文章信息
- RhoC与肿瘤血管生成关系的研究进展
- Research Progress of Relationship Between RhoC and Tumor Angiogenesis
- 肿瘤防治研究, 2018, 45(2): 110-113
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2018, 45(2): 110-113
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2018.17.0731
- 收稿日期: 2017-06-22
- 修回日期: 2017-09-11
肿瘤血管生成对于肿瘤的发生、生长、浸润、转移都有着十分重要的作用。肿瘤血管新生是一个极其复杂的过程,包含众多因素的参与。Rho(ras homologous)家族中的重要成员RhoC,不但在调节细胞骨架、细胞运动、增殖、凋亡、转录、转化及肿瘤细胞浸润、转移等方面发挥重要作用,而且与肿瘤血管生成密切相关[1-3]。目前,有关Rho家族的研究主要集中在肿瘤的浸润转移方面,关于RhoC等家族成员直接参与调控肿瘤血管生成的研究相对较少。因此,以Rho GTP酶家族中RhoC为代表进行研究,将有助于进一步了解肿瘤血管生成的机制,并为临床抗肿瘤血管生成提供新的理论依据。
1 Rho家族Rho家族属于Ras超家族中的重要成员之一,分子量大小为21~30 kDa,具有GTP酶活性,因此又被称为Rho GTP酶。与Ras家族GTP酶类似,在鸟嘌呤抑制因子(guanine dissociation inhibitors, GDI)和GTP激活蛋白等因子作用下,Rho GTP酶可以在有活性和无活性的GDP状态之间相互转换,介导细胞内信号转导,具有调节细胞骨架等作用[4]。现在已知该Rho家族成员有20多种,分8个亚族,分别是Rho(包括RhoA、RhoB、RhoC)、Rac(包括Rac1、Rac2、Rac3、RacG)、Cdc42、Rnd、RhoBTB、RhoD、RhoH、RhoU等,其中关于Rho、Rac、Cdc42三者的研究较多[5]。Rho亚族包括RhoA、RhoB、RhoC,三者之间有高度同源性,构成其蛋白的约85%的氨基酸序列相同,主要区别在C末端序列;N末端主要由能与GTP结合及水解相关的氨基酸组成[6]。除此之外,RhoA、RhoB、RhoC三者在组织细胞中的分布也具有规律性,在很多组织和细胞中均有表达,但表达水平存在差异,结构形态相似,功能上有着明显不同[7]。
近年来,随着对Rho亚家族成员功能的深入研究,逐渐发现Rho蛋白的主要功能是调节肌动蛋白细胞骨架[4]。其中RhoA在肌动、肌球蛋白收缩力调节中起关键作用;RhoC在细胞运动中起主要作用,虽然RhoB和RhoA、RhoC有较高同源性,但是功能上有很大差别。目前较多研究认为RhoB是肿瘤的负性调节基因,表达增高时可抑制肿瘤的生长和迁移[8]。
2 RhoC 2.1 RhoC基因结构RhoC定位于1p13-p21,其编码的蛋白质由193个氨基酸构成,是Rho家族中重要成员之一,具有水解鸟苷酸的功能。RhoC蛋白作为一种GTP蛋白酶,和Rho家族其他成员一样,在发挥功能效应时是通过GTP酶在有活性的GTP状态和无活性的GDP状态之间相互循环转换,完成相应的细胞调控功能。
2.2 RhoC生物学特点 2.2.1 调节肌动蛋白细胞骨架细胞骨架是胞质中蛋白纤维组成的网架结构,包括微丝、微管、中间纤维,可维持细胞形态、承受外力、保持细胞内部结构的有序性。RhoC主要参与应力纤维束(stress fibres)和黏着斑(focal adhesions)的形成。应力纤维束的主要作用是介导肌球蛋白的收缩,使细胞发生定向迁移[9]。黏着斑通过整合细胞外部信号作用到下游,从而参与细胞迁移、影响细胞骨架形态,在细胞增殖、肿瘤转移等生物学行为中发挥作用[10]。
2.2.2 调节细胞运动和肿瘤细胞的浸润、转移RhoC在调节细胞运动时,主要通过细胞上皮间质转化(epithelial mesenchymal transition, EMT)使上皮细胞极性丧失。研究发现,在肝细胞癌中RhoC表达增高可显著提高肝癌细胞的侵袭能力[11]。Kaushal等[12]研究显示转染RhoC siRNA可有效抑制乳腺癌细胞的浸润和转移。
2.2.3 调节细胞增殖和凋亡研究表明,在人脐静脉内皮细胞(human umbilical vein endothelial cells, HUVECs)中RhoC通过核β-catenin调控细胞周期蛋白D1转录,进而对细胞增殖周期进行调控[13]。在对胃癌细胞的增殖研究中,Wu等[14]发现RhoC通过和GTP酶激活蛋白1IQ结构域(IQGAP1)结合,在胃癌细胞中过表达可刺激胃癌细胞增殖。此外,有研究发现,通过RNA干扰技术降低RhoC表达,可诱导肝癌细胞凋亡[1]。
2.2.4 调节细胞转录和转化Xie等[15]研究显示,RhoC过表达可通过促进细胞增殖、迁移、浸润,进而促进正常肝细胞转化为恶性细胞。这一发现预示着在肝细胞癌中RhoC将成为新的癌基因。在头颈部鳞状细胞癌的研究中发现,RhoC GTP酶信号通路在调节和激活干细胞转录因子中起重要作用,这些转录因子可促使肿瘤细胞具有干细胞特性,因此RhoC也被认为是头颈部鳞状细胞癌中的重要癌基因[16]。
3 RhoC与肿瘤血管生成的关系肿瘤血管生成(tumor angiogenesis)是指在肿瘤细胞诱导下进行的极其复杂的过程,受到多种因素的调节,其过程包括:内皮细胞的激活和增殖、细胞外基质的降解和重塑、管腔的形成和维持新生血管的稳定[17]。
3.1 RhoC参与血管生成的信号通路RhoC作为Rho家族成员之一,其功能效应的发挥同样离不开上下游因子的调控。根据调控因子的性质分为正性调控和负性调控因子,其中鸟苷酸交换因子(guanine nucleotide exchange factors, GEF)属于正性调控因子,具有促进GDP-Rho转变为GTP-Rho的作用;鸟苷酸解离抑制因子(guanine nucleotide dissociation inhibitor, GDI)和GTP酶激活蛋白(GTPase-activating protein, GAP)属于负性调控因子,可促进GTP水解和阻止GDP-Rho转变为GTP-Rho[18-19]。
3.1.1 Rho/ROCK信号通路ROCK是RhoC的下游效应蛋白,是最主要的Rho激酶(Rho-kinase),又称为Rho相关卷曲螺旋蛋白激酶(Rho associated coiled-coiled protein kinase, ROCK)。ROCK是Rho下游主要的效应分子,属于丝/苏氨酸蛋白激酶。已知ROCK有ROCK1、ROCK2两种亚型,且RhoC的主要效应分子是ROCK1[20]。ROCK收到RhoC活化信号后,多个氨基酸位点发生磷酸化而被激活,并介导下游底物发生磷酸化。肌球蛋白磷酸酶是ROCK的底物,经RhoC/ROCK信号通路活化作用,使肌球蛋白磷酸酶发生磷酸化失活,进而无法使肌球蛋白轻链(myosin light chain, MLC)脱磷酸化。胞质中MLC磷酸化水平升高使得肌动-肌球蛋白交联增加,促进肌动蛋白微丝骨架聚合,进而对细胞骨架重建、细胞迁移、恶性肿瘤的浸润和转移等生物学行为进行调控[21]。有研究发现,RhoC特异性负调控因子ARHGAP18作为GTPase激活蛋白(GTPase-activating proteins, GAPs),可作用于RhoC/ROCK信号通路,影响血管生成[19]。
3.1.2 磷脂酰肌醇二磷酸(phosphatidylinositol bisphosphate, PIP2)信号通路PIP2是细胞膜上一种磷脂类信号分子,其含量不断发生变化,可被活化的磷脂酶C(phospholipase C, PLC)分解为三磷酸肌醇(inositol trisphosphate, IP3)和二酰基甘油(diacylglycerol, DAG)等第二信使进行信号传递,直接作用和调节肌动蛋白结合蛋白(包括Rho蛋白)的活化。研究发现,Rho促进PIP2的合成,并且PIP2的合成介导了Rho对细胞骨架的影响[22]。靖旭等[23]对细胞骨架与血管生成关系的实验结果显示,细胞骨架的微丝、肌动蛋白的动态聚合与分离,促进了血管的生成。
3.2 RhoC与内皮细胞的激活和增殖研究发现,RhoC可促进肝癌细胞周期相关基因、基质金属蛋白酶2(matrix metalloproteinases, MMP2)、MMP9和血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)表达[15]。VEGF在内皮细胞中通过VEGFR-1和VEGFR-2两种酪氨酸激酶受体的介导,对血管发生和血管生成起着重要作用;VEGF通过多种信号通路级联反应,使RhoC对血管内皮细胞的增殖和迁移进行调控[13]。
RhoC蛋白不但在肿瘤细胞形态改变及迁徙中发挥作用,在血管内皮细胞变形和迁移形成新生血管的过程中也发挥重要作用。内皮细胞的增殖和迁移是形成血管的前提,国内学者赵良平等[24]研究表明RhoC在HUVECs中表达并促进其体外迁移,Zhao等[2]的研究也显示在食管癌细胞中RhoC表达与肿瘤细胞侵袭增强有关,从侧面印证了前者的观点。细胞的迁移运动少不了以肌动蛋白为主的细胞骨架的改变,而调控肌动蛋白细胞骨架的正是Rho GTP家族[4],赵良平等[25]的研究也证实了这一结论。
3.3 RhoC与细胞外基质细胞外基质(extracellular matrix, ECM)存在于细胞与细胞之间,由胶原、蛋白聚糖、糖蛋白等大分子物质组成,在细胞之间起连接、支持作用,在炎症、肿瘤浸润和转移中也起到重要作用[26]。血管壁的主要成分是ECM,而降解ECM最重要的酶就是基质金属蛋白酶(MMPs)。RhoC通过调节MMPs和金属蛋白组织抑制因子的水平来调节ECM的降解和重塑,促进局部浸润。研究发现,RhoC GTP酶的激活在ECM的降解、重塑及肿瘤细胞的浸润中起着重要作用[27]。RhoC过度表达能明显增高MMP2、MMP9、VEGF的mRNA水平,提高其降解ECM的能力,从而增加肿瘤的侵袭力,促进血管生成[15]。
3.4 RhoC与管腔的形成及稳定性Chang等[19]研究结果显示,ARHGAP18负性调节RhoC活性,在敲除ARHGAP18表达后RhoC活性增加,能显著地促进肿瘤生长和血管生成。此外,RhoC通过调节内皮细胞中VEGF诱导的信号通路,有利于维持血管的稳定[13]。
4 总结与展望综上所述,RhoC作为Rho家族的重要成员,参与细胞运动、骨架重建、增殖、凋亡、转化及血管生成等诸多生命活动的调节过程。随着对Rho酶家族研究的深入,RhoC在肿瘤血管生成方面的作用逐渐凸显。
血管生成对于肿瘤的发生发展起着至关重要的作用[28],因此在肿瘤的治疗中抑制肿瘤血管生成一直是研究的热点。但是肿瘤的血管生成受到多种因素的共同调控,关系十分复杂,而有关RhoC与血管形成关系的研究相对较少,相关机制和信号通路尚不十分清楚。本文仅对研究中发现的RhoC基因在肿瘤血管生成方面可能起到的作用做了简要综述。至于内皮细胞中RhoC参与调控血管生成的具体机制和通路,还需更多的研究来说明。这些问题的解决以及RhoC调节机理的阐明,将有助于肿瘤的抗血管生成治疗迈上新的台阶。
[1] | Xie S, Zhu M, Lv G, et al. The role of RhoC in the proliferation and apoptosis of hepatocellular carcinoma cells[J]. Med Oncol, 2012, 29(3): 1802–9. DOI:10.1007/s12032-011-0003-0 |
[2] | Zhao ZH, Tian Y, Yang JP, et al. RhoC, vascular endothelial growth factor and microvascular density in esophageal squamous cell carcinoma[J]. World J Gastroenterol, 2015, 21(3): 905–12. DOI:10.3748/wjg.v21.i3.905 |
[3] | Wrighton KH. Cytoskeleton: RhoC invades cofilin's space[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2011, 12(6): 346–7. |
[4] | Murali A, Rajalingam K. Small Rho GTPases in the control of cell shape and mobility[J]. Cell Mol Life Sci, 2014, 71(9): 1703–21. DOI:10.1007/s00018-013-1519-6 |
[5] | Ridley AJ. Rho GTPase signalling in cell migration[J]. Curr Opin Cell Biol, 2015, 36: 103–12. DOI:10.1016/j.ceb.2015.08.005 |
[6] | Li X, Wang R, Xun X, et al. The Rho GTPase Family Genes in Bivalvia Genomes: Sequence, Evolution and Expression Analysis[J]. PloS One, 2015, 10(12): e0143932. DOI:10.1371/journal.pone.0143932 |
[7] | Ridley AJ. RhoA, RhoB and RhoC have different roles in cancer cell migration[J]. J Micros, 2013, 251(3): 242–9. DOI:10.1111/jmi.2013.251.issue-3 |
[8] | 陈伟浩, 徐衍盛, 欧阳昀, 等. Ras同源物基因家族成员B对肾透明细胞癌细胞生长及迁移能力的影响[J]. 转化医学杂志, 2017, 6(2): 80–3, 87. [ Chen WH, Xu YS, Ouyang Y, et al. The effect of Ras homolog gene family member B on cell growth activity and migration of renal clear cell carcinoma[J]. Zhuan Hua Yi Xue Za Zhi, 2017, 6(2): 80–3, 87. ] |
[9] | Vallenius T. Actin stress fibre subtypes in mesenchymal-migrating cells[J]. Open Biol, 2013, 3(6): 130001. DOI:10.1098/rsob.130001 |
[10] | 陈真, 许贤林. 黏着斑激酶和踝蛋白在黏着斑合成代谢中的作用[J]. 中国医药生物技术, 2015, 10(4): 303–5. [ Chen Z, Xu XL. The role of focal adhesion kinase and ankle protein in mucosal anabolism[J]. Zhongguo Yi Yao Sheng Wu Ji Shu, 2015, 10(4): 303–5. ] |
[11] | 欧阳锡武, 陶一明, 王志明. 基质硬度对PKN3表达及肝细胞癌侵袭转移的影响[J]. 中国普通外科杂志, 2016, 25(10): 1455–60. [ Ouyang XW, Tao YM, Wang ZM. Influence of matrix stiffness on PKN3 expression and invasion/metastasis in hepatocellular carcinoma[J]. Zhongguo Pu Tong Wai Ke Za Zhi, 2016, 25(10): 1455–60. DOI:10.3978/j.issn.1005-6947.2016.10.015 ] |
[12] | Kaushal N, Durmaz YY, Bao L, et al. "Smart" Nanoparticles Enhance the Cytoplasmic Delivery of Anti-RhoC Silencing RNA and Inhibit the Migration and Invasion of Aggressive Breast Cancer Cells[J]. Mol Pharm, 2015, 12(7): 2406–17. DOI:10.1021/acs.molpharmaceut.5b00114 |
[13] | Hoeppner LH, Sinha S, Wang Y, et al. RhoC maintains vascular homeostasis by regulating VEGF-induced signaling in endothelial cells[J]. J Cell Sci, 2015, 128(19): 3556–68. DOI:10.1242/jcs.167601 |
[14] | Wu Y, Tao Y, Chen Y, et al. RhoC regulates the proliferation of gastric cancer cells through interaction with IQGAP1[J]. PloS One, 2012, 7(11): e48917. DOI:10.1371/journal.pone.0048917 |
[15] | Xie S, Zhu M, Lv G, et al. Overexpression of Ras homologous C (RhoC) induces malignant transformation of hepatocytes in vitro and in nude mouse xenografts[J]. PloS One, 2013, 8(1): e54493. DOI:10.1371/journal.pone.0054493 |
[16] | Islam M, Sharma S, Teknos TN. RhoC Regulates Cancer Stem Cells in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma by Overexpressing IL-6 and Phosphorylation of STAT3[J]. PLoS One, 2014, 9(2): e88527. DOI:10.1371/journal.pone.0088527 |
[17] | 袁耀东, 鲁峰, 高建华. 细胞外基质在调控血管生成中的研究进展[J]. 中华实验外科杂志, 2014, 31(6): 1385–6. [ Yuan YD, Lu F, Gao JH. Research progress of extracellular matrix in the regulation of angiogenesis[J]. Zhonghua Shi Yan Wai Ke Za Zhi, 2014, 31(6): 1385–6. ] |
[18] | Griner EM, Dancik GM, Costello JC, et al. RhoC Is an Unexpected Target of RhoGDI2 in Prevention of Lung Colonization of Bladder Cancer[J]. Mol Cancer Res, 2015, 13(3): 483–92. DOI:10.1158/1541-7786.MCR-14-0420 |
[19] | Chang GH, Lay AJ, Ting KK, et al. ARHGAP18: an endogenous inhibitor of angiogenesis, limiting tip formation and stabilizing junctions[J]. Small GTPases, 2014, 5(3): 1–15. |
[20] | Rong C, Yuan C, Youyi Z, et al. RhoC mediates invasion and migration of CaSki cells through the Rho-associated serine-threonine protein kinase 1 signaling pathway[J]. Int J Gynecol Cancer, 2014, 24(2): 184–91. DOI:10.1097/IGC.0000000000000053 |
[21] | Linda J, Michael FO. Rho-associated coiled-coil containing kinases (ROCK): structure, regulation, and functions[J]. Small GTPases, 2014, 5: e29846. DOI:10.4161/sgtp.29846 |
[22] | Chong LD, Traynor-Kaplan A, Bokoch GM, et al. The small GTP-binding protein Rho regulates a phosphatidylinositol 4-phosphate 5-kinase in mammalian cells[J]. Cell, 1994, 79(3): 507–13. DOI:10.1016/0092-8674(94)90259-3 |
[23] | 靖旭, 孙金隆, 张晓芸, 等. Jasplakinolide通过稳定细胞骨架调控内皮细胞功能[J]. 中国药理学通报, 2013, 29(8): 1079–83. [ Jing X, Sun JL, Zhang XY, et al. Jasplakinolide affects the functions of HUVECs via actin stabilization[J]. Zhongguo Yao Li Xue Tong Bao, 2013, 29(8): 1079–83. ] |
[24] | 赵良平, 张庆华, 王薇娜, 等. RhoC过表达对人脐静脉内皮细胞体外迁移及血管生成能力的影响[J]. 肿瘤防治研究, 2008, 35(11): 766–9. [ Zhao LP, Zhang QH, Wang WN, et al. Overexpression of RhoC Affects Human Umbilical Vein Endothelial Cell Migration and Angiogenesis in Vitro[J]. Zhong Liu Fang Zhi Yan Jiu, 2008, 35(11): 766–9. DOI:10.3971/j.issn.1000-8578.512 ] |
[25] | 赵良平, 张庆华, 石晓燕, 等. RNAi沉默RhoC基因对人脐静脉内皮细胞体外生物学行为的影响[J]. 中华实验外科杂志, 2012, 29(9): 1713–5. [ Zhao LP, Zhang QH, Shi XY, et al. Influence of RNA interference-induced RhoC gene silencing on behaviors of human umbilical vein endothelial cells[J]. Zhonghua Shi Yan Wai Ke Za Zhi, 2012, 29(9): 1713–5. ] |
[26] | 李忠义, 缪起龙, 沈周俊. 细胞外基质与膀胱肿瘤转移[J]. 国际泌尿系统杂志, 2012, 32(3): 363–7. [ Li ZY, Miao QL, Shen ZJ. Extracellular Matrix and Bladder Tumor Metastasis[J]. Guo Ji Mi Niao Xi Tong Za Zhi, 2012, 32(3): 363–7. ] |
[27] | Martín-Villar E, Borda-d'Agua B, Carrasco-Ramirez P, et al. Podoplanin mediates ECM degradation by squamous carcinoma cells through control of invadopodia stability[J]. Oncogene, 2015, 34(34): 4531–44. DOI:10.1038/onc.2014.388 |
[28] | Loboda A, Jozkowicz A, Dulak J. HO-1/CO system in tumor growth, angiogenesis and metabolism -Targeting HO-1 as an anti-tumor therapy[J]. Vascular pharmacology, 2015, 74: 11–22. DOI:10.1016/j.vph.2015.09.004 |