天冬酰胺酶(L-asparaginase,L-ASN)是治疗急性淋巴白血病和淋巴瘤的有效药物[1]。天冬酰胺是癌变淋巴母细胞生长所必需的氨基酸,L-ASN通过消耗天冬酰胺发挥抗癌作用[2]。L-ASN是蛋白多肽类药物,与传统合成药物相比,其对正常细胞和组织的毒副作用较轻,但在体内易失活、稳定性差、生物利用度低,限制了其临床应用[3]。羟丙基-β-环糊精脂质体是一类新型药物载体,药物被羟丙基-β-环糊精包合后再制备成脂质体能提高药物包封率,增强药物稳定性,并能提高药物的生物利用度,具有良好的应用前景[4-5]。目前,国内尚未见羟丙基-β-环糊精脂质体载治疗酶的研究报道,本研究首次将L-ASN制备成载天冬酰胺酶羟丙基-β-环糊精脂质体(L-asparaginase loaded hydroxypropyl-β-cyclodextrin liposome,AHL),以期提高L-ASN的稳定性和生物利用度。
1 材料和方法 1.1 药品、试剂与仪器L-ASN(以色列Prospec公司,纯度>96%,批号:312PLASP11),天冬酰胺、胆固醇(美国Sigma公司),三羟甲基氨基甲烷(Tris,国药集团化学试剂有限公司),磷脂(德国Lipoid公司),乙醚、二氯甲烷[重庆川东化工(集团)有限公司]。A200S型精密电子天平(德国赛多利斯公司),G16型医用离心机(北京白洋医疗器械有限公司),PHS-25型酸度计(上海雷磁仪器厂),HWCL-3型集热式恒温磁力搅拌器(郑州长城科工贸有限公司),Zetasizer Nano型激光粒度仪(英国马尔文仪器有限公司),JEM-1400Plus型透射电子显微镜(日本电子株式会社)。
1.2 实验动物清洁级SD大鼠,体质量(200±20)g,雄性,由重庆医科大学实验动物中心提供,使用许可证号:SYXK(渝)2014-0001。
1.3 AHL的制备采用逆相蒸发法制备AHL[5-6]。称取适量胆固醇、卵磷脂,加15 mL二氯甲烷溶解,减压蒸发至形成均匀透明薄膜,加15 mL乙醚溶解已形成的薄膜,然后加入L-ASN羟丙基-β-环糊精包合物溶液10 mL,冰浴中超声后,旋转蒸发至形成乳白色均匀混悬液,即得AHL。将L-ASN及AHL置于4 ℃环境下,于第0、1、5、10、15、20、25、30天分别测定各溶液中L-ASN的活性,考察其稳定性。
1.4 AHL包封率的测定采用葡聚糖凝胶柱法测定AHL的包封率[6]。取AHL混悬液上葡聚糖凝胶G-200柱,Tris-盐酸缓冲液(pH 7.3)洗脱,流速为1.0 mL/min,分离AHL与游离酶,接取AHL部分,乙醚破乳后离心。取上清液加入考马斯亮蓝G-250溶液显色,于波长595 nm处测定其光密度值,计算过柱后的AHL中L-ASN的含量(W1)。另取相同体积未过柱的AHL同法测定,计算出其中L-ASN的含量(W2)。包封率=(W1/W2)×100%。
1.5 AHL粒径、zeta电位与形态的测定[3]取AHL混悬液,用pH为7.3的Tris-盐酸缓冲液稀释20倍,混合均匀后使用马尔文激光粒度仪测定其粒径与zeta电位;同时取部分稀释液滴加在铜网上,用1%的磷钨酸染色,晾干后在透射电子显微镜下观察其形态。
1.6 AHL药代动力学的测定取12只SD大鼠随机分为两组,每组6只,分别静脉注射AHL和L-ASN,剂量均为2 U/g,给药后5 min、10 min、15 min、30 min、45 min、1 h、1.5 h、2 h、3 h、4 h、6 h、8 h、10 h、12 h、24 h、48 h眼眶下静脉丛取血,置于肝素化的离心管中,1 006×g离心10 min,取上层血浆样品,采用奈斯勒试剂显色法测定L-ASN的活性[3, 7]。L-ASN活性单位定义为:在37 ℃、pH 7.3的条件下,每分钟催化天冬酰胺水解释放1 μmol氨所需的酶量。根据所测结果绘制活性-时间曲线,采用DAS 2.1.1软件计算主要的药代动力学参数[8]。
1.7 统计学处理采用SPSS 17.0软件对数据进行统计学分析。数据以x±s表示,两组间比较采用t检验。检验水准(α)为0.05。
2 结果 2.1 AHL的制备成功制备得到AHL。如图 1所示,4 ℃环境下30 d内AHL的稳定性优于L-ASN(P<0.05)。
2.2 AHL的包封率、粒径、zeta电位与形态
测得AHL的平均包封率为(53.53±0.58)%,平均粒径为(388.99±2.02)nm,平均zeta电位为(-8.56±0.75)mV。由图 2可见,制备得到的AHL呈类球形,大小分布较均匀。
2.3 AHL的活性-时间曲线
SD大鼠分别静脉注射AHL和L-ASN后定时采血,测定不同时间点血浆中L-ASN的活性(AHL组中L-ASN的活性是包载与游离L-ASN活性的总和)。如图 3所示,AHL的活性-时间曲线下面积大于L-ASN(P<0.05)。在大鼠体内,注射L-ASN后大鼠血浆中L-ASN的活性迅速下降,8 h时已接近于0 U/mL;而注射AHL后大鼠血浆中L-ASN的活性下降趋势缓慢,12 h时仍能检测到较高活性。这表明AHL能提高L-ASN在大鼠体内的血药浓度水平,延长其作用时间。
2.4 AHL的主要药代动力学参数
L-ASN和AHL的主要药动学参数见表 1。与L-ASN相比,AHL的相对生物利用度为344.05%,说明AHL能提高L-ASN的生物利用度。AHL的0~48 h平均滞留时间约为L-ASN的2.21倍,表明AHL能延长L-ASN在生物体内的作用时间。AHL的峰浓度(Cmax)约为L-ASN的1.2倍,表明AHL能提高L-ASN在生物体内的活性。AHL的达峰时间(Tmax)约为L-ASN的10.8倍,表明AHL具有缓释作用。
3 讨论
本研究采用逆相蒸发法制备AHL。制备脂质体的方法很多,如薄膜分散法、乙醇注入法、冷冻干燥法及逆相蒸发法等[3-4, 9-10]。薄膜分散法用于难溶性,尤其是挥发油类药物的制备;乙醇注入法制备速度慢,不适合大规模生产,用于醇溶性及挥发油类药物的制备;冷冻干燥法制备的脂质体稳定性好,但是需要加入保护剂,用于热不稳定性药物的制备;逆相蒸发法应用广、包封率高,适合制备水溶性的大分子类药物,通常采用逆相蒸发法制备酶类脂质体[3, 6]。酶类脂质体的包封率普遍不高,有些甚至低至10%,本研究中AHL的平均包封率为(53.53±0.58)%,高于L-ASN脂质体[11],远高于抗自由基复酶脂质体[12],表明AHL的包封较好。粒径和zeta电位是评价脂质体的重要指标。脂质体的粒径一般为50~1 000 nm[13],而酶类药物脂质体的粒径一般为250~850 nm[13-16],本研究中AHL的平均粒径为(388.99±2.02)nm,与文献报道一致。
有文献报道,大鼠静脉注射L-ASN纳米囊后峰浓度为29.95 U/mL,0~48 h曲线下面积为137.34 U/(mL • h)[7]。本研究中AHL的给药剂量与L-ASN纳米囊[7]一致,其峰浓度较天冬酰胺酶纳米囊提高了8%,且其相对L-ASN纳米囊的生物利用度为144.32%,而AHL相对L-ASN的生物利用度为344.05%,可见AHL能有效提高药物的生物利用度。分析AHL生物利用度提高的原因可能有:(1)羟丙基-β-环糊精脂质体对药物有保护作用,能提高L-ASN抗吞噬细胞清除和抗蛋白酶水解的能力[17-19];(2)羟丙基-β-环糊精脂质体能增强药物的稳定性,使L-ASN长时间保持较高活性[18, 20]。本研究中静脉注射AHL 1 h后大鼠血浆中L-ASN的活性最高,这与尿酸酶多囊脂质体静脉注射1 h后出现最大活性[15]类似。
综上所述,AHL能有效改善L-ASN的药代动力学特性,提高其生物利用度。本研究成功制备了AHL,为L-ASN及其他蛋白多肽类药物的临床应用奠定了基础。
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