文章信息
- 王丽妍, 关毅鸣, 刁宗礼, 黄红东
- WANG Liyan, GUAN Yiming, DIAO Zongli, HUANG Hongdong
- 多肽apelin通过调节去乙酰化酶Sirt3表达抑制急性肾损伤向慢性肾脏病转化
- Apelin inhibits the transition of acute kidney injury to chronic kidney disease by regulating Sirt3 expression
- 中国医科大学学报, 2025, 54(4): 312-317
- Journal of China Medical University, 2025, 54(4): 312-317
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文章历史
- 收稿日期:2024-10-09
- 网络出版时间:2025-04-10 10:53:53
研究[1]显示,全球每年发生急性肾损伤(acute kidney injury,AKI)患者超过1 000万,病死率约为10%;恢复肾功能患者中也有相当高的比例会进展为慢性肾脏病(chronic kidney disease,CKD)。近年来研究[2]发现,肾小管上皮细胞线粒体损伤是AKI的早期病理表现,随着疾病的进展,逐渐出现肾脏纤维化。去乙酰化酶Sirt3对于维持线粒体稳态至关重要[3]。前期研究[4]显示,多肽apelin具有减轻AKI的作用,但其机制尚未完全阐明。本研究采用顺铂刺激体外培养的肾小管上皮细胞和顺铂诱导的AKI小鼠模型,通过外源性补充apelin、敲减Sirt3等方法探讨apelin是否通过调节Sirt3来发挥肾脏保护作用,旨在为揭示AKI向CKD进展的新治疗靶点提供依据。
1 材料与方法 1.1 主要试剂与仪器顺铂、apelin-13、JC-1检测试剂盒(美国Sigma公司),线粒体荧光探针、Lipo2000转染试剂(美国Thermo公司),兔抗人Sirt3抗体(美国CST公司),兔抗人转化生长因子β1(transforming growth factorβ1,TGF-β1)抗体、兔抗小鼠Ⅰ型胶原(typeⅠ collegen,Col-Ⅰ)抗体(英国abcam公司),辣根过氧化物酶标记IgG抗体(北京中杉金桥生物技术有限公司),酶联免疫吸附试验(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)试剂盒(南京建成生物工程公司);MultiSkan3酶标仪(美国Thermo公司),LEICA2016石蜡切片机(德国Leica公司),BX51光学显微镜(日本OLYMPUS公司)。
1.2 细胞培养及分组原代人近端肾小管上皮细胞购自美国ScienCell公司,将其分为5个实验组:对照组、顺铂组、顺铂+ apelin组、顺铂+apelin+Sirt3 siRNA组和apelin组。细胞经复苏后按1 ∶ 4传代,将其置于37 ℃、5% CO2细胞培养箱中静置培养。当细胞长至90%融合时,换用含顺铂(10 µmol/L)和(或)apelin-13(1 µmol/L)的培养基继续孵育48 h,收集各组细胞用于后续实验。
1.3 细胞转染Sirt3 siRNA由上海吉玛制药技术有限公司合成。转染前1 d用不含抗生素的培养基培养,待细胞融合达50%时进行转染。用Opti-MEM分别溶解Lipofectamine 2000转染试剂和siRNA序列,然后混合静置。去除培养基,加入混合后的转染溶液,置于37 ℃培养箱中,6 h后更换新鲜培养基继续培养48 h,荧光显微镜下观察转染情况。转染效率(%)=荧光下细胞数/明场下细胞数×100,转染效率70%~80%为转染成功。
1.4 动物模型建立及分组10周龄雄性C57BL/6J小鼠,体重22~24 g,购自北京维通利华实验动物技术有限公司,在温度(22±1)℃、湿度(55±5)%的SPF级动物实验室饲养。Sirt3敲减腺病毒和空载腺病毒由汉恒生物科技(上海)有限公司合成。设立5个实验组:对照组、顺铂组、顺铂+apelin组、顺铂+apelin+Sirt3敲减组、空载腺病毒组。除对照组和空载腺病毒组外,其他组小鼠一次性腹腔注射顺铂(20 mg/kg)建立AKI模型。顺铂+ apelin-13组小鼠腹腔注射apelin-13(0.1 μg·kg-1·d-1),对照组小鼠腹腔注射等量生理盐水,持续2周;顺铂+ apelin+Sirt3敲减组小鼠尾静脉注射Sirt3敲减腺病毒(2×109 pfu/mL),腹腔注射apelin-13(0.1 μg·kg-1· d-1),持续2周;空载腺病毒组小鼠尾静脉注射空载腺病毒(2×109 pfu/mL)。实验结束留取各组小鼠血液标本,麻醉后处死小鼠并留取肾脏组织。
1.5 线粒体形态观察采用MitoTrackerⓇ试剂盒对细胞线粒体进行染色。实验前在24孔培养板内覆盖盖玻片,进行细胞爬片培养,细胞融合达70%~80%时吸除培养基,加入37 ℃预热的染色工作液,37 ℃、5% CO2条件下孵育15~45 min,洗涤细胞,多聚甲醛固定后利用荧光显微镜进行观察。
1.6 线粒体膜电位检测采用JC-1探针标记细胞线粒体,进行荧光酶标法检测。使用工作液(0.5 mL)重悬细胞,37 ℃、5%CO2培养箱孵育15~30 min后使用300 μL缓冲液重悬细胞。将染色好的细胞转移至黑色96孔板,用荧光酶标仪测量线粒体膜电位。正常线粒体膜电位较高,JC-1聚集在线粒体基质中,荧光呈红色(Ex=585 nm,Em=590 nm);损伤线粒体膜电位下降,JC-1以单体形式存在于胞质中,荧光呈绿色(Ex=514 nm,Em=529 nm)。线粒体膜电位通过红色荧光百分比来表示。
1.7 Western blotting检测蛋白表达PBS洗涤细胞,加入组织裂解液,4 ℃、12 000 g离心30 min。取100 μg蛋白进行12% SDS-PAGE,随后转移至PVDF膜,用5% BSA-PBST封闭1 h。加入兔抗人抗体,于4 ℃孵育过夜,再用辣根过氧化物酶标记的二抗于室温孵育1 h。洗膜后用ECL法显色,以β-tubulin作内参,计算目的蛋白的相对表达量。
1.8 小鼠肾脏组织学观察用4%多聚甲醛固定各组肾脏组织,石蜡包埋切片(厚度3 μm)后进行Masson染色,各组随机挑选5个视野,观察各组肾脏组织的纤维化程度,纤维化程度用阳性染色区域百分比表示。肾组织石蜡包埋切片(厚度5 μm)后进行Col-Ⅰ的免疫组织化学染色,各组随机挑选5个视野,计算阳性染色区域的百分比。
1.9 小鼠肾功能检测各组小鼠血液标本置于EDTA抗凝的真空采血管。4 000 g离心15 min,收集上清液,用ELISA试剂盒检测各组血清肌酐(creatinine,Cr)、血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)水平,操作按试剂盒说明书进行。
1.10 统计学分析利用SPSS 26.0软件进行统计学分析。计量资料采用x±s表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用q检验,P<0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 siRNA转染对Sirt3表达的影响Western blotting结果显示,与对照组比较,Sirt3 siRNA转染组细胞Sirt3蛋白的表达量明显降低,说明Sirt3 siRNA模型制备成功,见图 1。
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图 1 siRNA转染对Sirt3表达的影响 Fig.1 Impact of siRNA transfection on Sirt3 expression |
2.2 各组肾小管上皮细胞线粒体形态比较
细胞经过MitoTrackerⓇ试剂盒染色后,具有活性的线粒体会摄取携带红色荧光的物质。如图 2所示,对照组细胞线粒体分布在细胞核周围,呈条带状,相互连结成网。与对照组比较,顺铂组细胞核周围的红色区域减少,荧光强度减弱,提示线粒体数量和形态异常。与顺铂组比较,顺铂+apelin组细胞线粒体的染色有所改善。与顺铂+apelin组比较,顺铂+ apelin+Sirt3 siRNA组细胞线粒体数量和形态异常,apelin的改善作用受到显著抑制。apelin组线粒体的形态与对照组比较无明显差异。
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A, control group; B, cisplatin group; C, cisplatin+apelin group; D, cisplatin+apelin+Sirt3 siRNA group; E, apelin group. 图 2 各组肾小管上皮细胞线粒体形态比较×1 000 Fig.2 Comparison of mitochondrial morphology in renal tubular epithelial cells across experimental groups×1 000 |
2.3 各组肾小管上皮细胞线粒体膜电位比较
荧光酶标法检测结果显示,对照组、顺铂组、顺铂+apelin组、顺铂+apelin+Sirt3 siRNA组、apelin组细胞线粒体膜电位分别为(96.33±1.51)%、(61.29± 7.25)%、(86.66±5.90)%、(65.57±6.31)%和(95.01± 3.92)%。与对照组比较,顺铂组肾小管上皮细胞线粒体膜电位显著降低(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂+apelin组线粒体膜电位明显改善(P<0.05)。与顺铂+apelin组比较,顺铂+apelin+Sirt3 siRNA组apelin对线粒体膜电位的保护作用明显削弱(P<0.05)。见图 3。
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A, control group; B, cisplatin group; C, cisplatin+apelin group; D, cisplatin+apelin+Sirt3 siRNA group; E, apelin group. 图 3 各组肾小管上皮细胞线粒体膜电位比较 Fig.3 Comparison of mitochondrial membrane potentials in renal tubular epithelial cells across experimental groups |
2.4 Apelin抑制顺铂诱导的促纤维化细胞因子TGF-β1表达
Western blotting结果显示,对照组、顺铂组、顺铂+apelin组、顺铂+apelin+Sirt3 siRNA组、apelin组TGF-β1表达量分别为1.00±0.00、4.50±0.41、1.84± 0.33、4.19±0.44、1.18±0.21。与对照组比较,顺铂组TGF-β1表达明显升高(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂+apelin组TGF-β1表达显著抑制(P<0.05)。与顺铂+apelin组比较,顺铂+apelin+Sirt3 siRNA组apelin对TGF-β1表达的抑制作用明显削弱(P<0.05)。见 图 4。
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1, control group; 2, cisplatin group; 3, cisplatin+apelin group; 4, cisplatin+ apelin+Sirt3 siRNA group; 5, apelin group. 图 4 Western blotting检测各组肾小管上皮细胞TGF-β1表达 Fig.4 TGF-β1 expression in renal tubular epithelial cells across experimental groups by Western blotting |
2.5 Apelin减轻顺铂诱导的AKI小鼠肾间质纤维化和胶原的表达
Masson染色结果显示,与对照组比较,顺铂组小鼠出现明显肾小管萎缩和肾间质纤维化(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂+apelin组小鼠肾脏纤维化程度减轻(P<0.05)。与顺铂+apelin组比较,顺铂+apelin+ Sirt3敲减组小鼠肾间质纤维化程度加重(P<0.05)。空载腺病毒组小鼠肾脏形态与对照组相似。免疫组织化学染色结果显示,与对照组比较,顺铂组小鼠肾脏Col-Ⅰ主要分布在肾间质,表达明显增多(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂+apelin组小鼠Col-Ⅰ表达明显减少(P<0.05)。顺铂+apelin+Sirt3敲减组小鼠Col-Ⅰ表达量接近顺铂组水平。空载腺病毒组小鼠肾间质仅有极少量Col-Ⅰ表达,见图 5、表 1。
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图 5 Apelin对小鼠肾脏纤维化和Col-Ⅰ表达的影响×400 Fig.5 Effect of apelin on renal fibrosis and Col-Ⅰexpression in mice×400 |
Group | Renal fibrosis area (%) | Col-I positive area (%) | Cr ((μmol/L) | BUN(mmol/L) |
Control | 7.90 ±3.15 | 4.53 ± 2.70 | 13.65 ±3.53 | 7.02 ±2.19 |
Cisplatin | 60.61 ±9.391) | 50.90 ±7.741) | 61.75 ±9.041) | 34.30 ± 6.751) |
Cisplatin+apelin | 24.73 ± 7.522) | 22.46 ± 6.092) | 32.33 ± 6.142) | 17.59 ± 3.822) |
Cisplatin+apelin+Sirt3 konckdown | 51.61 ±8.523) | 45.27 ± 4.923) | 49.30 ± 8.733) | 29.52 ± 5.393) |
Empty adenovirus | 7.38 ± 3.97 | 5.74 ±3.36 | 14.61 ±3.69 | 6.71 ±2.45 |
F | 100.043 | 134.055 | 80.971 | 64.157 |
P | < 0.001 | < 0.001 | < 0.001 | < 0.001 |
1) P < 0.05 compared with control group;2) P < 0.05 compared with cisplatin group;3) P < 0.05 compared with cisplatin+apelin group. |
2.6 Apelin改善顺铂诱导的AKI小鼠肾脏功能
ELISA检测结果显示,顺铂组小鼠Cr和BUN水平明显高于对照组(P<0.05)。与顺铂组比较,顺铂+ apelin组小鼠肾损伤减轻,Cr和BUN水平显著降低(P<0.05)。与顺铂+apelin组比较,顺铂+apelin+Sirt3敲减组小鼠Cr和BUN显著升高(P<0.05)。空载腺病毒组小鼠Cr和BUN水平与对照组比较无统计学意义。见表 1。
3 讨论研究[5]显示,AKI和CKD相互关联,AKI患者易进展为CKD,而CKD患者对AKI的危险因素更为敏感,反复损伤后肾功能恶化加速。AKI的病因包括创伤、感染、手术等引起的肾脏缺血和接触肾毒性物质(非甾体药物、抗生素、抗肿瘤药物等[6])。临床上AKI发生隐匿,常存在多种致病因素,病理过程复杂。因此,明确AKI的发病机制是目前关注的热点。
肾脏近端肾小管上皮细胞只能依赖有氧代谢供能,其线粒体处于氧化活跃状态,对损伤最为敏感。AKI以近端肾小管坏死为主要病理表现[7];随着疾病的进展,肾小管上皮细胞进行上皮-间质转化,并分泌大量胶原成分,出现肾间质纤维化、肾小球硬化等病理改变,最终肾脏失去正常的结构和功能[8]。线粒体蛋白的翻译后修饰参与线粒体稳态的调节,其中去乙酰化酶Sirt3发挥重要作用[9]。已有研究[10]证实,顺铂诱导的AKI小鼠腹腔注射水飞蓟素可增加Sirt3表达,改善线粒体功能,减少肾小管上皮细胞凋亡。
Apelin是一种内源性活性肽,在人体生理和病理过程中的潜在作用备受关注。目前研究[11]已证实,外源性apelin可以降低耳蜗外植体中活性氧(reactive oxygen species,ROS)的产生,恢复线粒体膜电位,减少促凋亡因子的表达。Apelin预处理可以有效降低超氧阴离子的产生,抑制DNA损伤,减轻顺铂的心脏毒性[12]。本研究结果显示,顺铂可引起肾小管上皮细胞线粒体形态和膜电位异常。在顺铂刺激的肾小管上皮细胞中加入apelin,可以稳定线粒体的形态和膜电位,减少TGF-β1分泌,与以往研究结果一致。
本研究结果显示,通过siRNA转染下调Sirt3表达,会显著削弱apelin的肾脏保护作用。提示apelin减轻顺铂对肾小管上皮细胞线粒体的损伤,抑制AKI向CKD转化的生物学效应可能依赖于去乙酰化酶Sirt3。线粒体中Sirt3可直接结合并调控琥珀酸脱氢酶A,使ATP生成增加;在线粒体膜去极化过程中,Sirt3诱导特定的基质蛋白簇发生反应,增强线粒体功能[13]。最近的研究[14]发现,Sirt3能够调控近端肾小管上皮细胞间的微管网络,从而保护细胞的生物能量谱和氧化防御机制,而这些作用也是高度依赖线粒体供能的。可见,肾脏的能量代谢极其旺盛,线粒体功能异常与很多肾脏疾病密切相关,去乙酰化酶Sirt3可能是治疗肾脏疾病的新靶点。
综上所述,多肽apelin通过调节去乙酰化酶Sirt3来维持肾小管上皮细胞线粒体结构和功能的稳定,减轻肾脏纤维化,改善肾功能,抑制AKI向CKD转化。本研究仅通过细胞和动物实验对apelin保护肾小管上皮细胞线粒体的作用进行了初步探讨,apelin调节Sirt3的具体机制仍未明确,有待后续进一步论证。
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