2. 上海中医药大学附属第七人民医院检验科, 上海 200137
2. Department of Clinical Laboratory, Shanghai Seventh People's Hospital, Shanghai University of Traditional Chinese Medicine, Shanghai 200137, China
结直肠癌是我国常见的消化道肿瘤,由于饮食和生活方式的改变,近年来我国结直肠癌发病率呈上升趋势,男性、女性结直肠癌发病率分别位于恶性肿瘤的第5位和第4位[1]。目前在结直肠癌早期筛查工作中,常用的方法包括粪便隐血试验、粪便免疫化学检测及金标准肠镜筛查,但前两者的灵敏度和特异度不高,尤其对早期结直肠癌患者易造成误诊、漏诊,而肠镜则因为肠道准备和检查时间长、易引起疼痛等导致患者依从性不高[2]。因此,探讨简便易行且兼具高灵敏度和高特异度的结直肠癌筛查方法十分必要。
近年来随着基因甲基化检测技术的创新和发展,以甲基化基因作为分子标志物筛查肿瘤的方法越来越受到重视[3-6],如Septin9基因甲基化已被用于结直肠癌临床检测[7],但目前能够应用到临床的甲基化基因仍较少。本研究收集了海军军医大学(第二军医大学)长海医院31例结直肠癌标本及其相应癌旁正常结直肠组织标本,根据前期研究结果[8]选取PR结构域蛋白12(PR domain-containing protein 12,PRDM12)、叉头框E1(forkhead box E1,FOXE1)、β-1, 3-葡糖醛转移酶2(beta-1, 3-glucuronyltransferase 2,B3GAT2)、波形蛋白(vimentin,VIM)、分泌型卷曲相关蛋白2(secreted frizzled-related protein 2,SFRP2)基因进行甲基化水平检测,初步评估其作为结直肠癌早期筛查标志物的潜力。
1 材料和方法 1.1 标本来源收集海军军医大学(第二军医大学)长海医院2018年3月至2018年7月收治的31例结直肠癌患者经手术切除的癌组织及癌旁正常组织标本并制成石蜡切片,其中癌旁正常组织距离癌组织边缘5 cm以上,并经过组织病理学确认无相关癌细胞浸润。纳入标准:(1)经手术及组织病理学证实为结直肠癌;(2)患者知晓本次研究内容,并签署知情同意书。排除标准:(1)标本失活;(2)标本来源信息不全。本研究方案通过海军军医大学(第二军医大学)长海医院医学伦理委员会审批。
1.2 主要试剂及仪器组织全基因组DNA提取试剂盒(德国Qiagen公司);DNA甲基化试剂盒(美国ZYMO公司);Taq酶PCR预混液试剂盒(德国Qiagen公司);LC480Ⅱ PCR扩增仪(瑞士Roche公司);NanoDrop ND-2000微量紫外分光光度计(美国ThermoFisher Scientific公司);焦磷酸测序检测相关试剂(瑞典Biotage公司);PSQ96焦磷酸测序仪(德国Qiagen公司)。
1.3 检测方法通过前期研究分析结果[8],结合相关文献报道,确定并选择基因CpG岛位置。使用Pyro Mark Assay Design 2.0软件设计特异性扩增引物及测序引物。引物和探针(表 1)由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。使用组织全基因组DNA提取试剂盒从石蜡组织切片中提取基因组DNA,使用NanoDrop ND-2000微量紫外分光光度计测定DNA含量,按照DNA甲基化试剂盒说明书对基因组DNA进行亚硫酸盐处理后,-70 ℃保存备用。PCR反应体系为50 μL。基因组长片段扩增反应条件:95 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,60 ℃ 40 s,72 ℃ 30 s,35个循环;72 ℃ 5 min。焦磷酸测序模板扩增反应条件:95 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,54 ℃ 40 s,72 ℃ 30 s,40个循环;72 ℃ 3 min。将标有生物素的PCR产物与载有链霉亲和素的微珠混匀,变性后单链化处理测序模板,放入焦磷酸测序仪中检测各基因启动子CpG位点甲基化水平。
1.4 焦磷酸测序数据分析
使用焦磷酸测序检测结直肠癌组织和相应癌旁正常组织标本各基因检测位点出现甲基化的频率,利用焦磷酸测序仪的等位基因频率分析软件对测序结果进行统计。甲基化程度用甲基化指数(methylation index,MtI)衡量,MtI=基因甲基化位点峰值高度/(甲基化位点峰值高度+非甲基化位点峰值高度)。MtI<5%为检测背景值,≥5%表示该位点出现甲基化。当癌组织基因检测位点的MtI大于癌旁正常组织MtI的95%时,定义该基因高度甲基化。
1.5 统计学处理使用SPSS 20.0软件进行统计学分析。呈正态分布的计量资料以x±s表示;呈偏态分布的计量资料以中位数(下四分位数,上四分位数)表示,采用Wilcoxon符号秩检验比较癌组织与癌旁正常组织各基因CpG位点甲基化水平的差异。计数资料以例数和百分数表示。检验水准(α)为0.05。
2 结果 2.1 结直肠癌组织和癌旁正常组织中各基因启动子甲基化水平31例患者中,男23例、女8例,年龄为38~65岁,平均年龄为(45.29±4.36)岁,结直肠癌TNM分期Ⅰ期7例、Ⅱ期11例、Ⅲ期8例、Ⅳ期5例。结直肠癌组织和癌旁正常组织中PRDM12基因的MtI分别为42.49%(24.59%,52.52%)和18.44%(16.87%,21.06%),癌组织PRDM12基因MtI高于癌旁正常组织(Z=5.357,P<0.01);在所测序的PRDM12基因7个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1A)。结直肠癌组织和癌旁正常组织中FOXE1基因的MtI分别为36.22%(17.60%,42.53%)和6.90%(5.69%,9.64%),癌组织FOXE1基因MtI高于癌旁正常组织(Z=-4.68,P<0.01);在所测序的FOXE1基因6个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1B)。结直肠癌组织和癌旁正常组织中B3GAT2基因的MtI分别为22.78%(8.21%,34.33%)和7.97%(5.14%,10.26%),癌组织B3GAT2基因MtI高于癌旁正常组织(Z=4.23,P<0.01);在所测序的B3GAT2基因6个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1C)。结直肠癌组织和癌旁正常组织中VIM基因的MtI分别为33.25%(8.83%,70.36%)和6.99%(4.62%,11.82%),癌组织VIM基因MtI高于癌旁正常组织(Z=3.51,P<0.01);在所测序的VIM基因7个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1D)。结直肠癌组织和癌旁正常组织中SFRP2-1基因的MtI分别为28.25%(15.61%,48.61%)和11.80%(5.92%,16.65%),癌组织SFRP2-1基因MtI高于癌旁正常组织(Z=4.02,P<0.01);在所测序的SFRP2-1基因7个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1E)。结直肠癌组织和癌旁正常组织中SFRP2-2基因的MtI分别为8.85%(5.51%,27.24%)和5.26%(4.09%,7.35%),癌组织SFRP2-2基因MtI高于癌旁正常组织(Z=3.43,P<0.01);在所测序SFRP2-2基因的7个CpG位点中,癌组织MtI均高于癌旁正常组织(P均<0.01,图 1F)。
2.2 不同TNM分期结直肠癌组织中各基因启动子高度甲基化状态分析
在31例结直肠癌组织中,PRDM12、FOXE1、B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子高度甲基化率分别为87.1%(27/31)、90.3%(28/31)、80.6%(25/31)、77.4%(24/31)、74.2%(23/31)、64.5%(20/31),可见PRDM12和FOXE1基因启动子高度甲基化率较高,而B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子高度甲基化率相对较低。
不同TNM分期的结直肠癌组织中各基因的高度甲基化情况见表 2,在18例早期(TNMⅠ~Ⅱ期)结直肠癌患者癌组织中,PRDM12、FOXE1、B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子高度甲基化率分别为88.9%(16/18)、94.4%(17/18)、83.3%(15/18)、77.8%(14/18)、83.3%(15/18)、61.1%(11/18);而在13例晚期(TNMⅢ~Ⅳ期)结直肠癌患者癌组织中,PRDM12、FOXE1、B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子高度甲基化率分别为84.6%(11/13)、84.6%(11/13)、76.9%(10/13)、76.9%(10/13)、61.5%(8/13)、69.2%(9/13)。由以上结果可见PRDM12和FOXE1基因启动子在早期结直肠癌组织中的高度甲基化率较高,而B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子高度甲基化率相对较低。
3 讨论
结直肠癌为临床常见消化道恶性肿瘤,诊疗核心是早发现、早治疗,因此早期的筛查尤为重要[9-10]。近年来基因甲基化检测技术日益成熟,已被用于各类肿瘤疾病的早期筛查。目前在结直肠癌早期筛查中已应用到临床的甲基化检测基因有Septin9、N-myc下游调节基因4(N-myc downstream-regulated gene 4,NDRG4)等[5, 11]。Su等[12]检测了172例结直肠癌组织中Septin9基因甲基化情况,其中152例为阳性,灵敏度为88.4%。Xiao等[13]发现结直肠癌组织中NDRG4基因的甲基化阳性检出率为81%,而在癌旁正常组织中仅为8.3%。本研究发现PRDM12和FOXE1基因在结直肠癌组织中的甲基化率分别为87.1%(27/31)和90.3%(28/31),高于上述报道的Septin9、NDRG4基因甲基化率,提示PRDM12和FOXE1基因甲基化有潜力成为辅助诊断候选标志物。
PRDM12基因位于人第9号染色体9q34.12上,属于含有PR/SET蛋白结构域的转录调控因子家族成员。PRDM12是重要的转录调节因子,能够调控神经分化和形成,与实体肿瘤和血液恶性肿瘤发生相关[14-15]。FOXE1基因位于人第9号染色体9q22.33上,是叉头转录因子家族成员,既往研究表明FOXE1是重要转录因子,与甲状腺癌、胰腺癌、皮肤鳞状细胞癌的发生直接相关[16]。Dai等[17]研究表明结直肠癌中FOXE1基因低表达,且导致结直肠癌预后不良,这可能与FOXE1基因高甲基化使基因功能受到抑制有关。
本研究通过焦磷酸测序检测31例结直肠癌组织中多个基因的甲基化状态,结果发现PRDM12、FOXE1、B3GAT2、VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因启动子甲基化水平在结直肠癌组织与癌旁正常组织中均存在差异(P均<0.01),且PRDM12、FOXE1基因启动子高度甲基化率高于既往文献报道较多的VIM、SFRP2、Septin9、NDRG4等基因的甲基化率[4, 18-20]。在18例早期(TNMⅠ~Ⅱ期)结直肠癌中,PRDM12、FOXE1基因启动子高度甲基化率分别为88.9%(16/18)、94.4%(17/18),提示PRDM12、FOXE1基因甲基化在早期结直肠癌患者诊断中可能具有一定价值。B3GAT2基因编码葡萄糖醛酸转移酶家族的跨膜蛋白,参与人自然杀伤蛋白1碳水化合物表位的合成,与神经系统的细胞迁移和黏附有关,有研究发现B3GAT2蛋白表达下降与其基因启动子甲基化有关[21]。VIM通常在正常的间充质细胞中表达,并且其高甲基化与癌转移相关[22]。SFRP2蛋白主要参与Wnt信号通路相关蛋白的表达,有研究发现有该蛋白参与骨肉瘤和结直肠癌的癌细胞迁移[23-24]。但本研究结果显示,与PRDM12和FOXE1相比,VIM、SFRP2-1、SFRP2-2基因在结直肠癌组织中的甲基化水平相对较低,但由于这些基因均是在癌细胞扩散阶段发挥功能,可能不适合作为早期结直肠癌筛查的标志物。
综上所述,PRDM12和FOXE1基因在结直肠癌组织中出现异常甲基化表达,初步判断两者有潜力成为结直肠癌早期辅助诊断的分子标志物,值得进一步研究。后期我们将在本研究结果的基础上收集肠炎、息肉、腺瘤患者及健康人的组织和粪便样本,比较癌症与炎症、息肉、腺瘤及健康人人群中基因甲基化水平的差异,进一步探索PRDM12、FOXE1基因甲基化应用于结直肠癌早期筛查的可能性。
[1] |
CHEN W, ZHENG R, BAADE P D, ZHANG S, ZENG H, BRAY F, et al. Cancer statistics in China, 2015[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66: 115-132. DOI:10.3322/caac.21338 |
[2] |
林泳, 王红. 结直肠癌的筛查模式与筛查方法[J]. 中华全科医师杂志, 2017, 16: 342-345. |
[3] |
ABOUZEID H E, KASSEM A M, ABDEL WAHAB A H, EL-MEZAYEN H A, SHARAD H, ABDEL RAHMAN S. Promoter hypermethylation of RASSF1A, MGMT, and HIC-1 genes in benign and malignant colorectal tumors[J]. Tumour Biol, 2011, 32: 845-852. DOI:10.1007/s13277-011-0156-7 |
[4] |
MELOTTE V, LENTJES M H, VAN DEN BOSCH S M, HELLEBREKERS D M, DE HOON J P, WOUTERS K A, et al. N-myc downstream-regulated gene 4(NDRG4):a candidate tumor suppressor gene and potential biomarker for colorectal cancer[J]. J Natl Cancer Inst, 2009, 101: 916-927. DOI:10.1093/jnci/djp131 |
[5] |
IMPERIALE T F, RANSOHOFF D F, ITZKOWITZ S H, LEVIN T R, LAVIN P, LIDGARD G P, et al. Multitarget stool DNA testing for colorectal-cancer screening[J]. N Engl J Med, 2014, 370: 1287-1297. DOI:10.1056/NEJMoa1311194 |
[6] |
TIAN X, SUN D, ZHAO S, XIONG H, FANG J. Screening of potential diagnostic markers and therapeutic targets against colorectal cancer[J]. Onco Targets Ther, 2015, 8: 1691-1699. |
[7] |
TÓTH K, SIPOS F, KALMÁR A, PATAI A V, WICHMANN B, STOEHR R, et al. Detection of methylated SEPT9 in plasma is a reliable screening method for both left- and right-sided colon cancers[J/OL]. PLoS One, 2012, 7: e46000. doi: 10.1371/journal.pone.0046000.
|
[8] |
YAN H, CHOI A J, LEE B H, TING A H. Identification and functional analysis of epigenetically silenced microRNAs in colorectal cancer cells[J/OL]. PLoS One, 2011, 6: e20628. doi: 10.1371/journal.pone.0020628.
|
[9] |
GUPTA N, KUPFER S S, DAVIS A M. Colorectal cancer screening[J]. JAMA, 2019, 321: 2022-2023. DOI:10.1001/jama.2019.4842 |
[10] |
中华医学会消化内镜学分会消化系早癌内镜诊断与治疗协作组, 中华医学会消化病学分会消化道肿瘤协作组, 中华医学会消化内镜学分会肠道学组, 中华医学会消化病学分会消化病理学组. 中国早期结直肠癌及癌前病变筛查与诊治共识[J]. 中国实用内科杂志, 2015, 3: 211-227. |
[11] |
MA Z, WILLIAMS M, CHENG Y Y, LEUNG W K. Roles of methylated DNA biomarkers in patients with colorectal cancer[J/OL]. Dis Markers, 2019, 2019: 2673543. doi: 10.1155/2019/2673543.
|
[12] |
SU X L, WANG Y F, LI S J, ZHANG F, CUI H W. High methylation of the SEPT9 gene in Chinese colorectal cancer patients[J]. Genet Mol Res, 2014, 13: 2513-2520. DOI:10.4238/2014.January.17.5 |
[13] |
XIAO W, ZHAO H, DONG W, LI Q, ZHU J, LI G, et al. Quantitative detection of methylated NDRG4 gene as a candidate biomarker for diagnosis of colorectal cancer[J]. Oncol Lett, 2015, 9: 1383-1387. DOI:10.3892/ol.2014.2815 |
[14] |
SORRENTINO A, FEDERICO A, RIENZO M, GAZZERRO P, BIFULCO M, CICCODICOLA A, et al. PR/SET domain family and cancer: novel insights from the cancer genome atlas[J/OL]. Int J Mol Sci, 2018, 19: 3250. doi: 10.3390/ijms19103250.
|
[15] |
YANG C M, SHINKAI Y. Prdm12 is induced by retinoic acid and exhibits anti-proliferative properties through the cell cycle modulation of P19 embryonic carcinoma cells[J]. Cell Struct Funct, 2013, 38: 197-206. DOI:10.1247/csf.13010 |
[16] |
KATOH M, IGARASHI M, FUKUDA H, NAKAGAMA H, KATOH M. Cancer genetics and genomics of human FOX family genes[J]. Cancer Lett, 2013, 328: 198-206. DOI:10.1016/j.canlet.2012.09.017 |
[17] |
DAI W, MENG X, MO S, XIANG W, XU Y, ZHANG L, et al. FOXE1 represses cell proliferation and Warburg effect by inhibiting HK2 in colorectal cancer[J/OL]. Cell Commun Signal, 2020, 18: 7. doi: 10.1186/s12964-019-0502-8.
|
[18] |
AHMED D, DANIELSEN S A, AAGESEN T H, BRETTHAUER M, THⅡS-EVENSEN E, HOFF G, et al. A tissue-based comparative effectiveness analysis of biomarkers for early detection of colorectal tumors[J/OL]. Clin Transl Gastroenterol, 2012, 3: e27. doi: 10.1038/ctg.2012.21.
|
[19] |
WU D, ZHOU G, JIN P, ZHU J, LI S, WU Q, et al. Detection of colorectal cancer using a simplified SEPT9 gene methylation assay is a reliable method for opportunistic screening[J]. J Mol Diagn, 2016, 18: 535-545. DOI:10.1016/j.jmoldx.2016.02.005 |
[20] |
TAKEDA M, NAGASAKA T, DONG-SHENG S, NISHIE H, OKA T, YAMADA E, et al. Expansion of CpG methylation in the SFRP2 promoter region during colorectal tumorigenesis[J]. Acta Med Okayama, 2011, 65: 169-177. |
[21] |
HINOUE T, WEISENBERGER D J, LANGE C P, SHEN H, BYUN H M, VAN DEN BERG D, et al. Genome-scale analysis of aberrant DNA methylation in colorectal cancer[J]. Genome Res, 2012, 22: 271-282. DOI:10.1101/gr.117523.110 |
[22] |
LAZAROVA D L, BORDONARO M. Vimentin, colon cancer progression and resistance to butyrate and other HDACis[J]. J Cell Mol Med, 2016, 20: 989-993. DOI:10.1111/jcmm.12850 |
[23] |
LIU X, FU J, BI H, GE A, XIA T, LIU Y, et al. DNA methylation of SFRP1, SFRP2, and WIF1 and prognosis of postoperative colorectal cancer patients[J/OL]. BMC Cancer, 2019, 19: 1212. doi: 10.1186/s12885-019-6436-0.
|
[24] |
TECHAVICHIT P, GAO Y, KURENBEKOVA L, SHUCK R, DONEHOWER L A, YUSTEIN J T. Secreted frizzled-related protein 2(sFRP2) promotes osteosarcoma invasion and metastatic potential[J/OL]. BMC Cancer, 2016, 16: 869. doi: 10.1186/s12885-016-2909-6.
|