2. 江苏省中药药效与安全性评价重点实验室, 江苏 南京 210023;
3. 南京中医药大学附属苏州市中医医院苏州市吴门医派研究院, 江苏 苏州 215003
江国荣(1963-),男,博士,主任中药师,研究方向:中药药理学,通讯作者,E-mail:guorongjiang@hotmail.com
2. Jiangsu Key Laboratory for Pharmacology and Safety Evaluation of Chinese Materia Medica, Nanjing 210023, China;
3. Suzhou Wu Men Yi Pai Research Institute, the Affiliated Suzhou Hospital of TCM of Nanjing University of TCM, Suzhou Jiangsu 215003, China
支气管哮喘(简称哮喘)是一种由多种炎性细胞及组分参与的慢性炎症性疾病[1],严重威胁人们的生活质量。已有研究发现多种蛋白参与了支气管哮喘的发生与发展,其中尤以E-钙粘蛋白(E-cadherin,E-cad)的作用最为明显。E-cad是一类同源细胞间黏附的钙离子依赖性跨膜糖蛋白,它不仅介导蛋白与蛋白之间的相互作用,同时对于维持上皮细胞形态、组织完整及气道重塑发挥重要作用[2]。诸多研究表明,E-cad的异常表达与多种炎症密切相关,如胆管炎[3]、膀胱炎[4]及慢性牙周炎[5]等,且进一步研究发现,E-cad在这些炎症中的表达均呈现下调趋势。近年来,有研究发现E-cad在哮喘患者尤其是支气管哮喘中的表达明显降低[6, 7, 8],表明E-cad在支气管哮喘的发生发展过程中发挥了重要作用。本文对近年来E-cad在支气管哮喘中作用研究进展进行综述,并对E-cad异常表达介导支气管哮喘发生与发展的分子机制进行概述,为后续研究及临床治疗提供重要参考。
1 E-钙粘蛋白及其主要生理功能E-cad是一种I型跨膜糖蛋白,分子质量约120 ku,定位于人染色体16q22.1区域,广泛分布于上皮细胞表面,能够介导黏附连接蛋白(Adherens Junctions,AJs)连接相邻的细胞并使细胞-细胞间的连接成熟。研究发现,E-cad是由一个上皮细胞间同型的、钙离子依赖黏着的胞外域和一个高度保守的胞质尾组成[9]。在细胞膜上,E-cad的胞质区域只有和锚蛋白P120 catenin、β-catenin以及α-catenin结合,进而与微管网和肌动蛋白细胞骨架形成接口,从而使得其处于结构上的稳定状态。E-cad除了能维持细胞的正常结构,还能通过紧密连接蛋白(Zonula Occludens 1,ZO-1)及相关核酸结合蛋白等多种转录因子调节细胞的增殖和分化[10]。与此同时,研究还发现E-cad还能够为紧密连接蛋白(Tight Junctions,TJs)等连接复合物的形成提供必要的结构。研究显示,当支气管上皮层中的E-cad异常表达时,会引起TJs的组成蛋白ZO-1、occludin及claudins发生异位,进而导致TJs结构发生扭曲[11]。该研究表明,气道上皮细胞中E-cad在建立和维持细胞-细胞间的连接中起到不可或缺的作用。
2 E-钙粘蛋白异常表达介导支气管哮喘的发生与发展研究发现,哮喘患者中分化的支气管细胞连接分子E-cad和ZO-1的表达较正常人明显降低[11, 12],提示E-cad参与并介导了支气管哮喘的发生发展过程。de 等[13]研究表明,在哮喘患者中E-cad蛋白表达水平越低,屏障功能缺失就越明显,而屏障功能缺失又会进一步促进哮喘的发生与发展。Ierodiakonou等[14]对临床138名哮喘患者进行支气管活检,研究结果显示,这些哮喘患者中的E-cad表达较健康者明显偏低,进一步研究发现,E-cad能够介导支气管的气道重塑,其表达偏低影响了气道的重塑,进而加重支气管哮喘的进展。Yuksel等[15]对临床上哮喘患者肺呼出气冷凝物中E-cad进行检测,并将E-cad水平作为上皮损伤的一个指标。结果表明,哮喘患者肺呼出气冷凝物中E-cad的表达较健康者明显减少,表明哮喘患者的上皮受到了一定程度的损伤。Jia等[16]采用卵白蛋白(Ovalbumin,OVA)诱导大鼠构建哮喘模型并通过Western blot检测哮喘大鼠肺组织匀浆中E-cad表达,结果显示模型组中E-cad的表达较正常对照组明显降低,并且研究还发现模型组气道组织及平滑肌较正常组明显增厚。进一步研究发现,哮喘大鼠在给予卡介苗治疗后,其E-cad的表达较模型组明显上调,气道重塑得到改善。另有研究发现,在用甲苯二异氰酸酯诱发哮喘的小鼠中,其E-cad的分布明显异常,而预先给予地塞米松后则能够明显缓解E-cad的免疫反应性[17]。综上表明,E-cad的异常分布和表达在支气管哮喘的发生与发展进程中起到重要作用。
3 E-钙粘蛋白异常表达介导哮喘发生与发展的主要分子机制 3.1 EMT介导E-cad异常表达并促进哮喘的发生上皮间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是指上皮细胞通过特定程序转化为具有间质表型细胞的生物学过程。目前,有关EMT调控E-cad的表达已在胚胎发育和上皮肿瘤中被广泛研究,同时研究发现,Snail家族成员Snail-1 (Sna-1),Slug (Sna-2)和Zeb家族抑制转录因子均可调控E-cad的表达,且主要是下调E-cad的表达[18]。深入研究表明,EMT主要参与以下病理过程,包括异常上皮的修复[19]、特发性肺纤维化中的瘢痕组织形成[20]以及闭塞性细支气管炎[21]。Fischer等[22]采用尘螨诱导构建小鼠实验性哮喘模型并检测上皮细胞中EMT相关指标的变化。结果表明,上皮细胞中E-cad的表达明显减少,而波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白的表达却有所增加。众所周知,波形蛋白和α-平滑肌肌动蛋白均为EMT的标志物,因此上述结果提示EMT过程可能参与了哮喘的进程。另有研究表明,EMT过程介导E-cad表达下调可引起β-catein与信号转导分子Smads结合增多,进而促进细胞骨架发生重排并引起气道重塑[23]。综上所述,EMT过程介导了哮喘的发生与发展,其下游基因的活化则会进一步促进哮喘的进展。
3.2 表皮生长因子受体介导E-cad异常表达并促进哮喘的发生近年来,有研究发现哮喘病人气道中表皮生长因子(epidermal growth factor receptor,EGFR)的活性及表达均有所升高,这被认为可能是导致E-cad介导屏障功能缺失的一个潜在因素[24]。Heijink等[25]研究表明,利用siRNA沉默E-cad后,其介导的细胞连接及屏障功能功能明显减弱,并引起EGFR的磷酸化明显增加,进而磷酸化的EGFR进一步激活其下游MEK/ERK-1/2和p38 MAPK通路,导致Th2型炎症反应趋化因子TRAC和胸腺基质淋巴生成素TSLP表达增加,从而促进哮喘的发生与发展。
3.3 RhoA/Rho-kinase信号介导E-cad异常表达并促进哮喘的发生Rho激酶是GTP结合蛋白RhoA的效应分子,它的生理功能主要包括介导平滑肌的收缩、细胞的迁移和增殖。目前研究显示RhoA/Rho-kinase相关卷曲螺旋形成蛋白激酶信号参与介导哮喘、肺动脉高压、特发性肺纤维化及肺癌等多种肺部疾病的病理生理过程[26]。Forteza等[27]研究显示,正常人支气管上皮细胞接触香烟烟雾后,其E-cad的表达和跨上皮电阻明显减少。进一步研究发现,香烟烟雾生成的透明质酸片段可与其受体结合并能通过RhoA/Rho信号来抑制E-cad蛋白及基因的表达,从而导致上皮细胞-细胞之间连接的缺失,进而促进了哮喘的发生发展。与此同时,Kume等[28]研究表明,RhoA蛋白可以通过介导平滑肌的收缩性,进而提高气道的反应性,并通过调控E-cad蛋白的表达介导哮喘的进程。
4 小结支气管哮喘作为一种临床常见的气道慢性炎症,近年来其发病率逐渐升高,对人们的健康产生很大威胁。多种因素参与并介导了该病的发生发展过程,其中E-cad的异常表达在该病的进程中发挥重要作用。本文对近年来E-cad的异常表达在支气管哮喘中作用研究进展进行了综述,加深了我们对于支气管哮喘生理、病理过程的理解。
目前临床上关于哮喘的治疗主要以糖皮质激素和β2受体激动剂单用或联合用药为主[29],但这些治疗方法不能从根本上达到治愈哮喘的目的,这使得找到根治哮喘的方法迫在眉睫。已有研究发现E-cad的异常表达介导了哮喘的发生与发展,那么临床上针对E-cad开展哮喘的治疗可以采取哪些治疗策略呢?根据上述E-cad介导哮喘发生发展的机制研究,我们认为主要可以采用以下3种方法开展对哮喘的治疗:(1) 针对EMT在介导哮喘发生发展过程中的重要作用,临床上可通过采用EMT抑制剂或阻断剂阻断EMT过程[30],并且联用糖皮质激素或β2受体激动剂,排除了EMT过程对哮喘过程的影响,使得气道重塑的过程得以缓解或抑制,从而达到治疗哮喘的目的;(2) 联用EMT抑制剂和EGFR抑制剂,通过阻断介导哮喘的两个主要过程,首先实现对哮喘发病病机的控制,进而辅以糖皮质激素或β2受体激动剂进行治疗,从而达到治疗哮喘的效果;(3) 联合应用EMT抑制剂、EGFR抑制剂和RhoA/Rho激酶抑制剂,通过全面抑制导致哮喘的主要机制和其代偿效应,进而实现治疗哮喘的目的。
当然,目前对于E-cad在支气管哮喘中作用的研究还不够深入,同时E-cad介导调控支气管哮喘进程的深入机制仍有待进一步研究。综上所述,笔者认为E-cad有望成为防治支气管哮喘的新靶点。
[1] | 延光海, 金光玉, 朴红梅,等. 雷帕霉素对哮喘小鼠气道重塑的影响[J].中国药理学通报, 2013,29(7):942-6. Yan G H, Jin G Y, Piao H M, et al. Effects of rapamycin on airway remodeling in asthmatic mice[J]. Chin Pharmacol Bull, 2013,29(7):942-6. |
[2] | Wang M F,Kuo S H,Huang C H, et al. Exposure to environmental tobacco smoke, human E-cadherin C-160A polymorphism, and childhood asthma[J]. Ann Allergy Asthma Immunol, 2013,111(4):262-7. |
[3] | Nakagawa H,Hikiba Y,Hirata Y, et al. Loss of liver E-cadherin induces sclerosing cholangitis and promotes carcinogenesis[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2014,111(3):1090-5. |
[4] | Shie J H, Kuo H C. Higher levels of cell apoptosis and abnormal E-cadherin expression[J]. BJU Int, 2011,108(2 Pt 2):E136-41. |
[5] | Loo W T,Jin L,Cheung M N, et al. Epigenetic change in E-cadherin and COX-2 to predict chronic periodontitis[J]. J Transl Med, 2010,8:110. |
[6] | Wang J, Li F, Yang M, et al. FIZZ1 promotes airway remodeling through the PI3K/Akt signaling pathway in asthma[J]. Exp Ther Med, 2014,7(5):1265-70. |
[7] | Yang Z C, Yi M J,Ran N, et al. Transforming growth factor-β1 induces bronchial epithelial cells to mesenchymal transition by activating the Snail pathway and promotes airway remodeling in asthma[J]. Mol Med Rep, 2013,8(6):1663-8. |
[8] | Hackett T L, de Bruin H G, Shaheen F, et al. Caveolin-1 controls airway epithelial barrier function. Implications for asthma[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 2013,49(4):662-71. |
[9] | Nawijn M C,Hackett T L,Postma D S, et al. E-cadherin:gatekeeper of airway mucosa and allergic sensitization[J]. Cell, 2011, 32(6):248-55. |
[10] | Bajpai S, Correia J, Feng Y, et al. α-Catenin mediates initial E-cadherin dependent cell-cell recognition and subsequent bond strengthening[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2008,105(47):18331-6. |
[11] | Tunggal J A, Helfrich I, Schmitz A, et al. E-cadherin is essential for in vivo epidermal barrier function by regulating tight junctions[J]. EMBO J, 2005, 24(6):1146-56. |
[12] | Hackett T L, Shaheen F, Johnson A, et al. Characterization of side population cells from human airway epithelium[J]. Stem Cells, 2008,26(10):2576-85. |
[13] | de Boer W I, Sharma H S, Baelemans S M, et al. Altered expression of epithelial junctional proteins in atopic asthma:possible role in inflammation[J]. Can J Physiol Pharmacol, 2008,86(3):105-12. |
[14] | Ierodiakonou D, Postma D S, Koppelman G H, et al. E-cadherin gene polymorphisms in asthma patients using inhaled corticosteroids[J]. Eur Respir J, 2011,38(5):1044-52. |
[15] | Yuksel H, Turkrli A, Taneli F, et al. E-cadherin as an epithelial barrier protein in exhaled breath condensate[J]. J Breath Res, 2014,8(4):046006. |
[16] | Jia H, Bo J, Liu C, et al. Therapeutic effects of Baculle Cacille-Guerin vaccine on asthma airway remodeling in rats and its mechanism[J]. Zhonghua Yi Xue Za Zhi, 2014, 94(8):617-21. |
[17] | Song J, Zhao H, Dong H, et al. Mechanism of E-cadherin redistrbution in bronchial airway epithelial cells in a TDI-induced asthma model[J]. Toxicol Lett, 2013,220(1):8-14. |
[18] | Peinado H, Olmeda D, Cano A. Snail, Zeb and bHLH factors in tumour progression:an alliance against the epithelial phenotype[J]. Nat Rev Cancer, 2007,7(6):415-28. |
[19] | Kim K K, Wei Y, Szekeres C, et al. Epithelial cell alpha3beta1 integrin links betacatenin and Smad signaling to promote myofibroblast formation and pulmonary fibrosis[J]. J Clin Invest, 2009, 119(1):213-24. |
[20] | Konigshoff M, Kramer M, Balsara N, et al. WNT1-inducible signaling protein-1 mediates pulmonary fibrosis in mice and is upregulated in humans with idiopathic pulmonary fibrosis[J]. J Clin Invest, 2009,119(4):772-87. |
[21] | Hodge S, Holmes M, Banerjee B, et al. Posttransplant bronchiolitis obliterans syndrome is associated with bronchial epithelial to mesenchymal transition[J]. Am J Transplant, 2009,9(4):727-33. |
[22] | Fischer K D, Agrawal D K. Vitamin D regulating TGF- induced epithelial-mesenchymal transition[J]. Respir Res, 2014,15(1):146. |
[23] | Ijaz T, Pazdrak K, Kalita M, et al. Systems biology approaches to understanding Epithelial Mesenchymal Transition (EMT) in mucosal remodelingand signaling in asthma[J].World Allergy Organ J,2014,7(1):13. |
[24] | Heijink I H, van Oosterhout A, Kapus A. EGFR signaling contributes to house dust mite-induced epithelial barrier dysfunction[J]. Eur Respir J, 2010,36(5):1016-26. |
[25] | Heijink I H, Kies P M, Kauffman H F, et al. Down-Regulation of E-Cadherin in Human Bronchial Epithelial Cells Leads to Epidermal Growth Factor Receptor-Dependent Th2 Cell-Promoting Activity[J]. J Immunol, 2007,178(12):7678-85. |
[26] | Meng Y, Li T, Zhou G S, et al. The angiotensin-converting enzyme 2/angiotensin (1-7)/Mas axis protects against lung fibroblast migration and lung fibrosis by inhibiting the NOX4-derived ROS-mediatedRhoA/Rho kinase pathway[J]. Antioxid Redox Signal, 2015,22(3):241-58. |
[27] | Forteza R M, Casalino-Matsuda S M, Falcon N S, et al. Hyaluronan and layilin mediate loss of airway epithelial barrier function induced by cigarette smoke by decreasing E-cadherin[J]. J Biol Chem, 2012,287(50):42288-98. |
[28] | Kume H. RhoA/Rho-kinase as a therapeutic target in asthma[J]. Curr Med Chem, 2008,15(27):2876-85. |
[29] | 王雯, 陈阳育, 武宝梅,等. 吸入糖皮质激素/长效β2受体激动剂复合制剂治疗中、重度持续支气管哮喘的疗效研究[J].中华哮喘杂志, 2009,3(2):101-6. Wang W, Chen Y Y, Wu B M, et al. Clinical study of treatment with combined corticosteroids and long-acting β2 agonist powder for inhalation in moderate to severe bronchial asthma[J]. Chin J Asthma, 2009,3(2):101-6. |
[30] | Ijaz T, Pazdrak K, Kalita M, et al. Systems biology approaches to understanding Epithelial Mesenchymal Transition (EMT) in mucosal remodeling and signaling in asthma[J]. World Allergy Organ J, 2014,7(1):13. |