
文章信息
- 李晓蕾, 李忠华, 王鹏
- LI Xiaolei, LI Zhonghua, WANG Peng
- STEAP3在脑缺血再灌注损伤沙鼠中的表达及意义
- Expression of STEAP3 and its significance in gerbils with cerebral ischemia-reperfusion injury
- 中国医科大学学报, 2023, 52(1): 57-61, 67
- Journal of China Medical University, 2023, 52(1): 57-61, 67
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文章历史
- 收稿日期:2022-06-20
- 网络出版时间:2023-01-18 08:36:21
2. 贵州医科大学第三附属医院神经外科, 贵州 都匀 558000;
3. 哈尔滨医科大学大庆校区基础医学院生理学教研室, 哈尔滨 大庆 163319
2. Department of Neurosurgery, The Third Affiliated Hospital of Guizhou Medical University, Duyun 558000, China;
3. Department of Physiology, College of Basic Medical Science, Harbin Medical University (Daqing), Daqing 163319, China
脑缺血再灌注(ischemia-reperfusion,I/R)损伤是缺血性脑卒中后一定时间内恢复或重建血液再灌注,使原有的缺血性损伤进一步加重的现象,与缺血性脑卒中后的致残率和死亡率密切相关[1]。脑I/R损伤可发生于缺血后数小时至数天,最终导致神经元损伤,与氧化应激、炎症反应等相关[2]。进一步明确脑I/R损伤的发生机制,制定有效的防治措施,是脑卒中研究有待解决的重要问题。铁离子广泛存在于脑组织中,脑缺血时脑组织中铁离子含量增加,神经元脂质过氧化,细胞死亡增多。研究[3]表明,铁代谢和脂质代谢调控信号异常均能导致铁死亡的发生,说明铁死亡在脑I/R损伤中发挥关键作用。前列腺六跨膜上皮抗原3(six-transmembrane epithelial antigen of prostate 3,STEAP3)属于STEAP家族,是一种铁还原酶,在铁代谢过程中能够促进Fe3+还原成Fe2+,影响铁稳态、炎症、细胞增殖等过程[4]。研究[5]发现,敲除STEAP3表达通过抑制TAK1途径而减轻肝脏I/R损伤。然而,STEAP3在脑I/R损伤中的表达及其与铁死亡是否有关未见报道。本研究基于铁死亡,分析STEAP3在沙鼠脑I/R损伤中的表达及意义。
1 材料与方法 1.1 实验动物和分组48只健康雄性蒙古沙鼠,体质量60~80 g,4~5月龄,由哈尔滨医科大学大庆校区机能实验室提供。动物饲养实验室温度(24±1)℃,湿度45%~70%。将48只沙鼠随机分为假手术组(Sham组)、I/R模型组(I/R组)、I/R模型+STEAP3小干扰RNA(small interfering RNA,siRNA)组(siRNA组)和I/R模型+scramble siRNA组(Control组),每组12只。
1.2 主要试剂STEAP3和4-HNE购自英国Abcam公司;H2AX购自美国Cell signaling公司;谷胱甘肽过氧化物酶4(glutathione peroxidase 4,GPX4)购自美国Santa Cruz公司;GAPDH购自北京中杉金桥生物技术有限公司。Nissl、丙二醛(malondialdehyde,MDA)和Fe2+试剂盒购自南京建成生物工程研究所;BCA试剂盒购自上海碧云天生物技术公司。STEAP3 siRNA和scramble siRNA购自上海吉玛制药技术有限公司,X-treme GENE siRNA转染试剂购自美国罗氏公司。
1.3 沙鼠脑I/R损伤模型的建立沙鼠腹腔注射1%戊巴比妥钠(40 mg/kg)进行麻醉。麻醉后仰卧位固定,剪去颈部的毛,再剪开皮肤,分离皮下组织和肌肉,显示出两侧颈总动脉,使用无创微动脉夹夹闭双侧颈总动脉5 min。松开动脉夹,使脑血流恢复。Sham组不夹闭两侧颈总动脉,其他操作同I/R组。siRNA组和Control组沙鼠在手术前24 h分别尾静脉注射STEAP3 siRNA和scramble siRNA,其他操作同I/R组。
1.4 神经功能评分建模后24 h,参考文献[6]进行神经功能评分:无症状,0分;身体蜷缩或毛发凌乱,1分;眼睑下垂,2分;旋转行为,3分;后肢外翻,4分;痉挛,5分。分值越高,说明沙鼠神经功能损伤情况越严重。
1.5 Nissl染色沙鼠腹腔注射1%戊巴比妥钠(40 mg/kg)进行麻醉,断头取脑,分离海马组织,用于后续实验。每组随机选取6只沙鼠的海马组织,制成石蜡切片。切片脱蜡至水后,滴加Nissl染色液,37 ℃孵育10 min,蒸馏水洗3次,梯度乙醇脱水,二甲苯透明2次,10 min/次,中性树脂胶封片。
1.6 Fe2+和MDA水平测定每组随机选取6只沙鼠海马组织,称重后用生理盐水制成10%的匀浆,离心后取上清。根据试剂盒说明书检测Fe2+和MDA水平。
1.7 Western blotting检测STEAP3、H2AX、4-HNE、GPX4蛋白的表达收集沙鼠的海马组织,提取总蛋白,测定浓度。经SDS-PAGE凝胶电泳、转膜、封闭后,分别用STEAP3(1∶100)、H2AX(1∶100)、4-HNE(1∶200)、GPX4(1∶500)抗体4 ℃孵育过夜,洗膜后二抗室温孵育,ECL显色成像。通过图像分析软件进行积分吸光度分析。
1.8 统计学分析采用SPSS 26.0软件进行数据统计。结果以x±s表示,组间比较采用单因素方差分析。P < 0.05为差异有统计学意义。
2 结果 2.1 STEAP3在脑I/R沙鼠海马组织中的表达采用Western blotting检测Sham组和I/R组沙鼠海马组织中STEAP3蛋白的表达。结果显示,I/R组STEAP3蛋白的表达高于Sham组(P < 0.05),见图 1。提示STEAP3蛋白高表达可能与脑I/R损伤相关。
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图 1 Western blotting检测STEAP3蛋白的表达 Fig.1 Expression of STEAP3 protein detected using Western blotting |
2.2 STEAP3干扰后对脑I/R沙鼠神经功能评分的影响
脑I/R后24 h进行神经功能评分。Sham组沙鼠无神经功能缺损的症状,神经功能评分为0分;I/R组沙鼠神经功能受到不同程度损伤,出现身体蜷缩、眼睑下垂、旋转行为、后肢外翻及痉挛等,神经功能评分为(3.58±1.24)分;siRNA组沙鼠主要表现为身体蜷缩、毛发凌乱和眼睑下垂等,神经功能评分为(2.58±0.90)分;Control组沙鼠表现与I/R组相同,神经功能评分为(3.50±1.09)分。I/R组神经功能评分明显高于Sham组(P < 0.01),与Control组比较无统计学差异(P > 0.05);siRNA组神经功能评分低于I/R组(P < 0.01)和Control组(P < 0.05)。
2.3 STEAP3干扰后脑I/R沙鼠海马组织中STEAP3和H2AX的表达Western blotting检测沙鼠海马组织中STEAP3蛋白和细胞DNA损伤指标H2AX蛋白的表达情况。结果显示,I/R组STEAP3蛋白和H2AX蛋白的表达明显高于Sham组(P < 0.05,P < 0.01),siRNA组STEAP3蛋白和H2AX蛋白的表达明显低于I/R组(均P < 0.01)和Control组(P < 0.05,P < 0.01),I/R组与Control组比较差异无统计学意义(均P > 0.05)。见图 2。
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A, STEAP3 protein; B, H2AX protein. * P < 0.05 vs Sham group; ** P < 0.01 vs Sham group; ## P < 0.01 vs I/R group; & P < 0.05 vs siRNA group; && P < 0.01 vs siRNA group. 图 2 Western blotting检测STEAP3蛋白和H2AX蛋白的表达水平 Fig.2 Expression of STEAP3 and H2AX proteins detected using Western blotting |
2.4 STEAP3干扰后对脑I/R沙鼠海马神经元损伤的影响
Nissl染色(图 3A)显示各组沙鼠海马组织CA1区神经元损伤情况:Sham组神经元形态结构正常;I/R组和Control组神经元轮廓模糊,部分神经元丢失;siRNA组与I/R组比较,神经元数量增多,结构轮廓比较清晰。显微镜下计数各组海马组织CA1区神经元数量,结果(图 3B)显示,I/R组神经元数量明显低于Sham组(P < 0.01),siRNA组神经元数量明显增多于I/R组和Control组(P < 0.01),Control组与I/R组比较差异无统计学意义(P > 0.05)。
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A, Nissl staining of hippocampal CA1 region (×200);B, statistical analysis of the surviving neurons in the hippocampal CA1 region. ** P < 0.01 vs Sham group; ## P < 0.01 vs I/R group; && P < 0.01 vs siRNA group. 图 3 STEAP3对脑I/R沙鼠海马神经元损伤的影响 Fig.3 Effects of STEAP3 on hippocampal neuron injury of gerbils with cerebral I/R |
2.5 STEAP3干扰后对脑I/R沙鼠海马组织中GPX4蛋白表达的影响
GPX4为铁死亡相关蛋白,应用Western blotting检测各组沙鼠海马组织中GPX4的表达情况,结果(图 4)显示,I/R组与Sham组比较GPX4蛋白表达明显减少(P < 0.01),siRNA组GPX4蛋白表达明显高于I/R组(P < 0.05)和Control组(P < 0.01),Control组与I/R组比较差异无统计学意义(P > 0.05)。
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** P < 0.01 vs Sham group; # P < 0.05 vs I/R group; && P < 0.01 vs siRNA group. 图 4 STEAP3对脑I/R沙鼠海马组织中GPX4蛋白表达的影响 Fig.4 Effects of STEAP3 on the expression of GPX4 protein in the hippocampus of gerbils with cerebral I/R |
2.6 STEAP3干扰后对脑I/R沙鼠海马组织中Fe2+的影响
应用Fe2+试剂盒检测沙鼠海马组织中的Fe2+,结果(图 5)显示,I/R组与Sham组比较Fe2+水平明显升高(P < 0.01),siRNA组Fe2+水平明显下降,明显低于I/R组和Control组(P < 0.01),Control组与I/R组比较差异无统计学意义(P > 0.05)。
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** P < 0.01 vs Sham group; ## P < 0.01 vs I/R group; && P < 0.01 vs siRNA group. 图 5 STEAP3对脑I/R沙鼠海马组织中Fe2+水平的影响 Fig.5 Effects of STEAP3 on the Fe2+ levels in the hippocampus of gerbils with cerebral I/R |
2.7 STEAP3干扰后对脑I/R沙鼠海马组织中4-HNE表达和MDA含量的影响
为了分析STEAP3对细胞脂质氧化的影响,首先应用Western blotting检测4-HNE蛋白的表达,结果(图 6A)显示,I/R组4-HNE蛋白表达明显高于Sham组(P < 0.05),而敲除STEAP3后siRNA组4-HNE蛋白表达低于I/R组和Control组(P < 0.05),Control组与I/R组比较差异无统计学意义(P > 0.05)。接下来应用MDA试剂盒检测MDA含量,结果(图 6B)显示,I/R组脑组织MDA含量明显高于Sham组(P < 0.01),而siRNA组MDA含量明显低于I/R组和Control组(P < 0.01),Control组与I/R组比较差异无统计学意义(P > 0.05)。
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A, 4-HNE protein; B, MDA. *P < 0.05 vs Sham group; **P < 0.01 vs Sham group; # P < 0.05 vs I/R group; ## P < 0.01 vs I/R group; & P < 0.05 vs siRNA group; && P < 0.01 vs siRNA group. 图 6 STEAP3对脑I/R沙鼠海马组织中4-HNE蛋白表达和MDA含量的影响 Fig.6 Effects of STEAP3 on the expression of 4-HNE protein and MDA content in the hippocampus of gerbils with cerebral I/R |
3 讨论
脑是机体重要的器官之一,对缺氧的耐受能力差,缺血数分钟就会造成不可逆性损伤。但在缺血后一定时间内恢复脑血液灌注,会加重缺血脑组织不可逆性损伤[7]。脑缺血再灌注损伤与缺血性脑卒中后的致残率和死亡率密切相关,深入阐明脑I/R损伤的发生机制,能够为临床治疗提供重要参考,减轻再灌注导致的脑组织损伤程度。本研究发现,铁还原酶STEAP3在沙鼠脑I/R模型中高表达,敲除其表达可明显减轻脑组织损伤,说明STEAP3能够促进脑I/R损伤的发生;通过检测铁死亡相关指标GPX4、Fe2+、4-HNE、MDA,发现脑I/R损伤中STEAP3可能通过铁死亡途径发挥作用。
短暂的缺血性低灌注可导致严重的急性脑损伤。脑组织再灌注过程中,多种复杂的机制可诱导神经元死亡,导致迟发性神经损伤。大量研究已经证实,在脑I/R引起的神经元损伤中,铁死亡是神经元死亡的主要形式之一。铁死亡是基于细胞内亚铁的细胞死亡方式,在生物化学、形态和遗传上与凋亡、坏死和自噬不同[8],铁和氧化还原代谢的多种因素导致了铁死亡。
STEAP家族包括4个多通道膜蛋白,最初被报道为铁稳态调节因子,并已被确定参与许多细胞和分子事件,如细胞命运和炎症反应。STEAP3作为该家族的主要成员之一,已被证实参与了铁稳态、外泌体的组装和分泌、炎症等一些生物学过程[9]。本研究通过Western blotting检测沙鼠海马组织中STEAP3蛋白的表达,发现I/R组STEAP3蛋白的表达明显高于Sham组,提示STEAP3在脑I/R损伤中可能发挥一定的作用。为探究STEAP3的作用机制,造模前24 h给予沙鼠尾静脉注射STEAP3 siRNA(siRNA组)。siRNA组沙鼠神经功能评分和海马组织中DNA损伤指标H2AX蛋白表达明显低于I/R组,Nissl染色也发现siRNA组海马CA1区神经元数量多于I/R组。这些结果说明,敲除STEAP3能够减轻脑I/R组织的损伤程度。
铁死亡的主要特点是铁依赖性,即细胞内游离铁增多,Fe2+提供了氧化过程所需的电子。贮铁蛋白降解释放和转铁蛋白转入增多等多种途径使大量Fe3+进入细胞内,细胞内Fe3+被还原为Fe2+,构成了体内不稳定铁池的来源,一方面通过芬顿反应直接导致脂质过氧化物增多,另一方面参与合成含铁酶类促发铁死亡[10]。STEAP3是一种铁还原酶,能够促进Fe3+还原成Fe2+。本研究证实,I/R组Fe2+增多,干扰STEAP3表达,siRNA组与I/R组比较沙鼠海马组织Fe2+水平明显降低,说明STEAP3能够影响脑I/R组织中Fe2+的水平。
GPX4被认为是铁死亡标志性蛋白,是一种将H2O2分解成水或相应醇的酶,GPX4活性降低可提高细胞质和脂质的活性氧水平,最终导致细胞铁死亡[11]。4-HNE蛋白表达和MDA含量被用来评价细胞内脂质氧化的水平。本研究也进一步证实,与Sham组比较I/R组GPX4蛋白表达减少,4-HNE蛋白表达和MDA含量增多;而siRNA组与I/R组比较,GPX4蛋白表达增多,4-HNE蛋白表达和MDA含量减少。以上结果提示,STEAP3可能通过促进细胞内Fe3+还原为Fe2+,介导铁死亡,从而影响脑I/R损伤的发生和发展。
STEAP3是铁代谢有关的基因,与肿瘤等多种疾病有关。在肿瘤的研究中发现,STEAP3通过诱导间质转化、促进转铁蛋白受体表达和激活STAT3-FoxM1信号轴促进胶质瘤的进展[12];STEAP3通过阻滞细胞周期G1期,抑制肝癌细胞增殖[13]。在病理性心肌肥大的研究中发现,STEAP3可阻断Rac1依赖性信号级联的激活,是病理性心肌肥大的负调节因子[14]。STEAP3在肝脏I/R损伤中的作用已被证实,并通过TAK1介导JNK/p38途径发挥功能[5]。
综上所述,本研究证实了STEAP3在沙鼠脑I/R损伤中高表达,并通过介导铁死亡而影响脑I/R损伤的发生和发展,抑制其表达对脑I/R损伤具有保护作用。
[1] |
RAMLI F, ALI A, IBRAHIM N. Protective effects of tocotrienols in cerebral and myocardial ischemia-reperfusion injury: a systematic review[J]. Appl Sci, 2021, 11(17): 7994. DOI:10.3390/app11177994 |
[2] |
YUAN Q, YUAN Y, ZHENG Y, et al. Anti-cerebral ischemia reperfusion injury of polysaccharides: a review of the mechanisms[J]. Biomed Pharmacother, 2021, 137: 111303. DOI:10.1016/j.biopha.2021.111303 |
[3] |
WEILAND A, WANG Y, WU W, et al. Ferroptosis and its role in diverse brain diseases[J]. Mol Neurobiol, 2019, 56(7): 4880-4893. DOI:10.1007/s12035-018-1403-3 |
[4] |
WILKINSON HN, UPSON SE, BANYARD KL, et al. Reduced iron in diabetic wounds: an oxidative stress-dependent role for STEAP3 in extracellular matrix deposition and remodeling[J]. J Invest Dermatol, 2019, 139(11): 2368-2377. DOI:10.1016/j.jid.2019.05.014 |
[5] |
GUO WZ, FANG HB, CAO SL, et al. Six-transmembrane epithelial antigen of the prostate 3 deficiency in hepatocytes protects the liver against ischemia-reperfusion injury by suppressing transforming growth factor-β-activated kinase 1[J]. Hepatology, 2020, 71(3): 1037-1054. DOI:10.1002/hep.30882 |
[6] |
MCGRAW CP. Experimental cerebral infarction effects of pentobarbital in Mongolian gerbils[J]. Arch Neurol, 1977, 34(6): 334-336. DOI:10.1001/archneur.1977.00500180028006 |
[7] |
WU Y, SONG J, WANG Y, et al. The potential role of ferroptosis in neonatal brain injury[J]. Front Neurosci, 2019, 13: 115. DOI:10.3389/fnins.2019.00115 |
[8] |
OOSTERHEERT W, REIS J, GROS P, et al. An elegant four-helical fold in NOX and STEAP enzymes facilitates electron transport across biomembranes-similar vehicle, different destination[J]. Acc Chem Res, 2020, 53(9): 1969-1980. DOI:10.1021/acs.accounts.0c00400 |
[9] |
WU HT, CHEN WJ, XU Y, et al. The tumor suppressive roles and prognostic values of STEAP family members in breast cancer[J]. Bio-med Res Int, 2020, 2020: 9578484. DOI:10.1155/2020/9578484 |
[10] |
胡婉湘, 谢露. 铁死亡及其在脑缺血再灌注损伤中的作用[J]. 生理科学进展, 2021, 52(3): 169-175. DOI:10.3969/j.issn.0559-7765.2021.03.002 |
[11] |
LEI P, BAI T, SUN Y. Mechanisms of ferroptosis and relations with regulated cell death: a review[J]. Front Physiol, 2019, 10: 139. DOI:10.3389/fphys.2019.00139 |
[12] |
HAN MZ, XU R, WANG S, et al. Six-transmembrane epithelial antigen of prostate 3 predicts poor prognosis and promotes glioblastoma growth and invasion[J]. Neoplasia, 2018, 20(6): 543-554. DOI:10.1016/j.neo.2018.04.002 |
[13] |
范伟明, 姚志成, 徐见亮, 等. STEAP3对肝癌细胞增殖能力的抑制作用及机制[J]. 中华肝脏外科手术学电子杂志, 2017, 6(2): 134-138. DOI:10.3877/cma.j.issn.2095-3232.2017.02.014 |
[14] |
LI PL, LIU H, CHEN GP, et al. STEAP3(six-transmembrane epithelial antigen of prostate 3) inhibits pathological cardiac hypertrophy[J]. Hypertension, 2020, 76(4): 1219-1230. DOI:10.1161/HYPERTENSIONAHA.120.14752 |