林业科学  2010, Vol. 46 Issue (9): 28-33   PDF    
0

文章信息

刘玉民, 刘亚敏, 马明, 何丙辉, 李昌晓
Liu Yumin, Liu Yamin, Ma Ming, He Binghui, Li Changxiao
马尾松扦插生根过程相关生理生化分析
Analysis of Relevant Physiological and Biochemical Characteristics of Pinus massoniana During Cuttings Rooting
林业科学, 2010, 46(9): 28-33.
Scientia Silvae Sinicae, 2010, 46(9): 28-33.

文章历史

收稿日期:2009-02-17
修回日期:2010-07-11

作者相关文章

刘玉民
刘亚敏
马明
何丙辉
李昌晓

马尾松扦插生根过程相关生理生化分析
刘玉民1,2, 刘亚敏1,2, 马明1,2, 何丙辉1,2, 李昌晓2    
1. 西南大学资源环境学院 重庆 400715;
2. 西南大学三峡库区生态环境教育部重点实验室 重庆 400715
摘要: 对马尾松嫩枝扦插苗生根特性进行观测,研究其生根过程中相关氧化酶(PPO,POD,IAAO)活性、黄酮类物质和营养物质等內源物质的动态变化。结果表明:马尾松属于愈伤组织生根类型,用适宜含量的生根剂GGR6处理马尾松插穗能显著提高其生根率和根系质量,且能改变內源物质的变化动态。在马尾松嫩枝扦插过程中,大部分內源物质均成规律性变化,其中PPO和IAAO活性在愈伤组织诱导期上升,在愈伤组织形成期达到高峰,在根系形成期下降;POD活性在愈伤组织形成期和根系形成期均出现高峰。內源黄酮类物质含量在扦插初期逐渐下降,30~50天又急剧升高,在愈伤组织大量形成期达到高峰,然后又逐渐下降;且黄酮含量的变化与过氧化物酶活性变化有关,过氧化物酶活性的高峰值总是对应着黄酮含量的最低值。可溶性糖含量在扦插后逐渐升高,插穗大量生根时达到高峰值,然后又逐渐下降。总氮含量在整个扦插过程中变化规律不明显,且变化幅度很小。
关键词:马尾松    生根特性    氧化酶    黄酮类物质    营养物质    
Analysis of Relevant Physiological and Biochemical Characteristics of Pinus massoniana During Cuttings Rooting
Liu Yumin1,2, Liu Yamin1,2, Ma Ming1,2, He Binghui1,2 , Li Changxiao2    
1. College of Resources and Environment, Southwest University Chongqing 400715;
2. Key Laboratory of Eco-Environments in Three Gorges Reservoir Region of Ministry of Education, Southwest University Chongqing 400715
Abstract: The rooting characteristics of the twig cuttings of Pinus massoniana was observed to investigate the dynamic changes of relevant endogenous components during rooting process, including the activity of related oxidative enzymes (PPO, POD, IAAO) and the content of flavonoid and nutritive substances and so on. Results showed that rooting of Pinus massoniana was derived from the callus. When its cutting was treated by root stimulate GGR6 in a suitable concentration, rooting rate and the quality of root system could be significantly enhanced. Moreover, dynamic state of the endogenous components in Pinus massoniana plantlets can also be changed. Changes of the most endogenous components displayed regular pattern during the cutting. The activity of PPO and IAAO increased during induction period of the callus, reached to a peak during the formation period of callus, and started to decrease during the formation of root system. Whereas the activity of POD reached to a peak in the formation of both root systems and callus. The content of endogenous flavonoid decreased gradually at early stage of cutting, increased sharply 30-50 days later and reached to a peak when callus formed considerably, and then it started to decrease gradually. The content changes of flavonoid had relationship with the activity of peroxidase (POD); peak value of the activity of POD was always accompanied by a sharp decrease of the content of flavonoid. The content of soluble sugar increased gradually after cutting, reaching to a peak when most cuttings rooted, and then it decreased gradually. The content of total nitrogen changed irregularly during the whole process and the amplitude of variation was very small.
Key words: Pinus massoniana    rooting characteristics    oxidases    flavonoids    nutrients    

马尾松(Pinus massoniana)是我国特有的速生、丰产乡土树种,是南方主要的造林树种和工业原料树种,其木材和松脂是许多森林工业、林产工业和造纸工业的支柱,在林业生产中占有重要地位(莫江明等,2004周政贤,2001)。马尾松在我国的分布区域广泛,遍及南方15个省(区),纬向(N)纵越12°,经向(E)横跨20°。分布区内地理环境条件变化多端,由于长期自然选择和生殖隔离等原因,马尾松存在着极为丰富的遗传变异(周志春等,1997),但有性世代易造成优良性状的分化,单纯实施有性繁殖,不利于有效开展林木遗传改良工作和优良性状的保持。多年来马尾松一直采用实生苗造林,导致很多地区的马尾松林木生长速度缓慢,多年难以郁闭成林,不能尽快发挥其生态和经济效益。为最大限度地提高林木改良过程中的遗传增益,避免优良基因型材料在扩繁中发生分化,林木无性繁殖已成为最适的技术手段。扦插繁殖作为无性繁殖中的一种简便、实用、经济的技术,更是林业工作者关注的焦点。20世纪90年代以来,林业科研人员对马尾松扦穗生根的环境因子(主要是光、水、温、气和基质)、促根防腐剂筛选使用及插穗制备等开展了研究,取得了一些研究成果(来端等, 2004余能健等, 1992季孔庶, 1998张全仁等, 1993秦国峰, 1994陈宏胜, 2005),但由于马尾松是难生根树种,扦插生根率很不稳定,有关马尾松扦插繁殖的技术成果很少应用于生产实践。为了能持续稳定地获得马尾松优良无性繁殖苗,本文将对与马尾松扦插生根相关的内源因素进行研究,分析马尾松插穗生根过程的生理生化指标的变化,探寻马尾松的生根机制,为确定正确的马尾松扦插繁殖技术提供科学的理论依据。

1 材料与方法 1.1 试验材料来源

试验用插穗来源于重庆亚克林业有限公司马尾松采穗圃,采穗圃中的马尾松母株为3年生容器苗。扦插试验于2007年3月在西南大学温室大棚内进行。

1.2 扦插试验设计

扦插试验采用完全随机区组设计,3次重复,每个区组将对照和用GGR6浸蘸的插穗各插450条,3个区组总计扦插2 700条。

1.3 扦插条件

扦插的前一天在采穗圃内选择生长健壮、整齐一致、无病虫害的马尾松母株剪取半木质化枝条带回试验地,当天晚上用流水将剪取的枝条浸泡,扦插前截取半木质化枝条的上部作为插穗,截取长度为8~10 cm,粗度为0.5 cm,顶部带顶芽,下切口平剪,去除插穗基部针叶,然后将剪好的插穗先用35 ℃温水浸泡0.5 h,再用0.2%多菌灵溶液消毒,再用0.2 mg·kg-1的GGR6浸蘸0.5 h,以清水处理作对照(CK)。扦插基质为珍珠岩、林下黄土、针叶腐殖土的混合基质(体积比为4:3:3)。

1.4 插后管理

扦插后遮光率一直控制在70%左右(用遮荫网控制),温度控制在20~30 ℃,相对湿度控制在80%~90%,按照需要进行喷雾处理,各区组条件相同,并进行常规管理。

1.5 取样及样品处理

扦插后每隔10天采样1次,每个测定指标均在3个区组各随机取5株,进行3次重复测定。采样后洗净吸干,先观察其生根情况,然后取插穗基部3 cm的皮层分别测定其多酚氧化酶(PPO)、过氧化物酶(POD)和吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性、黄酮类物质含量等。营养物质的测定是将随机取出的插穗在110 ℃烘箱中迅速杀青,再于70 ℃下烘至恒量,经粉碎过筛后,测定可溶性糖含量和总氮含量。

1.5 测定方法

多酚氧化酶(PPO)活性采用李忠光等(2005)改进的方法测定;过氧化物酶(POD)活性、可溶性糖含量、总氮含量采用萧浪涛等(2005)的方法测定;吲哚乙酸氧化酶(IAAO)活性用比色方法测定(张志良等,2004);黄酮含量采用国家药典委员会(2005)黄酮测定方法。PPO活性以每克鲜品每分钟A410光密度变化0.01个单位所需要的酶液量作为1个活力单位(U);POD以每分钟内A470变化0.01为1个过氧化物酶活性单位(U);IAAO以每克鲜品在1 h内分解破坏IAA的毫克数表示1个酶活性单位(U)。

2 结果与分析 2.1 马尾松扦插苗生根特性

研究发现(表 1),马尾松半木质化插穗经生根剂GGR6处理后扦插,39天后开始形成愈伤组织,55天后开始形成不定根,110天时生根调查显示生根率为79%;不定根条数范围为1~10条,平均不定根条数为4条;生根植株最大根长为5.83 cm,平均根长为3.53 cm,幼苗根系总长度平均为15.18 cm;最大根粗为1.58 mm,平均根粗为1.15 mm。对照插穗扦插后,45天后才开始形成愈伤组织,71天后才开始形成不定根,110天时生根调查显示生根率为15%;不定根条数范围为1~7条,平均不定根条数为2条;生根植株最大根长为3.02 cm,平均根长为2.38 cm,每个幼苗根系总长度平均为5.68 cm;最大根粗为1.08 mm,平均根粗为0.73 mm。所有指标均比用生根剂GGR6处理的差。经观察所有扦插苗都是从愈伤部位生出的不定根,未发现有皮部生根现象,因此马尾松半木质化枝条扦插生根应为愈伤组织生根类型。

表 1 马尾松扦插苗生根特性 Tab.1 Rooting characteristics of P. massoniana
2.2 马尾松扦插生根过程相关酶活性变化 2.2.1 PPO活性变化

酚类物质对不定根的发生和发育起着极其重要的作用(Balakrishnamurthy et al., 1988),马尾松扦插苗中含有大量的酚类化合物,是抑制马尾松扦插生根的主要內源物质之一(季孔庶等,1997),而PPO的一个重要生理功能就是催化酚类物质和IAA形成一种“IAA-酚酸复合物”(Haissig, 1974),这种复合物是一种生根的辅助因子,能够促进不定根形成的活性(Bassuk et al., 1981),PPO还能催化生长素的代谢,促进不定根的发生与发育(Bhattacharya, 1989)。因此PPO活性的大小与根的发生有重要关系。用GGR6处理的马尾松插穗在前40天PPO活性持续上升,40天达到最大,此后PPO活性逐渐下降。对照马尾松插穗中PPO的活性与用GGR6处理的变化趋势类似,但峰值的出现比用GGR6处理的晚,用GGR6处理插穗PPO活性比对照高(图 1)。GGR6处理和对照之间PPO活性的差异达到显著水平(F=7.77,P=0.010 7<0.05)。扦插初期PPO活性较低,催化生成的“IAA-酚酸复合物”较少,随扦插时间的延长,PPO活性升高,可能导致生成的“IAA-酚酸复合物”也相应增多,促进了根的形成。GGR6处理使插穗中PPO活性较对照高,生根效果也较对照好,这一结果与扈红军等(2008)对榛子(Corylus heterophylla)嫩枝扦插所得的结论基本一致。

图 1 马尾松扦插生根过程中PPO活性变化 Figure 1 PPO activity of P.massoniana during cutting —▲— CGR6处理CGR6 treatment, —×— CK.下同The same below.
2.2.2 POD活性变化

POD的活性与离体植物生根有密切关系,POD是植物生根标志性物质之一(Gaspar et al., 1992)。POD作用的某些产物可能是不定根发生和发展所必须的辅助因子,能促进不定根的形成(宋丽红等,2005)。在有酚类物质存在的条件下,POD还参与生长素的代谢和细胞壁的木质化(Gyana, 2006)。用GGR6处理的马尾松插穗中POD活性在扦插0~40天逐渐上升,在40~50天下降,在50~80天上升;其中在第40天和第80天各有1个明显的高峰(图 2)。对照中POD活性与GGR6处理的变化趋势基本相同,但经GGR6处理的插穗中POD活性比对照的高,两者之间POD活性差异达到极显著(F=8.653,P=0.008 7 < 0.01)。

图 2 马尾松扦插生根过程中POD活性变化 Figure 2 POD activity of P. massoniana during cutting

在马尾松扦插生根过程中,POD活性先迅速上升,之后迅速下降,然后再上升,整个生根过程POD活性有2个高峰出现,这与前人对其他植物的研究结果相符(Gebhardt, 1982Pacheco et al., 1995宋金耀等,2001扈红军等,2007)。POD活性有2个高峰出现可能与POD分别参与根的诱导和表达有关(Calderon-Baltierra, 1994),在不定根诱导期和表达期,POD活性升高是有生根能力的标志(Moncousin et al., 1983Nordstrom et al., 1991)。POD能氧化IAA,消除体内过多的内源IAA,有利于根原基的诱导。表达期的POD活性下降,导致体内IAA含量上升,有利于根原基发育及不定根的形成(扈红军等,2007)。

2.2.3 IAAO活性变化

IAA是一种植物生长素,具有多种生理功能,其中之一是能促进不定根的发生与发育,而IAAO可以氧化IAA,因此IAAO活性的大小与根的发生有重要关系。在马尾松扦插生根过程中,插穗内IAAO活性随生根的不同阶段而发生规律性变化,经GGR6处理的马尾松插穗内IAAO活性在扦插0~40天逐渐上升,之后大幅度下降,IAAO活性高峰出现在愈伤组织形成期。对照与经GGR6处理的插穗中IAAO活性变化趋势基本相同,但对照插穗中IAAO活性变化较小,高峰值不明显。有研究认为植株离体生根的诱导期,高活性的IAAO使内源IAA水平降低,低含量的IAA有利于生根;在表达期IAAO活性降低使得植株內源IAA含量升高,高含量的IAA能促进根的生长(Gaspar et al., 1992Pacheco et al., 1995Moncousin, 1986宋金耀等,2001扈红军等,2008曹帮华等,2008),本试验的结果也与此相一致。

图 3 马尾松扦插生根过程中IAAO活性变化 Figure 3 IAAO activity of P. massoniana during cutting
2.3 马尾松扦插生根过程黄酮类物质变化

黄酮类物质是抑制马尾松扦插生根的主要內源物质之一,其含量变化直接影响马尾松扦插苗的生根率(季孔庶等,1997)。本试验结果显示(图 4),马尾松插穗在扦插生根过程中內源黄酮类物质含量发生规律性变化,经GGR6处理的马尾松插穗内黄酮类物质含量在扦插0~30天逐渐下降,30~50天大幅度上升,50天以后又逐渐下降,其高峰出现在插穗愈伤组织大量形成期。对照插穗中黄酮类物质含量与经GGR6处理的插穗变化趋势基本相同,但对照插穗中黄酮类物质变化时间有所滞后,变化幅度较小。有研究表明植物离体生根与其组织中的黄酮类物质含量有关(Curir,1992Berthon et al., 1993Pacheco et al., 1995宋金耀等,2001)。黄酮类物质对植物不定根的诱导和表达的作用不同,Berthon等(1993)在松树离体组织培养中发现,在诱导期黄酮类物质对生根有抑制作用,在表达期黄酮类物质则对生根有促进作用。本研究发现经GGR6处理的马尾松插穗在生根诱导期内源黄酮类物质含量逐渐减少,在生根表达期内源黄酮类物质含量大幅度上升,这有利于马尾松插穗的生根。黄酮含量的变化与过氧化物酶活性变化有关,过氧化物酶活性的高峰值总是对应着黄酮含量的最低值(Pacheco et al., 1995宋金耀等,2001),本试验也得到相同的结果。

图 4 马尾松扦插生根过程中黄酮含量变化 Figure 4 Changes in content of flavonoids of P. massoniana during cutting
2.4 马尾松扦插生根过程营养物质变化

营养物质是插穗生根的基本条件之一。马尾松在整个扦插过程中可溶性糖含量发生规律性变化,用GGR6处理的马尾松插穗内可溶性糖含量在扦插初期变化较小,扦插后20~70天可溶性糖含量急剧增加,由35.2 mg·g-1增加到59.5 mg·g-1,第70天达到高峰,之后可溶性糖含量又逐渐减少(图 5)。对照插穗中可溶性糖含量与经GGR6处理的插穗变化趋势基本相同,但对照插穗中可溶性糖含量变化比用GGR6处理的时间滞后,变化幅度较小,詹亚光等(2001)对白桦(Betula platyphylla)扦插研究中也有相同的结果,说明外源生根促进剂能明显加快插条基部糖的积累,促进不定根的形成。

图 5 马尾松扦插生根过程中营养物质变化 Figure 5 Changes in nutrient content of P. massoniana during cutting

马尾松扦插过程中总氮含量变化规律不明显,不论是用生根剂GGR6处理还是对照的插穗,其总氮含量在马尾松插穗生根过程中变化幅度均很小,用GGR6处理的插穗中总氮含量变幅仅为0.41%,对照插穗中总氮含量变幅仅为0.36%,用GGR 6处理对马尾松扦插过程中总氮含量的影响很小,这与詹亚光等(2001)对白桦扦插所得的结论相一致,但郭素娟等(2004)研究认为总氮含量与白皮松(Pinus bungeana)的扦插生根有一定的正相关关系,说明总氮对于插穗生根影响较为复杂。关于总氮与生根的关系有待进一步研究。

3 结论

马尾松为难生根树种,常规扦插生根率极低,用生根促进剂GGR6处理能显著提高其生根率和生根质量;马尾松属于愈伤组织生根类型。

马尾松嫩枝扦插生根过程中,PPO,POD和IAAO等3种氧化酶活性均呈规律性的变化,与不定根形成均有密切关系;愈伤组织诱导与形成期,3种酶活性均大幅度上升;整个生根过程中PPO活性有2个高峰出现,而POD和IAAO 2种酶只有1个峰值,3种氧化酶对生根的影响机制是不同的。

马尾松插穗在扦插生根过程中內源黄酮类物质含量发生规律性变化,其高峰出现在插穗愈伤组织大量形成期。对照插穗与经GGR6处理的插穗中黄酮类物质含量变化趋势基本相同,但对照插穗中黄酮类物质变化时间有所滞后,变化幅度较小。

马尾松在整个扦插过程中可溶性糖含量发生规律性变化,可溶性糖含量峰值出现在生根高峰期;生根剂GGR6能使可溶性糖的峰值提前,且能明显提高插穗基部可溶性糖的积累,促进不定根的形成。总氮含量变化规律不明显,不论是用生根剂GGR6处理还是对照的插穗,其总氮含量在马尾松插穗生根过程中变化幅度均很小。

参考文献(References)
曹帮华, 扈红军, 张大鹏, 等. 2008. 桑树硬枝扦插生根能力及其生根关联酶活性的研究[J]. 蚕业科学, 34(1): 96-100.
陈宏胜. 2005. 提高马尾松扦插繁殖成活率研究[J]. 福建林业科技, 32(2): 64-67.
郭素娟, 凌宏勤, 李凤兰. 2004. 白皮松插穗生根的生理生化基础研究[J]. 北京林业大学学报, 26(2): 43-47.
国家药典委员会. 2005. 中国药典, 一部[M]. 北京: 化学工业出版社.
扈红军, 曹帮华, 尹伟伦, 等. 2007. 不同处理对欧榛硬枝扦插生根的影响及生根过程中相关氧化酶活性的变化[J]. 林业科学, 43(12): 70-75. DOI:10.3321/j.issn:1001-7488.2007.12.012
扈红军, 曹帮华, 尹伟伦, 等. 2008. 榛子嫩枝扦插生根相关氧化酶活性变化及繁殖技术[J]. 林业科学, 44(6): 60-65. DOI:10.11707/j.1001-7488.20080610
季孔庶, 王章荣, 陈天华, 等. 1997. 马尾松插穗内源抑制物质的研究[J]. 林业科学, 32(2): 142-150.
季孔庶, 王章荣, 陈天华, 等. 1998. 马尾松插穗生根能力变异的研究[J]. 南京林业大学学报, 22(3): 66-70.
来端, 林开敏, 王锦上, 等. 2004. 马尾松扦插育苗及造林效果的研究[J]. 林业科学研究, 17(4): 434-440.
李忠光, 龚明. 2005. 植物多酚氧化酶活性测定方法的改进[J]. 云南师范大学学报, 25(1): 44-49.
莫江明, 彭少麟, BrownS. 2004. 鼎湖山马尾松林群落生物量生产对人为干扰的响应[J]. 生态学报, 24(2): 193-200.
秦国峰. 1994. 马尾松嫩枝扦插繁殖[J]. 林业科学研究, 7(1): 96-103.
宋金耀, 何文林, 李松波, 等. 2001. 毛白杨嵌合体扦插生根相关理化特性分析[J]. 林业科学, 37(5): 64-67. DOI:10.11707/j.1001-7488.20010511
宋丽红, 曹帮华. 2005. 光叶楮扦插生根的吲哚乙酸氧化酶、多酚氧化酶、过氧化物酶活性变化研究[J]. 武汉植物学研究, 23(4): 347-350.
萧浪涛, 王三根. 2005. 植物生理学实验基技术. 北京: 中国农业出版社, 107-109, 103-104, 152-153, 161-166.
余能健, 游为贵, 陈明武, 等. 1992. 马尾松扦插繁殖技术的研究[J]. 福建林学院学报, 12(1): 19-25.
詹亚光, 杨传平, 金贞福, 等. 2001. 白桦插穗生根的内源激素和营养物质[J]. 东北林业大学学报, 29(4): 1-4.
张全仁, 方程, 周盛, 等. 1993. 马尾松扦插繁殖技术的研究[J]. 中南林学院学报, 13(1): 1-7.
张志良, 瞿伟菁. 2004. 植物生理学实验指导[M]. 北京: 高等教育出版社: 188-189.
周政贤. 2001. 中国马尾松[M]. 北京: 中国林业出版社: 1-5.
周志春, 秦国峰. 1997. 马尾松遗传改良的成就、问题和思考[J]. 林业科学研究, 10(4): 435-442.
Balakrishnamurthy G, Madhava Rao V N. 1988. Changes in phenols during rhizogenesis in rose (Rose bourboniana Desp)[J]. Curr Sci, 57(17): 960-962.
Bassuk N L, Hunter L D, Howard B H. 1981. The apparent of polyphenol oxidase and phloridzin in the production of apple rooting cofactors[J]. J Hort Sci, 56(4): 313-322.
Berthon J Y, Battraw M Y, Gaspar T, et al. 1993. Early tests using phenolic compounds and peroxidase activity to improve in vitro rooting of Sequoiadendon giganteum (Lind1.) Buchholz[J]. Societe Botanique, 24: 7-13.
Bhattacharya N C. 1989. Enzyme activities during adventitious rooting //Davis T D, Haissig B E, Sankhla N. Adventitious root formation on cutting. Portland: Dioscorides, 88-101.
Calderon-Baltierra X V. 1994. Changes in peroxidase activity during root formation by Eucalyptus globulus shoots raised in vitro[J]. Plant Perox Newslett, 4: 27-29.
Curir P. 1992. Flavonoid accumulation is correlated with adventitious roots formation in Eucalyptus gunnii Hook micropropagated through axillary bud stimulation[J]. Plant Physiol, 92(4): 1148-1153.
Gaspar T, Kevers C, Hausman J F. 1992. Practical uses of peroxidase activity as a predictive marker of rooting performance of micropropagated shoot[J]. Agronomic, 12(10): 757-765. DOI:10.1051/agro:19921003
Gebhardt K. 1982. Activation of indole-3-acetic acid oxidase from horseradish and prunus by phenols and hydrogen peroxide (H2O2)[J]. Plant Growth Regulation, 1(2): 73-84. DOI:10.1007/BF00024500
Gyana R R. 2006. Effects of auxins on adventitious root development from single node cuttings of Camellia sinensis (L.) Kuntze and associated biochemical changes[J]. Plant Growth Regulation, 48(2): 111-117. DOI:10.1007/s10725-005-5665-1
Haissig B E. 1974. Influence of auxins and auxin synergists on adventitious primordium initiation and development[J]. N Z J For Sci, 4: 311-323.
Moncousin C H, Gaspar T. 1983. Peroxidase as a marker for rooting improvement in Cynara scolymus L. cultivated in vitro.[J]. Biochem Physiol Pflanzen, 178: 263-271. DOI:10.1016/S0015-3796(83)80040-7
Moncousin C H. 1986. Peroxidase as a marker for rooting improvement of clones of Vitis cultured in vitro//Greppin H, Penel C, Gasparth. Molecular and physiological aspects of plant peroxi-dases. Geneva: University of Geneva, 379-385.
Nordstrom A C, Eliasson J. 1991. Levels of endogenous indole-3-acetic acid and indole-3-acetylaspartic acid during adventitious root formation in pea cuttings[J]. Physiol Plant, 82(4): 599-605. DOI:10.1111/ppl.1991.82.issue-4
Pacheco P, Calderón X, Vega A. 1995. Flavonoids as regulators and markers of root formation by shoots of Eucalyptus globulus raised in vitro[J]. Plant Perox Newslett, (5): 9-12.