 美洲黑杨 P. deltoides 二倍体 Diploid 北京玉泉山 Yuquanshan, Beijing 南杨 P. deltoides ‘Nanyang’ ‘Nanyang’ 50号杨× 36号杨 P. deltoides ‘55 /56’ × P. deltoides ‘2KEN8’ 二倍体 Diploid 河南焦作 Jiaozuo, Henan 110杨 P. deltoides ×P. maximowiczii ‘Eridano’ ‘Eridano’ 美洲黑杨×辽杨 P. deltoides × P. maximowiczii 二倍体 Diploid 北京玉泉山 Yuquanshan, Beijing 森海2号杨 P. deltoides × P. cathayana ‘Senhai 2’ ‘Senhai 2’ 50号杨×青杨 P. deltoides ‘55 /56’ × P. cathayana 三倍体 Triploid 河北怀来 Huailai, Hebei 小叶杨 P. simonii Ps 青杨派 Sect. Tacamahaca 二倍体 Diploid 北京植物园 Beijing Botanical Garden 钻天杨 P. nigra var. italica Pn 欧洲黑杨 P. nigra 二倍体 Diploid 北京植物园 Beijing Botanical Garden

采用液体培养法进行杨树花粉萌发试验 (胡超，2011)，稍有改动。将花粉从-20 ℃冰箱中取出，每份杨树种质称取0.01 mg花粉，在4 ℃条件下充分吸水4 h。将花粉均匀撒入液体培养基 (15%蔗糖+ 100 mg·L^-1硼酸+ 300 mg·L^-1 CaCl₂ + 200 mg·L^-1 MgSO₄+ 100 mg·L^-1KNO₃，pH6.0) 上，21 ℃暗培养2，4，8，12，24 h后，在光学显微镜下观察花粉萌发情况，统计花粉萌发数并测量花粉管长度。每个处理随机观察5个视野，每个视野花粉粒不少于30个，以花粉管长度大于花粉粒直径视为萌发。萌发率=已萌发花粉数/花粉总数× 100%。每个样品在不同培养时间随机选取50个已萌发的花粉，采用显微测微尺测量花粉管长度。每份种质设置3次生物学重复。

采用三氯乙酸丙酮 (TCA-丙酮) 沉淀法提取5份杨树种质成熟花粉可溶性总蛋白质 (Zhang et al., 2015)。具体操作：将花粉从-20 ℃冰箱中取出，称取1 mg花粉，置于4 ℃条件下充分吸水4 h。加液氮充分研磨至粉末，置于100 mL预冷的TCA-丙酮溶液 (10%TCA，0.07%β-巯基乙醇) 中，震荡混匀后在-20 ℃条件下静置过夜，再14 000 r·min^-1离心30 min，弃上清；用冷丙酮 (含0.07%β-巯基乙醇) 冲洗沉淀1 h后，14 000 r·min^-1离心30 min，重复上述步骤3~4次，直至沉淀物为白色；真空冻干成干粉，-80 ℃保存备用。

按照1 mg·mL^-1的比例用蛋白质裂解缓冲液[7 mol·L^-1尿素，65 mmol·L^-1 DTT，4%(W/V) CHAPS，0.01%PMSF，0.2%载体两性电解质]溶解冻存的蛋白样品，并用Bradford法测定蛋白浓度。取600 μg样品与水化液 (7 mol·L^-1尿素，2 mol·L^-1硫脲，4%CHAPS，65 mmol·L^-1 DTT，0.002 kg·L^-1 Bio-Lyte) 充分混合后作为上样样品，总体积为350 μL。首先，使用非线性IPG固相胶条进行第1向等电聚胶电泳。电泳结束后，立即将IPG胶条依次于10 mL平衡液Ⅰ[6 mol·L^-1尿素，0.02 kg·L^-1 SDS，0.375 mol·L^-1 Tris-HCl (pH8.8)，30%甘油，0.02 kg·L^-1 DTT]和平衡液Ⅱ[6 mol·L^-1尿素，0.021 kg·L^-1SDS，0.375 mol·L^-1 Tris-HCl (pH8.8)，20%甘油，0.04 kg·L^-1碘乙酰胺]中各平衡15 min。然后进行第2向电泳，待溴酚蓝线至凝胶底部边缘时停止电泳，将SDS-PAGE胶在固定液中 (10%乙酸，40%甲醇，50%ddH₂O) 震荡过夜，再转移至考马斯亮蓝G-250染色液 (0.1%G-250，25%异丙醇，10%冰醋酸) 中震荡染色13 h。最后用ddH₂O脱色至背景近无色。每个品种的双向电泳试验平行重复3次，以确保试验结果的可靠性。

杨树花粉总RNA提取方法参照植物总RNA提取试剂盒 (RNeasy Plant Kit) 使用说明书，将提取的RNA纯化后进行反转录成cDNA (TaKaRa，China)，以cDNA为模板进行qRT-PCR。利用在线设计软件Primer3 Input 0.4.0设计实时定量PCR引物，其引物序列见表 2。参照SYBR^® Premix Ex Taq^TMKit (TaKaRa，China) 配制PCR反应体系，反应在Roche480(Roche，USA) 上进行，程序为：95 ℃ 30 s；95 ℃ 5 s，60 ℃ 30 s，40个循环；60 ℃ 1 min；50 ℃ 30 s。以PtActin作为内参对照，以36号杨的致敏相关基因作为对照组，qRT-PCR数据分析参照采用2^-ΔΔCt方法 (Pfaffl，2001)。为了确保试验结果的真实性和可靠性，每个试验均设3次生物学重复和4次技术重复。

表 2 用于qRT-PCR分析致敏蛋白基因的引物 Tab.2 Primers used in RT-PCR analysis of the allergenic proteins

表 2 用于qRT-PCR分析致敏蛋白基因的引物 Tab.2 Primers used in RT-PCR analysis of the allergenic proteins 蛋白点编号 Spot No. 正向引物序列 Forward primer sequence (5′—3′) 反向引物序列 Reverse primer sequence (5′—3′) 片段大小 Fragment size/bp 5 CGAAAGAGGAGGCAACAAAG CAATCAACCTCTCGCTGTCA 168 12 TTTGGAAAGAGCCCTAGCAA CCTGAGTCTGGTTGTCAGCA 238 44 TCATCAACGGTGGATCACAT CCAACATTTGTTGCATCCTG 228 51 CAAGCCACAGAAGTGGTGAA GTTCAACTGGTGCCCTGAAT 218 80 GTGACAGCCTCCCAATGAAT GCCTGTGCCAATTTTTGAAT 205 161 CCAAAATCAGCGAGGGAATA AGAATCAATGCTCCGGAATG 195 197 GATCGAGTTGCTGTTGTCCA CAGGCTGAAGCCCATATCAT 207 200 TGGATCTCTAGCCCCAACTG CTGGAGTCAATGGCTCATCA 177 216 GTGGCAGGTGTACGTTGATG AAGGAACAACCCAGTTGGTG 178

试验数据采用SPSS 13.0和Originlab 9.0软件进行方差分析、显著性分析和图表分析等。

通过光学显微镜分别观察6份杨树种质成熟花粉在暗培养2，4，8，12和24 h后的萌发动态，统计萌发花粉的数量，并测量花粉管长度。当培养到2 h时，花粉粒已经吸水膨大，部分花粉粒的花粉管已经伸出，随着培养时间的延长，花粉萌发率和花粉管长度逐渐提高 (图 1A)。萌发试验结果显示，除森海2号杨花粉一直没有萌发外，其他5份杨树种质的花粉萌发率均随着培养时间的延长逐渐提高。36号杨和南杨花粉萌发较快，在培养2 h时，萌发率分别为29.12%(±0.16%) 和21.44%(±0.25%)；在培养4 h时，钻天杨花粉萌发率迅速增加，达到36.67%(±0.02%)；在培养8 h时，110杨花粉仍未萌发；在培养12 h时，小叶杨和110杨花粉萌发率迅速增加到41.74%(±1.51%) 和38.83%(±0.16%)；在培养24 h时，36号杨花粉萌发率最大，高达74.42%(±2.36%)，其他依次是南杨67.23%(±2.10%)、钻天杨62.54%(±0.01%)、小叶杨56%(±0.04%) 和110杨42.23%(±1.95%)。差异分析结果显示，不同杨树种质的花粉萌发率差异达到了极显著水平 (P < 0.01)(图 1B)。由图 1C可看出，杨树花粉管平均长度随着培养时间的延长呈现逐渐增加趋势。培养24 h时，钻天杨花粉管平均长度为456.00 μm (±2.05 μm)，其他依次为南杨410.10 μm (±11.31 μm)，110杨390.06 μm (±12.59 μm)，36号杨310.16 μm (±11.13 μm) 和小叶杨276.44 μm (±11.08 μm)，而且不同杨树种质的花粉管萌发长度差异也达到了极显著水平 (P < 0.01)。以上结果表明，36号杨、南杨和钻天杨花粉活力较高，其次为110杨和小叶杨，森海2号杨活力最差，且不同杨树种质的成熟花粉活力存在明显差异。

图 1 不同培养时间下6份杨树种质花粉萌发动态、萌发率和花粉管长度比较 (标尺：200 μm) Fig.1 Change of the pollen germination, tube length with time for culturing in six poplar germplasms (Bar:200 μm) A.花粉萌发0，2，4，8，12，24 h的萌发状态；B. 6份杨树种质的花粉萌发率；C. 6份杨树种质的花粉管长度随培养时间的变化。 A. Pollen germinating state at 0, 2, 4, 8, 12 and 24 h respectively; B. Pollen germination rate of six poplar germplasms; C. Change of pollen tube length with culturing time of poplar germplasms.

南杨、110杨、森海2号杨、小叶杨和钻天杨成熟花粉蛋白的2-DE电泳图谱 (图 2) 十分相似，表明该5份杨树种质之间可以进行差异蛋白表达量的分析。利用Imagemaster 2D Platinum 6.0软件对5份杨树种质花粉的2-DE图谱进行比较分析，在南杨、110杨、森海2号杨、小叶杨和钻天杨的2-DE图谱上分别检测到449，442，428，419和422个蛋白质点，5份杨树种质间共有408个蛋白点相匹配，这些蛋白质的分子质量范围为5~63 kDa，等电点为4~7。但是，5份杨树种质成熟花粉却未发现特异蛋白。

图 2 5份杨树种质成熟花粉2-DE图谱 Fig.2 2-DE profile of mature pollen of five poplar germplasms

以36号杨已鉴定的28个潜在致敏蛋白 (Zhang et al., 2015) 为参照，对其他5份杨树种质成熟花粉的致敏蛋白相对表达量进行分析。从表 3中可看出，南杨有22个致敏蛋白，森海2号杨有21个致敏蛋白，110杨有20个致敏蛋白，小叶杨有19个致敏蛋白，钻天杨的致敏蛋白数量最少，为18个。与36号杨中的28个潜在致敏蛋白相比，有6个致敏蛋白点 (spot 22，66，84，142，144，184) 在该5份种质成熟花粉中均不存在，其他22个致敏蛋白点在电泳图谱中的放大图如图 3所示。随后，对该22个致敏蛋白进行差异表达量分析，其中有12个致敏蛋白 (spot 3，5，78，95，117，135，156，164，181，197，200，203) 在5份杨树种质中表达量较低，其相对表达量范围为-3.99~-0.02，其中森海2号杨和小叶杨表达量最低，其平均相对表达量分别为-1.83和-1.98。差异分析显示，森海2号杨和小叶杨分别有10个和8个致敏蛋白显著 (P < 0.05) 或极显著 (P < 0.01) 低于36号杨。南杨和钻天杨表达量稍低，分别为-0.83和-0.54。有3个致敏蛋白 (spot 133，208，216) 在5份种质间表达量均较高。其中南杨最高，其平均相对表达量为2.88，均极显著大于36号杨 (P < 0.01)；其次为钻天杨 (2.60)、森海2号杨 (1.19)、110杨 (0.83) 和小叶杨 (0.81)。组间差异方差分析发现，南杨和钻天杨的17个致敏蛋白表达量均显著 (P < 0.05) 或极显著 (P < 0.01) 高于小叶杨和森海2号杨，例如肌球蛋白抑制蛋白4(spot 216) 在南杨的表达量高达小叶杨的8倍之多。

表 3 致敏蛋白在不同杨树种质间的表达量差异分析^① Tab.3 The different expression of allergic protein among different poplar germplasms

表 3 致敏蛋白在不同杨树种质间的表达量差异分析① Tab.3 The different expression of allergic protein among different poplar germplasms 致敏蛋白 点编号 Allergenic protein ID 基因编号 Gene ID 蛋白质名称 Protein name 致敏蛋白相对表达量 The relative abundance of allergenic protein ‘Nanyang’/ ‘2KEN8’ ‘Eridano’/ ‘2KEN8’ ‘Senhai 2’/ ‘2KEN8’ Ps/ ‘2KEN8’ Pn/ ‘2KEN8’ 3 Potri.003G006300 间质70 kDa热激蛋白 Stromal 70 kDa heat shock-related protein -1.71** -1.83** -1.79* -1.09* -0.98 5 Potri.001G087500 结合蛋白亚型A BiP isoform A -0.13 -0.31 -0.93 -1.21* -0.34 12 Potri.001G285500 70 kDa热激蛋白 Heat shock protein 70 kDa 2.7** -0.88 — — — 22 Potri.009G079700 70 kDa热激蛋白 Heat shock protein 70 kDa — — — — — 44 Potri.006G116800 磷酸丙酮酸水合酶 Phosphopyruvate hydratase 0.69 -2.41** 1.75** -0.59 0.46 51 Potri.015G131100 烯醇酶 Enolases 0.95 -1.12* -0.99* -1.48* 1.77** 66 Potri.019G067200 未知蛋白 Uncharacterized protein — — — — — 78 Potri.002G034400 异黄酮还原酶 Isoflavone reductase -0.26 -0.16 -1.20* -2.36** -0.12 80 Potri.012G114900 类半乳糖变旋酶 Galactose mutarotase-like 2.08** 6.37** -1.13* -1.04* -3.99** 84 Potri.010G117900 果糖-二磷酸醛缩酶 Fructose-bisphosphate aldolase — — — — — 95 Potri.009G018600 延伸因子1 B-α亚基2 Elongation factor 1B alpha-subunit 2 -0.12 -1.19* -2.01** -0.01 — 117 Potri.001G034400 未知蛋白 Uncharacterized protein -1.63 -0.74 -0.96 -1.09* -0.51 133 Potri.008G056300 磷酸丙糖异构酶 Triosephosphate isomerase 2.18** 1.17* 1.00* 0.59 1.65** 135 Potri.013G092600 锰超氧化物歧化酶1 Manganese superoxide dismutase 1 -0.88 -0.99 -0.86 -1.42* -0.14 142 Potri.001G254700 热激蛋白20-类伴侣蛋白超家族蛋白 HSP20-like chaperones superfamily protein — — — — — 144 Potri.001G254700 热激蛋白20-类伴侣蛋白超家族蛋白 HSP20-like chaperones superfamily protein — — — — — 156 Potri.009G147900 热激蛋白20-类伴侣蛋白超家族蛋白 HSP20-like chaperones superfamily protein -1.73** -1.78** -5.42** -0.84 -0.38 158 Potri.018G083500 硫氧还蛋白过氧化物酶1 Thioredoxin-dependent peroxidase 1 -0.51 0.60 -2.55** -0.40 1.04* 161 Potri.001G392400 类花粉过敏原Ole e 1和伸展蛋白家族 Pollen Ole e 1 allergen and extensin family protein -2.33 -1.13* 2.72** -2.07** — 164 Potri.011G111300 类花粉过敏原Ole e 1和伸展蛋白家族 Pollen Ole e 1 allergen and extensin family protein -0.02 -1.73** -1.25** -1.51** -0.19 181 Potri.007G018000 1型硫氧还蛋白H Thioredoxin H-type 1 -1.86** — -2.48* -3.91** -0.88 184 Potri.006G093500 热激蛋白20-类伴侣蛋白超家族蛋白 HSP20-like chaperones superfamily protein — — — — — 197 Potri.009G146200 60S酸性核糖体蛋白家族 60S acidic ribosomal protein family -0.03 -1.98** -0.56 -6.43** -0.04 200 Potri.003G047700 前纤维蛋白3 Profilin 3 -1.49* -1.62** -3.37** — -0.98 201 Potri.006G235200 前纤维蛋白4 Profilin 4 -0.64 — 3.20** — — 203 Potri.001G190800 前纤维蛋白5 Profilin 5 -0.14 -1.15* -1.18* -1.88** -0.39 208 Potri.005G232700 1型硫氧还蛋白H Thioredoxin H-type 1 1.78** 1.07* 0.58 0.75 1.17* 216 Potri.018G057600 前纤维蛋白4 Profilin 4 4.68** 0.18 1.98** 0.59 4.98** ① “—”代表该种质花粉没有这个致敏蛋白点；“*”，“**”分别代表对照组与试验组之间差异显著 (P < 0.05) 和极显著 (P < 0.01)。“—”represents the germplasm without this allergenic protein; “*”, “**” represent significant (P < 0.05) and highly significant (P < 0.01) difference between control and treatment, respectively.

图 3 5份杨树种质的致敏蛋白点的放大 Fig.3 Enlargement view of allergenic proteins in five poplar germplasms

为进一步了解致敏蛋白编码基因在6份杨树种质间的转录水平，随机选取9个致敏蛋白基因，通过qRT-PCR对这9个基因的转录水平进行分析 (图 4)。结果显示，spot 12，51，200和216蛋白编码基因在南杨和钻天杨中的表达量显著 (P < 0.05) 或极显著高于其他种质；spot 44和spot 197蛋白编码基因在森海2号杨、小叶杨和钻天杨中的表达量极显著高于其他种质；spot 161蛋白编码基因在南杨、森海2号杨、小叶杨和钻天杨花粉中的表达量均是对照组36号杨的4 700倍以上，在钻天杨花粉中的表达量竟高达8 453.06(±267.47) 倍；spot 5蛋白编码基因仅在小叶杨中表达相对较高，达到显著水平；spot 80蛋白编码基因在5份种质花粉中的表达差异不显著。综合以上分析表明，9个致敏蛋白编码基因中，大多在南杨和钻天杨中表达量较高，而在森海2号杨和小叶杨中表达量较低，这与前面致敏蛋白在5份种质间的表达模式相一致。因此，差异定量结果分析也进一步验证了差异蛋白质组分析结果。

图 4 qRT-PCR分析致敏相关基因在杨树成熟花粉中的表达情况 Fig.4 Expression of related allergenic genes in poplar mature pollen by qRT-PCR “*”和“**”分别代表对照组与试验组之间差异显著 (P < 0.05) 和极显著 (P < 0.01)。 "*" and "**" represent significant (P < 0.05) and highly significant (P < 0.01) difference between control and treatment, respectively.

过敏原作为花粉的激发物质，分析其在不同杨树种质的差异对于低致敏品种选育具有重要意义。从本研究中的6份杨树种质成熟花粉致敏蛋白数量、表达量及致敏蛋白编码基因表达量来看，南杨和钻天杨的致敏蛋白表达量显著或极显著大于其他杨树种质。其致敏蛋白主要涉及蛋白质的合成与加工 (spot 3，5，95，156，197)、信号转导 (spot 200，201和203)、糖酵解 (spot 44，51和133) 以及防御或胁迫反应 (spot 78，135和208)，这些蛋白为植物花粉的发育提供物质基础和能量保障，促进花粉的萌发，与花粉萌发试验结果相符。Ole e 1是木犀榄花粉主要过敏原，90%木犀榄花粉过敏患者的过敏原都是Ole e 1(Quiralte et al., 2002)，其同源成员被鉴定为许多植物花粉的过敏原，如木樨科 (Oleaceae)[如欧梣 (Fraxinus excelsior)、紫丁香 (Syringa oblata) 和欧洲女贞 (Ligustrum vulgare) 等]、平车前 (Plantago depressa)、藜 (Chenopodium album) 等，但Ole e 1家族蛋白具体的功能和作用机制目前尚不清楚 (Lombardero et al., 2002)。在本研究中，Ole e 1家族蛋白 (spot 161) 在南杨、森海2号杨、小叶杨和钻天杨花粉中的表达量均是对照组36号杨的4 700倍以上，特别是在钻天杨花粉的表达量竟高达8 453.06(±267.47) 倍，故推测Ole e 1可能是杨树花粉的主要过敏原。此外，有6个致敏蛋白在5份种质花粉中均没有检测到表达情况，这可能是由于其表达量相对较低，双向电泳技术很难检测出来。

三倍体植物具有产量高和抗性强的双重优势，但是其花粉育性低 (杨诗勤，2014)。森海2号杨是通过人工杂交选育出的抗性强的优良三倍体新品种 (贾会霞等，2015)。在本研究中，森海2号杨的花粉没有萌发，可能由于多倍体小孢子母细胞发育异常造成花粉活力差和育性低 (曹媛等，2012)，而且其致敏蛋白表达水平也显著低于其他种质。Kondo等 (1997)发现三倍体日本柳杉 (Cryptomeria japonica) 花粉过敏原Cry j 1和Cry j 2含量低于二倍体，认为三倍体植物可能具有低致敏性，可以考虑作为低致敏杨树品种选育的一个方面。目前，对于三倍体花粉的低育性、低致敏性的机制还不清楚，有待于进一步深入研究。而且，本研究只是比较了杨树不同种质的成熟花粉致敏蛋白差异，未对花粉萌发的不同阶段进行差异蛋白质组分析。相关研究表明，花粉萌发伴随着表达基因数量的降低及特异性转录本的增加，同时也会导致蛋白质组的变化 (赵丽娟，2011)。因此，花粉萌发可能会丢失或产生过敏蛋白，值得进一步研究。

本研究表明，不同杨树种质间致敏蛋白表达量和致敏性存在差异，但问题是，致敏蛋白表达量的高低和致敏蛋白基因的表达量的多少与致敏性强弱有直接关联吗？Son等 (1999)认为苹果 (Malus× domestica) 不同品种间的致敏性差异主要与过敏原的表达量差异有关。Bolhaar等 (2005)通过酶联免疫测定金冠苹果的Mald 1(苹果主要过敏原) 含量远低于‘Jonathan’品种，但前者的Mald 1同患者血清中的抗体 (sIgE) 结合能力要强于后者。Zuidmeer等 (2006)通过体外免疫测定方法，进一步研究了造成这种结果冲突的原因，认为可能是过敏原结构的不稳定，难以控制。本研究初步探索了5份杨树种质成熟花粉致敏蛋白的表达特性，在今后的研究中，可以结合IgE检测、组胺释放试验 (HAT)、酶联免疫吸附试验 (ELISA) 等技术测定过敏原对患者血清中抗体结合能力的强弱来验证致敏蛋白的表达量与致敏性的相关性以及确定低致敏性杨树种质 (Sicherer et al., 2010)。同时，还可以借助现代分子生物技术如RNA干扰进行基因沉默，以达到消除致敏蛋白的目的 (Gallo et al., 2009)。

本研究通过杨树成熟花粉萌发试验、差异蛋白质组、qRT-PCR技术对不同杨树种质花粉中致敏蛋白表达量的差异进行了分析，结果表明杨树不同种质的花粉活力、致敏蛋白表达水平存在显著差异。其中36号杨、南杨和钻天杨花粉活力较高；南杨和森海2号杨的致敏蛋白数量最多，小叶杨和钻天杨的致敏蛋白数量最少，且22个致敏蛋白在6份杨树种质的表达存在很大差异，南杨和钻天杨致敏蛋白表达量极显著高于其他种质。该结果对今后筛选低致敏杨树品种及控制植物过敏性疾病等研究具有重要参考价值。