中国生物工程杂志  2016, Vol. 36 Issue (10): 8-14

文章信息

余自青, 吴锁伟, 张丹凤, 柳双双, 谢科, 饶力群, 万向元.
YU Zi-qing, WU Suo-wei, ZHANG Dan-feng, LIU Shuang-shuang, XIE Ke, RAO Li-qun, WAN Xiang-yuan.
玉米隐性核不育突变体ms14的遗传分析与基因定位
Genetic Analysis and Gene Mapping of Recessive Genic Male Sterility14 (ms14) Mutant in Maize
中国生物工程杂志, 2016, 36(10): 8-14
CHINA BIOTECHNOLOGY, 2016, 36(10): 8-14
http://dx.doi.org/DOI:10.13523/j.cb.20161002

文章历史

收稿日期: 2016-03-02
修回日期: 2016-04-20
玉米隐性核不育突变体ms14的遗传分析与基因定位
余自青1,2 ** , 吴锁伟1,2 ** , 张丹凤1,2 , 柳双双1,2 , 谢科1,2 , 饶力群1 , 万向元1,2     
1. 湖南农业大学生物科学技术学院 长沙 410128
2. 北京首佳利华科技有限公司 现代生物农业产业技术研究院 北京 100192
摘要: 玉米雄性不育材料是一种宝贵的种质资源,不育基因的遗传分析与定位研究对玉米分子育种和杂种优势利用具有重要价值。通过对从美国引进的玉米雄性不育突变体材料ms14进行雄花育性鉴定和花药I2-KI染色,表明该突变体是无花粉型雄性不育;通过不育突变体ms14与正常自交系郑58、昌7-2杂交获得F1,然后自交构建两个F2遗传分离群体(ms14×郑58和ms14×昌7-2),并进行雄花育性调查、数据统计和遗传分析,发现可育株数与不育株数的分离比是3:1,表明该突变体由隐性单基因控制;通过SSR等分子标记与不育位点的连锁分析,将ms14基因定位在玉米第1染色体的SSR标记umc2025和umc1676之间,遗传距离分别是2.2cM和0.3cM。对玉米不育基因ms14的遗传分析和初步定位,为该基因的精细定位和克隆、不育机理的解析及其产业化应用奠定了基础。
关键词: 玉米     隐性核雄性不育     ms14     遗传分析     基因定位    
Genetic Analysis and Gene Mapping of Recessive Genic Male Sterility14 (ms14) Mutant in Maize
YU Zi-qing1,2** , WU Suo-wei1,2** , ZHANG Dan-feng1,2 , LIU Shuang-shuang1,2 , XIE Ke1,2 , RAO Li-qun1 , WAN Xiang-yuan1,2     
1. College of Bioscience and Biotechnology, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China;
2. Institute of Industrial Technology on Modern Bio-Agriculture, Beijing Shou Jia Li Hua Sci-Tech Co. Ltd., Beijing 100192, China
Abstract: Maize (Zea mays L.) genic male sterility mutant lines are one kind of elite germplasm, which is helpful to genetics and breeding research and hybrid production in maize. A maize genic male sterility mutant, male sterility14 (ms14) was preliminary studied. Firstly, phenotypical analysis and I2-KI dyeing of ms14 tassels and anthers showed that ms14 mutant is completely pollen sterile and exerts no anthers. Secondly, genetic analysis using two F2 segregation populations of ms14 (ms14×zheng58 and ms14×chang7-2), the ratio of fertile to sterile plants is 3 to 1, which shows that the ms14 mutant is controlled by a recessive genic male sterility gene. Thirdly, through the linkage analysis between ms14 locus and molecular markers in the F2 segregation populations of ms14 (ms14×chang7-2), the ms14 gene is roughly mapped to an interval on Chromosome 1 between SSR markers umc2025 and umc1676, with the genetic distance of 2.2 cM and 0.3 cM, respectively. Finally, the potential application value of the ms14 gene in maize hybrid breeding and production is discussed.
Key words: Zea mays     Recessive genic male sterility     ms14     Genetic analysis     Gene mapping    
1 材料与方法 1.1 材料

本试验所用的材料包括玉米雄性不育突变体ms14,玉米自交系郑58、昌7-2。其中玉米雄性不育突变体ms14从美国玉米种质资源中心(Maize Genetics Cooperation Stock Center)引进,玉米自交系郑58、昌7-2为本实验室保存的国内常规育种材料。

1.2 玉米不育突变体ms14的表型鉴定、分离群体构建及遗传分析

玉米植株抽雄散粉时,取突变体成熟颖花在解剖镜下进行形态观察,同时取不育株和可育株雄穗上、中、下3个部位的小穗,用卡氏固定液固定,剥取花药,用1% I2-KI染色,镜检花药的可染性;田间参照Duvick提出的5级育性鉴定标准[22],逐株进行育性鉴定。

2013年夏季在北京通州试验基地,以玉米不育突变体ms14为母本,以自交系郑58、昌7-2为父本,杂交获得ms14×郑58、ms14×昌7-2的F1种子;2013年冬季在海南三亚基地,种植F1种子,并套袋自交,获得F2分离群体(ms14×郑58、ms14×昌7-2)种子;2014年夏季在北京通州基地,种植F2分离群体,单株挂牌编号,在抽雄散粉期观察各单株的雄花育性表型,记录群体总株数、不育株数和可育株数,计算不育株/可育株的分离比例,并做卡方检验,进行遗传分析。

1.3 玉米DNA提取、分子标记开发及筛选

在抽雄散粉期完成F2群体(ms14×昌7-2)的雄花育性调查鉴定后,按照单株编号,分别剪取其中的全部不育株、部分可育株、母本ms14和父本昌7-2的叶片,采用改良的CTAB法[23]提取亲本和F2不育株的基因组DNA。

根据田间的育性调查结果,随机选取完全不育株和可育株的DNA各10份,分别组成不育池和可育池,再加上不育和可育亲本DNA,选择分布于玉米第1染色体上的SSR分子标记40对,进行SSR引物的多态性标记筛选和基因初步定位。然后在初步定位的基础上,围绕不育基因位点进行SSR、Indel标记开发(表 1),引物由生工生物工程上海(股份)有限公司合成。PCR反应体系及程序参照文献[24],扩增产物利用8%的聚丙烯酰氨凝胶电泳分离,银染检测。

表 1 所用的多态性分子标记序列和名称 Table 1 Molecular marker of polymorphism using in this study
引物名称 正向序列(Forward) 反向序列(Reverse) 染色体位置
umc2229 CGAAGAGCACGATGTTGACG GAGAAGGGCGGGAGGAATAAC 1.04
umc2025 CGCCGTAGTATTTGGTAGCAGAAG TCTACCGCTCCTTCGTCCAGTA 05
umc1676 AGTCGTACGATGACGGAGGC GCACCACCGACTGATCAAGA 05
umc1611 TACTACCAGCAGCTTGCTTCAACA CTTCTTGTTCTTCACGCAGTTGTC 05
umc2232 CTAGATTGCCTCGGACCTGTAAGA CATTCATCCACCATAAATATCCTGC 05
umc1972 ATAGCTCGAGTATTGCGTTGCTCT AGTTGTTGGTGATGGTGAAGGTG 06
umc1035 CTGGCATGATCACGCTATGTATG TAACATCAGCAGGTTTGCTCATTC 06
umc1590 CAGAGTCTGATAGTCCGAACCCAG GTAAAGCTCACAGCTTCCGACAG 06
EP6 CAAATTCCCACAATCACACG ACTGAGCTTCAGGAACTCGC 05
EP7 GAAGACCGTCTCTGTCCTCG ACGATCTTATGCTGGTTGCC 05

1.4 玉米隐性不育基因ms14的连锁分析与遗传作图

ms14×昌7-2的F2群体为作图群体。根据PCR扩增产物电泳后显示的谱带,按以下方法赋值:将具有不育株带型单株记为“A”,具有可育株带型单株记为“B”,杂合体带型记为“H”。采用Mapmaker3.0作图软件进行数据分析和作图,用Kosambi函数将重组率转化为遗传距离,构建ms14基因所在区域的遗传连锁图谱。

2 结果与分析 2.1 玉米隐性核不育突变体ms14的表型鉴定

玉米ms14突变体植株在营养生长阶段与正常可育株在株型上基本无差异,到了生殖生长阶段,可育植株能够正常抽雄,花药能够正常开裂、散粉,自交后可正常结实;与可育株相比,ms14不育株能正常抽雄,但是不能正常开花,花药颖壳不开裂,花药干瘪不外露,无花粉粒形成(图 1 A,B)。对雌穗发育的观察发现,突变株与正常株的雌穗均可以正常授粉结实,说明突变基因不影响雌穗育性。

图 1 玉米不育突变体ms14的雄穗与花药表型 Figure 1 Phenotypes of the tassel and anther of male sterility mutant ms14 in maize (A), (B) and (C) shows that phenotypes of tassel, anther and anther treated by I2-KI in male fertile plant (ms14/+) and male sterility mutant (ms14/ms14), respectively. Bar=2 mm

对正常株花药和突变株花药进行I2-KI染色发现,正常株花粉粒经染色后呈黑褐色(图 1C左),表明正常株花粉发育正常;而突变体无法进行I2-KI染色(图 1C右),说明突变体花药发育异常,不能正常形成花粉粒。

2.2 玉米隐性核不育突变体ms14的遗传分析

为了验证玉米ms14突变体是否是隐性单基因控制的核雄性不育,我们通过ms14突变体分别与郑58、昌7-2杂交,获得F1杂交种,F1植株的雄花均表现为正常可育(与父本一致),说明ms14不育基因呈隐性遗传;F1植株进一步自交构建了2个F2分离群体,并在开花散粉期对分离群体的单株进行了雄花育性调查(表 2)。其中,ms14×郑58的F2分离群体共调查了631个单株,其中可育株数488个,不育株数143个,可育株与不育株的分离比是3.41:1;ms14×昌7-2的F2分离群体共调查了826个单株,其中可育株数645个,不育株数181个,可育株与不育株的分离比是3.56:1。经过卡方测验,表明两个F2分离群体的可育株:不育株的育性分离比都符合3:1,证明该突变体不育性状受1对隐性核基因控制。

表 2 玉米突变体ms14的F2分离群体可育株与不育株分离比例 Table 2 The ratio of fertile vs sterile plants in the F2 segregation populations of maize ms14 mutant
F2分离群体 总株数 可育株数 不育株数 分离比 χ2 P 显著性测验
(P > 0.05)
ms14×郑58 631 488 143 3.41:1 0.971 0.324 ns*
ms14×昌7-2 826 645 181 3.56:1 1.959 0.161 ns*
* ns经卡方测验实际分离比与理论分离比差异不显著,符合3:1

2.3 玉米隐性核不育基因ms14的连锁标记筛选

前人的研究已经将玉米隐性核不育基因ms14遗传定位于玉米第1号染色体上(MaizeGDB,http://www.maizegdb.org/)。为了进行ms14的遗传定位,我们筛选了玉米第1号染色体上的40对SSR引物,发现8对SSR引物(表 1)在ms14突变体与昌7-2之间有多态性,可作为基因定位的分子标记。首先,利用SSR标记umc2025对ms14×昌7-2的F2分离群体的171不育个体进行PCR扩增和电泳分析(图 2),发现umc2025在171个不育单株群体中ms14背景基因型占比94%(表 3),表明umc2025与ms14紧密连锁。

图 2 玉米隐性核不育基因ms14的SSR标记分析(umc2025) Figure 2 SSR marker analysis of the recessive male sterility gene ms14 in maize A:P1, male sterile parent ms14; B:P2, fertile parent line Chang7-2; 1~48 shows that DNA samples of 48 sterile plants in F2 segregation population; M: Molecular weight marker; * indicates the recombinant
表 3 玉米不育基因ms14的连锁标记筛选 Table 3 The linkage marker screening of ms14 gene in maize
F2群体 母本(A) 父本(B) 目标基因位点 目标基因位置 SSR标记 A基因型数 B基因型数 H基因型数 缺失样品数 不育株数 A基因型占比
Ns14×昌7-2 ms14 昌7-2 ms14 1.05 umc2025 159 0 10 2 171 94%

2.4 玉米隐性核不育基因ms14的初步定位

为了初步定位不育基因ms14,利用8个多态性SSR分子标记对ms14×昌7-2的F2分离群体的171个不育植株进行PCR电泳分析,构建了玉米不育基因ms14所在区间的遗传连锁图谱。结合表型数据,进行连锁交换分析,初步将ms14基因定位于umc2025与umc1676之间,遗传距离分别为2.2cM和0.3cM(图 3)。

图 3 玉米不育基因ms14的初步定位 Figure 3 Primary mapping of maize male sterility gene ms14

为了进一步精细定位不育基因ms14,在umc2025与umc1676之间,根据单拷贝基因设计多态标记,并对亲本进行多态性分析,筛选到2个Indel标记(EP6,EP7)在两亲本间有多态性(表 1)。但是,进一步对F2群体171个不育单株进行分析后,发现这两个多态标记的定位结果与SSR标记umc1676和umc1611无差异,暗示该区段的重组率非常低。因此,ms14最终只能初步定位于umc2025和umc1676之间的近着丝粒区。

3 讨论

玉米是雌雄同株异花作物,也是杂种优势利用的典范,其中杂交制种技术的关键在于母本的去雄。玉米人工去雄相对容易,也可以通过机械去雄、化学杀雄等途径,但是这些策略存在一些问题:一方面,这些去雄技术大大增加了制种的成本;另一方面,因人工去雄的不彻底或不及时,会降低杂交种的纯度,造成生产上大面积减产,导致巨大的经济损失。因此,降低制种成本、提高种子纯度是当前玉米生产急待解决的问题,而利用雄性不育系制种是最为有效的途径之一。

迄今,创制和利用玉米的雄性不育系进行“三系法”或“两系法”制种,已获得了一定的成功。“三系法”主要利用玉米的细胞质(质核互作)雄性不育性,实施不育系、保持系和恢复系三系配套技术,易受专化性病原小种侵染,同时限制了杂交育种中玉米种质资源的利用率。“两系法”主要利用玉米的光温敏雄性核不育系,在特定的光温环境条件下,可以实现雄花育性转换,从而达到一系两用的目的。但是,由于光温敏雄性不育系易受环境因素影响,育性不稳定,在玉米制种过程中存在较大风险。因此,建立一套“遗传可控的、不受光温敏影响的玉米核雄性不育系”技术体系,并创制出一批稳定的核雄性不育系,对玉米优异杂交新品种培育和高效、低成本、无风险制种,具有重要意义。

玉米隐性核不育材料是一种重要的种质资源,在玉米雄花发育分子机制与遗传育种应用中具有重要价值。相对于细胞质不育系(三系法)和光温敏核不育系(两系法)而言,隐性核不育材料具有不育性稳定、种质资源利用率高等优点,因而越来越受到玉米遗传育种工作者的青睐。

本文对玉米不育突变体ms14进行了雄花和花药表型鉴定、遗传分析、基因定位等初步研究,结果表明ms14是单隐性基因控制的无花粉型核不育突变体,并通过分子标记连锁分析将其定位于玉米第1染色体的SSR标记umc2025与umc1676之间,遗传距离分别为2.2 cM和0.3cM,为ms14基因的精细定位、分离克隆及其产业化应用奠定了基础。

目前,由于F2分离群体规模较小(小于1000株),同时由于ms14定位于玉米第1染色体的近着丝粒区,该区段的重组率极低,致使4个多态性分子标记(umc1676,umc1611,EP6与EP7)对ms14基因的定位结果无差异。下一步将通过扩大F2分离群体(其中不育株10 000株以上),进一步对ms14进行精细定位,并完成ms14基因的分离克隆。此外,通过突变体与野生型的测序分析、玉米转基因功能互补试验等,完成ms14基因的功能验证。

玉米隐性核不育材料ms14是遗传稳定的无花粉型不育系,在玉米不育化杂交育种和制种中具有巨大的应用潜力。通过紧密连锁标记(如umc1676、umc1611、EP6与EP7)的标记辅助选择育种,可以创制不同遗传背景的ms14不育系,为其产业化应用奠定基础。此外,ms14基因一旦完成克隆验证后,可以通过构建以其野生型基因Ms14为核心的多控不育载体(同时含有育性恢复基因Ms14、花粉失活基因ZmAA/Dam、筛选标记基因DsRed/mCherry/Bar等4~5个功能元件)并转化玉米ms14突变体材料,以获得转基因的多控不育保持系;通过转基因技术、传统育种技术(杂交、回交)和分子标记辅助选择技术的综合应用,筛选和创制不同遗传背景的非转基因玉米雄性不育系,实现隐性核不育系材料的有效保持和繁殖。建立基于玉米隐性核不育系(以ms14基因为核心)的高效杂交育种和制种技术体系,实现降低玉米制种成本、提高制种纯度、提高杂种优势利用效率、有效保护品种权等目的,为我国玉米种业的发展提供科技支撑。

参考文献
[1] Timofejeva L, Skibbe D S, Lee S, et al. Cytological characterization and allelism testing of anther developmental mutants identified in a screen of maize male sterile lines. G3(Bethesda) , 2013, 3 : 231–249.
[2] 吴锁伟, 方才臣, 万向元, 等. 玉米隐性核雄性不育基因研究进展及其育种应用途径分析. 分子植物育种(网络版) , 2012, 10 : 1001–1011. Wu S W, Fang C C, Wan X Y, et al. Research progress and breeding utilization strategies of recessive genic male sterility genes in maize. Molecular Plant Breeding (online) , 2012, 10 : 1001–1011.
[3] 万向元, 吴锁伟, 周岩, 等.植物花粉发育调控基因Ms1及其编码蛋白, 中国发明专利, CN201410381072.5, 2014. Wan XY, Wu S W, Zhou Y, et al. The DNA sequence and the coded protein of Ms1 gene which controls the male fertility of plants. Chinese patent, CN201410381072.5, 2014.
[4] 万向元, 吴锁伟, 谢科, 等.一种控制玉米雄性生育力的ZmMs7基因序列及其编码蛋白, 中国发明专利, CN201410338212.0, 2014. Wan X Y, Wu S W, Xie K, et al. The DNA sequence and the coded protein of ZmMs7 gene which controls the male fertility of maize. Chinese patent, CN201410338212.0, 2014.
[5] Wang D, Skibbe D S, Walbot V. Maize male sterile 8 (Ms8), a putative β-1, 3-galactosyltransferase, modulates cell division, expansion, and differentiation during early maize anther development. Plant Reprod , 2013, 26 (4) : 329–338. DOI:10.1007/s00497-013-0230-y
[6] Albertsen M C, Fox T, Leonard A, et al. Cloning and use of the ms9 gene from maize, United States Patent, US20160024520A1, 2016.
[7] Chaubal R, Anderson J R, Trimnell M R, et al. The transformation of anthers in the msca1 mutant of maize. Planta , 2003, 216 : 778–788.
[8] Albertsen M C, Fox T, Trimnell M, et al. Msca1 nucleotide sequences impacting plant male fertility and method of using same, United States Patent, US20090038027A1, 2009.
[9] Wu Y, Hershey H. Nucleotide sequences mediating plant male fertility and method of using same. United States Patent, US20110173725A1, 2011.
[10] Vernoud V, Laigle G, Rozier F, et al. The HD-ZIP IV transcription factor OCL4 is necessary for trichome patterning and anther development in maize. Plant J , 2009, 59 : 883–894. DOI:10.1111/tpj.2009.59.issue-6
[11] Wang C J, Nan G L, Kelliher T, et al. Maize multiple archesporial cells 1 (mac1), an ortholog of rice TDL1A, modulates cell proliferation and identity in early anther development. Development , 2012, 139 : 2594–2603. DOI:10.1242/dev.077891
[12] 万向元, 吴锁伟, 周岩, 等.一种玉米花粉减数分裂后发育调控基因Ms30的DNA序列及其编码蛋白, 中国发明专利, CN201410703778.9, 2014. Wan X Y, Wu S W, Zhou Y, et al. The DNA sequence and the coded protein of a pollen post-meiotic developmental gene Ms30 in maize. Chinese patent, CN201410703778.9, 2014.
[13] Moon J, Skibbe D, Timofejeva L, et al. Regulation of cell divisions and differentiation by Male Sterility32 is required for anther development in maize. The Plant Journal , 2013, 76 : 592–602. DOI:10.1111/tpj.2013.76.issue-4
[14] Cigan A M, Unger E, Xu R J, et al. Phenotypic complementation of ms45 maize requires tapetal expression of MS45. Sex Plant Reprod , 2001, 14 : 135–142. DOI:10.1007/s004970100099
[15] Hondred D, Young J K, Brink K, et al. Plant genomic DNA flanking SPT event and methods for identifying SPT event. United States Patent, US20090210970A1, 2009.
[16] 王超, 安学丽, 万向元, 等. 植物隐性核雄性不育基因育种技术体系的研究进展与展望. 中国生物工程杂志 , 2013, 33 (10) : 124–130. Wang C, An X L, Wan X Y, et al. Development and prospect of breeding technological system by recessive genic male-sterile genes in plants. China Biotechnology , 2013, 33 (10) : 124–130.
[17] Wu Y, Fox T W, Trimnell M R, et al. Development of a novel recessive genetic male sterility system for hybrid seed production in maize and other cross-pollinating crops. Plant Biotechnol J, 2015, doi: 10.1111/pbi.12477.
[18] 万向元, 吴锁伟, 谢科, 等.基于Ms1基因构建的介导玉米雄性生育力的多控不育载体及其应用, 中国发明专利, CN201510298173.0, 2015. Wan X Y, Wu S W, Xie K, et al. The multi-control male sterility constructs based on Ms1 gene and their application. Chinese patent, CN201510298173.0, 2015.
[19] 万向元, 谢科, 吴锁伟, 等.一种基于Ms7基因构建的多控不育表达载体及其用于保持和繁殖玉米隐性核不育系的方法, 中国发明专利, CN201510301333.2, 2015. Wan X Y, Xie K, Wu S W, et al. The multi-control male sterility constructs based on Ms7 gene and their application in maintaining and producing maize recessive genic male sterility lines. Chinese patent, CN201510301333.2, 2015.
[20] 万向元, 吴锁伟, 谢科, 等.一种基于Ms30基因建立的玉米雄性不育系保持和繁殖的方法, 中国发明专利, CN201510300778.9, 2015. Wan X Y, Xie K, Wu S W, et al. The methods of maintaining and producing maize recessive genic male sterility lines based on Ms30 gene. Chinese patent, CN201510300778.9, 2015.
[21] Beadle G W. Genes in maize for pollen sterility. Genetics , 1932, 17 : 413–431.
[22] Duvick D N. Cytoplasmic pollen sterility in corn. Advan Genet , 1965, 13 : 1–56.
[23] CIMMYT. Laboratory Protocols: CIMMYT Applied Molecular Genetics Laboratory. 2005. Third Edition. Mexico, EI Batan, D.F.: CIMMYT.
[24] Wu S W, Yu Z W, Wang F G, et al. Cloning, characterization, and transformation of the phosphoethanolamine N-methyltransferase gene (ZmPEAMT) from maize (Zea mays L.). Mol Biotech , 2007, 32 : 102–112.