文章信息
- 周志, 林中祥
- ZHOU Zhi, LIN Zhong-xiang
- C60-脱异丙基脱氢枞胺衍生物的NMR光谱分析
- NMR Analysis of C60-Deisopropyldehydroabietylamine Derivative
- 波谱学杂志, 2016, 33(2): 345-352
- Chinese Journal of Magnetic Resonance, 2016, 33(2): 345-352
- http://dx.doi.org/10.11938/cjmr20160216
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文章历史
收稿日期: 2015-08-02
修订日期: 2016-04-13
DOI:10.11938/cjmr20160216
2. 南京林业大学 化学工程学院, 江苏 南京 210037
2. College of Chemical Engineering, Nanjing Forestry University, Nanjing 210037, China
脱氢枞胺是松香的重要改性产品之一,是歧化松香胺的主要成分,是一种具有三环二萜结构的光学活性碱.C60具有独特的碳笼结构,在化学反应中表现缺电子烯烃性质[1],可发生各种环加成反应[2-4].C60与松香类化合物发生环加成反应可生成多种功能性富勒烯衍生物[5-11].近期,我们以脱氢枞胺为起始原料,通过C-7位氧化产物与对甲苯磺酰肼反应生成酰腙而得到碳烯中间体,再与C60发生1,3-偶极环加成反应,合成了新化合物N,N-四氯邻苯二甲酰基-13-硝基-7,7-C60-脱异丙基脱氢枞胺[12](化合物1如图 1所示).目前,有关C60-脱异丙基脱氢枞胺衍生物的研究很少,特别是C60-脱异丙基脱氢枞胺衍生物结构的NMR归属尚未见文献报道.本文利用1H-1H COSY和ROESY,1H-13C HSQC和1H-13C HMBC等2D NMR技术对该化合物的1H和13C NMR信号进行了解析和谱峰归属,为表征类似化合物的分子结构提供了借鉴.
1 实验部分 1.1 仪器及试剂1D和2D NMR实验均在Bruker AVANCE 500型NMR波谱仪上进行.N,N-四氯邻苯二甲酰基-13-硝基-7,7-C60-脱异丙基脱氢枞胺按文献[12]的方法合成,分子式为C85H20N2O4Cl4.利用基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱测得其分子量为1 274.1(基质:a-氰基-羟基肉桂酸,负离子检测模式).原料岐化松香胺(含脱氢枞胺70%),广西桂林化工厂;C60,河南濮阳市永新化学试剂公司;其余试剂均为分析纯.
1.2 测试条件样品溶于CDCl3,以TMS为内标,1H和13CNMR的工作频率分别为500.13 MHz和125.76 MHz,谱宽分别为10 330.58 Hz和29 761.90 Hz.2D NMR实验包括1H-13C HMBC、1H-13C HSQC、1H-1H COSY和1H-1H ROESY,均采用标准脉冲序列.1H-1H COSY的F2 (1H)和F1 (1H)维的谱宽均为6 251.63 Hz,采样数据点阵t2 × t1 = 1 024×256;ROESY的F2 (1H)和F1 (1H)维的谱宽均为6 251.63 Hz,采样数据点阵t2 × t1 = 2 048× 256;HSQC谱的F2 (1H)和F1 (13C)维的谱宽分别为6 251.63 Hz和22 636.80 Hz,采样数据点阵t2×t1 = 2 048×256;HMBC谱的F2 (1H)和F1 (13C)维的谱宽分别为6 251.63 Hz和22 636.80 Hz,采样数据点阵t2×t1 = 4 096×256.
2 结果与讨论 2.1 化合物1的1H NMR归属在1H NMR谱(表 1)中,根据化学位移、峰形及耦合常数可以直接确认芳香环上质子.处在低场区域的dH7.68 (1H,d,J = 8.7 Hz)、9.48 (1H,d,J = 2.5 Hz)、8.28 (1H,dd,J = 8.6,2.4 Hz)可分别归属为芳环上的H-11、H-14、H-12.
No | dC | dH (J/Hz) | COSY | ROESY | HSQC | HMBC |
1 | 39.4 | 2.44 (1H,br d,12.4,H-1b) 1.77 (1H,td,12.3、4.4,H-1a) | H-1a,2 H-1b,2 | H-17,11,2,1a H-5,11,1b,3a | + | H-17,5 |
2 | 18.0 | 1.83~1.90 (2H,m) | H-3b,3a,1b,1a | H-16,3b,1b | + | / |
3 | 37.1 | 1.64 (1H,br d,13.2,H-3b) 1.48 (1H,td,12.8、4.9,H-3a) | H-3a,2 H-3b,2 | H-16,2,15b,3a H-5,15a,3b,1a | + | H-16,15a,15b |
4 | 41.0 | / | / | / | / | H-16,5,6b,15b,15a |
5 | 47.8 | 1.91 (1H,dd,10.6、9.3) | H-6b,6a | H-H-3a,1a,6a,15a | + | H-17,16,3b,15a, H-15b,6b,6a,1a |
6 | 27.8 | 3.67 (1H,dd,14.2、10.4,H-6b) 3.53 (1H,dd,14.3,8.9,H-6a) | H-5,6a H-5,6b | H-16,17,6a,15b H-5,6b,15b,15a | + | H-5 |
7 | 42.4 | / | / | / | / | H-6a,6b,14,11 |
8 | 134.5 | / | / | / | / | H-6b,11 |
9 | 160.3 | / | / | / | / | H-14,12,17,5 |
10 | 39.8 | / | / | / | / | H-17,5,6a,2,11 |
11 | 122.7 | 7.68 (1H,d,8.7) | H-12 | H-1b,1a,12,17 | + | / |
12 | 123.1 | 8.28 (1H,dd,8.6、2.4) | H-11,14 | H-11 | + | H-14 |
13 | 145.3 | / | / | / | / | H-14,12,11 |
14 | 124.6 | 9.48 (1H,d,2.5) | H-12 | / | + | H-12 |
15 | 50.1 | 3.83 (1H,d,13.9,H-15b) 3.64 (1H,d,13.9,H-15a) | H-15a H-15b | H-16,3b,6a,6b H-5,3a,6a | + | H-16,5 |
16 | 19.2 | 1.34 (3H,s) | / | H-17,6b,15b,2,3b | + | H-5,3a,15a,15b |
17 | 21.9 | 1.90 (3H,s) | / | H-16,1b,6b,11 | + | H-5,1a |
18 | 83.7 | / | / | / | / | H-6a,6b |
19 | 76.5 | / | / | / | / | H-6a |
1',6' | 129.8 | / | / | / | / | / |
2',5' | 127.4 | / | / | / | / | / |
3',4' | 140.4 | / | / | / | / | / |
7',8' | 164.5 | / | / | / | / | H-15a,15b |
C60 | 149.0~137.8 | / | / | / | / | / |
在高场区域,有dH3.83 (1H,d,J = 13.9 Hz)、3.64 (1H,d,J = 13.9 Hz)两个双峰(d)和dH3.67 (1H,dd,J = 14.2,10.4 Hz)、3.53 (1H,dd,J = 14.3,8.9 Hz)、1.91 (1H,dd,J = 10.6,9.3 Hz)三个双重双峰(dd)(表 1).在HSQC谱(图 2)中,由于dH3.83、3.64都与dC50.1相关,dH3.67、3.53都与dC27.8相关,因此,dH3.83、3.64归属为H-15 (H-15b或H-15a),dH3.67、3.53归属为H-6 (H-6b或H-6a).dH1.91与H-6在COSY谱(图 3)中相关,归属为H-5.在ROESY谱(图 4)中,dH3.64、3.53与H-5信号相关,而dH3.83、3.67与H-5没有相关信号,因此,dH3.64、3.53分别归属为H-15α和H-6a,dH3.83、3.67分别归属为H-15b和H-6b.
dH1.34和dH1.90两个单峰(s)为两个甲基质子信号峰(表 1).在ROESY谱中,dH1.34与dH1.90、H-6b、H-15b均相关,而dH1.90与dH1.34、H-6β、H-11均相关,因此,dH1.34归属为H-16,dH1.90归属为H-17.
最后,dH2.44 (1H,br d,J = 12.4 Hz)、1.64 (1H,br d,J = 13.2 Hz)两个宽双峰(brd)和dH1.77 (1H,td,J = 12.3,4.4 Hz)、1.48 (1H,td,J = 12.8,4.9 Hz)二个三重双峰(td)以及dH1.83~1.90 (2H,m)一个多重峰(m)为剩余的三个亚甲基上质子的信号(表 1).
HSQC谱中,dH2.44、1.77与dC39.4相关,同时在ROESY谱中,dH2.44与H-17、H-11、H-2、dH1.77相关,dH1.77与H-5、H-11、dH2.44、1.48相关,故dH2.44(宽双峰)被归属为H-1b,dH1.77(td)被归属为H-1a.同样,HSQC谱中,dH1.64、1.48与dC37.19相关,而在ROESY谱中,dH1.64与H-16、H-2、H-15b、dH1.48相关,dH1.48与H-5、H-15a、H-1a、dH1.64相关,故dH1.64(宽双峰)被归属为H-3b,dH1.48(td)被归属为H-3a.所以dH1.83~1.90被归属为H-2.在COSY谱中,dH1.83~1.90与dH2.44、1.64、1.77、1.48均相关,这进一步证明了H-2归属的正确性.
2.2 化合物1的13CNMR归属化合物1的分子式为C85H20N2O4Cl4,分子中含有85个碳原子,在13CNMR谱 (图 5)中呈现66个碳信号峰.
在13CNMR谱(表 1)中,处于低场的dC164.5可直接被归属为两个等价的酰胺羰基碳C-7'和C-8'[13],这一归属也从HMBC谱(图 6)中dC164.5与H-15b、H-15α的交叉峰得到证实.同时,dC127.4、129.8、140.4被归属为四氯邻苯二甲酰基苯环上的碳原子[14].苯环上C-3'和C-4'在甲酰基的对位,且与氯原子直接相连,去屏蔽效应最强,化学位移向低场位移最大;而C-1'和C-6'与甲酰基直接相连,化学位移亦向低场移动,故dC140.4、129.8被分别归属为C-3'和C-4'、C-1'和C-6',剩余的dC127.4归属为C-2'和C-5'.
在HSQC谱(图 2)中,dC19.2、21.9分别与H-16、H-17相关,故被归属为C-16、C-17两个甲基碳原子;dC18.0与H-2,dC39.4与H-1b、H-1α,dC37.1与H-3β、H-3α,dC27.8与H-6b、H-6a,dC50.1与H-15b、H-15a的交叉峰表明dC18.0、39.4、37.1、27.8、50.1分别为C-2、C-1、C-3、C-6、C-15五个亚甲基碳原子;从dC47.8与H-5的交叉峰可判定dC47.8为次甲基C-5;同样,由于dC122.7、123.1、124.6分别与H-11、H-12、H-14相关,被分别归属为芳香碳原子C-11、C-12、C-14.
在HMBC谱中,dC41.0与H-16、H-5、H-15a、H-15b、H-6b,dC134.5与H-6b、H-11,dC160.3与H-14、H-12、H-17、H-5,dC39.8与H-17、H-5、H-6a、H-2、H-11,dC145.3与H-14、H-12、H-11存在远程相关,所以dC41.0、134.5、160.3、39.8、145.3被分别归属为C-4、C-8、C-9、C-10、C-13五个季碳原子.另外,dC 42.4与H-6a、H-6b、H-14、H-11,dC83.7与H-6a、H-6b,dC76.5与H-6a存在远程相关,因此dC42.4被归属为C-7,dC83.7、76.5被归属为C60上sp3杂化的桥头碳原子C-18或C-19[15].脱异丙基脱氢枞胺的三个六元环中,与C60相连的六元环为半椅式构象,C-6在环平面的里侧(a位),H-6在空间上接近C-19.由于立体效应,使C-19的电子云密度增加,增大屏蔽效应,化学位移向高场移动,故dC76.5归属为C-19,dC 83.7归属为C-18.
13CNMR谱(图 5)中,在dC149.0~137.8区域,除去已归属的dC140.4 (C-3'、C-4')和dC145.3 (C-13),剩余的43个季碳原子的NMR信号被归属为C60上sp2杂化碳原子.除开桥头两个碳原子C-18、C-19,C60上还有58个碳原子,但谱图中只有43个碳原子共振信号,从13CNMR谱看,在dC 145.3、144.8、143.1、142.2、142.2、142.2处峰强度较大,说明C60上部分碳原子信号已发生重合.
3 结论该论文综合运用1D和2D NMR技术,解析并归属了N,N-四氯邻苯二甲酰基-13-硝基-7,7-C60-脱异丙基脱氢枞胺分子结构的1H和13C NMR信号,为表征类似化合物的结构提供了借鉴和参考.
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