肺癌是临床上最常见的恶性肿瘤之一,其中非小细胞肺癌(non-small cell lung cancer,NSCLC))占85%。NSCLC主要包括肺腺癌和鳞癌,其5年生存率大约为15%[1]。多西他赛属于微管解聚抑制剂,是NSCLC患者的标准二线化疗药物[2]。纤维蛋白原样蛋白1(fibrinogen-like protein 1,FGL1)是肝脏分泌的一种可促进细胞有丝分裂的特异生长因子,且在正常肝组织、肿瘤细胞和组织内呈过表达状态[3-4]。生理条件下,FGL1主要以自分泌的形式促进细胞有丝分裂增殖[5]。目前,有关FGL1与多西他赛等药物敏感性的研究较少。本研究旨在探讨FGL1在人肺腺癌细胞株PC-9中的表达情况及其对肺癌细胞多西他赛敏感性的影响,为提高多西他赛的临床疗效提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 细胞株人正常肺上皮细胞BEAS-2B及人肺腺癌PC9细胞均购自中国科学院上海细胞库。
1.1.2 药物与试剂多西他赛购于北京索莱宝有限公司(货号ID0400),胎牛血清购自Gibco(货号10270106),RPMI培养基购自Hylcone(货号SH30022.02),CCK-8试剂盒购自北京索莱宝科技公司(货号CA12110)、二喹啉甲酸(Bicinchoninicacid,BCA)试剂盒均购自Beyotime(货号P0010S); 实时荧光定量试剂盒TBGreen购自日本TaKaRa公司(货号RR820A), β-actin抗体购自Proteintech公司(货号60008-1-lg),FGL1抗体购自Abcam公司(货号ab197357), FGL1-siRNA重组序列、随机阴性对照序列由上海吉凯基因技术有限公司设计及合成。FGL1靶点序列GAPDH序列见Tab 1。
Gene | Primer(5′-3′) |
FGL1-siRNA1 | Upper reaches GCCGUUAUGCACAAUAUAATT |
Lower reaches UUAUAUUGUGCAUAACGGCT | |
FGL1-siRNA2 | Upper reaches GCAAACCUGAAUGGUGUAUTT |
Lower reaches AUACACCAUUCAGGUUUGCTT | |
Negative control | Upper reaches UUCUCCGAACGUGUCACGUTT |
Lower reaches ACGUGAVAVGUUCGGAGAATT | |
FGL1 | Upper reaches GCTGGTGGTTTAACAGGTGTC |
Lower reaches AGAATACCACCACCCATGCC | |
GAPDH | Upper reaches AGAAGACTGTGGATGG |
Lower reaches AGCTCAGGGATGACCTTG |
超净工作台(苏州净化设备厂),恒温水浴箱(北京医疗设备厂),低温高速离心机(德国Heraeus公司),普通离心机(德国Heraeus公司400e型),电泳仪(美国Bio-rad公司),酶标仪(美国Bio-rad公司), 纯水器(美国Millipore公司)。
1.2 方法 1.2.1 细胞培养人正常肺上皮BEAS-2B细胞和人肺腺癌PC-9细胞分别在含有10%胎牛血清的DMEM培养基和RPIM培养基中,置于37 ℃、5% CO2饱和湿度条件下培养。细胞为贴壁生长,取对数生长期的细胞进行实验。
1.2.2 CCK-8法检测多西他赛对细胞的抑制率将实验分为空白对照组、阴性对照组及实验组。空白对照组只加培养液,阴性对照组加细胞悬液不加药,实验组细胞培养24 h后贴壁,加入不同浓度(0、5、10、20、40、80 μmol·L-1)多西他赛分别作用于人肺腺癌PC-9细胞24 h和48 h,制备单细胞悬液,以5×104个/mL的浓度,接种于96孔培养板中,每孔200 μL(边缘孔用无菌PBS填充);终止试验前4 h在每个孔内加入CCK-8(5 g·L-1);酶标仪上测定各孔OD值(A值)。抑制率/%=[1-(药物处理组A值-空白对照组A值)/(细胞对照组A值-空白对照组A值)]×100%。计算出半数抑制浓度(half inhibitory concentration,IC50)。
1.2.3 蛋白免疫印迹法(Western blot)检测FGL1蛋白表达细胞中加入适量的裂解液,裂解完全后离心,取上清,BCA法测定蛋白浓度,蛋白液与上样缓冲液充分混匀,100 ℃加热10 min,每泳道加入40 μg样品进行8% SDS-PAGE凝胶电泳,转膜、5%脱脂牛奶封闭1 h后,FGL1和GAPDH抗体均按照1 : 1 000稀释,4 ℃孵育一抗过夜。4 ℃取出膜,吐温PBS清洗,加入按照1 : 10 000稀释二抗(HRP标记的二抗),室温孵育90 min,洗膜,化学发光法在紫外凝胶成像仪上进行拍照分析。FGL1的相对表达量通过FGL1的灰度值除以GAPDH的灰度值计算。
1.2.4 逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)将处于对数生长期的人肺腺癌PC-9细胞消化后接种至6孔板中,使细胞密度能够达到80%~90%。收集细胞,使用TRIzol、氯仿和异丙醇等试剂提取总RNA,根据逆转录试剂盒说明进行逆转录,FGL1和内参GAPDH的引物序列见Tab 1。以cDNA为模板用实时荧光定量PCR仪进行扩增,反应总体积20 μL,PCR反应条件:95 ℃预变性5 min,之后95 ℃、10 s,60 ℃退火40 min,共40个循环,每孔设置3个复孔。采用由公式Folds=2-△△CT计算目的基因相对表达量。1.2.5细胞转染PC-9细胞在转染前1 d消化收集,制备细胞悬液,接种细胞至6孔板中,使转染细胞密度能够达到40%~60%,实验分为空白组(Control组),阴性对照组(FGL1siNC组),FGL1siRNA实验组。空白组不经任何处理,实验组转染FGL1siRNA。严格按照lipofectamineTM2000试剂盒说明书进行siRNA转染,用Opti-MEM(Invitrogen)转染试剂进行转染,于37 ℃、5% CO2转染6 h后每组加入完全培养基,转染48 h收集细胞。采用荧光倒置显微镜观察各组转染后细胞形态观察其形态学变化,判断转染效率,通过Western-blot法验证转染效果。
1.3 统计学分析采用SPSS 22.0统计软件对实验数据分析,所有计量资料以 ±s表示。采用单因素方差分析和t检验。
2 结果 2.1 BEAS-2B、PC-9细胞中FGL1的差异表达以人正常肺上皮BEAS-2B细胞作为对照,通过Western blot法检测FGL1蛋白在人肺腺癌PC-9细胞中的表达,见Fig 1。与BEAS-2B细胞中FGL1蛋白表达量相比,PC-9细胞FGL1相对表达量为(1.42±0.014),明显高于BEAS-2B细胞,差异具有显著性(P < 0.01)。
2.2 不同浓度多西他赛对人肺腺癌PC-9细胞的增殖抑制作用CCK-8试剂盒检测多西他赛对人肺腺癌PC-9细胞增殖抑制作用并计算IC50值,Fig 2结果发现,不同浓度多西他赛对PC-9细胞的增殖抑制作用呈现剂量依赖性。作用24 h时,药物的IC50值是29.48 μmol·L-1;而作用48 h时,药物的IC50值是5.88 μmol·L-1,提示多西他赛对PC-9细胞的增殖抑制作用可能有一定的时间依赖性。且与阴性对照组相比,差异具有显著性(P < 0.01)。
2.3 多西他赛增强人肺腺癌PC-9细胞中FGL1的表达不同浓度多西他赛作用于人肺腺癌PC-9细胞24 h后,以Western blot法检测FGL1蛋白的表达情况,Fig 3A、3B发现,随着多西他赛浓度的增加,PC-9细胞中FGL1蛋白的表达水平明显上调,且各个浓度组与对照组相比,差异均具有显著性。进一步采用RT-PCR检测FGL1 mRNA的表达情况(Fig 3C)。当多西他赛浓度为5 μmol·L-1时,FGL1 mRNA相对表达量为(1.08±0.023)(P < 0.05);当多西他赛浓度为40 μmol·L-1时, FGL1 mRNA相对表达量为(1.62±0.013)(P < 0.01),与对照组相比差异均具有显著性。
2.4 转染FGL1 siRNA后对PC-9细胞中的FGL1蛋白表达的影响转染FGL1 siRNA 48 h后,用Western blot法检测人肺腺癌PC-9细胞中FGL1蛋白表达,见Fig 4。转染组siRNA1的FGL1相对表达量与阴性对照组相比降至(0.865±0.045)倍,差异无显著性(P>0.05);转染组siRNA2中FGL1相对表达量与阴性对照组相比降至(0.427±0.0025)倍,差异具有显著性(P < 0.01)。选取转染效果较好的FGL1siRNA-2序列用于后续实验。
2.5 沉默FGL1增强人肺腺癌PC-9细胞对多西他赛敏感性的作用不同浓度(0、5、10、20、40、80 μmol·L-1)多西他赛作用于人肺腺癌PC-9细胞24 h后,用CCK-8试剂盒检测多西他赛对人肺腺癌PC-9细胞的增殖抑制作用,见Fig 5。FGL1 siRNA组药物IC50值为2.91 μmol·L-1, 与对照组相比差异具有显著性(P < 0.01)。而FGL1siNC组细胞IC50值为29.48 μmol·L-1,与对照组相比差异也具有显著性(P < 0.01),表明FGL1 siRNA可增加多西他赛药物的敏感性。
3 讨论恶性肿瘤已经成为严重威胁中国人群健康的主要公共卫生问题之一,其中肺癌位居我国恶性肿瘤发病首位[6-7]。NSCLC的二线化疗标准方案包括多西他赛,其作用机理是加强微管蛋白聚合、抑制微管解聚作用,阻滞细胞于G2与M期,从而破坏肿瘤细胞的有丝分裂与增殖。多西他赛不仅可导致细胞分裂异常、纺锤体结构的损伤而引起细胞死亡[8-9],还可以在内皮细胞内解除对肌动蛋白调节[10],具有间接抑制血管新生功能。同时其还具有免疫调节能力,如增强肿瘤相关抗原的释放,增加细胞的抗原呈递和提高肿瘤细胞的免疫原性[11]。但由于目前多西他赛对NSCLC疗效尚不甚满意,因此寻找新的干预手段以提高肺癌细胞对其敏感性,可能是一种治疗肺癌的新策略和研究重点。
纤维蛋白原样蛋白1(FGL1),也称Hepassocin或肝细胞源性纤维蛋白原相关蛋白(HFREP-1),是Yamamoto等[12]于1993年通过差减杂交的方法在肝癌中筛选的一种过表达基因,属于纤维蛋白原家族,与羧基末端纤维蛋白β和γ亚基具有高氨基酸同源性,但它没有纤维蛋白凝块形成所必须的特征性血小板、交联区域和凝血酶敏感结合位点。目前研究发现,FGL1 mRNA在肺腺癌、前列腺癌和恶性黑色素瘤等多种肿瘤组织中表达均上调。此外,研究发现在小鼠肿瘤模型中体内沉默FGL1基因可促进T细胞的免疫而使肿瘤缩小,且通过基因芯片技术检测到人肺腺癌组织中FGL1呈过表达状态。推测FGL1是淋巴细胞活化基因3(lymphocyte-activation gene-3, LAG-3)的主要免疫抑制配体,FGL1可以通过LAG-3在体内外抑制抗原介导的T细胞应答,造成肿瘤免疫逃逸现象。此外有研究已证实FGL1在胃癌细胞和组织中高表达,且对胃癌的侵袭、迁移和增殖起促进作用[13]。Nayeb-Hashemi等[14]在肝癌研究中发现,FGL1是肝肿瘤细胞抑制因子,其丢失与分化程度低等相关[14]。但FGL1表达与化疗药物敏感性间的关系尚未见报道。本研究发现与正常肺上皮BEAS-2B细胞相比,FGL1在人肺腺癌PC-9细胞中呈高表达,通过转染FGL1siRNA沉默FGL1表达可增加不同浓度多西他赛对人肺腺癌PC-9细胞的增殖抑制作用,且与对照组相比统计学有显著性差异(P < 0.01),表明抑制人肺腺癌PC-9细胞中FGL1的表达有可能成为提高多西他赛药物敏感性的有效策略。
综上所述,FGL1在人肺腺癌PC-9细胞中呈高表达,沉默FGL1表达可增强人肺腺癌细胞PC-9对多西他赛的敏感性,抑制肿瘤细胞增殖。但FGL1对肺癌细胞凋亡、侵袭和迁移有何影响及可能的信号转导机制仍需要进一步研究。
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