文章信息
- 董安琪, 郑金丹, 于晓萌, 刘丽丽
- DONG Anqi, ZHENG Jindan, YU Xiaomeng, LIU Lili
- SMAD4对多囊卵巢综合征大鼠卵巢颗粒细胞增殖和凋亡的调控作用
- SMAD4 regulates the proliferation and apoptosis of ovarian granulosa cells in rats with polycystic ovary syndrome
- 中国医科大学学报, 2025, 54(3): 223-227
- Journal of China Medical University, 2025, 54(3): 223-227
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文章历史
- 收稿日期:2024-04-26
- 网络出版时间:2025-3-19 11:12:23
2. 锦州市妇婴医院妇产科,辽宁 锦州 121001
2. Departments of Obstetrics and Gynecology, Women and Children's Hospital of Jinzhou, Jinzhou 121001, China
多囊卵巢综合征(polycystic ovary syndrome,PCOS) 是排卵功能障碍的主要原因,影响全世界约6%~20%的育龄期妇女[1]。除不孕之外,PCOS的主要特征还包括多囊卵巢、高雄激素血症、高胰岛素血症、慢性无排卵和代谢紊乱等。尽管PCOS的发病机制尚不明确,但颗粒细胞功能障碍被认为是造成PCOS卵泡发育异常的主要原因[2]。颗粒细胞和卵母细胞处于同一个微环境中,颗粒细胞通过分泌营养物质和激素,参与卵母细胞的减数分裂和成熟。因此,颗粒细胞对卵母细胞成熟和排卵至关重要,颗粒细胞异常增殖或凋亡可能是造成PCOS排卵障碍的根本原因。
转化生长因子(transforming growth factor,TGF) β1是TGF-β超家族的多肽成员,具有多种细胞学功能,参与成熟生物体发育中胚胎的许多细胞过程,包括生长、分化、凋亡、动态平衡等[3]。TGF-β1是一个在雌性哺乳动物生殖系统中高表达的多功能因子,其表达或功能缺失会导致颗粒细胞转录组变化。SMAD家族蛋白是细胞内重要的TGF-β信号传导和调节分子,可将TGF-β信号由细胞膜直接传导至细胞核内,且不同的SMAD介导不同的TGF-β信号转导。最近的一项研究[4]证实,依赖SMAD4核转录活性和配体依赖性途径是TGF-β1调控卵巢颗粒细胞转录组变化的普遍机制。然而,SMAD4蛋白在PCOS颗粒细胞增殖和凋亡中的调控作用目前仍不清楚。本研究探讨了SMAD4在PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中的功能,及其作为临床治疗PCOS排卵障碍分子靶点的潜力。
1 材料与方法 1.1 实验动物和试剂SD大鼠,购自锦州医科大学实验动物中心,所有动物实验方案获得锦州医科大学实验动物伦理委员会批准(编号:2022121201)。
脱氢表雄酮(dehydroepiandrosterone,DHEA),购自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;RNA提取试剂盒,购自哈尔滨新海基因检测有限公司;逆转录试剂盒和实时定量PCR扩增试剂盒,购自宝日医生物技术(北京) 有限公司;组织蛋白提取试剂盒,购自上海贝博生物科技有限公司;兔抗鼠GAPDH单克隆一抗,购自南京巴傲得生物科技有限公司;兔抗鼠Smad4、BAX单克隆一抗,购自艾博抗(上海) 贸易有限公司;兔抗鼠PCNA多克隆一抗,购自沈阳万类生物科技有限公司,FSHR多克隆一抗、Cy3山羊抗兔二抗,购自美国爱博泰克生物科技有限公司;BCA试剂盒、ECL发光液,购自北京兰杰柯科技有限公司;CCK-8试剂盒、DMEM/F12培养基,购自武汉塞维尔生物科技有限公司;干扰小RNA (small interfering RNA,siRNA),购自湖州河马生物科技有限公司;转染试剂CALNPTM RNAi in vitro,购自北京多纳医药科技有限公司;胎牛血清,购自以色列Biological Industries公司。
1.2 方法 1.2.1 PCOS模型构建选取3周龄雌性SD大鼠54只,随机分为PCOS组和对照组,每组27只。PCOS组采用DHEA法构建[5]PCOS大鼠模型,大鼠每日注射0.2 mL芝麻油+DHEA (6 mg/100 g),对照组大鼠注射等量芝麻油,连续注射20 d。
1.2.2 细胞提取和培养用颈椎脱臼法处死大鼠,收集卵巢。PBS清洗后剔除脂肪和结缔组织,转移到培养基中,刺破卵泡。加入1 mL胰酶,37 ℃孵育30 min。使用40 µm过滤筛孔过滤,离心后弃上清,加入红细胞裂解液吹打悬浮,静置5 min后离心。加入完全培养基(DMEM/F12+10%胎牛血清+2%青链霉素) 吹打悬浮,接种在培养皿中,37 ℃、5%CO2培养箱中孵育,48 h换液。
1.2.3 HE染色卵巢组织固定、脱水、石蜡包埋,切片厚度为5 μm,进行HE染色。光学显微镜下观察和拍照。
1.2.4 免疫荧光染色将颗粒细胞接种于24孔板中,细胞生长至60%时,室温固定、封闭,FSHR一抗、荧光二抗孵育。加入DAPI溶液,荧光显微镜下观察和拍照。细胞表达阳性率(%) =FSHR阳性细胞数/总细胞数×100,表达阳性率 > 95%时进行下述实验。
1.2.5 siRNA干扰将密度为3×105/mL的PCOS大鼠卵巢颗粒细胞悬液分为PCOS+si-SMAD4和PCOS+si-scramble组,接种于培养板中,生长至70%后,分别转染siRNA和阴性对照(10 nmol/L)。37 ℃培养箱中孵育,24 h测定mRNA水平,48 h测定蛋白水平和细胞增殖情况。转染siRNA序列,正向5’-GGUUCAC AAUGAGCUUGCAUUTT-3’,反向5’-AAUGCAAGCU CAUUGUGAACCTT-3’。
1.2.6 Western blotting收集PCOS组和对照组、PCOS+ si-SMAD4组和PCOS+si-scramble组细胞并提取蛋白,经电泳、转膜至PVDF膜上,室温封闭2 h。SMAD4、PCNA、BAX、BCL-2蛋白抗体作为一抗,4 ℃孵育过夜。二抗室温孵育1 h。化学发光成像仪拍照。
1.2.7 实时定量PCR使用RNA提取试剂盒提取PCOS组和对照组、PCOS+si-SMAD4组和PCOS+si-scramble组总RNA。按照说明书进行逆转录、扩增。引物序列:SMAD4,正向5’-CAGCCAGGACAGCA GCAGAATG-3’,反向5’-CAGGAGCAGGATGATTG GAAATGGG-3’;GAPDH,正向5’-ACTCCCATTCTT CCACCTTTG-3’,反向5’-CCCTGTTGCTGTAGCCAT ATT-3’。
1.2.8 CCK-8实验设置空白孔和样本孔,将PCOS+si-SMAD4组和PCOS+si-scramble组颗粒细胞接种并培养于96孔板中。每孔加入10 µL CCK-8溶液,37 ℃避光孵育1 h,酶标仪测定光密度值,波长为450 nm。
1.3 统计学分析采用GraphPad Prism 9.5对数据进行统计学分析。计量资料用x±s表示,多组间比较采用单因素方差分析,组间两两比较采用LSD检验,2组间比较采用独立样本t检验。P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 PCOS大鼠模型鉴定大鼠卵巢组织HE染色结果(图 1)显示,与对照组比较,PCOS组大鼠卵巢闭锁卵泡和囊性卵泡增多,颗粒细胞层数、黄体数明显减少,提示PCOS大鼠模型构建成功。
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| A, control group; B, PCOS group. PF, primary follicle; SF, secondary follicle; An, sinus follicle; At, atretic follicle; CL, corpus luteum. 图 1 大鼠卵巢组织HE染色×40 Fig.1 HE staining of rat ovarian tissue ×40 |
2.2 大鼠卵巢颗粒细胞鉴定
FSHR在颗粒细胞中特性异表达,FSHR阳性染色定位于细胞质,呈红色荧光染色,DAPI染核呈深蓝色,表达阳性率 > 95%,可进行后续实验(图 2)。
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| A, DAPI; B, FSHR; C, merge. White arrows indicate negative staining. 图 2 大鼠卵巢颗粒细胞免疫荧光染色×200 Fig.2 Immunofluorescence staining of rat ovarian granulosa cells ×200 |
2.3 PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4表达水平
实时定量PCR结果(图 3A)显示,PCOS组大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4 mRNA表达水平升高(P < 0.05)。Western blotting结果(图 3B)显示,与对照组相比,PCOS组大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4蛋白表达水平升高(P < 0.05)。
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| A, quantitative real-time PCR; B, Western blotting. * P < 0.05. 图 3 2组大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4表达水平的比较 Fig.3 Comparison of SMAD4 expression in rat ovarian granulosa cells between the two groups |
2.4 转染siRNA对大鼠卵巢颗粒细胞增殖和凋亡的影响
实时定量PCR结果显示,siRNA显著降低PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4 mRNA表达水平。Western blotting结果显示,siRNA显著降低PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4蛋白表达水平,PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中PCNA、BCL-2蛋白表达水平升高,BAX蛋白表达水平降低。siRNA可促进颗粒细胞的增殖(图 4)。
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| A, quantitative real-time PCR; B, Western blotting; C, PCNA protein; D, BAX protein; E, BCL-2 protein; F, cell viability. * P < 0.05;** P < 0.01. 图 4 SMAD4-siRNA对大鼠卵巢颗粒细胞增殖和凋亡的影响 Fig.4 Effect of SMAD4-siRNA on the apoptosis of rat ovarian granulosa cells |
3 讨论
PCOS是一种病因不明的异质性疾病,是引起女性排卵障碍性不孕、月经失调和高雄激素的重要原因[6]。PCOS的发病基础是卵泡的程序化发育发生改变,即窦前卵泡生成过多和窦卵泡发育停滞。卵泡发育成熟是卵子发育成受精胚胎的必然条件,颗粒细胞作为卵泡内最大的功能细胞群,其增殖和分化直接影响卵泡发育,其凋亡异常可能是PCOS发病的主要原因[7]。本研究采用DHEA法诱导SD大鼠,成功构建PCOS大鼠模型,体外分离、鉴定大鼠卵巢颗粒细胞,探讨PCOS大鼠卵巢颗粒细胞发育障碍的可能机制。
TGF-β是一种多效性细胞因子,可以调节细胞生长、分化、细胞外基质重构、上皮-间质转化等[8]。已发现哺乳动物中TGF-β家族包括3种不同的亚型(TGF-β1、TGF-β2和TGF-β3),它们的序列和结构具有较高的相似性,在体内也具有相似的生物功能,其中TGF-β1在各种组织中的表达水平、生物活性较好。SMAD4基因编码的蛋白属于SMAD家族,目前已知的SMAD蛋白至少有9种,其中SMAD4为唯一的共同介质,是TGF-β信号的重要胞质内信号级联分子。SMAD4可以自身形成同源复合物或与其他的激活型Smad家族成员形成异源复合物,转移到细胞核内,与其他转录因子协同作用,调节TGF-β应答基因的转录。本研究体外培养PCOS大鼠卵巢颗粒细胞,结果发现,PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中SMAD4基因表达水平明显高于正常大鼠。
既往研究[9]发现,SMAD4表达水平降低可使TGF-β介导的信号通路转录调控障碍。在体外培养的猪颗粒细胞中,SMAD4过表达会促进颗粒细胞增殖[10],SMAD4可激活Wnt信号通路,抑制猪颗粒细胞凋亡[11]。在敲除SMAD4基因的小鼠模型中,TGF-β1信号的敏感性降低[12]。研究[13]证实,SMAD4和SMAD4依赖性TGF-β信号通路与卵泡闭锁有关。另有研究[14]发现,敲低SMAD4可以显著延长人颗粒细胞的细胞周期,抑制凋亡。以上研究均提示,SMAD4基因表达与颗粒细胞增殖、凋亡有关。为了进一步验证SMAD4基因过表达是否与PCOS大鼠卵巢颗粒细胞增殖、凋亡相关,本研究采用siRNA干扰SMAD4基因表达,结果发现,敲低SMAD4后PCOS大鼠卵巢颗粒细胞中PCNA、BCL-2蛋白表达水平升高,BAX蛋白表达水平降低。提示敲低SAMD4可促进PCOS大鼠卵巢颗粒细胞增殖,抑制凋亡。
综上所述,本研究发现PCOS大鼠卵巢颗粒细胞发育障碍可能与SMAD4基因过表达有关,SMAD4有望成为治疗PCOS患者排卵障碍的潜在靶点。但SMAD4基因调控PCOS大鼠卵巢颗粒细胞发育障碍的具体机制尚不清楚,需要更多的动物和细胞实验证实。
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2025, Vol. 54



