文章信息
- 张玲莉, 仝晓阳, 郭健民, 雷乐, 邹军.
- ZHANG Ling-li, TONG Xiao-yang, GUO Jian-min, LEI Le, ZOU Jun.
- 3D水凝胶压应力模型建立及压应力对成骨细胞的影响
- 3D Hydrogel Compression Model and Effect of Cyclic Compression on Osteoblast Differentiation
- 中国生物工程杂志, 2017, 37(8): 8-14
- China Biotechnology, 2017, 37(8): 8-14
- http://dx.doi.org/DOI:10.13523/j.cb.20170802
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文章历史
- 收稿日期: 2016-12-21
- 修回日期: 2017-06-03
骨骼内稳态受多个因素的影响,特别是机械载荷和生长因子信号通路影响颇多[1]。系统研究细胞对力学刺激信号的转导和响应主要是建立于体外特定力学传导装置下细胞培养的基础上的[2],可以将机械载荷转化为细胞内生化反应[3]。
目前机械牵张力作用于细胞的研究较多,而压力作用于细胞的研究较少,主要是由于细胞压应力模型的建立尚不成熟,同时不同强度、频率、时间的压应力对成骨细胞的影响也不同。因此,本研究在之前压应力细胞模型的基础上,尝试建立3D水凝胶细胞模型,同时采用不同强度、频率、时间压应力对MC3T3-E1细胞进行机械干预,观察压应力对成骨细胞分化的影响,探讨促进成骨细胞分化的适宜压应力方案。
1 材料与方法 1.1 成骨细胞系的培养成骨细胞系MC3T3-E1(ATCC,CRL-2594) 在10cm规格的培养皿中复苏后采用α-MEM培养液(含10%FBS+1%PS),在37℃、5%CO2的培养箱中进行常规细胞培养。每2天换一次液,细胞长至70%~80%融合时进行传代。
1.2 3D细胞水凝胶建模10cm规格的培养皿中细胞量达到90%左右进行干预,将细胞用胰酶消化后转移至15ml离心管中,1 000RP 5min离心后弃上清留沉淀,10%的无菌蔗糖溶液清洗两遍,加入100μl的无菌蔗糖溶液进行重悬,此时细胞计数浓度可以达到1~2×107cells/ml。一般建议细胞浓度在这个范围内,否则细胞量过低,在与水凝胶混合后极易溶解在培养液中。
从4℃冰箱中将BeaverNanoTM 3D细胞水凝胶取出,室温放置30min降低水凝胶原溶液的粘性成液态,加样器取100μl的细胞水凝胶置于1.5ml无菌EP管中。在吸取的过程中容易产生气泡,因此做1 000RP 5min离心处理。
将100μl细胞蔗糖重悬液缓慢地注入到水凝胶中,要均匀、缓慢,尽可能不产生气泡。将细胞蔗糖水凝胶混合液混匀后,每100μl注入到Flexcell公司生产的底部具有弹性模的专用6孔板(BioFlex® Plate弹性膜6孔板),此前每个孔中已经加入2ml α-MEM培养液。一般10cm规格的培养皿细胞达到80%~90%融合时,建议种两个孔(图 1)。将培养板放置培养箱内,15min后换成含诱导分化剂的培养液(含抗坏血酸L、β-甘油磷酸钠)尽快改变水凝胶的酸度。二次换液后,将培养板重新放置培养箱待到细胞蔗糖水凝胶混合液凝固后即可进行加压干预。
1.3 压应力方案细胞种板后,第二天对细胞进行压应力干预(Flexcell-FX5000 Compression System,USA)——一种由计算机控制培养箱里的细胞压应力装置连接外界泵提供动力,设计不同强度、频率的压应力梯度方案对3D水凝胶进行干预(如表 1所示),对照组细胞不进行干预正常培养,每组2个孔。在此基础上,通过统计学计算出有效的强度和频率压应力方案,后做一个时间梯度的方案(如表 2所示),每组2个孔。加压干预结束后即刻收集细胞,胶块放置1.5ml RNA free的离心管中,按照RNA的提取步骤,提取RNA。经过酶标仪检测出每个样本RNA的纯度和浓度后,按照反转录试剂盒步骤,将RNA反转录为cDNA。利用试剂盒,对样本中的ATF4 mRNA、ALP mRNA、Runx2 mRNA、osteocalcin mRNA、RANKL mRNA和RANK mRNA进行定量检测。在Pubmed数据库查询小鼠ATF-4、ALP、Runx2、osteocalcin、RANKL、RANK和GAPDH基因引物序列,后用Primer Express 3.0软件检测引物(表 3),引物由上海生工生物工程公司合成。上述实验重复2次。
组别 | 强度(%) | 频率(Hz) | 时间(h) |
G0 | 0 | 0 | 0 |
G1 | 1 | 0.5 | 4 |
G2 | 2 | 0.5 | 4 |
G3 | 3 | 0.5 | 4 |
G4 | 1 | 1.0 | 4 |
G5 | 2 | 1.0 | 4 |
G6 | 3 | 1.0 | 4 |
mRNA | Primer | Sequences(5’~3’) |
ATF4 | Forward | GAGCTTCCTGAACAGCGAAGTG |
Reverse | TGGCCACCTCCAGATAGTCATC | |
ALP | Forward | ACTGGCTGTGCTCTCCCTAC |
Reverse | GACCTCTCCCTTGAGTGTGG | |
Runx2 | Forward | TTTAGGGCGCATTCCTCATC |
Reverse | TGTCCTTGTGGATTAAAAGGACTTG | |
Osteocalcin | Forward | AGCAGGAGGGCAATAAGGTAGT |
Reverse | ACCGTAGATGCGTTTGTAGGC | |
RANKL | Forward | CTGATGAAAGGAGGGAGCAC |
Reverse | AAGGGTTGGACACCTGAATG | |
RANK | Forward | CTGACTCTATGCCCGTGTCC |
Reverse | ACTGCCTGTGTAGCCATCTGT | |
GAPDH | Forward | CCACAGTCCATGCCATCAC |
Reverse | CATACCAGGAAATGAGCTTGAC |
1.4 细胞在水凝胶中的凋亡检验
确定机械压应力实验方案后,将接种3D细胞水凝胶的培养板放置于培养箱中培养确定实验方案的天数后,取出培养板用1×PBS清洗,其中两个孔的胶块制成10μm冰冻切片,用Tunel Apo-Green Detection Kit(Biotool)进行凋亡染色,在显微镜拍片观察细胞在水凝胶的存活凋亡情况。
1.5 统计学分析实验结果皆以mean ± SEM表示,数据均采用SPSS13.0软件包分析处理。针对不同强度和频率梯度压应力的数据,先采用双因素方差分析,确定强度、频率是否产生独立作用或产生交互作用,针对不同因素产生的作用,再采用单因素方差分析或独立样本T检验推断组间是否存在差异;针对不同时间梯度压应力的数据,采用单因素方差分析推断组间是否存在差异。P<0.05表示结果有显著性差异。
2 结果 2.1 不同强度和频率压应力对成骨细胞系的作用针对不同强度和频率梯度压应力的数据,先采用双因素方差分析,图 2结果显示不同强度和频率对ALP(P<0.05)、Runx2(P<0.01) 交互作用显著。图 3和图 4结果显示不同强度压应力对ATF4、osteocalcin、RANK和RANKL并未出现显著作用,不同频率压应力对ATF4、osteocalcin、RANK和RANKL也未出现显著作用,且二者没有出现交互作用。
2.2 不同时间压应力对成骨细胞系的作用针对不同时间梯度压应力的数据,采用单因素方差分析,图 5结果显示4h加压Runx2的表达量比12h加压的高(P<0.05);图 6结果显示4h加压RANKL的表达量比12h加压的低(P<0.05)。
2.3 凋亡染色的结果所有的细胞呈现出蓝色荧光,凋亡的细胞核呈现出绿色荧光,从图层合并可以看出24h内在水凝胶中的细胞凋亡的数目较少。
3 分析与讨论有效的成骨分化高度依赖生长因子信号和机械载荷刺激[4]。骨细胞可以对骨骼变形做出检测和应答,并且认为这些细胞可以将机械性刺激转变为特殊的化学性刺激传给成骨细胞。应力均可刺激成骨细胞的形成和发展,其生物学机制主要通过骨组织感受力学刺激——应力敏感通道和整合素蛋白-细胞骨架结构来完成[5]。推测的机械性刺激转变为化学性刺激的两种途径为G蛋白偶联受体感受器途径,跨膜整合蛋白、细胞骨架和核转录之间的直接联系。机械载荷通过激活细胞膜上Ca2+通道引起胞外Ca2+内流,促进胞内Ca2+释放,细胞在接受到机械信号后先被跨膜的表面受体如整合蛋白、G蛋白偶联受体或离子通道等传递到细胞质内,这样机械信号转换为胞质中的生化信号[6],通过调节第二信使或活化信号分子最终调控细胞迁移、生长、分化和基质重建等行为[7-8]。
成骨细胞是骨细胞中感受应力刺激的效应器,可将机械刺激转化为细胞内化学信号。力学刺激有多种,主要包括重力、牵张力、压力和流体剪切力[9]。在上述力学对成骨细胞的作用研究中以重力[10-11]、牵张力[12-13]和流体剪切力[14-15]研究居多,压力研究较少;而从人体骨细胞受力情况而言,压应力又必不可少。压应力作用于细胞研究较少,推测主要难度在于细胞的3D建模。之前我们课题组选用的是琼脂糖凝胶,但是琼脂糖凝胶需要在37℃时才会融化为液态,才可将细胞注射入胶内,这很容易导致细胞大量死亡。后来选用了BeaverNanoTM水凝胶,是由多肽类生物纳米材料制备而成。其主要成分是1%(w/v)多肽水溶液(pH:2.0~2.5),无色透明,室温状态下呈液态;同时有极好的生物相容性,采用细胞注射的方式即可植入。较之琼脂糖凝胶、胶原蛋白、甲基纤维素凝胶,该水凝胶的工作浓度比较低(0.125%~0.5%),有利于营养物质的扩散和细胞的迁移;纳米纤维孔径为50~200nm,理化性质稳定,不会因为温度或湿度等因素的影响而发生改变,更接近细胞原本在体内的微环境;且成分明确,减少了不确定因素对细胞生长的影响。此外,该水凝胶可以填充任意形状的缺损,进入机体后可迅速在损伤部位启动凝胶化过程。
压应力干预机械设备——Flexcell-FX5000 Compression System存在强度、频率和时间三个变量因素。如果按照严格的三因素实验设计,强度(1%,2%,3%)、频率(0.5Hz,1.0Hz)、时间(4h,8h,12h,16h),加上对照组需要25组,再加之细胞种板总量大,总体实验需要重复两遍,实验不具备实际操作性,所以就将实验设计拆分成两部分进行,第一部分先验证强度和频率两因素,在此基础上再验证时间因素。骨细胞中ALP和骨骼的钙化作用密切相关,成骨细胞中的ALP作用产生磷酸,与钙生成磷酸钙沉积于骨骼中。在细胞增殖晚期,与细胞周期与细胞增殖相关的基因表达下降,而编码细胞外基质成熟的蛋白的基因开始表达,在分化早期主要是ALP表达,因此ALP被认为是细胞外基质成熟的早期标志。Runx2是成骨细胞的特异转录因子,对骨组织的形成和重建起着重要作用[9]。OPG/RANKL/RANK通路是成骨细胞与破骨细胞之间相互作用的信号通道,主要调控破骨细胞的形成、活动和生存[16]。在OPG/RANKL/RANK系统中,骨髓基质及成骨细胞分泌一定量的RANKL使破骨细胞分化,促进骨吸收,同时也分泌相应数量的OPG以防止骨过度吸收[17]。结合实验结果看,图 2显示强度和频率对ALP(P<0.05)、Runx2(P<0.01) 交互作用显著,1%强度、0.5Hz频率、4h的压应力对成骨细胞的分化作用最优。图 3和图 4的实验指标未出现显著性差异,加上时间因素后,从图 5和图 6可发现,在同样的强度和频率压应力方案下,较之于8h、12h和16h,4h的压应力干预方案能够促进成骨细胞系的生长。这与之前的研究得出的结论"适当的压应力早期能提高成骨细胞的增殖能力并抑制凋亡,促进骨形成"[18]一致。查阅文献发现对成骨样细胞株(MG-63) 施加压力,随着压应力强度的增加,成骨细胞脱落、死亡增加[19]。
在确定1%强度、0.5Hz频率、4h的压应力干预方案后,将接种3D细胞水凝胶的培养板放置于培养箱中培养1天后,冰切后进行凋亡染色,显微镜拍片观察细胞在水凝胶中凋亡的细胞数较少(图 7),表明仍有大量的细胞可以承受1%强度、0.5Hz频率、4h的压应力干预方案。
4 结论确定了压力强度和频率后,对3D细胞水凝胶模型施加一段时间的压应力后发现,以1%强度、0.5Hz频率、4h的压应力干预方案能够促进成骨细胞系的生长。
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