中国医科大学学报  2023, Vol. 52 Issue (6): 481-486

文章信息

白诗瑶, 包慧静, 马琳, 麻雪晴, 李丹玲, 苏新明
BAI Shiyao, BAO Huijing, MA Lin, MA Xueqing, LI Danling, SU Xinming
miR-23b-5p通过靶向下调FN1缓解支气管哮喘气道重塑
miR-23b-5p relieves airway remodeling in bronchial asthma through targeted downregulation of FN1
中国医科大学学报, 2023, 52(6): 481-486
Journal of China Medical University, 2023, 52(6): 481-486

文章历史

收稿日期:2022-11-22
网络出版时间:2023-05-25 15:31:43
miR-23b-5p通过靶向下调FN1缓解支气管哮喘气道重塑
中国医科大学附属第一医院呼吸与危重症医学科,沈阳 110001
摘要目的 探讨miR-23b-5p靶向下调纤维连接蛋白1 (FN1) 对支气管哮喘(简称哮喘) 气道重塑的影响。方法 将BALB/c小鼠随机分为正常对照组和哮喘组,每组6只。Masson染色观察气道壁周围胶原沉积水平。ELISA测定白细胞介素-6 (IL-6)、肿瘤坏死因子-α (TNF-α)、转化生长因子-β1 (TGF-β1)、血管内皮生长因子(VEGF) 水平。实时荧光定量PCR (qRT-PCR) 检测肺组织中miR-23b-5p表达水平。免疫组织化学染色、Western blotting检测FN1、α-平滑肌肌动蛋白(α-SMA) 在肺组织中的表达。TargetScan网站预测miR-23b-5p靶基因,双荧光素酶报告实验验证。转染miR-23b-5p模拟物和抑制剂于人支气管平滑肌细胞(HBSMC) 后,Western blotting检测FN1表达水平。结果 与正常对照组相比,哮喘组小鼠气道上皮下胶原沉积,IL-6、TNF-α、TGF-β1、VEGF表达显著增高(P < 0.001),miR-23b-5p表达显著降低(P < 0.05)。免疫组织化学染色、Western blotting结果显示,FN1、α-SMA在哮喘组小鼠肺组织中的表达显著升高(P < 0.05)。FN1受miR-23b-5p靶向调控,并且与miR-NC组相比,转染miR-23b-5p模拟物后FN1表达水平显著下调(P < 0.05),而转染miR-23b-5p抑制剂后FN1表达水平显著升高(P < 0.01)。结论 miR-23b-5p可通过靶向下调FN1,缓解哮喘气道重塑。
关键词支气管哮喘    气道重塑    miR-23b-5p    纤维连接蛋白1    
miR-23b-5p relieves airway remodeling in bronchial asthma through targeted downregulation of FN1
Department of Respiratory and Critical Care Medicine, The First Hospital of China Medical University, Shenyang 110001, China
Abstract: Objective To investigate the effects of miR-23b-5p on airway remodeling in bronchial asthma through targeted downregulation of fibronectin 1 (FN1). Methods BALB/c mice were randomly divided into a control or an asthma group (n = 6 mice per group). Collagen deposition in the airway walls were detected using Masson staining. The levels of interleukin-6 (IL-6), tumor necrosis factor-α (TNF-α), transforming growth factor-β1 (TGF-β1), and vascular endothelial growth factor (VEGF) were determined using ELISA. Real-time fluorescence quantitative PCR (qRT-PCR) was performed to detect miR-23b-5p expression levels in lung tissues. Immunohistochemical staining and Western blotting were performed to detect the expression of FN1 and α-smooth muscle actin (α-SMA) in lung tissues. miR-23b-5p target genes were predicted using the TargetScan website, and validated using dual luciferase reporter assay. Western blotting was performed to detect the FN1 expression levels after transfection of miR-23b-5p mimic and inhibitor in human bronchial smooth muscle cells. Results Compared with the control group, mice in the asthma group had subepithelial collagen deposition in their airway, significantly higher levels of IL-6, TNF-α, TGF-β1, and VEGF (P < 0.001), and significantly lower levels of miR-23b-5p (P < 0.05). Immunohistochemical staining and Western blotting showed that the expression of FN1 and α-SMA significantly increased in the asthma group (P < 0.05). FN1 was directly regulated by miR-23b-5p. Compared with the miR-NC group, FN1 expression levels were significantly down-regulated after transfection with miR-23b-5p mimic (P < 0.05) and significantly increased after transfection with miR-23b-5p inhibitor (P < 0.01). Conclusion miR-23b-5p relieves airway remodeling in bronchial asthma through the downregulation of FN1.
Keywords: bronchial asthma    airway remodeling    miR-23b-5p    fibronectin 1    

支气管哮喘(简称哮喘) 是以气道炎症、气道重塑和气道高反应性为主要病理改变的慢性气道疾病,其中气道重塑主要表现为各种结构改变所致的气道壁增厚,包括气道平滑肌细胞的炎症、肥大和(或) 增生,上皮下纤维化,杯状细胞增生,胶原沉积以及血管增多等[1-2]。微RNA (microRNA,miRNA) 是一种小分子非编码RNA,通过与mRNA的3’非翻译区(3’-untranslated region,3’-UTR) 不完全结合,启动靶基因mRNA降解程序并抑制其翻译,在过敏性哮喘的发生、发展中起重要作用,被认为是过敏性哮喘的潜在生物标志物之一[3]。miR-23b可通过结合不同的靶基因,参与细胞的增殖、迁移和分化以及上皮-间质转化等多种生物学过程[4-6]。研究[7]表明,miR-23b过表达能够促进气道平滑肌细胞的凋亡并抑制其增殖。本研究制备哮喘小鼠模型,检测miR-23b在正常和哮喘小鼠肺组织中的表达差异,获得miR-23b可能影响哮喘气道重塑的靶基因,进一步探讨miR-23b参与哮喘气道重塑的具体机制。

1 材料与方法 1.1 材料

1.1.1 主要试剂

鸡卵白蛋白,购自美国Sigma公司;原代平滑肌细胞培养体系,购自赛百慷(上海) 生物技术股份有限公司;Lipofectamine 2000,购自美国Invitrogen公司;miR-23b-5p模拟物(miR-23b-5p mimic)、抑制剂(miR-23b-5p inhibitor) 及阴性对照(miR-NC),miRNA实时荧光定量PCR (real-time fluorescence quantitative PCR,qRT-PCR) 引物、U6引物、反转录试剂盒,购自广州锐博生物科技有限公司;纤维连接蛋白1 (fibronectin1,FN1) 兔源多克隆抗体,购自武汉赛维尔生物科技有限公司;α-平滑肌肌动蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA) 兔源单克隆抗体,购自美国Abcam公司;β-actin兔源单克隆抗体,购自美国CST公司;AG RNAex Pro RNA提取试剂、SYBR Green Pro Taq HS预混型qRT-PCR试剂盒,购自湖南艾科瑞生物工程有限公司;Masson三色染色试剂盒和免疫组织化学显色试剂盒,购自福州迈新生物技术开发有限公司;小鼠白细胞介素-6 (interleukin-6,IL-6)、肿瘤坏死因子-α (tumor necrosis factor-α,TNF-α)、转化生长因子-β1 (transforming growth factor-β1,TGF-β1)、血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF) ELISA检测试剂盒,购自美国R & D公司;双荧光素酶报告基因检测试剂盒,购自美国Promega公司。

1.1.2 实验动物分组和模型制备

健康SPF级雌性BALB/c小鼠12只,6~8周龄,体质量(20±2) g,购自北京华阜康生物科技股份有限公司。将12只小鼠随机分为正常对照组和哮喘组,每组6只。于SPF级动物房适应性饲养1周后,哮喘组于第0、7、14天给予含Ⅴ级卵白蛋白(20 μg) 和氢氧化铝(2 mg) 的卵白蛋白致敏液0.2 mL腹腔注射,于第21天应用压缩空气式雾化器雾化2% Ⅱ级卵白蛋白激发液,3次/周,30 min/次,连续8周。正常对照组致敏和激发均给予生理盐水替代卵白蛋白。

1.1.3 细胞培养、转染和分组

人支气管平滑肌细胞(human bronchial smooth muscle cell,HBSMC) 购自美国组织培养库,接种在含10%胎牛血清、100 U/mL链霉素-青霉素的平滑肌细胞培养基中,置于37 ℃、含5%CO2的细胞培养箱中培养。按照Lipofectamine 2000说明书,将miR-NC (miR-NC组)、miR-23b-5p模拟物(miR-23b-5p mimic组)、miR-23b-5p抑制剂(miR-23b-5p inhibitor组) 转染HBSMC。

1.2 方法

1.2.1 肺组织病理染色

取各组小鼠左侧肺组织,用4%多聚甲醛固定后,全自动脱水机脱水,石蜡包埋,制备切片,切片厚度4 μm,65 ℃烤箱中烘烤3 h后,室温保存备用。切片脱蜡至水后,使用Masson三色染色试剂盒,根据说明书,应用Masson复合染液染5 min,蒸馏水洗去染液后滴加磷钼酸,5 min后甩干。苯胺蓝染1 min,蒸馏水稍洗,滴加分化液分化,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片。光镜下观察气道壁周围胶原沉积水平,应用ImageJ软件分析胶原沉着区占基底膜区面积的百分比。

1.2.2 血清细胞因子检测

应用ELISA检测血清中IL-6、TNF-α、TGF-β1、VEGF水平。操作方法参照试剂盒说明书。

1.2.3 qRT-PCR检测肺组织miR-23b-5p表达水平

提取肺组织总RNA,按说明书配置反转录反应体系。反应条件:42 ℃ 60 min;70 ℃ 10 min。使用梯度PCR仪进行反转录反应,获得cDNA并分装保存于-80℃冰箱内备用。SYBR Green Mix配置qRT-PCR反应体系,使用Roche LightCycler 480 Ⅱ型qRT-PCR仪进行两步法qRT-PCR。反应结束后,检测并确认扩增曲线和溶解曲线,记录Ct值。以U6为对照,采用Livak法进行qRT-PCR相对定量分析。

1.2.4 SP法免疫组织化学染色

石蜡切片复温后脱蜡至水,柠檬酸钠抗原修复缓冲液微波修复30 min,放凉至室温后PBS洗3次,3 min/次。擦干切片上多余水分,应用免疫组织化学试剂盒,内源性过氧化物酶阻断剂处理10 min,PBS冲洗;非特异性染色阻断剂封闭30 min,甩干;一抗FN1、α-SMA (PBS稀释,稀释比为1∶1 000) 4 ℃孵育过夜;过夜后室温下复温45 min,PBS洗去抗体,滴加辣根酶标记山羊抗兔/鼠二抗10 min,PBS冲洗;链霉亲和素-过氧化酶复合物染10 min,PBS冲洗;滴加DAB显色液后于显微镜下观察显色,自来水下冲洗10 min,苏木素复染核5 min,流水振洗,盐酸乙醇分化10 s,返蓝10 min,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封片。光镜下观察FN1、α-SMA在肺组织中表达分布,ImageJ软件半定量分析FN1、α-SMA平均光密度。

1.2.5 Western blotting

提取蛋白并使用BCA试剂盒定量后,加入上样缓冲液,100 ℃水浴加热5 min使蛋白质变性,-80 ℃冰箱冻存备用。PAGE蛋白凝胶电泳(120 V,60 min),转膜(0.25 A,90 min),快速封闭液室温封闭30 min,FN1、α-SMA、β-actin以1∶1 000稀释比稀释后4 ℃孵育过夜,TBST洗去生物膜表面抗体后,辣根酶标记山羊抗兔IgG (H+L) 以1∶5 000稀释比稀释后室温孵育1 h,ECL法检测蛋白表达,UVP系统成像,应用ImageJ软件对所得蛋白条带进行灰度值分析。

1.2.6 双荧光素酶实验检测miR-23b-5p是否靶向FN1

通过TargetScan网站(https://www.targetscan.org/vert_80/) 预测miR-23-5p与FN1 mRNA的3’-UTR存在结合位点。采用阳离子脂质体法转染细胞,按照双荧光素酶报告基因检测试剂盒说明书,检测双荧光素酶活性。

1.3 统计学分析

应用GraphPad Prism 9.0软件进行统计分析。计量资料用x±s表示,组间比较采用独立样本t检验。P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 哮喘小鼠肺组织病理改变

Masson染色结果显示,哮喘组小鼠气道壁周围大量蓝色胶原沉积,气道平滑肌增厚、塌陷。与正常对照组相比,哮喘组小鼠气道壁周围胶原面积显著增加(P < 0.001)。见图 1

A, Masson staining (×200);B, percentage of collagen deposition area. ** P < 0.001 vs control group. 图 1 哮喘小鼠肺组织病理变化 Fig.1 Pathological changes in the lung tissues of asthmatic mice

2.2 哮喘小鼠血清中炎性细胞因子水平变化

ELISA检测结果显示,与正常对照组相比,哮喘组小鼠血清中炎性细胞因子IL-6、TNF-α、TGF-β1、VEGF表达水平显著升高(P < 0.001)。见图 2

A, IL-6;B, TNF-α; C, TGF-β1;D, VEGF. ** P < 0.001 vs control group. 图 2 哮喘小鼠血清中炎性细胞因子表达水平 Fig.2 Levels of inflammatory cytokine in the serum of asthmatic mice

2.3 哮喘小鼠肺组织中miR-23b-5p表达降低

qRT-PCR结果表明,哮喘组与正常对照组小鼠肺组织中miR-23b-5p表达水平分别为0.000 4±0.000 12和0.001 0±0.000 27;与正常对照组相比,哮喘组小鼠肺组织中miR-23b-5p显著下调(P < 0.05)。

2.4 哮喘小鼠肺组织中的FN1和α-SMA表达升高

免疫组织化学染色和Western blotting结果均显示,正常对照组小鼠肺组织中可见FN1和α-SMA的表达,与正常对照组相比,哮喘组小鼠肺组织FN1和α-SMA表达显著增加(P < 0.05)。见图 3

A, immunohistochemical staining (×200);B, Western blotting; C, immunohistochemical staining results; D, Western blotting results. *P < 0.05 vs control group; **P < 0.001 vs control group. AOD, average optical density. 图 3 哮喘小鼠肺组织中FN1和α-SMA表达水平 Fig.3 Levels of FN1 and α-SMA expression in asthmatic mice IL-6/pg·mL-1

2.5 FN1是miR-23b-5p的直接靶点

TargetScan预测表明,FN1 3’-UTR是miR-23-5p靶向结合序列。双荧光素酶检测结果表明,与miR-NC组及miR-23b-5p inhibitor组相比,miR-23b-5p mimic组野生型FN1荧光素酶活性强度显著下调(P < 0.05),miR-23b-5p与FN1间存在靶向作用关系。见图 4

A, TargetScan result; B, dual luciferase reporter results. * P < 0.05 vs miR-23b-5p mimic group. 图 4 哮喘小鼠肺组织中miR-23b-5p的靶向分析 Fig.4 Targeting analysis of miR-23b-5p in asthmatic mice

2.6 miR-23b-5p抑制HBSMC中FN1的表达

与miR-NC组相比,miR-23b-5p mimic组HBSMC中FN1表达水平显著下调(P < 0.05),而miR-23b-5p inhibitor组HBSMC中FN1表达水平显著升高(P < 0.01)。见图 5

A, Western blotting; B, Western blotting results. * P < 0.05 vs miR-NC group; ** P < 0.01 vs miR-NC group. 图 5 HBSMC中FN1的表达水平 Fig.5 Levels of FN1 in HBSMC

3 讨论

气道平滑肌层增厚是哮喘患者气道壁重塑最显著的病理表现之一,与哮喘严重程度密切相关[8]。研究[2]表明,大多数气道重塑的特征表现会在一定程度上依赖炎症,当发生气道重塑时,气道炎症能够进一步促进气道过度狭窄,从而维持或增加气道重塑水平,而气道平滑肌的重塑改变也可以部分独立于气道炎症。本研究通过制备哮喘小鼠模型,发现在长期的卵白蛋白刺激下,哮喘小鼠的气道发生了明显的重塑性改变,主要表现为气道平滑肌增厚,气道壁周围胶原纤维沉积,血清中气道重塑相关因子IL-6、TNF-α、TGF-β1、VEGF的表达水平升高,这也与本课题组的前期研究[9]结果一致,表明哮喘小鼠模型构建成功。

miR-23b是由染色体9q22.32区域编码的miR-23b/27b/24-1基因簇产生的一种多效性转录后调节因子,参与发育过程中正常的生长和分化、肿瘤、病毒感染、自身免疫性疾病等多种生物学过程和疾病的转录调节[10]。miR-23b在许多免疫过程中通过调节细胞因子(如IL-17、TNF-α) 的表达,参与炎症反应的反馈调控过程[3, 10],但其在哮喘气道重塑中的作用及具体机制尚不明确。本研究结果表明,miR-23b-5p在哮喘小鼠肺组织中表达明显下调。而miR-23b-5p也被认为是影响平滑肌细胞增殖的重要因素,是支气管哮喘的潜在生物标志物和治疗靶点[11]。miR-23b可通过结合不同的靶基因发挥其功能。本研究通过TargetScan预测到FN1可能是miR-23b-5p的靶基因,采用双荧光素酶法进一步证实了FN1是miR-23b-5p的直接靶点。纤维连接蛋白是主要的细胞外基质蛋白,调控细胞的增殖、迁移等生物学行为。研究[12]发现FN1在哮喘患者的气道中高表达,是过敏性哮喘气道炎症和气道重塑的重要影响因素之一。本研究采用免疫组织化学染色和Western blotting半定量分析哮喘小鼠模型肺组织中FN1和α-SMA的表达水平,发现在哮喘发生时FN1和α-SMA表达升高,而过表达miR-23b-5p的气道平滑肌细胞中FN1表达降低,说明miR-23b-5p可以通过靶向抑制FN1,从而在一定程度上抑制哮喘发生时的气道重塑改变。

综上所述,miR-23b-5p在哮喘小鼠肺组织中表达下调,上调miR-23b-5p的表达能够抑制气道平滑肌的重塑改变,其机制可能与miR-23b-5p直接靶向抑制FN1的表达有关。但这一机制还有待进一步研究,以明确miR-23b-5p调控哮喘发生时气道重塑的具体机制,从而为哮喘的治疗提供新靶点。

参考文献
[1]
BANNO A, REDDY AT, LAKSHMI SP, et al. Bidirectional interaction of airway epithelial remodeling and inflammation in asthma[J]. Clin Sci (Lond), 2020, 134(9): 1063-1079. DOI:10.1042/CS20191309
[2]
ELLIOT JG, NOBLE PB, MAUAD T, et al. Inflammation-dependent and independent airway remodelling in asthma[J]. Respirology, 2018, 23(12): 1138-1145. DOI:10.1111/resp.13360
[3]
WEIDNER J, BARTEL S, KILIÇ A, et al. Spotlight on microRNAs in allergy and asthma[J]. Allergy, 2021, 76(6): 1661-1678. DOI:10.1111/all.14646
[4]
LI H, CHEN Z, CHEN W, et al. MicroRNA-23b-3p deletion induces an IgA nephropathy-like disease associated with dysregulated mucosal IgA synthesis[J]. J Am Soc Nephrol, 2021, 32(10): 2561-2578. DOI:10.1681/asn.2021010133
[5]
KADOTA T, YOSHIOKA Y, FUJITA Y, et al. Extracellular vesicles from fibroblasts induce epithelial-cell senescence in pulmonary fibrosis[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 2020, 63(5): 623-636. DOI:10.1165/rcmb.2020-0002OC
[6]
SI X, CHEN Q, ZHANG J, et al. MicroRNA-23b prevents aortic aneu-rysm formation by inhibiting smooth muscle cell phenotypic swit-ching via FoxO4 suppression[J]. Life Sci, 2022, 288: 119092. DOI:10.1016/j.lfs.2021.119092
[7]
CHEN M, SHI J, ZHANG W, et al. MiR-23b controls TGF-β1 induced airway smooth muscle cell proliferation via direct targeting of Smad3[J]. Pulm Pharmacol Ther, 2017, 42: 33-42. DOI:10.1016/j.pupt.2017.01.001
[8]
JAMES AL, NOBLE PB, DREW SA, et al. Airway smooth muscle proliferation and inflammation in asthma[J]. J Appl Physiol (1985), 2018, 125(4): 1090-1096. DOI:10.1152/japplphysiol.00342.2018
[9]
任媛, 苏新明, 李孟露, 等. 急性期和慢性期哮喘小鼠模型在哮喘致病过程中的对比研究[J]. 国际呼吸杂志, 2017, 37(14): 1067-1072. DOI:10.3760/cma.j.issn.1673-436X.2017.14.004
[10]
WANG W, WANG Y, LIU W, et al. Regulation and biological roles of the multifaceted miRNA-23b (MIR23B)[J]. Gene, 2018, 642: 103-109. DOI:10.1016/j.gene.2017.10.085
[11]
GUO Y, YUAN X, HONG L, et al. Promotor hypomethylation mediated upregulation of miR-23b-3p targets PTEN to promote bronchial epithelial-mesenchymal transition in chronic asthma[J]. Front Immunol, 2022, 12: 771216. DOI:10.3389/fimmu.2021.771216
[12]
JANULAITYTE I, JANUSKEVICIUS A, KALINAUSKAITE-ZUKAUSKE V, et al. In vivo allergen-activated eosinophils promote collagenⅠ and fibronectin gene expression in airway smooth muscle cells via TGF-β1 signaling pathway in asthma[J]. Int J Mol Sci, 2020, 21(5): 1837. DOI:10.3390/ijms21051837