2. 广东省植物纤维综合利用工程技术研究开发中心, 广东广州 510316;
3. 广州市植物纤维综合利用重点实验室, 广东广州 510316;
4. 广州市古氏康生物科技有限公司, 广东广州 510670
2. Guangdong Engineering Research & Development Center for Comprehensive Utilization of Plant Fiber, Guangzhou 510316;
3. Guangzhou Key Laboratory for Comprehensive Utilization of Plant Fiber, Guangzhou 510316;
4. Guangzhou's Kang Biological Technology Co. Ltd.
异麦芽酮糖(Isomaltulose)亦称帕拉金糖、益寿 糖、巴糖、异构蔗糖,2001 年被美国食品与药物管 理局 (FDA)确定为普遍公认安全食品 (GRAS),并对 其摄入量不作限定。研究表明,异麦芽酮糖具有非 致龋齿性,被人体食用后,由于只在小肠中被缓慢 消化吸收,血糖上升指数较低,因而有益于糖尿病 的防治并可防止脂肪的过多积累,还有改善肠内菌 群平衡的作用。作为一种健康食品甜味剂,异麦芽 酮糖可以作为蔗糖的理想替代品应用于糖尿病专用 食品、减肥食品、口香糖、谷物食品、饮料、肉制 品、糖果等食品工业[1]。 1 异麦芽酮糖的理化性质
异麦芽酮糖是一种结晶状的还原性双糖,由葡 萄糖与果糖以 α-1,6 糖苷键结合而成。分子式为 C12H22O11·H2O,失水后不呈结晶状。含水异麦芽酮糖晶体的相对分子质量为 360.32,比旋光度[α] D20 为 97.2° [2]。作为蔗糖异构体,其口感和物理性质 与蔗糖非常相似,而甜度只有蔗糖的一半;两者水 溶液的粘度也很接近,而异麦芽酮糖的熔点较蔗糖 低,并且在酸性条件下更稳定。近年来异麦芽酮糖 之所以在全球被广泛应用,除具有低吸湿性、高稳 定性、高耐受性、低热量、甜味纯正等特点外,主 要是因为不会像其他低 GI 糖一样导致肠鸣和腹泻, 资料显示,人体一次食用 85 g 也不会导致腹泻 [2]。 表 1 为异麦芽酮糖与其它糖的比较。
异麦芽酮糖难以使用化学方法合成,到目前为 止,异麦芽酮糖的主要生产方式包括微生物转化法 及酶转化法。 2.1 微生物转化法
微生物转化法包括菌体发酵与蔗糖转化同步进 行及菌体静息细胞固定化转化 2 种方式。早期一般 采用同步进行,如 Cho 等 [3]以 Enterobacter sp. FMB-1 为生产菌株,经 48 h 后,异麦芽酮糖合成量达 90%。 但这种工艺分离提取较困难,不适用于工业放大。 随着固定化技术越来越成熟,通过物理或化学手段 将静息细胞定位于某一空间区域,既保持菌体本身 催化活性,又方便产物回收,因此广受欢迎。 Krastanov 等 [4]采用壳聚糖包埋 Serratia plymuthica 细胞,以 400 g/L 的蔗糖溶液为原料,生产异麦芽酮 糖,异麦芽酮糖产率最高达 94%。 2.2 酶转化法
鉴于微生物发酵法生产异麦芽酮糖存在菌体浓度较低、生产强度较弱的缺陷,目前一般采用从微 生物细胞中提纯蔗糖异构酶,固定化酶后转化蔗糖 为异麦芽酮糖。酶转化法的一般工艺如图 1 所示。
对不同来源的蔗糖异构酶结构分析表明,在果 糖结合位点有一段高度保守区域 325RLDRD329[5, 6]。 通过对保守区的三维结构预测得出蔗糖异构酶属于 α-糖苷酶 13 家族,Arg325 和 Arg328 2 个残基在果糖 结合位点与底物依靠氢键结合。对 Arg325 和 Arg328 诱变处理后,活性位点对果糖基团亲和力下降,果 糖基团脱落,葡萄糖与活性位点结合形成异麦芽糖。 与此同时,异麦芽酮糖合成量下降,海藻糖合成量 微弱上升。
基于蔗糖转化的产物分析及稳态条件下的动力 学分析,Perlot 等[3]提出蔗糖异构酶作用原理为兵乓 机制(图 2)。酶首先与蔗糖结合释放果糖,同时发 生形变形成蔗糖酶-葡萄糖复合酶(SI-G);然后 SI-G 与 H2O 或者葡萄糖结合释放出葡萄糖或者异麦芽酮 糖,同时蔗糖异构酶本身发生回复形变,还原为原 始构型。
蔗糖异构酶来源较广泛,自然界中积累该酶的 生物包括 Silverleaf whitefly 等昆虫类及大量的微生 物。但 Silverleaf whitefly 合成的蔗糖异构酶只能催 化蔗糖合成海藻酮糖。微生物细胞来源的蔗糖异构 酶 又 分 为 异 麦 芽 酮 糖 主 产 型 (70% ~ 85%) ,如 Erwinia rhapontici、 Protaminobacter rubrum、 Serratia plymuthica、 Klebsiella sp.等; 海藻酮糖主产型(85%~ 95%),如 Agrobacterium radiobacter、 Pseudomonas mesoacidophila 等[7, 8, 9, 10, 11, 12]。 2.2.3 蔗糖异构酶积累工程菌
虽然自然界中积累蔗糖异构酶的生物较多,但 野生型菌株普遍存在细胞得率低,酶活较低的缺点, 因此,工业化生产中多采用代谢工程的手段构建蔗 糖异构酶生产菌株。 Li 等[13]将 E. rhapontici 中编码 蔗糖异构酶的基因 palI 扩增到大肠杆菌(E. coli) Lac 乳糖操纵子表达系统,酶活单位达到野生菌株的 10.3 倍。 Zhang 等[14]将 Klebsiella sp. strain LX3 中蔗 糖异构酶基因 palI 过量表达与 E. coli 5α 中,得到 重组酶最高活力 328.0 ± 2.5 U/mg;以蔗糖为底物 时,Km(米氏常数)为 54.6±1.7 mM,且酶活力受 Fe3+、 Hg2+抑制,但 Mn2+、 Mg2+促进酶活力提高。 Ravaud 等[9]将 P. rubrum CBS 547.77 中的蔗糖异构酶基因 smuA 基因在 E. coli JM109 中过量表达,得到粗酶液 酶 活 40 U/mg 。 Watzlawick 等 [10] 将 P. mesoacidophila MX-45 中蔗糖异构酶基因 mutB 在 E. coli JM109 过量表达,得到上清液酶活 80 U/mg, 纯化后酶活达到 900 U/mg。
目前,广泛用作蔗糖异构酶表达载体的菌体除 了 E. coli 外,还有 Saccharomyces cerevisiae、 Lactococcus lactis。 Lee 等 [15] 将 Enterobacter sp. FMB-1 中蔗糖异构酶 基因 ESI 在 S. cerevisiae EBY100 细胞表面表达,同时对 S. cerevisiae 及 E. coli 重组菌体稳定性进行比较。在底物浓度为 50~ 250 mM 时,蔗糖转化率为 6.4%~7.4%。 Park 等[16] 采用 P170 表达系统将 Enterobacter sp. FMB-1 中蔗 糖异构酶基因在 Lactoccus lactis MG1363 过量表达, 在采用信号肽 SP310mut2 将 40%的异构酶分泌到胞 外。胞外蔗糖异构酶转化 50 g/L 蔗糖合成 72%的异 麦芽酮糖。 2.2.4 蔗糖异构酶纯化工艺及酶学特性
蔗糖异构酶是一类存在于周质空间的胞内酶,因 此,对该酶的纯化首先需要收集菌体,超声破碎后收 集上清液得到粗酶液。经硫酸铵沉淀、透析、 DEAE-Sepharose 阴离子交换层析、 DEAE-Sepharose 阳离子交换层析后收集活性峰,透析浓缩后储存 4℃ 冰箱备用。
该酶性质稳定,在 pH5.0~7.0,酶活力为最大 酶活的 80%以上;在 10~40℃,酶活力为最大酶活 的 85%以上。此外,Ag+、 Hg+完全抑制酶活,Mg2+、 Mn2+促进酶活,Ca2+、 Cu2+、 Zn2+微弱抑制酶活。与 此同时,蔗糖异构酶只与单一底物蔗糖反应,葡萄 糖和果糖是该酶的竞争性抑制剂,降低底物亲和 力 [17]。 3 异麦芽酮糖的提取纯化工艺
鉴于蔗糖异构酶异构化蔗糖生产异麦芽酮糖的 生产中,酶转化液中主要产物为异麦芽酮糖和少量 的海藻糖、果糖、葡萄糖,而海藻糖等其他糖的溶 解度较大,因此常用结晶的方法从转化液中提取异 麦芽酮糖。一般通过旋转蒸发至异麦芽酮糖浓度至 70%左右,冷却并加入少量晶种,得到白色晶体, 在转化液中添加乙醇等有机溶剂,能够促进晶体快 速析出,但也会促进蔗糖结晶,产品异麦芽酮糖晶 体纯度不高。为了得到更纯的晶体,采用重结晶可 达到 99%的纯度 [18]。通过合理控制结晶的方法和结 晶的次数,酶转化液中 95%以上的异麦芽酮糖能够 回收。采用双锥混合全结晶的方法固化液体异麦芽 酮糖,异麦芽酮糖在二次浓缩时,温度达 170℃, 水分含量已达到终产品所要控制的水平,处于融溶 状态。这种固化方法比通过喷雾与粉状成粒后再干 燥节省能耗[19]。 4 异麦芽酮糖的市场前景
异麦芽酮糖由于具有某些独特的理化性质、生 理功能和使用安全性,目前已在 50 多个国家和地区 使用和销售,使用它作为甜味剂的产品已达千种。 但总体而言,异麦芽酮糖推向市场的时间还较短, 因此还有较大的上升空间。 2013 年,全球销售量接 近 40 万 t,国内市场也达到 4 万 t 以上,且年增长 率保持在 10%以上。但是国内仅有 2 家企业建有异 麦芽酮糖的生产线,且规模较小,年产量近 5000 t。 随着国民生活水平的逐渐提高,国内肥胖、糖尿病 人的发病率逐渐增加,消费者也会更加关注健康饮 食,异麦芽酮糖属于健康饮食发展趋势下的前沿产 品,具有非常大的市场潜力,尤其是在功能性糖果、 能量缓释运动产品、代餐类食品中,均有机会开发 出划时代、促进行业变革的产品,不仅给消费者带 来健康的享受,更可为企业带来良好的经济效益和 社会效益,从而将迎来快速的增长期。 5 展望
异麦芽酮糖是一种新型的功能甜味剂,不仅给 消费者带来健康的享受,更可为企业带来良好的经 济效益和良好的社会地位。但目前国内异麦芽酮糖 的生产技术和生产规模都还具有非常大的提升空 间。作者认为可从以下几个方面加强研究开发,提 高我国异麦芽酮糖的生产水平。
( 1)蔗糖异构酶生产菌株的选育。利用传统诱 变方法结合新型离子束注入等新型诱变手段,选育 能生产具有底物专一性强、催化能力高的菌株。
( 2)构建基因工程菌,实现蔗糖异构酶的胞外 表达,提高蔗糖异构酶的生产效率。
( 3) 鉴于低温诱导蔗糖异构酶合成异麦芽酮糖 的比例增加,因此可以在基因组水平、蛋白质组学 水平研究低温作用于蔗糖异构酶的结构特性,并通 过各种组学手段得到高温条件下仍然为该结构特性 的蔗糖异构酶,提高反应主产物异麦芽酮糖的产出 率。
( 4)低成本、高效率的异麦芽酮糖的分离纯化 技术开发。
[1] | HOLUB I, GOSTNER A, THEIS S, et al. Novelfindings on the metabolic effects of the low glycaemiccarbohydrate isomaltulose (palatinose)[J]. British Journalof Nutrition, 2010, 103(12): 1730-1737.(1) |
[2] | 尤新. 异麦芽酮糖的功能与应用[J]. 食品安全导刊,2013(15):62-63.(2) |
[3] | CHO M H, PARK S E, LIM J K, et al. Conversion ofsucrose into isomaltulose by Enterobacter sp. FMB1, anisomaltulose-producing microorganism isolated fromtraditional Korean food[J]. Biotechnol Lett, 2007, 29(3):453-458.(2) |
[4] | KRASTANOV A, BLAZHEVA D, YANAKIEVA I, et al.Conversion of sucrose into palatinose in a batch andcontinuous processes by immobilized Serratia plymuthicacells[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2006, 39(6):1306-1312.(1) |
[5] | VERONESE T, PERLOT P. Proposition for thebiochemical mechanism occurring in the sucroseisomerase active site[J]. FEBS Lett, 1998, 441(3):348-352.(1) |
[6] | LEE H C, KIM J H, KIM S Y, et al. Isomaltoseproduction by modification of the fructose-binding siteon the basis of the predicted structure of sucroseisomerase from ""Protaminobacter rubrum""[J]. ApplEnviron Microbiol, 2008, 74(16): 5183-5194.(1) |
[7] | AHN S J, YOO J H, LEE H C, et al. Enhancedconversion of sucrose to isomaltulose by a mutant ofErwinia rhapontici[J]. Biotechnol Lett, 2003, 25(14):1179-1183(1). |
[8] | ZHANG D, LI N, LOK S M, et al. Isomaltulose synthase(PalI) of Klebsiella sp. LX3. Crystal structure andimplication of mechanism[J]. J Biol Chem, 2003, 278(37):35428-35434.(1) |
[9] | RAVAUD S, WATZLAWICK H, HASER R, et al.Overexpression, purification, crystallization andpreliminary diffraction studies of the Protaminobacterrubrum sucrose isomerase SmuA[J]. Acta CrystallogrSect F Struct Biol Cryst Commun, 2006, 62(Pt 1): 74-76.(2) |
[10] | WATZLAWICK H, MATTES R. Gene cloning, proteincharacterization, and alteration of product selectivity forthe trehalulose hydrolase and trehalulose synthase from""Pseudomonas mesoacidophila"" MX-45[J]. Appl EnvironMicrobiol, 2009, 75(22): 7026-7036.(2) |
[11] | ZHOU X, ZHENG Y, WEI X, et al. Sucrose isomeraseand its mutants from Erwinia rhapontici can synthesisealpha-arbutin[J]. Protein Pept Lett, 2011, 18(10):1028-1034.(1) |
[12] | GOULTER K C, HASHIMI S M, BIRCH R G. Microbialsucrose isomerases: producing organisms, genes andenzymes[J]. Enzyme Microb Technol, 2012, 50(1): 57-64.(1) |
[13] | LI S, CAI H, QING Y, et al. Cloning and characterizationof a sucrose isomerase from Erwinia rhapontici NX-5 forisomaltulose hyperproduction[J]. Appl BiochemBiotechnol, 2011, 163(1): 52-63.(1) |
[14] | LI N, ZHANG D, ZHANG L H, et al. Expression,crystallization and preliminary X-ray analysis ofisomaltulose synthase (PalI) from Klebsiella sp. LX3[J].Acta Crystallogr D Biol Crystallogr, 2003, 59(Pt 1):150-151.(1) |
[15] | LEE G Y, JUNG J H, SEO D H, et al. Isomaltuloseproduction via yeast surface display of sucrose isomerasefrom Enterobacter sp. FMB-1 on Saccharomycescerevisiae[J]. Bioresour Technol, 2011, 102(19):9179-9184.(1) |
[16] | PARK J Y, JUNG J H, SEO D H, et al. Microbialproduction of palatinose through extracellular expressionof a sucrose isomerase from Enterobacter sp. FMB-1 inLactococcus lactis MG1363[J]. Bioresour Technol, 2010,101(22): 8828-8833.(1) |
[17] | 李莎. 生物催化制备甜味剂异麦芽酮糖的研究[D],南京工业大学,2011.(1) |
[18] | CHRITOPHER B,CHEETHAM P S J.Production ofisomaltulose[P].US 435953 1,1982-11-16.(1) |
[19] | 苏雪梅. 帕拉金糖的生产工艺及市场分析[J]. 轻工科技,2012(4):1-2.(1) |