2. 第二军医大学药学院药理学教研室, 上海 200433;
3. 第二军医大学药学院药剂学教研室, 上海 200433;
4. 第二军医大学东方肝胆外科医院微创二科, 上海 200438
2. Department of Pharmacology, School of Pharmacy, Second Military Medical University, Shanghai 200433, China;
3. Department of Pharmacy, School of Pharmacy, Second Military Medical University, Shanghai 200433, China;
4. Minimally Invasive Therapy Department Ⅱ, Eastern Hepatobiliary Surgery Hospital, Second Military Medical University, Shanghai 200438, China
氟尿嘧啶是一种常用的肝癌治疗药物,但对癌细胞和正常细胞的选择性较差[1],半衰期短,并有较强的毒副作用,可引起骨髓抑制、消化道反应等,限制了其临床使用。微球有栓塞肿瘤周围血管和缓释药物达到局部抗癌的双重功效[2],本研究用聚乳酸为囊材包裹氟尿嘧啶,制成微球缓释制剂,可减小药物的细胞毒性,并借助聚乳酸微球的缓释作用延长药物作用时间。我国是肝癌的高发区,但肝癌的手术切除率仅为20%,而结合临床肝癌的介入疗法[3],通过导管注入微球栓塞肿瘤周围的肝动脉,可阻断肿瘤血供,提高药物的靶向性。在微球中同时包裹碘化油作为造影剂,便于跟踪后期的栓塞效果。
本实验以新西兰肝肿瘤兔为动物模型,在数字减影血管造影(Digital subtraction angiography,DSA)监测下经股动脉插入微导管行至肝动脉注射微球[4 ,5],使可显影碘化油-氟尿嘧啶聚乳酸微球机械栓塞肝动脉,定期在CT下检查肿瘤生长情况,观察微球的栓塞效果,并结合病理切片评价治疗效果,从而为可显影碘化油-氟尿嘧啶聚乳酸微球制剂的临床使用提供依据。
1 材料4排螺旋CT机(GE,美国);数码相机(SONY,日本);显微镜(Nikon Eclipse Boi,日本);氟尿嘧啶(南通精华制药有限公司,批号: FLV070601);聚乙烯醇(PVA,北京化工厂); 二氯甲烷(上海凌峰化学试剂有限公司);碘化油注射液(法国GUERBET公司,批号: 06LU011A);碘海醇(上海奈可明公司);氟尿嘧啶注射液(上海旭东海普药业公司,批号: 071107);自制可显影碘化油-氟尿嘧啶聚乳酸微球[6]。
洁净级新西兰兔,上海斯莱克实验动物有限责任公司提供,生产许可证号: SCXK(沪)2007-0005,雄性,体质量(2.81±0.25) kg。
2 方法和结果 2.1 动物模型的建立及模型评价将肿瘤细胞(第二军医大学长征医院放射科提供)种植在健康新西兰兔肝脏上,生长3周后,CT评价肿瘤生长正常,将新西兰肝肿瘤兔上肝肿瘤组织取出,切成2~3 mm的小块状组织,移植到健康新西兰兔的两叶肝上,缝合,自然生长2周后进行CT扫描,观察模型兔的肿瘤生长大小。
2.2 给药途径及给药方案分离模型兔右侧后肢的股动脉,经股动脉插入微导管(图 1),在DSA的监测下微导管沿腹主动脉行至肝动脉,经导管将各组药物分别注入肝脏肿瘤组织周围动脉(图 2)。
肿瘤模型兔分组如下: (1)空白对照组: 6只,不予任何药物治疗。(2)药物对照组: 6只,在DSA观测下经导管将氟尿嘧啶3 mL(相当于氟尿嘧啶0.075 g)和碘化油1 mL注入肝脏肿瘤组织周围的动脉血管。(3)实验组: 6只,在DSA观测下经导管将自制微球0.04 g(相当于氟尿嘧啶0.003 2 g)注入肝脏肿瘤组织周围的动脉血管。
2.3 CT扫描评价各组肿瘤模型兔介入治疗术后1周进行CT扫描评价,每周1次,连续观察5周,评价肿瘤生长情况、碘化油沉积情况,CT扫描结果见图 3。
CT评价结果表明,空白对照组兔肝脏肿瘤组织随时间延长,肿瘤组织快速增长,逐渐变大。药物对照组给予 氟尿嘧啶和碘化油治疗后,CT扫描可见肝脏肿瘤组织周围有明显的碘化油沉积,但随时间增加,碘化油沉积由连续、均匀变为不连续且减少。实验组给予自制微球治疗后,CT扫描可见肿瘤组织周围有碘化油沉积,且持续时间较长,随时间增加,碘化油沉积无明显减少,说明自制微球有一定的显影效果,且随时间推移,微球仍栓塞在肿瘤组织周围,不容易随血液流失。
A1,B1,C1,D1,E1: 1-5 weeks of blank control group; A2,B2,C2,D2,E2: 1-5 weeks of drug control group; A3,B3,C3,D3,E3: 1-5 weeks of experimental group |
经介入治疗的模型兔和空白对照组模型兔CT观察满5周,处死,取出肝脏及肿瘤组织做病理切片,并进行H-E染色和TUNEL染色,显微镜下观察肿瘤组织的坏死情况和肿瘤细胞的凋亡情况。病理评价结果见图 4。
A, B, C: H-E staining of the blank group, drug control group, and experimental group, respectively; D, E, F: TUNEL staining of the blank group, drug control group, and experimental group, respectively. In B, C the arrows showed part of the necrotic tumor tissues; In E, F the arrows showed apoptosis of tumor cells. Original magnification: ×200 |
空白对照组的H-E染色和TUNEL染色病理切片图中,细胞均为活性细胞,无肿瘤组织坏死, 无肿瘤细胞凋亡(图 4A、4D);药物对照组的H-E染色和TUNEL染色病理切片图中,大片肿瘤组织坏死(图 4B),可见凋亡细胞(图 4E);实验组的H-E染色和TUNEL染色病理切片图中,大片肿瘤组织坏死(图 4C),可见凋亡细胞,见凋亡细胞数量优于药物对照组(图 4F)。
3 讨 论本研究建立了药效学评价的兔肝肿瘤动物模型,并在DSA观测下对模型兔介入栓塞治疗,结合临床确立了动物模型给药方案,采用影像学和病理学方法评价治疗结果,发现实验组肿瘤组织大面积坏死,凋亡细胞数量优于药物对照组,空白对照组几乎无肿瘤组织坏死和肿瘤细胞凋亡,病理学与影像学评价结果基本一致。实验观察完成后,将3组实验动物处死,解剖发现空白对照组模型兔肿瘤已在腹腔大面积转移,腹水、肝硬化等严重;药物对照组肿瘤不同程度转移,有肝损伤和肝硬化现象;实验组肿瘤转移较少,有局部肝硬化。有文献报道,碘油可栓塞肿瘤组织的主要供血血管[7],阻断其血供,且碘油沉积越浓密、均匀,肿瘤坏死率越高[8]。本实验中将可显影碘化油和氟尿嘧啶用聚乳酸包裹,制成可显影碘化油-氟尿嘧啶聚乳酸微球,在治疗的同时便于对治疗效果跟踪观察,进而了解微球的栓塞部位,判断栓塞效果;同时微球的物理栓塞作用和缓释效果,还可延长药物的治疗周期、降低药物的毒副作用,提高患者的适应性和治疗依从性。实验结果表明,本实验自制的可显影碘化油-氟尿嘧啶聚乳酸微球,具有良好的肝癌治疗作用和显影效果,且作用时间更长,有利于临床使用,通过影像学可以实时了解肿瘤生长情况,从而评价治疗效果。
4 利益冲突所有作者声明本文不涉及任何利益冲突。
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