2. 武警湖北总队医院神经外科,湖北 武汉 430061;
3. 湖北科技学院基础医学院,湖北 咸宁 437100
2. Dept of Neurosurgery, Hospital of Hubei Province Armed Police Corps, Wuhan 430061, China;
3. College of Basic Medicine, Hubei University of Science and Technology, Xianning Hubei 437100, China
学习能力障碍(learning disability,LD)常出现在儿童期,又称儿童学习困难,最近美国《精神障碍诊断与统计手册(第五版)》将其定义为神经发育障碍,是世界各国普遍存在并引起广泛关注的儿童疾病之一。有研究指出[1],约3%的神经发育障碍是由环境污染物暴露直接引起,另有25%是由广泛界定的环境因素与遗传易感性之间的相互作用导致。邻苯二甲酸二丁酯(dibutyl phthalate,DBP)作为一类典型的具有神经毒性的持久性有机污染物,可通过日常饮食、吸入和皮肤接触等途径影响儿童的学习、记忆能力[2-3]。Cho等[2]的流行病学研究提示,DBP暴露可明显降低小学生的学习成绩和智商。一些研究证实,孕期DBP暴露可持续诱发儿童的LD[3]。Wojtowicz等[4]研究揭示,DBP暴露所致儿童LD的关键在于:DBP可通过孕妇胎盘和婴幼儿血脑屏障,导致脑海马神经元凋亡,但其机制有待进一步阐明。
细胞外调节蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)主要包括ERK1和ERK2,与细胞凋亡、细胞增殖等重要生理过程存在联系[5],ERK1/2通路活化可能参与DBP诱导的海马神经元凋亡。有资料显示[6],ERK1/2通路活化涉及的内源性细胞凋亡与线粒体通透性增加(胞内Ca2+增加)、细胞色素C(cytochrome C,Cyt C)释放、caspase-3的激活密切相关。尼莫地平(nimodipine,Nim)作为第2代二氢吡啶类Ca2+拮抗剂,在脑相关疾病治疗中具有较大的临床应用价值。近年资料表明[7],Nim对神经元有直接作用,具有神经和精神药理活性,可保护和促进记忆、智力恢复,但目前尚未见报道Nim对DBP所致学习记忆障碍的作用。本实验拟探究Nim对DBP所致KM小鼠学习记忆障碍的拮抗作用及其可能机制。
1 材料与方法 1.1 试剂与仪器DBP(纯度≥99.6%,货号84742)、Nim (纯度≥98%,货号N149)、Hoechst 33258荧光染料,均购自美国Sigma-Aldrich;TUNEL细胞凋亡原位试剂盒(南京凯基生物技术公司);钙调蛋白(calmodulin,CaM)、钙/钙调素依赖性蛋白激酶Ⅱ(calcium/calmodulin dependent protein kinase Ⅱ,CaMKII)、蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)、Cyt C、caspase-3酶联免疫试剂盒,均购自美国eBioscience;β-actin抗体(Abcam公司,货号ab37168);ERK(货号4695)、p-ERK(货号4370)抗体,均购自国CST。EthoVision XT Version 12.0实验动物神经行为记录仪(荷兰Noldus);蛋白电泳及转膜系统(美国Bio-Rad);凝胶成像及分析系统(英国Syngene);RM2245切片机(德国LEICA);BX53显微镜(日本Olympus);ELx800酶标仪(美国Bio-Tek)。
1.2 实验动物SPF级♂KM小鼠,体质量(18±1)g,购自湖北省实验动物研究中心,许可证号:SYXK(鄂)2015-0052。所有小鼠均饲养于SPF级标准动物房内,提供自由饮食,房间温度保持在(20~25) ℃,湿度为50%~70%,光照/黑暗周期为12 h。
1.3 实验分组与处理36只KM小鼠随机分成4组:对照组、50 mg·kg-1 DBP组、2 mg·kg-1 Nim组、50 mg·kg-1 DBP+2 mg·kg-1 Nim组(DBP+Nim)。DBP先用Tween 80助溶,再用生理盐水稀释至终浓度,DBP剂量及灌胃给药途径参考Yan等报道[8],Nim剂量及腹腔给药途径参考Karande等报道[9]。给药处理如下:实验期间每天上午固定时间给药,DBP组小鼠每天灌胃50 mg·kg-1 DBP 1次,给药体积为10 mL·kg-1,连续给药28 d;DBP+Nim组小鼠每天腹腔注射2 mg·kg-1 Nim 1次,30 min后再灌胃给予50 mg·kg-1 DBP,连续给药28 d。
1.4 指标与方法 1.4.1 Morris水迷宫(morris water maze, MWM)实验MWM实验选用直径为100 cm圆桶形水箱,水深20 cm,水温控制范围(23±1)℃,逃逸平台位于SW象限的正中央,距离水面0.5 cm。小鼠的游泳轨迹等数据由水池正上方的摄像机记录,影像数据记录传入计算机,通过EthoVision软件分析。小鼠于给药d 22~26进行水迷宫定向航行训练,d 27为遗忘期,d 28撤掉平台后,进行空间探索实验,检测小鼠寻找目标平台的时间,记为逃逸潜伏期(s)。
1.4.2 脑海马CA1区切片病理学观察实验取材的脑海马组织用4%多聚甲醛固定,常规脱水,石腊包埋切片,进行苏木精-伊红(HE)染色和Nissl染色,显微镜下观察脑海马组织CA1的病理变化,拍片(×400倍)。
1.4.3 脑海马CA1区Hoechst 33258荧光染色脑海马组织CA1区切片经工作浓度为5 mg·L-1 Hoechst 33258荧光染液,染色5 min,用PBS水洗两遍后,置于荧光显微镜下观察,拍片(×200倍)。
1.4.4 脑海马CA1区TUNEL染色脑海马组织CA1区切片用二甲苯浸洗2次,每次5 min,脱蜡后用梯度乙醇(100%、95%、90%、80%、70%)至水,经蛋白酶K工作液(20 mg·L-1)在室温下处理15 min,PBS漂洗2次;加50 μL TUNEL反应混合液(阴性对照组仅加50 μL荧光素标记的dUTP液)于标本上,暗湿盒中37 ℃孵育60 min。PBS漂洗后,加100 μL DAB混合液(50 μL DAB+50 μL DAB底物缓冲液+50 μL H2O2+950 μL三蒸水)10 min显色,荧光显微镜下观察,拍片(×200倍)。
1.4.5 Western blot检测脑海马ERK、p-ERK蛋白表达脑海马用预冷的PBS缓冲液漂洗2~3次,去除血污,剪成小块置于匀浆器中。加入10倍于组织体积的蛋白提取试剂,冰浴彻底匀浆。将匀浆液转移至离心管中,振荡。冰浴30 min,期间用移液器反复吹打,确保匀浆液完全裂解。4 ℃、12 000 r·min-1离心5 min,收集上清,即为总蛋白溶液,测定样品蛋白浓度。10% SDS-PAGE电泳分离蛋白,转至PVDF膜上,加一抗封闭缓冲液室温封闭1 h,再分别加入一抗4 ℃过夜。用TBST洗膜3次,每次5 min,再加入二抗,室温孵育30 min,ECL显影。胶片扫描后,用AlphaEaseFC软件分析目标带的光密度值。
1.4.6 脑海马CaM、CaMKII、PKC、Cyt C及caspase-3水平的检测小鼠经称重后,取脑海马组织置于预冷PBS(pH 7.4)中漂洗,滤纸拭干,称重后置于匀浆器中,加预冷的PBS制成10%匀浆液,4 ℃、10 000×g离心10 min后取上清,待检。取脑海马组织匀浆上清液,按照ELISA试剂盒说明,测定CaM、CaMKII、PKC、Cyt C及caspase-3水平。
1.5 统计学分析实验数据均用x±s表示,采用GraphPad Prism 5.0软件进行统计分析,组间差异采用单因素方差分析(one-way ANOVA)结合Tukey检验比较。
2 结果 2.1 Nim改善DBP对小鼠学习记忆的影响与对照组比较,50 mg·kg-1 DBP组小鼠的潜伏期明显上升(P < 0.05);与50 mg·kg-1 DBP组比较,DBP+Nim组小鼠的潜伏期有一定程度下降。小鼠60 s内寻找逃逸平台的游泳轨迹热点见Fig 1,DBP组小鼠的轨迹较少出现在目标象限,游泳路径没有目的性,且无规律;而DBP+Nim组小鼠在目标象限的轨迹有所增加。
2.2 Nim降低DBP暴露后小鼠脑海马的Ca2+水平各组小鼠脑海马组织的CaM、CaMKII及PKC水平可反映胞内Ca2+水平。Tab 1结果显示,与对照组比较,DBP组小鼠脑海马CaM、CaMKII水平下降,PKC水平上升,差异均有统计学意义(P < 0.01)。与DBP组比较,DBP+Nim组小鼠脑海马组织中CaM、CaMKII水平明显上升(P < 0.01,P < 0.05),PKC水平明显下降(P < 0.05)。
Group | CaM/mg·L-1 | CaMKII/μg·L-1 | PKC/ng·L-1 |
Control | 58.94±2.43 | 35.67±0.96 | 1190.00±206.04 |
DBP(50 mg·kg-1) | 39.13±2.13** | 23.98±1.01** | 2028.33±184.78** |
Nim(2 mg·kg-1) | 55.16±0.66 | 34.62±1.54 | 1230.83±165.50 |
DBP+Nim | 51.77±1.83# | 29.92±1.36# | 1337.00±102.09# |
**P < 0.01 vs control; #P < 0.05 vs DBP |
ERK未活化时分布在细胞质内,活化形式磷酸化ERK1/2 (p-ERK1/2)转位到核内,p-ERK1/2是ERK通路活化的主要标志。如Fig 2所示,各组小鼠脑海马ERK表达未见明显变化;与对照组比较,DBP组小鼠脑海马p-ERK表达水平明显上调(P < 0.01);与DBP组比较,DBP+Nim组小鼠脑海马p-ERK1/2表达量下降(P < 0.05)。
2.4 Nim减轻DBP暴露后小鼠脑海马CA1神经细胞的损伤脑系数的结果见Tab 2,与对照组比较,DBP组小鼠脑系数明显降低(P < 0.05),经Nim处理后,DBP+Nim组小鼠脑系数有一定程度增加。Fig 3的HE染色结果显示,对照组小鼠脑海马CA1区的锥体神经细胞形态保持完好,呈多角形且排列整齐,边缘清晰;DBP组小鼠脑海马出现了损伤特征,锥体细胞肿胀变形,顶状树突变短或消失;经Nim处理后,DBP+Nim组小鼠脑海马锥体细胞虽仍表现出一定程度的损伤,但组织病理学的改变如肿胀变形、顶状树突变短或消失等损伤细胞的数量明显减少。Nissl染色结果显示,与对照组比较,DBP组小鼠脑海马神经细胞内Nissl小体大量缺失,细胞结构受到一定程度的破坏;经Nim处理后,DBP+Nim组Nissl小体缺失的现象在给予Nim保护后有所缓解。
Group | Pre-exposure weight/g | Post-exposure brain coefficient/% |
Control | 17.86±0.44 | 1.23±0.029 |
DBP(50 mg·kg-1) | 17.73±0.83 | 1.18±0.031* |
Nim(2 mg·kg-1) | 16.74±0.38 | 1.29±0.074 |
DBP+Nim | 17.25±0.59 | 1.21±0.028 |
*P < 0.05 vs control |
由Tab 3可知,与对照组比较,DBP组小鼠脑海马Cyt C、caspase-3水平明显上升(P < 0.01);经Nim处理后,与DBP组比较,DBP+Nim组小鼠脑海马Cyt C、caspase-3水平明显下降(P < 0.05)。Fig 4的Hoechst 33258染色结果显示,DBP组小鼠脑海马细胞核或细胞质内可见浓染致密的颗粒块状荧光,数量明显多于对照组,且荧光强度有明显性增加;经Nim处理后,DBP+Nim组小鼠脑海马CA1区荧光强度有所减弱。Fig 5的TUNEL染色结果显示,DBP组小鼠脑海马CA1区带有TUNEL荧光标记的神经元,其数量明显多于对照组;经Nim处理后,与DBP组比较,DBP+Nim组小鼠脑海马CA1区凋亡细胞数量有一定程度减少,凋亡水平明显降低。
Group | Cyt C/nmol·L-1 | Caspase-3/pmol·L-1 |
Control | 235.57±28.70 | 15.02±4.39 |
DBP(50 mg·kg-1) | 424.65±12.85** | 33.37±5.30** |
Nim(2 mg·kg-1) | 156.42±7.61 | 14.38±3.28 |
DBP+Nim | 206.59±9.67# | 17.91±2.09# |
**P < 0.01 vs control; #P < 0.05 vs DBP |
细胞凋亡在神经元发育过程中起重要作用,凋亡缺陷可能是各种神经退行性疾病的基础。大脑是接受外源刺激的一个重要靶器官,而海马是学习和记忆的关键功能区,海马神经元的损伤、凋亡以及信号通路的激活等,在导致LD过程中起重要作用[10]。既往研究表明[6],细胞内钙离子浓度的升高是细胞发生凋亡的一个重要条件。另有研究报道[7],Nim是一种L型钙通道拮抗剂,能减少病理状态下过度的Ca2+,可明显减轻受试动物的空间学习记忆障碍,抑制海马CA1区神经元的丢失。本实验结果表明,DBP可增加Ca2+浓度,激活PKC-ERK1/2通路,导致KM小鼠脑海马组织CA1区神经元细胞发生凋亡,而Nim作为Ca2+拮抗剂可减少Ca2+浓度,从而抑制ERK1/2通路的活化,降低DBP对KM小鼠脑组织CA1区神经元的损伤及凋亡,具有一定的神经保护作用。
体内外研究均显示[11],胞内Ca2+浓度与细胞凋亡密切相关。CaM是细胞内一种钙结合蛋白,能敏感地捕获Ca2+,每4个Ca2+可被一分子CaM结合;当胞内游离的Ca2+浓度增加,无活性的CaM结合Ca2+而被活化,激活相关靶蛋白,从而参与介导细胞凋亡、细胞短期和长期记忆等生命活动。CaMKII广泛分布在神经组织中,在海马内约占蛋白总量的1%~2%,它的主要作用是能感受突触后钙离子水平的变化,维持突触可塑性和发挥学习记忆功能。PKC是G蛋白偶联受体系统中的效应物,在未受刺激的细胞中,PKC主要分布在细胞质中,呈非活性构象;一旦有第二信使如Ca2+的存在,PKC将成为膜结合的酶,一方面它能激活细胞质中的酶如ERK1/2,参与生化反应的调控,同时也能作用于细胞核中的转录因子,参与基因表达的调控,在细胞的转录激活等方面具有重要作用。本研究结果显示,50 mg·kg-1 DBP组小鼠脑组织CaM、CaMKII含量明显降低,同时PKC水平增加,提示DBP可致细胞内Ca2+浓度增加,这与蒋昀等[12]报道一致。
ERK1/2通路活化与中枢神经系统的海马组织神经细胞的凋亡有重要关联[13]。Zhai等[13]指出,ERK1/2参与海马突触可塑性的形成,在学习记忆过程中起重要作用。另一方面,ERK1/2通路可被细胞内钙离子信号所激活,直接参与内源性细胞凋亡过程。本实验结果表明,50 mg·kg-1 DBP组小鼠脑海马组织p-ERK1/2蛋白表达水平明显高于对照组,提示DBP可激活ERK1/2通路。
研究证实[14],Cyt C释放是早期凋亡发生的重要事件,caspase-3是介导细胞凋亡过程中的关键执行分子,两者水平可反映早期细胞凋亡程度。本实验结果表明,50 mg·kg-1 DBP组小鼠脑海马组织Cyt C、caspase-3含量明显高于对照组;HE与Nissl染色结果也显示,50 mg·kg-1 DBP组小鼠脑海马组织CA1区锥体神经元出现了损伤,伴有Nissl小体缺失。根据Hoechst 33258以及TUNEL荧光结果进一步显示,DBP暴露后,小鼠脑海马组织CA1区的细胞凋亡水平明显升高。以上结果提示,DBP暴露可激活caspase-3细胞凋亡途径,导致小鼠脑组织神经细胞的损伤及凋亡。
脑海马CA1区的病理学改变与小鼠神经行为学的变化密切相关,MWM实验主要用于测试实验动物对空间位置感和方向感(空间定位)的学习记忆能力。本实验MWM的结果表明,50 mg·kg-1 DBP组小鼠的逃逸潜伏期明显高于对照组,出现在目标象限的游泳轨迹较少,而经Nim处理后,DBP+Nim组小鼠的学习记忆能力有一定程度改善。其他动物实验表明,Nim可通过抑制胞内Ca2+浓度的增加,下调全脑放疗后细胞凋亡,减轻迟发性认知功能障碍,对记忆障碍有改善作用[15]。本实验结果提示,Nim可能在一定程度上拮抗DBP引起的胞内Ca2+浓度的增加,缓解DBP诱导的脑海马CA1区神经细胞损伤,从而发挥神经保护作用。
综上所述,DBP暴露可影响小鼠脑海马神经细胞内Ca2+相关蛋白,上调p-ERK1/2表达,诱发或加重小鼠的学习记忆障碍。Nim作为一种选择型钙拮抗剂,能改善DBP所致小鼠的学习记忆下降,或与其可拮抗胞内Ca2+浓度增加,降低DBP暴露后小鼠脑组织p-ERK1/2、caspase-3水平有关。
( 致谢: 本实验动物给药操作在湖北科技学院基础医学院完成,感谢暨南大学中医学院陈刚教授的指导。)
[1] |
Landrigan P J, Lambertini L, Birnbaum L S. A research strategy to discover the environmental causes of autism and neurodevelopmental disabilities[J]. Environ Health Persp, 2012, 120(7): 258-60. |
[2] |
Cho S C, Bhang S Y, Hong Y C, et al. Relationship between environmental phthalate exposure and the intelligence of school-age children[J]. Environ Health Persp, 2010, 118(7): 1027-32. doi:10.1289/ehp.0901376 |
[3] |
Kobrosly R W, Evans S, Miodovnik A, et al. Prenatal phthalate exposures and neurobehavioral development scores in boys and girls at 6-10 years of age[J]. Environ Health Persp, 2014, 122(5): 521-8. doi:10.1289/ehp.1307063 |
[4] |
Wojtowicz A K, Szychowski K A, Wnuk A, et al. Dibutyl phthalate (DBP)-induced apoptosis and neurotoxicity are mediated via the aryl hydrocarbon receptor (AhR) but not by estrogen receptor alpha (ERα), estrogen receptor beta (ERβ), or peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPARγ) in mouse cortical neurons[J]. Neurotox Res, 2017, 31(1): 77-89. doi:10.1007/s12640-016-9665-x |
[5] |
Jr R R. ERK1/2 MAP kinases: structure, function, and regulation[J]. Pharmacol Res, 2012, 66(2): 105-43. doi:10.1016/j.phrs.2012.04.005 |
[6] |
Abdoulazize S, Buquet C, Li H, et al. Integration of Ca2+ signaling regulates the breast tumor cell response to simvastatin and doxorubicin[J]. Oncogene, 2018, 37(36): 4979-93. doi:10.1038/s41388-018-0329-6 |
[7] |
Ming H, Liu Z, Lv P, et al. Nimodipine activates neuroprotective signaling events and inactivates autophages in the VCID rat hippocampus[J]. Neurol Res, 2017, 39(10): 1-6. |
[8] |
Yan B, Guo J, Liu X, et al. Oxidative stress mediates dibutyl phthalate induced anxiety-like behavior in Kunming mice[J]. Environ Toxicol Phar, 2016, 45: 45-51. doi:10.1016/j.etap.2016.05.013 |
[9] |
Karande V B., Bende M M. Study of cognitive function enhancing effect of nimodipine by using morris water maze test[J]. Int J Med Sci, 2013, 3(1&2): 6-9. |
[10] |
Whitlock J R, Heynen A J, Shuler M G, et al. Learning induces long-term potentiation in the hippocampus[J]. Science, 2006, 313(5790): 1093-7. doi:10.1126/science.1128134 |
[11] |
Hajnóczky G, Davies E, Madesh M. Calcium signaling and apoptosis[J]. Biochem Bioph Res Co, 2003, 304(3): 445-54. doi:10.1016/S0006-291X(03)00616-8 |
[12] |
蒋昀, 夏强. 邻苯二甲酸二丁酯的收缩血管作用及其机制[J]. 中国药理学通报, 2014, 30(2): 199-202. Jiang Y, Xia Q. Vasoconstriction effect of di-n-butyl phthalate and its underlying mechanism[J]. Chin Pharmacol Bull, 2014, 30(2): 199-202. doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2014.02.012 |
[13] |
Zhai S, Ark E D, Parrabueno P, et al. Long-distance integration of nuclear ERK signaling triggered by activation of a few dendritic spines[J]. Science, 2013, 342(6162): 1107-11. doi:10.1126/science.1245622 |
[14] |
楼烨亮, 陈梦静, 王可, 等. 哈巴苷对急性脑缺血及线粒体介导的Caspase依赖性细胞凋亡信号通路的影响[J]. 中国药理学通报, 2017, 33(4): 563-7. Lou Y L, Chen M J, Wang K, et al. Effects of harpagide on cerebral ischemia and mitochondria mediated Caspase dependent apoptotic signaling pathway in mice[J]. Chin Pharmacol Bull, 2017, 33(4): 563-7. doi:10.3969/j.issn.1001-1978.2017.04.022 |
[15] |
Tong J, Li J, Zhang Q S, et al. , Delayed cognitive deficits can be alleviated by calcium antagonist nimodipine by downregulation of apoptosis following whole brain radiotherapy[J]. Oncol Lett, 2018, 16(2): 2525-32. |