肿瘤防治研究  2021, Vol. 48 Issue (5): 464-469
本刊由国家卫生和计划生育委员会主管,湖北省卫生厅、中国抗癌协会、湖北省肿瘤医院主办。
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文章信息

MFG-E8对卵巢癌SKOV3细胞顺铂敏感度的影响及分子机制
Effect and Molecular Mechanism of MFG-E8 on Sensitivity of Ovarian Cancer SKOV3 Cells to Cisplatin
肿瘤防治研究, 2021, 48(5): 464-469
Cancer Research on Prevention and Treatment, 2021, 48(5): 464-469
http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2021.20.1012
收稿日期: 2020-08-31
修回日期: 2021-03-12
MFG-E8对卵巢癌SKOV3细胞顺铂敏感度的影响及分子机制
李娜1 ,    代聪伟2 ,    杨艳艳2 ,    魏强3 ,    邱刚1 ,    吴小华4     
1. 050051 石家庄,河北省人民医院肿瘤科;
2. 050051 石家庄,河北省人民医院妇科;
3. 050051 石家庄,河北省人民医院核医学科;
4. 050082 石家庄,石家庄妇产医院生殖医学中心
摘要: 目的 探讨沉默MFG-E8基因对SKOV3细胞抗癌药物敏感度的影响及其相关机制。方法 小干扰技术沉默卵巢癌SKOV3细胞中MFG-E8基因并对干扰效率进行测定。CCK-8检测转染MFG-E8 siRNA后SKOV3细胞对顺铂的敏感度。qRT-PCR检测MFG-E8基因沉默后多重耐药蛋白ABCB1及ABCC1 mRNA的表达,qRT-PCR及Western blot检测沉默MFG-E8对ETM相关蛋白的影响。结果 MFG-E8 siRNA可有效沉默MFG-E8蛋白水平的表达;不同浓度顺铂作用于MFG-E8 siRNA转染组与阴性对照组NC siRNA两组细胞48 h后,随药物浓度增高,两组细胞增殖抑制率均上升,MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖抑制率上升较明显(P < 0.01)。3 μg/ml顺铂浓度作用于两组细胞48、72 h后,与阴性对照组相比,MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖活性明显受到抑制(P < 0.05)。qRT-PCR结果显示,MFG-E8 siRNA转染组中ABCB1及ABCC1 mRNA表达均明显降低。qRT-PCR及Western blot结果显示,沉默MFG-E8基因可下调SKOV3细胞中N-Cadherin、Vimentin、Snail mRNA及蛋白的表达,上调E-Cadherin mRNA及蛋白表达。结论 沉默MFG-E8基因可增加SKOV3细胞对顺铂的敏感度,下调多重耐药蛋白ABCB1及ABCC1 mRNA表达,其机制可能与沉默MFG-E8抑制EMT进程有关。
关键词: 卵巢癌    MFG-E8    顺铂耐药    耐药基因    EMT    
Effect and Molecular Mechanism of MFG-E8 on Sensitivity of Ovarian Cancer SKOV3 Cells to Cisplatin
LI Na1 , DAI Congwei2 , YANG Yanyan2 , WEI Qiang3 , QIU Gang1 , WU Xiaohua4     
1. Department of Oncology, Hebei General Hospital, Shijiazhuang 050051, China;
2. Department of Gynecology, Hebei General Hospital, Shijiazhuang 050051, China;
3. Department of Nuclear Medicine, Hebei General Hospital, Shijiazhuang 050051, China;
4. Reproductive Medicine Center, Shijiazhuang Obstetric and Gynecology Hospital, Shijiazhuang 050082, China
Abstract: Objective To investigate the effect of silencing MFG-E8 gene on the sensitivity of SKOV3 cells to anticancer drugs and related mechanisms. Methods SKOV3 cells were transfected with MFG-E8 siRNA (Msi) and NC siRNA (Csi), respectively and the efficiency of transfection was confirmed by Western blot. The sensitivity of SKOV3 cells to cisplatin was observed by CCK-8 assay after transfection. The mRNA expression of ABCB1 and ABCC1 were detected by qRT-PCR. Effect of silencing MFG-E8 on the expression of ETM-related protein was detected by qRT-PCR and Western blot. Results MFG-E8 siRNA could effectively silence the expression of MFG-E8 protein. With the increasing drug concentration, the proliferation inhibition rate of each group also increased, and the cell proliferation inhibition rate of MFG-E8 siRNA group increased significantly (P < 0.01). Compared with NC siRNA group, downregulation of MFG-E8 expression led to decreased SKOV3 cell proliferation at 48h or 72h after 3 μg/ml cisplatin treat ment (P < 0.05). qRT-PCR results showed that the mRNA expression of ABCB1 and ABCC1 in Msi group were significantly lower than those in Csi group. qRT-PCR and Western blot results showed that silencing MFG-E8 gene down-regulated the mRNA and protein expression of N-Cadherin, Vimentin and Snail and up-regulated the expression of E-Cadherin. Conclusion Silencing the MFG-E8 gene can increase the sensitivity of SKOV3 cells against anti-tumor drugs and down-regulate the mRNA expression of ABCB1 and ABCC1, which may be related to the inhibition of EMT progression.
Key words: Ovarian cancer    MFG-E8    Platinum resistance    Drug resistance gene    EMT    
0 引言

卵巢癌是一个突出的公共卫生问题,尽管其发病率在女性生殖系统恶性肿瘤中低于宫颈癌及子宫内膜癌,但死亡率占据妇科恶性肿瘤之首[1]。根据世界卫生组织的统计,每年新增病例约225 500例,卵巢癌死亡的病例约140 200例左右[2]。1980年以来,卵巢癌的5年总生存率仍低于30%,未见明显改善[3]。因此探讨卵巢癌的发病机制,寻找新的治疗策略,成为女性健康领域的重大诉求。

乳脂肪球表皮生长因子8(milk fat globule-EGF factor 8, MFG-E8),又称为乳凝集素,是一种分泌型糖蛋白,由MFG-E8基因编码[4],其在许多生理和病理过程中发挥重要作用,如吞噬作用、动脉粥样硬化的发病机制、血管生成、免疫保护以及其他[5-8]。已有研究证实MFG-E8在多种肿瘤中高表达,并可促进肿瘤细胞的增殖和侵袭等[9-13],但MFG-E8在卵巢癌中的研究较少[14]。前期实验中,我们已经证实沉默MFG-E8可抑制上皮性卵巢癌细胞增殖、影响细胞周期分布、迁移、黏附、侵袭等生物学特性,并对其相关机制进行了探讨。有研究显示在肿瘤干细胞标记阳性的黑素瘤、乳腺癌以及非小细胞肺癌细胞株中证实MFG-E8可激活Stat3和Sonic Hedgehog信号途径,与IL-6协同增强其抗癌药耐药性[15],但其对于卵巢癌细胞化疗抵抗的影响尚不明确。本研究通过探讨沉默MFG-E8基因对卵巢癌SKOV3细胞顺铂药物敏感度的影响及其相关作用机制,为上皮性卵巢癌靶向治疗提供新思路。

1 材料与方法 1.1 材料

SKOV3细胞购自中科院上海细胞库。引物由上海生工合成,MFG-E8 siRNA及NC siRNA由江苏吉玛生物公司构建并合成。RPMI 1640培养基、胎牛血清均购自美国Gibco公司、细胞培养瓶和多孔培养板均购自美国Corning公司、CCK-8增殖试剂盒购自美国MCE公司、E-cadherin兔抗人单克隆抗体、N-cadherin兔抗人单克隆抗体、Vimentin兔抗人单克隆抗体、Snail+Slug兔抗人多克隆抗体以及GAPDH兔抗人单克隆抗体均购自美国Abcam公司、蛋白酶抑制剂、BCA检测试剂盒、ECL化学发光检测试剂盒均购自武汉塞维尔公司。Lipofectamine™2000购自美国Invitrogen公司、反转录聚合酶链反应(RT-PCR)试剂盒购于日本TaKaRa公司、顺铂购自山东齐鲁药业有限公司(H20073653)。

1.2 细胞培养及转染

SKOV3细胞用含10%胎牛血清的RPMI1640培养基中,在37℃、5%CO2饱和湿度条件下常规培养,1~2天换液一次。

MFG-E8 siRNA以及阴性对照siRNA(NC siRNA)序列如下:MFG-E8 siRNA#1:正义(5’-3’)GAUUUCCCAAGAAGUGCGATT,反义(5’-3’)UCGCACUUCUUGGGAAAUCTT;MFG-E8 siRNA#2:正义(5’-3’)GGACACGAAUU-CGAUUUCATT,反义(5’-3’)UGAAAUCGAAUUCGUGUCCTT;MFG-E8 siRNA#3:正义(5’-3’)GGCCUGAAGAAUAACAGCATT,反义(5’-3’)UGCUGUUAUUCUUCAGGCCTT;NC siRNA:正义(5’-3’)UUCUUCGAACGUGUCACGUTT,反义(5’-3’)ACGUGACACGUUCGGAGAATT。转染前一天,用胰酶消化细胞并计数,将细胞铺入六孔板中,使转染时细胞汇合度达到50%~70%,此时用不含抗生素的培养基进行培养,第二天进行细胞转染。转染步骤参考Lipofectamine™2000的试剂说明进行。步骤如下:(1)分别将2 μg NC siRNA或转染组MFG-E8 siRNA #1、#2、#3、5 μl LipofectamineTM2000溶于250 μl Opti-MEMⅠ培养基中,室温孵育5 min。(2)将上述siRNA与Lipofectamine™2000混合,室温下继续孵育20 min。(3)将500 μl上述混合物分别加入各孔细胞中,轻轻混悬。转染6~8 h后更换含10%血清的完全培养基继续培养至48 h。收集细胞用于后续的研究。

1.3 MFG-E8 siRNA转染对细胞的顺铂药物毒性影响

取对数生长期的SKOV3细胞,常规胰酶消化,离心后用RPIM 1640培养基(含10%胎牛血清)重悬为单细胞悬液,计数板计数后,按每孔1×105个/孔接种于6孔板内,每组设6个复孔,置于5%CO2、37℃的培养箱内培养24 h,第二天用NC siRNA和MFG-E8 siRNA分别转染细胞。于转染后24 h,分别加入使用浓度为0、1.5、3、4.5、6、7.5、9、10.5 μg/ml顺铂作用于各组细胞,继续置于培养箱内培养48 h后,每孔加入CCK-8试剂10 μl,孵育2 h,应用酶标仪于450 nm波长处测定吸光度值(OD),根据以下公式计算细胞相对增殖抑制率。

相对增殖抑制率(%)=1-[(实验孔OD值-空白孔OD值)/(对照孔OD值-空白孔OD值)]×100%。本研究空白孔为单纯培养基。GraphPad Prism 5.0统计软件计算各组细胞顺铂注射液的IC50,选取适宜的药物浓度进行后续试验。

1.4 CCK-8检测MFG-E8 siRNA转染后细胞对顺铂的反应

取SKOV3细胞单细胞悬液,计数后将1×105个/孔细胞均匀接种于96孔板中。贴壁12 h后,用NC siRNA和MFG-E8 siRNA转染细胞,方法同前,每组设6个复孔。转染后24 h,分别加入顺铂(药物浓度为上述实验中检测顺铂对阴性对照组细胞的IC50值)继续培养。分别在加药24、48和72 h后,每孔加入10 μl CCK-8,继续培养2 h,利用多功能酶标仪测定各个孔在450 nm处的OD值。

1.5 实时荧光定量PCR实验

按照TRIzol试剂盒说明书提取细胞总RNA,并对所提取的RNA完整性鉴定和定量,反转录合成cDNA,SYBR®GreenⅠ行Real-time PCR检测,50℃适应2 min,94℃预变性5 min,94℃变性15 s,60℃复性、延伸45 s,循环40次。每次延伸前读板。95℃反应10 min后作溶解曲线分析。以GAPDH作为内参基因,分析目的基因的mRNA相对表达量。

1.6 Western blot实验

加入细胞蛋白裂解液提取细胞总蛋白,测定蛋白浓度,SDS-聚丙烯酰氨凝胶电泳,湿转法电转印蛋白质至PVDF膜,将PVDF膜放入5%脱脂牛奶封闭液中,封闭2 h,将膜放置于含有一抗的稀释液中,4℃过夜,加入二抗(1:500)室温孵育2 h,将等体积的化学发光试剂A和B混匀后与PVDF膜共孵育1 min,应用Image Quant LAS 4000凝胶成像系统进行显色,Gelpro4.0软件分析条带灰度值,蛋白相对表达量=待检样品蛋白的灰度值/内参的灰度值。

1.7 统计学方法

所有实验结果均采用均数±标准差(x±s)表示,GraphPad Prism5.0统计软件处理,t检验对数据进行统计分析,P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 沉默MFG-E8基因转染效率测定结果

分别将NC siRNA及MFG-E8 siRNA转染SKOV3细胞中,于转染后48 h收集细胞检测MFG-E8 siRNA的干扰效率,Vehicle(溶剂组)只加转染试剂LipofectamineTM2000。

Western blot结果显示,MFG-E8蛋白的表达在MFG-E8 siRNA#3中明显低于MFG-E8 siRNA#1、MFG-E8 siRNA#2以及组Vehicle组和NC siRNA组细胞,其中NC siRNA组相对蛋白量为0.85±0.106,MFG-E8 siRNA组相对蛋白量为0.28±0.079(P=0.0003),见图 1。上述结果表明所用MFG-E8 siRNA#3序列可以有效干扰MFG-E8的表达,阴性序列对MFG-E8蛋白表达无明显影响,因此应用MFG-E8 siRNA#3(Msi)及NC siRNA(Csi)完成后续试验。

Csi: NC siRNA group; Msi: MFG-E8 siRNA group. 图 1 转染后48 h各组细胞中MFG-E8蛋白的表达 Figure 1 Expression of MFG-E8 protein in SKOV3 cells after MFG-E8 siRNA transfection for 48h
2.2 CCK-8检测MFG-E8 siRNA转染对SKOV3细胞顺铂毒性的影响

不同浓度的顺铂作用于两组细胞48 h后结果显示,随着药物浓度的增高,两组细胞的增殖抑制率均有上升,MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖抑制率上升较明显(P=0.0001),见图 2A。GraphPad Prism 5.0统计软件计算顺铂对两组细胞的IC50,MFG-E8 siRNA转染组(3.308±1.75)明显低于对照组(1.934±0.06),差异有统计学意义(P=0.0002)。

A: cell growth rate was evaluated using CCK-8 assay in SKOV3 cells transfected with MFG-E8 siRNA(Msi) or NC siRNA(Csi), followed by different concentration of Casplatin treatment for 48h respectively; B: cell growth rate was evaluated using CCK-8 assay in SKOV3 cells transfected with MFG-E8 siRNA(Msi) or NC siRNA(Csi), followed by 3μg /ml Casplatin treatment for 24h, 48h and 72h, respectively. 图 2 CCK-8检测顺铂对两组SKOV3细胞的毒性反应 Figure 2 Toxicities reaction of cisplatin in two groups of SKOV3 cells detected by CCK-8

据所测阴性对照组的IC50,将3 μg/ml顺铂浓度作用于两组细胞,检测不同时间后两组细胞对顺铂的敏感度变化。结果表明,处理48、72 h后,可见MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖活性显著低于阴性对照组,见图 2B表 1

表 1 FG-E8 siRNA转染联合顺铂(3 μg/ml) 对细胞增殖的影响 Table 1 Influence of MFG-E8 siRNA t ransfection combined with casplatin (3μg/ml) on proliferation of SKOV3 cells
2.3 qRT-PCR检测MFG-E8 siRNA对多重耐药蛋白ABCB1、ABCC1 mRNA水平表达的影响

结果显示,与阴性对照组相比,MFG-E8 siRNA转染组中ABCB1及ABCC1 mRNA表达均明显降低,差异有统计学意义(P=0.0059, P=0.0206),见图 3

图 3 qRT-PCR检测两组细胞中耐药基因ABCB1、ABCC1 mRNA相对表达水平 Figure 3 ABCB1 and ABCC1 mRNA expression in SKOV3 cells of two groups detected by qRT-PCR
2.4 MFG-E8 siRNA对SKOV3细胞中EMT进程的影响

Csi与Msi组中N-Cadherin mRNA表达量分别为1.01±0.073和0.72±0.086,差异有统计学意义(P=0.002),Snail mRNA表达量分别为1.06±0.072和0.71±0.032,差异有统计学意义(P=0.000);Vimentin mRNA相对表达量分别为1.03±0.181和0.60±0.122,差异有统计学意义(P=0.0469);E-Cadherin mRNA相对表达量分别为0.92±0.087和1.69±0.2371,差异有统计学意义(P=0.001)。说明沉默MFG-E8基因可下调N-Cadherin、Vimentin、Snail mRNA的表达,上调E-Cadherin mRNA表达,见图 4

图 4 qRT-PCR检测转染MFG-E8 siRNA对SKOV3细胞中EMT的影响 Figure 4 Effect of MFG-E8 siRNA transfection on EMT in SKOV3 cells detected by qRT-PCR

Western blot检测结果显示,Csi组与Msi组N-Cadherin蛋白的相对表达量为0.67±0.03和0.47±0.013,差异有统计学意义(P=0.020);snail+slug蛋白相对表达量分别为0.33±0.02和0.12±0.017,差异有统计学意义(P=0.0002);Vimentin蛋白相对表达量分别为0.53±0.081和0.27± 0.062,差异有统计学意义(P=0.0258);E-Cadherin蛋白相对表达量分别为0.27±0.033和0.61±0.034,差异有统计学意义(P=0.0085)。结果表明,沉默MFG-E8可降低SKOV3细胞中N-Cadherin、Vimentin、Snail+Slug蛋白的表达,上调E-Cadherin蛋白表达,见图 5

图 5 Western blot检测转染MFG-E8 siRNA对SKOV3细胞中EMT相关蛋白表达的影响 Figure 5 Effect of MFG-E8 siRNA transfection on expression of EMT-related proteins in SKOV3 cells detected by Western blot
3 讨论

尽管随着治疗技术的进展,手术及联合放化疗等治疗手段广泛应用于临床,但中晚期的上皮性卵巢癌患者病死率仍无明显改善。卵巢癌在女性生殖系统恶性肿瘤中死亡率最高,其恶性进展的特征包括:腹腔内肿瘤细胞的扩散,大量腹水的快速形成,肿瘤血管的形成[16]。认识卵巢癌的发病机制,寻找更有效的治疗方案,是关乎女性健康的一大挑战。

MFG-E8可从各种类型的细胞中分泌,包括乳腺上皮细胞、巨噬细胞和未成熟的树突细胞,并通过与吞噬细胞上的αVβ3整合素结合来介导凋亡细胞的有效吞噬作用[17-18],已有研究证实MFG-E8可促进肿瘤增殖、侵袭[5, 9]

化疗是上皮性卵巢癌的主要治疗手段之一,尤其是对中晚期患者来说。本研究进一步检测了MFG-E8 siRNA转染对SKOV3细胞顺铂毒性反应以及联合顺铂处理对细胞增殖的影响。结果显示,随着药物浓度的增高,各组细胞的增殖抑制率上升,MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖抑制率上升明显,当顺铂浓度达到7.5 μg/ml以上时,两组细胞OD值趋于接近,参考顺铂对阴性对照组细胞的IC50,设定药物浓度为3 μg/ml作用于两组细胞,测不同的时间点(24、48、72 h)对抗肿瘤药物敏感度的变化。结果显示处理48、72 h后,MFG-E8 siRNA转染组细胞增殖活性显著低于阴性对照联合顺铂处理组细胞。提示MFG-E8参与了卵巢癌耐药的发生过程。

虽然一线化疗(铂类联合)对大多数卵巢癌患者在初始治疗时疗效显著,但大约70%的晚期卵巢癌患者会在治疗后复发,并最终因化疗耐药而导致死亡。有研究表明,MFG-E8可以促进肿瘤细胞对化疗的耐药性[15],ABCB1(P-gp MDR1)以及ABCC1(MRP1)均属于为ATP结合盒(ATP binding cassette transporters)转运蛋白超家族成员,广泛分布于肿瘤组织内,与多重耐药相关[19]。研究发现,多重耐药分子机制复杂,涉及多个方面,如肿瘤细胞对化疗药物的摄取降低、排出增加、以及机体对药物代谢的改变、DNA损伤修复增强等,但其具体机制尚不明确。ATP结合盒转运蛋白具有“药泵”作用,它可以将化疗药物从肿瘤细胞内泵出,降低细胞内有效药物浓度,从而产生耐药。为进一步了解MFG-E8基因对多重耐药蛋白ABCB1及ABCC1的影响,我们用qRT-PCR检测MFG-E8 siRNA对ABCB1及ABCC1 mRNA表达变化,结果显示,与阴性对照组相比,MFG-E8 siRNA转染组中ABCB1及ABCC1 mRNA表达均明显降低。这表明沉默MFG-E8对顺铂的增敏作用可能是通过降低ABCB1及ABCC1表达产生。

越来越多的研究表明上皮间充质细胞转化(epithelial mesenchymal transtion, EMT)激活可促进肿瘤组织的侵袭、远处转移及肿瘤耐药[20-21]。EMT是指上皮性细胞失去细胞极性转化为间质细胞的过程,间充质细胞可表现出更高的侵袭性及迁移性等恶性表型[22]。EMT在各种病理过程中同样发挥着重要作用,包括伤口愈合、组织纤维化和癌症进展[20-21]。EMT被分为三型:1型EMT指在胚胎发育阶段上皮细胞转化为运动间充质细胞;2型涉及伤口愈合和组织再生;3型发生在上皮性肿瘤细胞中与肿瘤进展和转移密切相关[23]。EMT的形成体现在上皮性标志物E-cadherin蛋白表达降低,同时伴有N-cadherin、Vimentin、Snail及Slug蛋白表达升高[24]。本研究同时检测沉默MFG-E8基因表达在mRNA水平及蛋白水平对EMT进程的影响,结果显示MFG-E8 siRNA可上调E-cadherin表达,同时抑制N-cadherin、Vimentin、Snail及Slug表达,证实沉默MFG-E8基因可逆转SKOV3细胞中的EMT形成过程。我们的结果与MFG-E8在恶性黑色素瘤及结直肠癌中的作用研究结果一致[5, 25]

综上,本研究提示在沉默MFG-E8基因可以增加肿瘤细胞对化疗药物的敏感度,并下调多重耐药蛋白ABCB1及ABCC1 mRNA水平的表达,说明MFG-E8与化疗耐药相关,并且沉默MFG-E8可抑制EMT进程。这将为表达MFG-E8的卵巢癌的治疗提供新思路。

作者贡献:

李娜:实验设计、收集整理数据、统计分析及论文撰写

代聪伟、杨艳艳:实验技术支持

魏强、邱刚:收集并分析数据

吴小华:指导实验设计、审核数据、指导论文撰写与修改

参考文献
[1]
Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics, 2019[J]. CA Cancer J Clin, 2019, 69(1): 7-34. DOI:10.3322/caac.21551
[2]
Matulonis UA, Sood AK, Fallowfield L, et al. Ovarian cancer[J]. Nat Rev Dis Primers, 2016, 2: 16061. DOI:10.1038/nrdp.2016.61
[3]
周琦, 吴小华, 刘继红, 等. 卵巢恶性肿瘤诊断与治疗指南(第四版)[J]. 中国实用妇科与产科杂志, 2018, 34(7): 739-749. [Zhou Q, Wu XH, Liu JH, et al. Guidelines to the diagnosis and treatment of malignant ovary tumors (4th edition)[J]. Zhongguo Shi Yong Fu Ke Yu Chan Ke Za Zhi, 2018, 34(7): 739-749.]
[4]
Kamińska A, Enguita FJ, Stępień EŁ. Lactadherin: an unappreciated haemostasis regulator and potential therapeutic agent[J]. Vascul Pharmacol, 2018, 101: 21-28. DOI:10.1016/j.vph.2017.11.006
[5]
Jinushi M, Nakazaki Y, Carrasco DR, et al. Milk fat globule EGF-8 promotes melanoma progression through coordinated Akt and twist signaling in the tumor microenvironment[J]. Cancer Res, 2008, 68(21): 8889-8898. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-08-2147
[6]
Neutzner M, Lopez T, Feng X, et al. MFG-E8/lactadherin promotes tumor growth in an angiogenesis-dependent transgenic mouse model of multistage carcinogenesis[J]. Cancer Res, 2007, 67(14): 6777-6785. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-07-0165
[7]
Uchiyama A, Motegi SI, Sekiguchi A, et al. Mesenchymal stem cells-derived MFG-E8 accelerates diabetic cutaneous wound healing[J]. J Dermatol Sci, 2017, 86(3): 187-197. DOI:10.1016/j.jdermsci.2017.02.285
[8]
Ait-Oufella H, Kinugawa K, Zoll J, et al. Lactadherin deficiency leads to apoptotic cell accumulation and accelerated atherosclerosis in mice[J]. Circulation, 2007, 115(16): 2168-2177. DOI:10.1161/CIRCULATIONAHA.106.662080
[9]
Yamada K, Uchiyama A, Uehara A, et al. MFG-E8 Drive Melanoma Growth by Stumulating Mesenchymal Stromal Cell-Induced Angiogenesis and M2 Polarization of Tumor-Associated Macrophages[J]. Cancer Res, 2016, 76(14): 4283-4292. DOI:10.1158/0008-5472.CAN-15-2812
[10]
Fujiwara C, Motegi SI, Ohira A, et al. The significance of tumor cells-derived MFG-E8 in tumor growth of angiosarcoma[J]. J Dermatol Sci, 2019, 96(1): 18-25. DOI:10.1016/j.jdermsci.2019.08.005
[11]
Kanemura T, Miyata H, Makino T, et al. Immunoregulatory influence of abundant MFG-E8 expression by esophageal cancer treated with chemotherapy[J]. Cancer Sci, 2018, 109(11): 3393-3402. DOI:10.1111/cas.13785
[12]
Ko DS, KimSH, Park JY, et al. Milk Fat Globule-EGF Factor 8 Contributes to Progression of Hepatocellular Carcinoma[J]. Cancers(Basel), 2020, 12(2): 403.
[13]
Okamoto A, Sakakura K, Takahashi H, et al. Immunological and Clinicopathological Significance of MFG-E8 Expression in Patients with Oral Squamous Cell Carcinoma[J]. Pathol Oncol Res, 2020, 26(2): 1263-1268. DOI:10.1007/s12253-019-00692-3
[14]
Tibaldi L, Leyman S, Nicolas A, et al. New blocking antibodies impede adhesion, migration and survival of ovarian cancer cells, highlighting MFGE8 as a potential therapeutic target of human ovarian carcinoma[J]. PLoS One, 2013, 8(8): e72708. DOI:10.1371/journal.pone.0072708
[15]
Jinushi M, Chiba S, Yoshiyama H, et al. Tumor-associated macrop- hages regulate tumorigenicity and anticancer drug responses of cancer stem/initiating cells[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2011, 108(30): 12425-12430. DOI:10.1073/pnas.1106645108
[16]
Matulonis UA. Bevacizumab and its use in epithelial ovarian cancer[J]. Future Oncol, 2011, 7(3): 365-379. DOI:10.2217/fon.10.167
[17]
Li Y, Zou T, Xue L, et al. TGF-beta 1 enhances phagocytic removal of neuron debris and neuronal survival by olfactory ensheathing cells via integrin/MFG-E8 signaling pathway[J]. Mol Cell Neurosci, 2017, 85: 45-56. DOI:10.1016/j.mcn.2017.08.006
[18]
Wang Y, Luo G, Chen J, et al. Cigarette smoke attenuates phagocytic ability of macrophages through down-regulation Milk fat globule-EGF factor 8 (MFG-E8) expressions[J]. Sci Rep, 2017, 7: 42642. DOI:10.1038/srep42642
[19]
Chen Z, Shi T, Zhang L, et al. Mammalian drug efflux transporters of the ATP binding cassette (ABC) family in multidrug resistance: A review of the past decade[J]. Cancer Lett, 2016, 370(1): 153-164. DOI:10.1016/j.canlet.2015.10.010
[20]
Nieto MA, Huang RY, Jackson RA, et al. EMT: 2016[J]. Cell, 2016, 166(1): 21-45. DOI:10.1016/j.cell.2016.06.028
[21]
Shibue T, Weinberg RA. EMT, CSCs, and drug resistance: the mechanistic link and clinical implications[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2017, 14(10): 611-629. DOI:10.1038/nrclinonc.2017.44
[22]
Ye X, Weinberg RA. Epithelial-Mesenchymal Plasticity: A Central Regulator of Cancer Progression[J]. Trends Cell Biol, 2015, 25(11): 675-686. DOI:10.1016/j.tcb.2015.07.012
[23]
刘菊花, 何成诗. 骨桥蛋白调控上皮间质转化的研究进展[J]. 生理科学进展, 2020, 51(5): 353-356. [Liu JH, He CS. Research progress on molecular mechanism of osteopontin-regulated epithelial-mesenchymal transition[J]. Sheng Li Ke Xue Jin Zhan, 2020, 51(5): 353-356. DOI:10.3969/j.issn.0559-7765.2020.05.007]
[24]
Tan H, He Q, Gong G, et al. miR-382 inhibits migration and invasion by targeting ROR1 through regulating EMT in ovarian cancer[J]. Int J Oncol, 2016, 48(1): 181-190. DOI:10.3892/ijo.2015.3241
[25]
Zhao Q, Xu L, Sun X, et al. MFG-E8 overexpression promotes colorectal cancer progression via AKT/MMPs signalling[J]. Tumour Biol, 2017, 39(6): 1010428317707881.