中国医科大学学报  2018, Vol. 47 Issue (3): 217-221

文章信息

张利华, 张丽艳, 张小康, 徐超龙, 周义
ZHANG Lihua, ZHANG Liyan, ZHANG Xiaokang, XU Chaolong, ZHOU Yi
β-淀粉样蛋白诱导的阿尔茨海默病大鼠模型中BDNF与TRPC3的关系
Relationship between BDNF and TRPC3 in a Rat Model of Alzheimer's Disease Induced by β-amyloid Protein
中国医科大学学报, 2018, 47(3): 217-221
Journal of China Medical University, 2018, 47(3): 217-221

文章历史

收稿日期:2017-10-30
网络出版时间:2018-03-02 17:38
β-淀粉样蛋白诱导的阿尔茨海默病大鼠模型中BDNF与TRPC3的关系
沈阳医学院基础医学院病理生理学教研室, 沈阳 110034
摘要目的 探讨经典瞬时受体电位通道蛋白3(TRPC3)与脑源性神经营养因子(BDNF)在阿尔茨海默病(AD)大鼠模型海马组织中的表达及其相互关系。方法 将SD大鼠随机分为PBS组、AD组和AD+BDNF组。采用β-淀粉样蛋白(Aβ1-42)侧脑室注射,制备AD模型。BDNF在造模14 d后经侧脑室导管注入。Morris水迷宫实验测定大鼠的空间学习记忆能力。实时PCR和Western blotting分别检测海马组织中TRPC3BDNF mRNA和蛋白的表达情况。结果 Morris水迷宫实验表明,AD组大鼠第5天逃避潜伏期较PBS组延长(P < 0.05);AD+BDNF组大鼠的逃避潜伏期较AD组缩短(P < 0.05)。实时PCR及Western blotting结果表明,与PBS组相比,TRPC3BDNF mRNA和蛋白在AD组表达均降低(P < 0.05);与AD组相比,TRPC3 mRNA和蛋白在AD+BDNF组表达均增高(P < 0.05)。结论 BDNF和TRPC3在AD大鼠海马组织表达降低;外源性BDNF可能通过上调TRPC3表达,从而改善Aβ1-42导致的AD大鼠空间学习记忆障碍,起到保护神经元的作用。
Relationship between BDNF and TRPC3 in a Rat Model of Alzheimer's Disease Induced by β-amyloid Protein
Department of Pathophysiology, College of Basic Medical Sciences, Shenyang Medical College, Shenyang 110034, China
Abstract: Objective To investigate the expression and relationship of canonical transient receptor potential channel-3 (TRPC3) and brain-derived neurotrophic factor (BDNF) in the hippocampus of a rat model of Alzheimer's disease (AD).Methods SD rats were randomly divided into PBS, AD, and AD+BDNF experimental groups. AD models were generated by intracerebroventricular injection of β-amyloid protein (Aβ1-42). BDNF was injected via the lateral ventricle catheter after 14 days. The Morris water maze test was used to assess the spatial learning and memory ability of the rats. The expression of TRPC3 and BDNF mRNA and protein in the hippocampus were detected by RT-PCR and Western blotting, respectively.Results The Morris water maze test showed that the escape latencies of the fifth day in the AD group were longer than those in the PBS group (P < 0.05). The escape latencies in the AD+BDNF group were shorter than those in the AD group (P < 0.05). RT-PCR and Western blotting results showed that the expression of both TRPC3 and BDNF were reduced in the AD group compared with the PBS group (P < 0.05). TRPC3 expression was increased in the AD+BDNF group compared with the AD group (P < 0.05).Conclusion The expression of BDNF and TRPC3 is decreased in the hippocampus of AD rats. An exogenous BDNF injection appears to improve the spatial learning and memory of AD rats that are impaired by a Aβ1-42 injection, possibly via TRPC3 upregulation, and may play a protective role in neurons.

阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)又称老年痴呆症,是一种以记忆、学习、认知功能改变为主要特征的神经系统退行性疾病。病因假说很多,其中β-淀粉样蛋白(β-amyloid protein,Aβ)异常沉积占主导地位。其主要病理特征是在患者大脑皮质、海马区出现老年斑和神经元纤维缠结,此外还有神经元缺失、神经元突触异常等病理改变。脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是中枢神经系统中分布最广泛的营养因子,在突触可塑性、神经元存活方面起着关键作用。最近的研究[1]报道,AD患者的血清中BDNF水平降低,且发现健康老年受试者的脑脊液中BDNF水平低下可能预示着未来会出现认知衰退。哺乳动物中的经典瞬时受体电位通道蛋白(canonical transient receptor potential channel,TRPC)是一种非典型钙离子通道,与神经系统的生长、增殖、分化和凋亡密切相关。BDNF通过激活TRPC3促进树突棘的生长发育[2]。卡洛西汀通过促进TRPC6和磷酸化环磷腺苷效应元件结合蛋白的表达从而治疗脑缺血损伤[3]。在癫痫大鼠海马神经元初代培养中,BDNF和TRPC3表达增加对癫痫引起的细胞损伤起保护作用[4]。在视网膜缺血性损伤的研究中发现,BDNF/酪氨酸激酶受体B通过调节TRPC3/6通道的表达进而发挥神经节细胞的保护作用。

本课题组的前期研究[5]发现,在Aβ诱导的AD小鼠模型中,TRPC4表达增加。但目前关于BDNF和TRPC3在Aβ所致的AD模型中的关系及作用机制尚不清楚。本研究采用SD大鼠侧脑室注射寡聚型Aβ1-42的方法模拟AD [6],利用逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)和Western blotting检测大鼠海马组织中TRPC3BDNF mRNA和蛋白表达,探讨它们之间的关系,为AD发病机制研究提供新的证据,同时也为预防和治疗AD提供新的思路。

1 材料与方法 1.1 实验材料

1.1.1 动物

24只5周龄200~220 g的SPF级雄性SD大鼠(辽宁长生生物技术有限公司)。

1.1.2 试剂

Aβ和BDNF兔单克隆抗体(英国Abcam公司);重组人源BDNF(美国Peprotech公司);总RNA小量制备试剂盒(美国Axygen公司);逆转录试剂盒(加拿大Abm公司);BCA蛋白浓度测定试剂盒和SDS-PAGE凝胶配制试剂盒(上海碧云天公司);TRPC3兔多克隆抗体(台湾Arigo公司);β-actin小鼠单克隆抗体和辣根酶标记山羊抗兔IgG(H+L)(美国Proteintech公司);辣根酶标记山羊抗小鼠IgG(H+L)(北京中杉金桥公司)。

1.2 方法

1.2.1 Aβ1-42寡聚化处理

注射前,将Aβ1-42室温放置1 h,低速离心10 min,溶解在灭菌PBS溶液中(浓度为1 μg/μL),并在37 ℃恒温箱中孵育48 h诱导寡聚化,放置冰上备用。

1.2.2 AD模型制备

大鼠经腹腔注射10%水合氯醛(0.4 mL/100 g)麻醉,头部消毒后将皮肤沿矢状线切开1 cm,棉签蘸碘伏消毒,剔除骨膜,完全暴露颅骨前囟,置于脑立体定位仪上,侧脑室导管放置位置根据《大鼠脑立体定位图谱》确定,前囟后0.8 mm,中线向右旁开1.5 mm,深度3.5 mm。置管后在管周前、左、右3个位置分别拧入小螺丝半固定,涂以牙科水泥固定,晾干后缝合。肌注青霉素5 d预防感染。待手术应激消失后,用微量注射器经导管缓慢注射Aβ1-42 10 μL,注射速度约为2 μL/min,注射结束留针3 min,使溶液充分弥散。对照组注射同等剂量的PBS溶液。

1.2.3 BDNF给药

根据说明书溶解和稀释BDNF,分装后置于-40 ℃冰箱低温保存,避免反复冻融。Aβ1-42给药14 d后即水迷宫实验前1 d,从第15天起,给予AD+BDNF组大鼠BDNF水溶液,剂量为10 μL(0.025 μg/μL),持续给药5 d。

1.2.4 Morris水迷宫行为学检测

Aβ1-42给药后第16天,利用MT-200 Morris水迷宫跟踪分析系统(成都泰盟科技有限公司)检测各组大鼠学习和记忆能力。前5 d进行定位航行实验,将待测大鼠头部面向池壁放入水中,让其寻找目标象限内的隐藏平台,所用时间即逃避潜伏期,依据该时间的长短检测大鼠的空间学习能力,3次/d,平台位置不动,象限不重复。第6天进行空间探索实验,将平台撤去,记录大鼠穿越平台次数以及在平台所在象限停留时间,以检测大鼠的空间记忆能力。

1.2.5 RT-PCR检测TRPC3BDNF mRNA的表达

Morris水迷宫实验结束后将大鼠断头取海马组织,-80 ℃超低温冰箱保存,以备RT-PCR实验以及Western blotting实验使用。提取大鼠海马组织总RNA后进行逆转录。以逆转录所得的cDNA为模板进行PCR扩增,所需引物由金斯瑞生物科技公司合成。β-actin上游引物5’-AGCGGGAAATCGTGCGTG-3’,下游引物5’-CAGGGTACATGGTGGTGCC-3’;BDNF上游引物5’-CTGAGCGTGTGTGACAGTATTAGCG-3’,下游引物5’-CAGCCTTCCTTCGTGTAACCCAT-3’;TRPC3,上游引物5’-CTGGCCAACATAGAGAAGGAGT-3’,下游引物5’-CACCGATTCCAGATCTCCAT-3’。琼脂糖凝胶成像结果采用Gel Image System软件进行分析。

1.2.6 Western blotting检测TRPC3和BDNF蛋白的表达

向低温保存的海马组织中加入含有蛋白酶抑制剂的RIPA裂解液200 μL,12 000 r/min离心5 min。取上清液,采用BCA法得出标准曲线,根据样品吸光度计算得出蛋白浓度。蛋白上样量为30 μg/10 μL,室温下SDS-PAGE凝胶电泳1 h,TRPC3(分子量91 000)采用湿转方式转膜2 h,BDNF(分子量15 000)采用半干转方式转膜20 min,放入5%脱脂牛奶中摇床封闭1 h,加入适度稀释度的一抗TRPC3(1:2 000)、BDNF(1:2 000)、β-actin(1:5 000)4 ℃孵育过夜。翌日TBST漂洗15 min×3次,加入适度稀释的二抗(1:2 000),冰上孵育2 h,TBST漂洗15 min×3次,最后,用化学发光成像系统(中国天能公司)进行ECL显影,用Gel Image System软件对实验结果进行分析。

1.3 统计学分析

采用SPSS 17.0统计软件进行统计学处理,数据以x±s表示,组间比较采用单因素方差分析,P < 0.05为差异有统计学意义。

2 结果 2.1 BDNF对AD大鼠空间学习记忆能力有改善作用

侧脑室导管Aβ1-42给药14 d后,从第15天开始,BDNF连续给药5 d,期间进行水迷宫实验。第5天大鼠逃避潜伏期AD组较PBS组延长,有统计学差异[分别为(31.06±4.01)s和(24.23±4.62)s,P < 0.05];第6天穿越平台次数AD组较PBS组减少(分别为3.25±0.45和6.62±0.46,P < 0.05),表明AD组大鼠的空间学习记忆能力下降。而第5天大鼠逃避潜伏期AD+BDNF组较AD组缩短[分别为(23.30±4.84)s和(31.06±4.01)s,P < 0.05];第6天穿越平台次数AD+BDNF组较AD组增加(分别为5.83±0.75和3.25±0.45,P < 0.05),表明BDNF对AD大鼠空间学习记忆能力有改善作用。见图 1

A, escape latencies of the three groups; B, numbers of platform crossing of the three groups during the probe trial. * P < 0.05 vs PBS group; # P < 0.05 vs AD+BDNF group. n = 8. 图 1 Morris水迷宫实验中各组大鼠行为学比较 Fig.1 Behavioral comparisons of each group of rats in the Morris water maze

2.2 BDNF促进TRPC3 mRNA的表达

RT-PCR结果显示,AD组与PBS组相比,BDNFTRPC3 mRNA相对含量均降低(P < 0.05)。AD+BDNF组与AD组相比,TRPC3 mRNA相对含量增加(P < 0.05)。见图 2

A, BDNF and TRPC3 mRNA in rats in each group; B, relative levels of BDNF mRNA in rats in each group; C, relative levels of TRPC3 mRNA in rats in each group. M, marker; lane 1-2, PBS group; lane 3-4, AD group; lane 5-6, AD+BDNF group. * P < 0.05 vs PBS group; # P < 0.05 vs AD+BDNF group.n = 4. 图 2 RT-PCR检测大鼠海马区BDNFTRPC3 mRNA的表达水平 Fig.2 Expression of BDNF and TRPC3 mRNA in the hippocampus of rats detected by RT-PCR

2.3 BDNF促进TRPC3蛋白的表达

Western blotting结果显示,AD组与PBS组相比,BDNF和TRPC3蛋白相对含量均降低(P < 0.05),AD+BDNF组与AD组相比,TRPC3蛋白相对含量增加(P < 0.05)。见图 3

A, BDNF and TRPC3 protein in rats in each group; B, relative levels of BDNF protein in rats in each group; C, relative levels of TRPC3 protein in rats in each group. Lane 1-2, PBS group; lane 3-4, AD group; lane 5-6, AD+BDNF group. * P < 0.05 vs PBS group; # P < 0.05 vs AD+BDNF group. n = 4. 图 3 Western blotting检测各组大鼠海马区BDNF和TRPC3蛋白表达 Fig.3 Expression of BDNF and TRPC3 protein in the hippocampus detected by Western blotting

3 讨论

研究[7]表明,Aβ在脑内沉积形成老年斑是AD最具特征的病理改变,与大脑认知障碍密切相关。Aβ在AD的发病机制中起着核心作用,但它通过何种机制造成神经元损伤,尚不清楚。在转基因AD小鼠脑组织中观察到BDNF的降低可能会促进神经元萎缩和突触损伤,而BDNF的上调可以控制AD的认知衰退[8]。本研究中,AD组大鼠BDNF表达下降,空间学习记忆能力减退;当给予AD大鼠一定剂量的BDNF时,可明显改善其空间学习记忆能力,与之前ZHANG等[9]的研究结果一致。

有研究[10]表明,在心肌缺血性损伤及癫痫大鼠模型中,BDNF与TRPC3/6协同作用,对神经元损伤起保护作用。本研究中,AD组大鼠TRPC3表达下降,当给予AD大鼠一定剂量的BDNF时,TRPC3 mRNA和蛋白水平均明显增加,说明BDNF可能通过上调TRPC3从而发挥其改善AD大鼠认知障碍的作用,这在AD模型中尚属首次发现。

有研究[11]表明,BDNF通过钙调蛋白依赖性蛋白激酶激酶激活TRPC5或TRPC6通道从而诱导谷氨酸亚基1翻译和突触生长。也有研究[12]表明,哌嗪类化合物通过激活DAG,进而引起TRPC3/6/7介导的Ca2+内流,发挥BDNF样神经营养作用。但在AD模型中,BDNF通过何种途径调控TRPC3的表达,仍需进一步的试验证实。

综上所述,本研究表明,BDNF可能通过上调TRPC3表达,从而发挥其对AD大鼠认知障碍的改善作用,但其具体机制有待研究。这可能对临床预防和治疗AD有一定帮助。

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