文章信息
- FGF3和FGF10对人卵巢癌SKOV3细胞迁移和侵袭的影响及其与Wnt/β-catenin信号通路的关系
- Influences of FGF3 and FGF10 on Migration and Invasion of Human Ovarian Cancer SKOV3 Cells and Relation Between These Influences and Wnt/β-catenin Signaling Pathway
- 肿瘤防治研究, 2018, 45(12): 970-975
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2018, 45(12): 970-975
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2018.18.0484
- 收稿日期: 2018-04-13
- 修回日期: 2018-09-12
卵巢癌发病率居妇科恶性肿瘤第三位,但死亡率居妇科恶性肿瘤之首[1]。因其早期症状隐匿,缺乏有效的筛查手段,超过70%的患者就诊时已为晚期。目前,手术+铂类/紫杉醇联合化疗仍然是卵巢癌患者的主要治疗手段,但其复发率超过了85%。复发性卵巢癌耐药性明显增加,使用化疗药物缓解率不足30%,且化疗药物的不良反应限制了其使用剂量[2],因此,单纯依靠现有技术提高患者的生存率非常有限,需要探索更加有效的治疗方法。成纤维细胞生长因子(Fibroblast growth factor, FGFs)于大脑和垂体的组织提取物中首次发现,迄今在哺乳动物体内已经鉴别出22种[3]。FGF信号通路具有多种生物学功能,如参与胚胎发育、器官形成、损伤组织修复、血管生成,促进细胞分化、生存、增殖、迁移及侵袭等。异常的FGF信号可以通过促进肿瘤增殖、生存、抑制肿瘤凋亡、促进肿瘤细胞迁移、侵袭等多种途径参与肿瘤的发生发展[4]。近年来,大量研究发现在多种类型癌症中存在FGF3和FGF10的过表达,并且证实FGF3和FGF10参与肿瘤的发生发展[5-6]。而FGF3和FGF10在卵巢癌中研究甚少,因此本研究选取FGF3和FGF10作为研究的靶点,探讨其与卵巢癌的关系。鉴于文献报道癌症中激活的Wnt/β-catenin信号通路可以引起FGF信号通路的激活,且FGF20、FGF9等多个FGFs被证实是Wnt信号通路的靶基因[7-8],故本研究还探讨Wnt/β-catenin信号通路与FGF3、FGF10的相互关系,试图筛选出对卵巢癌的复发和预后有预测作用的指标,为卵巢癌的靶向治疗提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 细胞和主要试剂卵巢癌细胞株SKOV3由西安交通大学第一附属医院转化医学中心提供,小干扰RNA购自上海吉玛公司,RPMI 1640购自美国Gibco公司,胰蛋白酶购自美国Sigma公司,新生小牛血清购自杭州四季青生物工程材料有限公司,FGF3/10多克隆抗体购自北京博奥森生物技术有限公司,GAPDH单克隆抗体购自北京康为世纪生物科技有限公司。
1.2 细胞培养人卵巢癌细胞株SKOV3常规培养在含100 ml/L小牛血清的RPMI1640培养基中,培养条件为37℃、5%CO2饱和湿度,待细胞长满瓶底时,2.5 g/L胰蛋白酶消化传代。当细胞达到对数生长期时,进行实验。
1.3 FGF3/10 siRNA的构建与转染siRNA表达载体由上海吉玛生物有限公司合成,FGF3 siRNA两条:分别为siRNA-858序列:5’-GCUGGGCUAUAAUACGUAUTT-3’;siRNA-706序列:5’-CCUACAGUAUUUUGGAGAUTT-3’。FGF10 siRNA两条:分别为siRNA-230序列:5’-CGCUGGAGAAAGCUAUUCUTT-3’;siRNA-410序列:5’-GGGAAACUCUAUGGCUCAATT-3’。阴性对照(siRNA-NC)序列为:5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’。严格按照LipofectamineTM2000试剂说明书进行转染。将培养至对数生长期的细胞以3×105个/孔接种于六孔板,细胞过夜贴壁,使其生长至50%左右的融合度。转染当天换为2 ml无血清培养基。100 μl无血清培养基中分别加入15 μl siRNA和7 μl LipofectamineTM 2000,室温静置5 min后混合,室温静置20 min。将上述混合物加入六孔板中,轻轻混匀,继续培养48 h或72 h。荧光显微镜下观察转染效率。转染效率达70%为转染成功,可进行下一步实验。
1.4 Real-time PCR检测mRNA表达Trizol法提取细胞总RNA, 测定RNA浓度与纯度,按试剂盒说明书将mRNA反转录为cDNA。在ABI7300荧光定量PCR仪上进行检测。反应条件为:95℃ 30 s,95℃ 5 s,60℃ 30 s,40个循环,用2-ΔΔCt法[5]计算基因相对表达水平。实验重复3次。
1.5 Western blot检测蛋白表达裂解提取细胞总蛋白,采用BCA蛋白质定量试剂盒测定总蛋白浓度,煮沸5 min使蛋白变性,12%的SDS-PAGE电泳分离后,湿转到硝酸纤维素膜上,将膜置于50 g/L脱脂奶粉中室温封闭1h,再以含5%脱脂奶粉的TBST稀释的一抗(GAPDH:1:1 000;FGF3:1:200;FGF10:1:200)封闭NC膜,4℃过夜。TBST洗膜8 min×5次,再与辣根酶标记的羊抗鼠二抗按1:2 000室温孵育2 h,TBST洗膜后,ECL显色,使用Image-Lab软件进行成像扫描记录。蛋白表达以光密度表示,以目的蛋白/GAPDH比值来表示蛋白的相对表达量, Image-Lab软件对结果进行分析并拍照。
1.6 Transwell法检测细胞迁移将Millicell小室放入24孔板内,向每个小室中加入200 μl不含血清的细胞悬液,使细胞数达到3×105个/小室;向Millicell小室下室中加入600 μl含20%胎牛血清的RPMI1640培养基;37℃、5%CO2培养箱中培养48 h后,取出细胞,用镊子夹出小室,移至另一含有600 μl 1×PBS的孔内浸泡3 min,取出小室,用棉签小心擦去微孔膜上层细胞。如此洗涤3次。再将小室放入70%甲醇中室温固定30 min,同上用1×PBS洗涤三遍;将小室移入含600 μl 0.1%结晶紫的孔内,室温染色30 min;用棉签擦拭小室内侧,室温晾干;在10倍视野下,随机选取5个视野,显微镜下计数穿膜细胞数,取其平均值,实验重复三次。
1.7 Transwell法检测细胞侵袭Transwell小室中加入以无血清RPMI1640培养基稀释的Matrigel,37℃静置4~6 h,待胶凝固,向每个小室中加入200 μl不含血清的细胞悬液,使细胞数达到3×105个/小室;向Millicell小室下室中加入600 μl含20%胎牛血清的RPMI1640培养基;37℃、5%CO2培养箱中培养48 h后,取出细胞,用镊子夹出小室,移至另一含有600 μl 1×PBS的孔内浸泡3 min,取出小室,用棉签小心擦去微孔膜上层细胞。如此洗涤3次。再将小室放入70%甲醇中室温固定30 min,同上用1×PBS洗涤三遍;将小室移入含600 μl 0.1%结晶紫的孔内,室温染色30 min;用棉签擦拭小室内侧,室温晾干小室;显微镜照相并计数:计数穿过微孔的细胞数,在10倍视野下,随机选取5个视野,显微镜下计数穿膜细胞数,取其平均值,实验重复三次。
1.8 统计学方法实验数据用SPSS18.0统计软件进行统计分析,计量资料结果用均数±标准差表示,组间比较采用方差分析和t检验,P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 siRNA转染SKOV3细胞效率的检测结果由于siRNA NC带有FAM基因,在荧光显微镜下,可以观察到转染成功的SKOV3细胞表达绿色荧光。转染SKOV3细胞48 h时,在荧光显微镜下观察转染效率,比较一个视野内荧光细胞数与细胞总数的比例。结果显示SKOV3细胞的转染效率达70%以上,可用于后续实验,见图 1。
2.2 特异性FGF3 siRNA和FGF10 siRNA对SKOV3细胞FGF3 mRNA和FGF10 mRNA表达的抑制作用为了明确FGF3 siRNA和FGF10 siRNA转染效果,利用Real-time PCR法检测siRNA对SKOV3细胞中FGF3 mRNA和FGF10 mRNA的抑制作用。通过与GAPDH的Ct值差异来均衡各实验组之间的差异,应用2-ΔΔCt方法进行分析,结果发现,与siNC组相比,转染了FGF3 siRNA-858、siRNA-706的mRNA分别下降了91.9%(P=0.003)、92.3%(P=0.003),差异具有统计学意义,见图 2;转染了FGF10 siRNA-230、siRNA-410的mRNA分别下降了84.2%(P=0.006)、92.2%(P=0.003),差异具有统计学意义,见图 3。说明小干扰后,FGF3和FGF10 mRNA表达显著降低。
2.3 特异性FGF3 siRNA和FGF10 siRNA对SKOV3细胞FGF3蛋白和FGF10蛋白表达的抑制作用
应用Western blot法检测FGF3 siRNA和FGF10 siRNA对FGF3和FGF10蛋白水平的作用。FGF3 siRNA-858和FGF siRNA-706均能显著抑制FGF3蛋白水平(P=0.007; P=0.004),FGF10 siRNA-230和FGF siRNA-410也能显著抑制FGF10蛋白表达(P=0.006; P=0.005),差异均具有统计学意义;而NC组与未处理SKOV3细胞中的FGF3和FGF10蛋白表达比较,差异无统计学意义(均P > 0.05),见图 4。依据siRNA对FGF3、FGF10 mRNA和蛋白的抑制水平,我们选择抑制水平最高的siRNA-706和siRNA-410用于后续实验。
2.4 特异性FGF3 siRNA和FGF10 siRNA对SKOV3细胞迁移及侵袭能力的影响为了明确FGF3和FGF10与卵巢癌侵袭转移的关系,我们采用Transwell小室法检测干扰FGF3和FGF10基因前后SKOV3细胞的迁移及侵袭能力的变化。采用不铺基质胶及铺基质胶的Transwell小室,模拟肿瘤在体内迁移及侵袭的过程,用穿过膜的细胞数反映SKOV3细胞的体外迁移及侵袭能力。
结果显示,转染了FGF3 siRNA-706和FGF10 siRNA-410的SKOV3细胞与NC组及未处理组相比,通过未铺胶的Transwell小室的细胞数目与NC组相比明显减少,差异具有统计学意义(P=0.000; P=0.008),见图 5。通过铺胶的transwell小室的细胞数目与NC组相比明显减少,差异具有统计学意义(P=0.000; P=0.009),见图 6。
2.5 激活Wnt/β-catenin通路后对FGF3 mRNA和FGF10 mRNA水平的影响
使用Wnt通路激活剂LiCl激活Wnt通路,然后采用Real-Time PCR法检测Wnt通路激活后,FGF3 mRNA和FGF10 mRNA水平的变化。结果显示,10 mmol/L LiCl处理组和未处理组相比,FGF3 mRNA和FGF10 mRNA水平显著增加,差异具有统计学意义(P=0.006);20 mmol/L LiCl处理组和未处理组相比,FGF3 mRNA和FGF10 mRNA水平显著增加,差异也具有统计学意义(P=0.038),见图 7。
3 讨论卵巢癌组织来源复杂,包含了多种组织病理类型,上皮性卵巢癌占全部卵巢癌的80%。卵巢癌发病率虽然低于宫颈癌,但其死亡率却居妇科恶性肿瘤的首位。卵巢癌容易发生局部侵袭和远处转移,这也是卵巢癌患者预后差、死亡率高的主要原因[1]。
FGF3和FGF10是FGFs家族的成员,已有研究证明,原癌基因FGF3在多种肿瘤如膀胱癌[9]、口腔癌[10]、肝癌[11]、乳腺癌[12]、肺癌[9]中均呈高表达。FGF10是众所周知的乳腺癌致癌基因,在大约10%的乳腺癌中存在扩增[13]。Matsuike等运用PCR和Western blot法在结直肠癌细胞株中检测到了FGF10 mRNA的扩增和FGF10蛋白的表达[14]。本研究运用RNA干扰来探讨FGF3和FGF10在卵巢癌转移中的作用及其机制。
本研究首先利用GeneBank检索相关序列,针对FGF3和FGF10设计了两条靶序列及一条无义序列(NC)作为对照,无义序列带有FAM荧光报告基团,可以在荧光显微镜下发出荧光。通过荧光显微镜观察细胞所发出的荧光,可以判断siRNA瞬转的效率,优化转染条件。采用siRNA转染卵巢癌SKOV3细胞,荧光显微镜下观察转染效率,利用Real-Time PCR法和Western blot法分别检测特异性FGF3 siRNA和FGF10 siRNA对FGF3和FGF10 mRNA和蛋白表达的抑制效果。结果显示,与siNC相比,FGF3 siRNA-706和FGF10 siRNA-410可以明显抑制FGF3和FGF10的mRNA水平和蛋白的表达。因此,后续实验采用FGF3 siRNA-706和FGF10 siRNA-410进一步研究对SKOV3细胞功能的影响。
为进一步研究FGF3和FGF10在卵巢癌转移中的作用,本研究进行了Transwell实验。结果表明干扰FGF3基因后可以明显抑制卵巢癌SKOV3细胞的迁移和侵袭。这与张孝卫等用RNA干扰大肠癌HT-29细胞的FGF3基因后细胞的迁移能力明显下降[15]的结论相一致。也与蒋林芳等通过免疫组织化学实验得出FGF3的蛋白表达和卵巢癌的FIGO分期有显著的相关性这一结论相一致[16]。通过Transwell实验,本研究同样发现干扰FGF10基因可以明显抑制卵巢癌SKOV3细胞的迁移和侵袭,这与Abolhassani等报道的用siRNA干扰乳腺癌MDA-MB-231细胞中FGF10可以抑制乳腺癌的迁移[17],Itoh等报道FGF10可以促进胰腺癌细胞株的侵袭[18]的结论一致。
FGF3和FGF10影响细胞增殖和迁移的特异机制目前尚不明确。Wnt/β-catenin通路的活化在许多人类肿瘤中被发现,而且其靶基因的激活可以通过影响细胞迁移、增殖和血管生成等促进肿瘤的发展。本研究通过Real-Time PCR技术检测了激活Wnt/β-catenin通路后FGF3和FGF10 mRNA水平的变化。结果显示使用10 mmol/L LiCl处理SKOV3细胞后可以明显提高FGF3和FGF10 mRNA的水平,且效果最强。使用20 mmol/L LiCl处理SKOV3细胞后也可以提高FGF3和FGF10 mRNA的水平,但其mRNA上升水平低于10 mmol/L LiCl。推测可能是因为20 mmol/L LiCl对SKOV3细胞产生了细胞毒性,导致细胞死亡,影响细胞中FGF3和FGF10 mRNA的水平。这个结果说明激活Wnt/β-catenin通路可以明显提高FGF3和FGF10的mRNA水平。这与Aman等在胚胎发育研究中抑制Wnt/β-catenin信号通路后会引起FGF3和FGF10表达下调的结论一致[19]。
综上所述,FGF3和FGF10的表达与卵巢癌细胞迁移能力和侵袭能力密切相关,FGF3和FGF10受Wnt/β-catenin信号通路的调控来促进卵巢癌SKOV3细胞的转移。本研究结果证明FGF3和FGF10在卵巢癌转移中起重要作用,FGF3和FGF10有可能成为卵巢癌患者基因治疗的有效靶点。
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