文章信息
- PTTG1促进结肠癌SW480细胞侵袭和迁移的作用机制
- Effect of PTTG1 Expression on Invasion and Migration of Colon Cancer Cell SW480 and Its Possible Mechanism
- 肿瘤防治研究, 2016, 43(11): 948-953
- Cancer Research on Prevention and Treatment, 2016, 43(11): 948-953
- http://www.zlfzyj.com/CN/10.3971/j.issn.1000-8578.2016.11.006
- 收稿日期: 2015-12-18
- 修回日期: 2016-05-19
2. 443002 宜昌,宜昌市中心人民医院肛肠科
2. Anorectal Section,Yichang Central People's Hospital,Yichang 443002,China
结肠癌是全球第三大恶性肿瘤,每年将近1000 000新确诊患者,超过500 000死于结肠癌[1]。垂体肿瘤转化基因1(pituitary tumor transforming gene 1,PTTG1)是一种新的癌基因;被报道在多发性骨髓瘤[2]、宫颈癌[3]等肿瘤中高表达,与肿瘤的不良预后密切相关,高表达PTTG1具有促进细胞侵袭和转移功能。前期研究显示PTTG1在结肠癌患者中高表达与肿瘤的侵袭能力密切相关[4];但未有报道提示PTTG1对结肠癌癌细胞侵袭和转移的影响。本研究通过建立PTTG1过表达的结肠癌SW480细胞,检测PTTG1对SW480细胞侵袭和迁移的影响,并分析其可能的分子机制,期望为结肠癌的治疗提供新的分子靶点。
1 材料与方法 1.1 材料人结肠癌细胞SW480为实验室传代培养,pcDNA3.1(+)-PTTG1及空载pcDNA3.1(+)为三峡大学第一临床医学院中心实验室保存;胎牛血清、RPMI 1640培养液、青霉素、链霉素及G418均购自美国Gibco公司;转染试剂Lipofectamine TM 2000购自美国Invitrogen 公司;兔抗人PTTG1、MMP2、MMP9、E-cadherin、Vimentin、Snail的多克隆抗体,β-actin单克隆抗体,HRP标记的羊抗兔抗体均购自美国Santa Cruz公司;TRIzol试剂购自美国Invitrogen公司,PrimeScript反转录试剂盒及SYBR premix EXTaqⅡ荧光定量PCR试剂盒购自宝生物工程(大连)有限公司;Transwell小室购自美国Thermo Fisher公司;G418、LY29400购自美国Sigma公司;其余试剂均为国产分析纯试剂。
1.2 方法 1.2.1 SW480细胞培养及稳定过表达PTTG1基因的细胞株建立人结肠癌细胞株SW480常规培养于含10%胎牛血清、100 u/ml青霉素和100 mg/L链霉素的RPMI 1640培养液,37℃、5%CO2相对湿度95%的恒温培养箱,2~3天传代一次,取对数生长期细胞用于实验。转染前24 h将细胞消化传代平铺到10 cm直径的培养皿中,使用脂质体转染法转染pcDNA3.1(+)-PTTG1及空载pcDNA3.1(+),转染后24 h,在培养液中加入800 μg/ml的G418。每2~3天更换筛选培养液,显微镜下观察,挑取单克隆用含400 μg/ml的G418常规培养液培养14天后,建立稳定转染的细胞系。
1.2.2 Western blot法检测PTTG1等蛋白表达收集对数生长期细胞,提取蛋白质,测定蛋白浓度,取20 μg蛋白制成总体为20 μl的上样缓冲液,经10%凝胶电泳(电压80 V,恒压电泳2.5 h),转印(70 V转印1.5 h)后将载有目的蛋白的PVDF膜浸入5%(M/V)脱脂奶粉溶液中,室温摇床缓慢摇动封闭1 h,用PTTG1、MMP2、MMP9、E-cadherin、Vimentin、Snail兔抗人一抗(5%脱脂奶粉1:500稀释抗体)4℃过夜、HRP标记羊抗兔二抗(5%脱脂奶粉1:5 000稀释抗体)37℃孵育30 min,ECL显影。显影后的PVDF膜经抗体剥离后,重新封闭,用HRP标记β-actin抗体(5%脱脂奶粉1:5 000稀释抗体)37℃孵育1 h,ECL显影。
1.2.3 Real-time PCR检测PTTG1的表达TRIzol法提取细胞总RNA,依照PrimeScript反转录试剂盒标注方法反转录制备cDNA,实时荧光定量PCR(Real-time PCR)检测PTTG1的表达。引物:PTTG1正义链:5′-TGA CGA GGA GAG AGA GCTTGA AA-3′;PTTG1反义链:5′-CAA CAT CCA GGGTCG ACA GAA T-3′;β-actin正义链:5′-CCC AGC ACAATG AAG ATC AAG ATC A-3′; β-actin 反义链:5′-ATCTGCTGGAAGGTGGACAGCGA-3′。反应条件:以95℃ 30 s预变性,95℃ 5 s,退火温度30 s,40个循环,加设溶解曲线程序:75℃ 2 s以0.2℃/s升至95℃ 2 s,PCR产物进行2%琼脂糖凝胶电泳鉴定产物。各设3个复孔,取其平均Ct值,以β-actin为内参。采用2-△△Ct法分析基因的相对表达量。
1.2.4 Transwell法检测细胞侵袭和迁移能力未铺基质胶和铺好基质胶Transwell小室放入24孔板中,下室加入含10%FBS的培养液750 μl;收集对数生长期细胞,计数后以5×104个每孔细胞平铺到上室,置37℃、5%CO2饱和湿度条件下培养12 h后,取出Transwell小室,PBS轻轻冲洗,上下各冲洗1次;用棉签擦去微孔膜上层细胞;多聚甲醛室温下固定20 min,苏木精染液染色3 min,蒸馏水冲洗。在倒置显微镜下(×200)对迁移至微孔膜下层的细胞计数。每个样本选取5个视野计数细胞个数,取均数。
1.3 统计学方法采用SPSS13.0统计分析软件进行统计学处理,计量资料采用平均数±标准差(x±s)表示,组间比较采用单因素方差分析,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 PTTG1过表达增强SW480细胞侵袭和迁移能力传代培养实验室前期建立稳定转染PTTG1真核表达质粒细胞株PTTG1-SW480及其对照细胞系Vector-SW480,与常规培养SW480细胞相比,PTTG1-SW480细胞PTTG1蛋白表达水平上升,其表达量是SW480细胞的3.58倍、Vector-SW480细胞的3.42倍,差异均有统计学意义(P<0.01)。PTTG1 mRNA表达水平亦显著升高,是SW480细胞2.01倍、Vector-SW480的2.07倍,差异均有统计学意义(P=0.002,P=0.001)。Vector-SW480和SW480细胞间差异无统计学意义,见图 1。
与Vector-SW480细胞(103 vs. 60)和SW480细胞(103 vs. 59)比较,PTTG1-SW480细胞侵袭能力显著增强,差异有统计学意义;Vector-SW480细胞和SW480细胞间差异无统计学意义。PTTG1-SW480细胞迁移能力亦显著增强,与Vector-SW480细胞(165 vs. 97)和SW480细胞(165 vs. 98)相比,差异有统计学意义;Vector-SW480细胞和SW480细胞间差异无统计学意义,见图 2。同时检测MMP2和MMP9的表达,与Vector-SW480和SW480细胞相比,PTTG1-SW480细胞MMP2和MMP9表达量均显著升高,差异均有统计学意义;Vector-SW480和SW480细胞间差异无统计学意义,见图 3。
2.2 PTTG1促进SW480细胞上皮间质转化
上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)在调控肿瘤细胞侵袭及转移中发挥了关键作用。检测细胞表面黏附分子E-cadherin、间质细胞标记分波形蛋白(Vimentin)及调控EMT转化的关键调控因子Snail的表达,结果显示:与Vector-SW480和SW480细胞相比,PTTG1-SW480细胞中E-cadherin表达降低,Vimentin、Snail表达均升高,差异均有统计学意义(P<0.05);Vector-SW480和SW480细胞间差异无统计学意义,见图 4。
2.3 PTTG1通过活化PI3K/Akt信号促进SW480细胞EMT、侵袭和迁移PI3K/AKT信号活化能够有效促进肿瘤细胞EMT、侵袭和迁移。结果显示:PTTG1过表达细胞PTTG1-SW480中活化形式p-AKT表达较Vector-SW480和SW480细胞显著升高,见图 5。使用PI3K/AKT信号抑制剂LY29400(10 μmol/L)干预后,能有效抑制PTTG1-SW480细胞侵袭(103 vs. 59)和迁移(165 vs. 95),差异有统计学意义,P值分别为0.032和0.060,对Vector-SW480细胞侵袭(60 vs. 57)和迁移(97 vs. 98)无显著影响,P值分别为0.700和0.825,见图 6;LY29400干预能有效下调PTTG1-SW480中Vimentin和Snail的表达,上调E-cadherin表达,对Vector-SW480细胞没有显著性影响,见图 7。表明PTTG1通过活化PI3K/Akt信号促进SW480细胞EMT、侵袭和迁移。
3 讨论
PTTG1是一个癌基因,有研究报道中高表达的PTTG1具有促进肿瘤侵袭和转移的能力[7]。上皮间质转化(EMT),是指上皮细胞通过特定程序转化为具有间质表型细胞的生物学过程。在胚胎发育、慢性炎性反应、组织重建、癌症转移和多种纤维化疾病中发挥了重要作用,其主要特征有细胞黏附分子(E-cadherin)表达的减少、间充质细胞神经-钙黏素(N-cadherin)表达上调,细胞角蛋白细胞骨架转化为波形蛋白(Vimentin)为主的细胞骨架及形态上具有间充质细胞的特征等。通过EMT,上皮性肿瘤细胞失去了细胞极性,失去与基底膜的连接等上皮表型,获得了较高的迁移与侵袭、抗凋亡和降解细胞外基质的能力等间质表型;转录因子Snail、Slug、Twist和ZEB1能有效调控具有抑制E-cadherin的表达,促进肿瘤细胞EMT、侵袭和迁移[8-10]。研究显示癌基因PTTG1通过调控肿瘤细胞EMT和肿瘤干细胞的扩增促进肿瘤的恶性表型[11]; PTTG1在口腔鳞癌细胞中过表达能够有效促进肿瘤细胞侵袭和迁移,促进细胞EMT,下调E-cadherin的表达,上调Snail和Vimentin蛋白的表达[12]。本研究中,结肠癌SW480细胞过表达PTTG1后,细胞侵袭和迁移能力增强,E-cadherin表达下调,Snail和Vimentin蛋白表达上调。结肠癌相关研究提示Snail1的表达与肿瘤的进展和转移相关,77%表达Snail的结肠癌细胞在经历EMT[13]。表明上调Snail的表达可能是PTTG1调控结肠癌细胞EMT,参与结肠癌侵袭和转移的主要机制之一。
磷酯酰肌醇3激酶(phosphoinositide-3-kinase,PI3K)家族,是生长因子超家族信号转导过程中的重要分子,可被多种细胞因子和理化因素激活,癌基因诱导常介导PI3K活化参与肿瘤的进程;丝氨酸激酶(serine threonine kinase,AKT)通路主要负责由PI3K始动的生物信息的转导,AKT处于这一通路的中心环节,它在细胞增殖、侵袭和迁移、凋亡等多种生物学过程中发挥着重要作用[14]。PTTG1被报道能够有效活化PI3K/AKT信号促进细胞侵袭和迁移[7, 11]。本研究发现PTTG1过表达可以有效促进PI3K/AKT信号活化,LY294002干预后能有效抑制结肠癌细胞的侵袭与转移。而此前的研究显示PI3K/Akt信号参与调控肿瘤细胞EMT,促进肿瘤的侵袭与迁移;Chen等发现骨形态发生蛋白-2(bone morphogenetic protein 2, BMP2)通过活化PI3K/Akt信号促进胰腺癌细胞EMT、侵袭和转移,使用 LY294002干预后将有效抑制胰腺癌细胞EMT,抑制细胞侵袭和迁移[15];Wang等研究显示HPIP通过活化PI3K/Akt 信号促进甲状腺癌细胞的EMT,下调E-cadherin蛋白表达,上调N-cadherin的表达[14]。另有研究证实五溴联苯醚能通过活化PI3K/Akt信号上调EMT关键转录因子Snail的表达,但不上调Slug、Twist和ZEB1的表达,增加N-cadherin的表达,促进结肠癌的EMT,增强细胞侵袭和转移能力[16];Cho等报道CD44/EGFR/PI3K-Akt信号的活化促进结肠癌细胞EMT,下调E-cadherin的表达,抑制E-cadherin-β-catenin复合物的形成、抑制细胞的侵袭和转移[17]。本研究中,LY294002干预后能有效抑制PTTG1-SW480细胞EMT,细胞中的E-cadherin蛋白表达下调,Snail、N-cadherin的表达上调,但对Vector-SW480没有影响;充分表明PTTG1通过活化PI3K/AKT信号调控SW480细胞EMT,促进肿瘤侵袭与迁移。
综上所述,本研究体外建立PTTG1过表达的SW480细胞,得到PTTG1能有效促进细胞的侵袭和迁移,SW480细胞发生EMT转化;使用LY29400抑制PI3K/AKT信号活化能有效拮抗PTTG1对SW480细胞侵袭和迁移、EMT的调控作用。表明PTTG1通过诱导PI3K/AKT信号活化调节SW480细胞EMT、侵袭和迁移。提示PTTG1可以作为结肠癌治疗靶点应用于临床的诊断与治疗。
[1] | Center MM, Jemal A, Smith RA, et al. Worldwide variations in colorectal cancer[J]. CA Cancer J Clin, 2009, 59 (6) : 366–78. DOI:10.3322/caac.20038 |
[2] | McMillan DC, McArdle CS. Epidemiology of colorectal liver metastases[J]. Surg Oncol, 2007, 16 (1) : 3–5. DOI:10.1016/j.suronc.2007.04.008 |
[3] | Cunningham D, Atkin W, Lenz HJ, et al. Colorectal cancer[J]. Lancet, 2010, 375 (9719) : 1030–47. DOI:10.1016/S0140-6736(10)60353-4 |
[4] | Noll JE, Vandyke K, Hewett DR, et al. PTTG1 expression is associated with hyperproliferative disease and poor prognosis in multiple myeloma[J]. J Hematol Oncol, 2015, 8 (1) : 106. DOI:10.1186/s13045-015-0209-2 |
[5] | Li L, Han LY, Yu M, et al. Pituitary tumor-transforming gene 1 enhances metastases of cervical cancer cells through miR-3666-regulated ZEB1[J]. Tumour Biol, 2015, [Epub ahead of print] . |
[6] | Heaney AP, Singson R, McCabe CJ, et al. Expression of pituitary-tumour transforming gene in colorectal tumours[J]. Lancet, 2000, 355 (9205) : 716–9. DOI:10.1016/S0140-6736(99)10238-1 |
[7] | Lin YH, Tian Y, Wang JS, et al. Pituitary tumor-transforming gene 1 regulates invasion of prostate cancer cells through MMP13[J]. Tumour Biol, 2015, [Epub ahead of print] . |
[8] | Zuo QF, Cao LY, Yu T, et al. MicroRNA-22 inhibits tumor growth and metastasis in gastric cancer by directly targeting MMP14 and snail[J]. Cell Death Dis, 2015, 6 : e2000. DOI:10.1038/cddis.2015.297 |
[9] | Kumar K, Chow CR, Ebine K, et al. Differential Regulation of ZEB1 and EMT by MAPK-interacting protein kinases (MNKs) and eIF4E in Pancreatic Cancer[J]. Mol Cancer Res, 2015, 14 (2) : 216–27. |
[10] | Zhu QQ, Ma C, Wang Q, et al. The role of TWIST1 in epithelial-mesenchymal transition and cancers[J]. Tumour Biol, 2016, 37 (1) : 185–97. DOI:10.1007/s13277-015-4450-7 |
[11] | Yoon CH, Kim MJ, Lee H, et al. PTTG1 oncogene promotes tumor malignancy via epithelial to mesenchymal transition and expansion of cancer stem cell population[J]. J Biol Chem, 2012, 287 (23) : 19516–27. DOI:10.1074/jbc.M111.337428 |
[12] | Zhang E, Liu S, Xu Z, et al. Pituitary tumor-transforming gene 1 (PTTG1) is overexpressed in oral squamous cell carcinoma (OSCC) and promotes migration,invasion and epithelial-mesenchymal transition (EMT) in SCC15 cells[J]. Tumour Biol, 2014, 35 (9) : 8801–11. DOI:10.1007/s13277-014-2143-2 |
[13] | Brzozowa M, Michalski M, Wyrobiec G, et al. The role of Snail1 transcription factor in colorectal cancer progression and metastasis[J]. Contemp Oncol(Pozn), 2015, 19 (4) : 265–70. |
[14] | Wang SC, Chai DS, Chen CB, et al. HPIP promotes thyroid cancer cell growth,migration and EMT through activating PI3K/AKT signaling pathway[J]. Biomed Pharmacother, 2015, 75 : 33–9. DOI:10.1016/j.biopha.2015.08.027 |
[15] | Chen X, Liao J, Lu Y, et al. Activation of the PI3K/Akt pathway mediates bone morphogenetic protein 2-induced invasion of pancreatic cancer cells Panc-1[J]. Pathol Oncol Res, 2011, 17 (2) : 257–61. DOI:10.1007/s12253-010-9307-1 |
[16] | Wang F, Ruan XJ, Zhang HY. BDE-99 (2,2',4,4',5-pentabromodiphenyl ether) triggers epithelial-mesenchymal transition in colorectal cancer cells via PI3K/Akt/Snail signaling pathway[J]. Tumori, 2015, 101 (2) : 238–45. DOI:10.5301/tj.5000229 |
[17] | Cho SH, Park YS, Kim HJ, et al. CD44 enhances the epithelial-mesenchymal transition in association with colon cancer invasion[J]. Int J Oncol, 2012, 41 (1) : 211–8. |