中国生物工程杂志  2015, Vol. 35 Issue (12): 96-102

文章信息

樊飞飞, 李杰勤, 詹秋文, 王丽华, 刘言龙
FAN Fei-fei, LI Jie-qin, ZHAN Qiu-wen, WANG Li-hua, LIU Yan-long
植物肉桂酰辅酶A还原酶基因克隆研究进展
Research Progress of Cinnamoyl-CoA Reductase (CCR) Gene in Plants
中国生物工程杂志, 2015, 35(12): 96-102
China Biotechnology, 2015, 35(12): 96-102
http://dx.doi.org/10.13523/j.cb.20151215

文章历史

收稿日期: 2015-06-30
修回日期: 2015-08-11
植物肉桂酰辅酶A还原酶基因克隆研究进展
樊飞飞, 李杰勤 , 詹秋文, 王丽华, 刘言龙    
安徽科技学院农学院 凤阳 233100
摘要: 木质素单体合成的过程中涉及了许多酶的参与,而肉桂酰辅酶A还原酶(cinnamoyl-CoA reductase, CCR)是该过程中的一个关键酶。综述了CCR基因在植物体内的克隆、基因功能及在植物组织中的表达情况,并介绍了该基因在植物的抗病虫害和抗逆性研究、饲草和能源上的应用潜力,为进一步研究CCR基因生物学功能和利用奠定了基础。
关键词: 木质素     肉桂酰辅酶A还原酶     基因克隆     基因功能     植物组织表达    
Research Progress of Cinnamoyl-CoA Reductase (CCR) Gene in Plants
FAN Fei-fei, LI Jie-qin , ZHAN Qiu-wen, WANG Li-hua, LIU Yan-long    
College of Agriculture, Anhui Science and Technology University, Fengyang 233100, China
Abstract: Many enzymes involved in the biosynthesis of lignin monomer in plant. Cinnamoyl coenzyme A reductase (cinnamoyl-CoA reductase, CCR) is a key enzyme of the process. The progress of CCR gene cloning, function and expression in plants were summarized. Additionally, the potential of this gene in plant's resistance to pests and stress, forage and energy usage were also described. It provided the foundation for further research and usage of this gene.
Key words: Lignin cinnamoyl-CoA reductase (CCR)     Gene cloning     Gene function     Plant tissue expression    

木质素是包围于管胞、导管及木纤维等纤维束细胞及厚壁细胞外的一类高分子物质,它与纤维素、半纤维素一起,形成植物骨架的主要成分,在数量上仅次于纤维素[1]。在细胞壁的木质化过程中,木质素增强了植物细胞壁的韧性和强度,维持了细胞壁的结构完整性。此外,植物体内木质素的含量、构成木质素单体的含量和种类对于植物的抗倒伏、抗病和抗逆性起到了举足轻重的作用[2]。但是,过高的木质素含量不仅影响了造纸工艺和纸张质量,而且也影响了牲畜对于饲草的消化和营养的吸收利用。因此,研究木质素在植物体内的生物合成路径具有重要意义。

木质素的生物合成分为两步。第一步是木质素单体合成,它是以苯丙酸为底物,经过一系列羟基化、甲基化、连接、还原等生成松柏醇、香豆醇及芥子醇;第二步这些单体被转运到木质化沉积位点,经脱氢聚合形成木质素[3, 4]

目前,研究人员大多认为木质素单体合成途径分为三个步骤:第一步是植物的光合作用产物到苯丙氨酸等形成途径,为莽草酸途径;第二步是从苯丙氨酸到羟基肉桂酸及其辅酶A酯类,为苯丙酮酸途径;最后一步是羟基肉桂基辅酶A酯类到合成木质素过程,为木质素合成的特异途径[5] (图 1)。在这些单体的合成过程中涉及了许多酶的参与,而CCR和CAD是该过程的2个关键酶,其合成过程中的3种羟基桂酸的辅酶A酯在CCR的催化下生成相应的肉桂醛。CCR是催化木质素特异合成途径的一个关键酶,同时也是一个重要的限速酶[6]

图 1 木质素单体的生物合成途径 Fig. 1 Biosynthesis pathway of lignin monomers

本文综述了CCR的酶学特征、CCR基因克隆、CCR基因在植物组织中的表达情况、以及该基因的应用潜力。

1 CCR的酶学特征

CCR的分子量一般在30kDa以上,不同作物略有差异。拟南芥的AtCCR1 分子量为37.5kDa,等电点为6.1,AtCCR2 分子量为36.6kDa,等电点为6.09[7]。柠条锦鸡儿的CkCCR分子量为36.76kDa,等电点为6.69[8]

CCR酶的活性受pH、 反应产物、金属螯合物及有机物的影响。杨树CCR 在缓冲液中的最适pH 值为6.0 ~ 6.5[9]。反应产物NADP+能够反馈性地抑制大豆CCR的活性[10]。金属螯合物1,10-菲罗啉(1,10-phenanthroline) 也能不可逆地抑制白杨等植物的CCR的酶活。N-乙基顺丁烯二酰亚胺(NEM)及4-氯汞基苯甲酸盐(pCMB)等能与巯基反应的有机物可以不同程度地抑制CCR的活性[11]

2 CCR基因植物中的克隆进展

自从在水稻中克隆出CCR基因以来,到目前克隆了21种植物的CCR基因。其中单子叶植物8种,双子叶植物12种,裸子植物1种。从目前克隆的植物CCR基因来看,CCR1主要与木质素的合成有关,而CCR2主要与植物的抗逆性有关。例如,玉米ZmCCR1与木质素合成有关,ZmCCR2与抗干旱有关;柳枝稷pvCCR1与木质素合成有关,pvCCR2与抗锈病有关。但在一些植物内CCR基因既与木质素的合成有关又和抗逆性有关,例如柠条锦鸡儿的CkCCR基因既与木质素合成有关,又和抗旱有关;丹参SmCCR-2基因既与木质素合成有关,又与抗病有关(表 1)[12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31]

表 1 植物的CCR基因的功能 Table 1 CCR gene function in different plants
植物名称
(Plant Names)
CCR基因
(CCR
gene)
基因功能
(Gene Function)
参考文献
(References)
单子叶植物
(Monocotyledon)
玉米
(Zea mays L.)
ZmCCR1
ZmCCR2
木质素有关
抗逆性有关
[12]
[13]
小麦
(Triticum spp.)
TaCCR1
TaCCR2
木质素合成
木质素合成
[14]
黑麦草(Lolium)LPCCR1木质素合成[15]
大麦(Hordeum vulgare L.)HvCCR木质素合成[16]
柳枝稷
(Panicum virgatum)
PvCCR1
PvCCR2
木质素合成
抵抗不良环境有关
[17]
水稻
(Oryza sativa)
OsCCR木质素合成[18]
东方百合
(Lilium oriental hybrids)
LsCCR1尚未明确[19]
象草
(Pennisetum rpureum)
PpCCR尚未明确[20]
双子叶植物
(Dicots)
菘蓝
(Isatis indigotica Fort)
LtCCCR木质素合成[21]
芒果
(Mangifera indica Linn)
CCR尚未明确[22]
柠条锦鸡儿
(Caragana korshinkii Kom)
CkCCR既与木质素合成有关,
又与抗逆有关
[8]
丹参
(Salvia miltiorrhiza Bunnge)
SmCCR-2既与木质素合成有关,
又与抗逆有关
[23]
雀稗
(Paspalum dilatatum)
PdCCR木质素合成[24]
拟南芥
(Arabidopsis thaliana)
AtCCR1
AtCCR2
与木质素合成
抵抗不良环境有关
[7]
银合欢
(Leucaena leucocephala)
LlCCR. 发育缓慢,
皱叶和延缓衰老
[25]
番茄
(Solanum lycopersicum L)
LeCCR1
LeCCR2
木质素合成
抗逆性(在病菌的侵染之下)
[26]
胡杨
(Populus euphratica)
PopTrCCR12
其它的CCR
木质素合成
抵抗不良环境有关
[27]
苜蓿
(Medicago truncatula)
CCR1
CCR2
大幅度的降低木质素含量并且植物生长停止
木质素适度的降低,植物正常生长
[28]
白桦(Betula platyphylla Suk)BpCCR木质素合成[29]
棉花(Gossypium hirsutum)GhCCR4木质素合成[30]
裸子植物
(gymnosperm)
云杉
(Picea asperata Mast)
asCCR木质素合成[31]
3 CCR基因在不同植物组织中的表达情况

CCR1基因在植物组织中的表达部位主要集中在木质化程度高的部位。例如,玉米的ZmCCR1基因在茎的上部节间和基部节间表达量很高;小麦中的TaCCR1基因在小麦茎的表达量最高;Escamilla-TreviñoLL研究发现柳枝稷PvCCR1基因在基部节间的表达量最高,尤其在第一节间,几乎是PvCCR2基因的200倍。因此CCR1基因的表达模式表明它是与木质素合成有关,这与其功能也一致。

在模拟逆境条件下,CCR2基因在植物体内的表达部位有差异。Ling Fan等研究玉米根系在水分胁迫的条件下,ZmCCR2基因在根中表达有所上升。柳枝稷在锈病的作用下,PvCCR2在叶片中表达量非常大。拟南芥在水稻白叶枯病菌的作用下,AtCCR2基因在叶片中的表达强烈,同时也检测到叶片中产生大量与抗病有关系的酚类物质。这也从侧面反映出CCR2基因的表达模式,表明它与植物的抗逆性有关。

4 CCR基因的应用 4.1 CCR基因在作物抗逆和抗病育种上的研究前景

抗逆和抗病育种是现代育种的一个重要方向,Dixon等[32]研究结果表明植物细胞壁木质化不仅能提高植物体机械支持强度,还在植物抗病虫害及抗逆性等方面起作用。例如,Lauvergeat等[33]研究了拟南芥中的CCR基因时,他们发现木质化对植物具有保护作用,它能干扰病菌进入植物体内。同时拟南芥的AtCCR2出现在被细菌感染的叶片中,或许表明它具有抗病的功能,但拟南芥的AtCCR2也可能不参与木质素的形成,而是涉及酚类化合物(如植物抗毒素)的合成并参与抗病。研究人员利用聚乙二醇6000对玉米进行水分胁迫处理,发现ZmCCR2基因在玉米根部表达量上升,同时玉米根部细胞壁也产生大量的酚类物质,这就说明在模拟干旱环境下,玉米根部所产生的一切变化都有助于玉米适应干旱环境。陈刚等[34]对不同抗白粉病南瓜品种接种白粉菌后,发现高抗品种叶片中CCR基因的表达量增大,并且表达时间变长,这说明CCR基因与南瓜的抗病性密切相关。Hyun等[35]对大豆的 CCR 基因(GmCCR)进行了研究,认为 GmCCR与大豆抵抗非生物胁迫的机制有关。因此他们的研究为利用CCR基因在抗病虫害及抗逆有关的育种应用提供了可能。

4.2 CCR基因在饲用作物上的应用

饲用作物中的木质素含量与其消化率直接相关,降低木质素合成过程中的相关基因表达,能够降低木质素的合成。Guo等[36]把野生型的苜蓿与咖啡酰甲基转移酶(CCoAOMT)和咖啡酸甲基转移酶(COMT)缺陷的苜蓿对比,发现在咖啡酰甲基转移酶(CCoAOMT)和咖啡酸甲基转移酶(COMT)缺陷的苜蓿中,其木质素下降了20%,并且纤维素的含量增加了30%。同时,转基因苜蓿的木质素结构和成分也发生了变化,该变化提高牲畜对于茎的消化率。胡可等[37]获得了9株黑麦草CCR基因干扰株系,这些植株中木质素含量平均降低了34.67%,该变化提高了牲畜对黑麦草的消化和营养的吸收。CCR是木质素特异单体合成路径中的一个关键酶,利用基因工程改变植物细胞壁的总木质素含量和木质素单体的组成比例,从而提高饲用作物消化性和适口性,同时也提高饲用作物的产量与品质,使各种放牧家畜的自由采食量大大增加[38]。这为提高饲用作物的饲用品质育种提供了一个新的发展方向。

4.3 CCR基因在能源上的利用前景

能源危机是当今世界面临的巨大危机,基于可持续发展的原则,人们普遍认为以能源植物为主的生物质能将是人类未来的理想选择[39, 40]。能源植物指的是绿色植物通过光合作用将太阳能转化为化学能而储存在生物质内部,因其具有绿色洁净、可再生及分布广的特点,使其能够替代石油、天然气等成为未来的主要能源资源[41, 42]

利用淀粉类作物生成能源的成本太高,而像柳枝稷、杨树及芒草等这些富含纤维的能源植物则是非常好的选择,但在生成生物柴油的过程中,植物细胞壁中的木质素极大地阻碍了合成效率。研究人员发现在降低CAD表达水平的转基因和突变体的柳枝稷与玉米中,木质素含量和结构不但发生了变化,而且柳枝稷生成糖的效率和玉米生成酒精的产量也提高了[43, 44, 45]。Chen等[46]通过下调紫花苜蓿中CCR基因的表达水平,发现降低木质素含量可以增加生物质糖化水解效率,进而增加酒精产量。在杨树中,降低CCR的活动提高了161%的乙醇产量[47]。所以,除了在杨树中,改变CCR在其他能源植物中的表达量与改变CAD一样,也可以提高生物能源的生成效率。因此,CCR基因在提高生物质能源的生成效率上将大有可为。

4.4 CCR基因在造纸植物上的应用潜力

木质素是植物体内数量仅次于纤维素的有机物,但在造纸过程中却是主要的污染来源,造纸工业每年大约可产生5000万吨的木质素称之为“黑液”,其绝大部分直接排入河流或焚烧,造成了严重的环境污染[48]。近年来的研究发现,降低CCR基因的表达量可显著地降低木质素的含量及其单体的比例。在转基因杨树中,CCR表达量的下降可导致杨树中木质素含量降低50%,S型木质素比G型木质素降低更多,而且发现四年生的转基因杨树更适合造纸[49]。同样,挪威云杉中CCR表达量下降也可降低其木质素含量。在这些转基因植物中,降低CCR可以得到理想的制浆效果。因而,利用转基因技术降低造纸植物的木质素含量,能够减轻造纸工业对环境的污染。

致谢 感谢安徽科技学院大学生创新课题(项目编号:15XSZ17)和安徽科技学院作物学重点学科(项目编号:AKZDXK2015A03)的支持。

参考文献
[1] Zhong R Q, Morrison W H, Himmelsbach D S, et al. Essential role of caffeoyl coenzyme a O-methytransferase in lignin biosynthesis in woody polar plants. Plant physiol, 2000, 124:563-578.
[2] Guo D J, Chen F, Inoue K, et al. Down regulation of caffeic acid 3-O-Methltransferase and caffeoyl CoA3-O-Methltransferase in transgenic alfalfa impacts on lignin structure and implications for the biosynthesis of G and S lignin. Plant Cell, 2001, 13:73-88.
[3] Rogers L A, Campbell M M. The genetic control of lignin deposition during plant growth and development. New Phytologist, 2004, 164:17-30.
[4] Miao Y C, Liu C J. ATP-binding cassette-like transporters are involved in the transport of lignin precursors across plasma andvacuolar membranes. PNAS, 2010, 107(52):22728-22733.
[5] 耿飒,徐存拴,李玉昌,等.木质素的生物合成及其调控研究进展.西北植物学报, 2003, 23(1):171-181. Geng S, Xu C S, Li Y C, et al. Advance in biosynthesis of lignin and its regulation. Acta Botanica Boreali-Occidentalia Sinica, 2003, 23(1):171-181.
[6] Lacombe E, Hawkins S, Van Doorsselaere J, et al. Cinnamoyl CoA reductase, the first committed enzyme of the lignin branch biosynthetic pathway:cloning, expression and phylogenetic relationships. Plant J, 1997, 11(3):429-441.
[7] Lauvergeat V, Lacomme C, Lacombe E, et al. Two cinnamoyl-CoA reductase (CCR) genes from Arabidopsis thaliana are differentially expressed during development and in response to infection with pathogenic bacteria. Phytochemistry, 2001, 57(7):1187-1195.
[8] 李高,杨杞,张烨,等.柠条锦鸡儿肉桂酰辅酶A还原酶基因克隆和分析.中国生物工程杂志, 2014, 34(1):50-56. Li G, Yang Q, Zhang Y, et al. Caragana korshinkii Kom cinnamon coenzyme A reductase gene cloning and analysis. China Biotechnology, 2014, 34(1):50-56.
[9] Sarni F, Grand C, Boudet A M. Purification and properties of cinnamoyl-CoA reductase and cinnamyl alcohol dehydrogenase from poplar stems (Populus×Euramericana). Biochem, 1984, 139:259-265.
[10] Wengenmayer H, Ebel J, Grisebach H. Enzymic synthesis of lignin precursors. Purification and properties of a cinnamoyl-CoA NADPH reductase from cell suspension cultures of soybean (Glycine max). Biochem., 1976,65:529-536.
[11] Goffner D, Campbell M M, Campargue C, et al. Purification and characterization of cinnamoyl-coenzyme A:NADP oxidoreductase in Eucalyptus gunnii. Plant Physiol, 1994, 106:625-632.
[12] Tamasloukht B, Wong Quai Lam M S, Martinez Y, et al. Characterization of a cinnamoyl-CoA reductase 1(CCR1)mutant in maize:effects on lignification, fibre development, and global gene expression. Journal of Experimental Botany, 2011, 62(11):3837-3848.
[13] Ling F, Raphael L, Shimon G, et al. Progressive Inhibition by water deficit of cell wall extensibility and growth along the elongation zone of maize roots is related to increased lignin metabolism and progressive stelar accumulation of wall phenolics1.Plant Physiol, 2006, 140(2):603-612.
[14] Ma Q H, Tian B. Biochemical characterization of a cinnamoyl-CoA reductase from wheat. Biol Chem, 2005, 386(6):553-560.
[15] Yi Tu. Functional analyses of caffeic acid O-methyltransferase and cinnamoyl-CoA-reductase genes from perennial ryegrass (Lolium perenne). Plant Cell, 2010, 22(10):3357-3373.
[16] Larsen K. Molecular cloning and characterization of cDNAs encoding cinnamoyl CoA reductase (CCR) from barley (Hordeum vulgare) and potato (Solanum tuberosum). Plant Physiol, 2004, 161(1):105-112.
[17] Escamilla-Trevino L L, Shen H, Dixon R A. Switch grass (Panicum virgatum) possesses a divergent family of cinnamoyl CoA reductases with distinct biochemical properties. New Phytol, 2010, 185(1):143-155.
[18] 白勇,巩威,朱玉贤,等.水稻肉桂酰辅酶A还原酶基因的克隆与表达分析.科学通报, 2003, 48(16):1780-1784. Bai Y, Gong W, Zhu Y X, et al. Oryza sativa cinnamon coenzyme A reductase gene cloning and expression analysis. Chinese Science Bulletin, 2003, 48(16):1780-1784.
[19] 李晓荣,王桂凤,席梦利,等.东方百合 LsCCR1基因克隆及表达分析.分子植物育种, 2008, 6(1):141-147. Ling X R, Wang G F, Xi M L, et al. Cloning and expression analysis of the LsCCR1 gene from Lilium Oriental hybrids. Molecular Plant Breeding, 2008, 6(1):141-147.
[20] Zhu Q H, Zhang X Q, Huo S, et al. Cloning and bioinformatic analysis of cinnamoyl-CoA reductase gene (CCR)from Pennisetum purpureum,Agricultural Science & Technology,2012, 13(2):284-291.
[21] Hu Y S, Di P, Chen J.F, et al. Isolation and characterization of a gene encoding cinnamoyl-CoA reductase from Isatis indigotica Fort. Mol Biol Rep, 2011, 38(3):2075-2083.
[22] 张宇,张波,赵志常,等.芒果CCR基因的克隆及其序列分析.华北农学报, 2014, 29:16-19. Zhang Y, Zhang B, Zhao Z C, et al. Cloning and sequence analysis of CCR gene from mango. Acta Agriculturae Boreail-Sinica, 2014, 29:16-19.
[23] 陈尘,王政军,曹鑫林.丹参肉桂酰辅酶A还原酶基因克隆与生物学分析.西北植物学报, 2011, 31(10):1963-1968. Chen C,Wang Z J,Cao X L. Bioinformatics and expression analysis of cinnamoy-l CoA reductase gene from Salvia miltiorrhiza Bunge. Acta Bot Boreal-Occident Sin, 2011, 31(10):1963-1968.
[24] Giordano A, Liu Z, Panter S N, et al. Reduced lignin content and altered lignin composition in the warm season forage grass Paspalum dilatatum by down-regulation of a cinnamoyl CoA reductase gene. Transgenic Res, 2014, 23(3):503-517.
[25] Prashant S, Srilakshmi Sunita M, Pramod S, et al. Down-regulation of Leucaena leucocephala cinnamoyl CoA reductase (LlCCR) gene induces significant changes in phenotype, soluble phenolic pools and lignin in transgenic tobacco. Plant Cell Rep., 2011, 30(12):2215-2231.
[26] Vander Rest B, Danoun S, Boudet A M, et al. Down-regulation of cinnamoyl-CoA reductase in tomato (Solanum lycopersicum L.) induces dramatic changes in soluble phenolic pool. Exp Bot, 2006, 57(6):1399-1411.
[27] Barakat A, Yassin N B, Park J S, et al. Comparative and phylogenomic analyses of cinnamoyl-CoA reductase and cinnamoyl-CoA-reductase-like gene family in land plants. Plant Sci, 2011, 181(3):249-257.
[28] Zhou R, Jackson L, Shadle G, et al. Distinct cinnamoyl CoA reductases involved in parallel routes to lignin in Medicago truncatula. PNAS, 2010, 107(41):17803-17808.
[29] 张岩.白桦BpCCR基因的功能研究和应用力转录组分析.哈尔滨:东北林业大学, 2012. Zhang Y. Functional characterization of a BpCCR gene from Betula platyphylla Suks and transcriptome analysis of reaction wood. Harbin:Northeast Forestry University, 2012.
[30] 秦超.棉花肉桂酰辅酶A还原酶基因(GhCCR4)遗传转化和功能分析.乌鲁木齐:新疆农业大学, 2009. Qin C. Genetic transformation and function analysis of cinnamoyl CoA reductase(GhCCR4) gene in Cotton(Gossypium hitstum).Urumuchi:Xin Jiang Agricultural University, 2009.
[31] Wadenbäck J, Von Arnold S, Egertsdotter U, et al. Lignin biosynthesis in transgenic Norway spruce plants harboring an antisense construct for cinnamoyl CoA reductase (CCR).Transgenic Res, 2008, 17(3):379-392.
[32] Dixon R A, Lamb C J. Molecular communication in interactions between plants and microbial pathogens, Annu Rev Plant Physiol, Plant Mol Biol, 1990, 41:339-367.
[33] Lauvergeat V, Lacomme C, Lacombe E, et al. Two cinnamoyl-CoA reductase (CCR) genes from Arabidopsis thaliana are differentially expressed during development and in response to infection with pathogenic bacteria. Phytochem, 2001, 57:1187-1195.
[34] 陈刚.美洲南瓜CCR基因与种皮发育和抗白粉病相关性研究及其功能分析.兰州:甘肃农业大学, 2013. Chen G. Correlation study of CCR gene in development of seed coat and resistance to powdery mildew and its function analysis in Cucurbita pepo. Lanzhou:Gansu Agricultural University, 2013.
[35] Hyun A S, Eunsook C, Chang W C, et al. Molecular cloning and characterization of soybean cinnamoyl CoA reductase induced by abiotic stresses. Plant Pathol, 2010, 6(4):380-385.
[36] Guo D, Chen F, Inoue K, et al. Downregulation of caffeic acid 3-O-methyltransferase and caffeoyl CoA 3-O-methyltransferase in transgenic alfalfa:impacts on lignin structure and implications for the biosynthesis of G and S lignin. Plant Cell, 2001, 13:73-88.
[37] 胡可,严雪锋,栗丹.沉默CCR和CAD基因培育低木质素含量转基因多年生黑麦草.草业学报, 2013, 22(5):72-83. Hu K, Yang X F, Li D. Genetic improvement of perennial ryegrass with low lignin content by silencing genes of CCR and CAD. Acta Prataculturae Sinica, 2013, 22(5):72-83.
[38] Cherney J H, Cherney D J, Akin D, et al. Potential of brown-midrib, low-lignin mutants for improving forage quality. Agron, 1991, 46:157-198.
[39] 郭廷杰.贯彻科学发展观拓展资源再生产业促进生物质能利用.再生资源研究, 2005, 2:1-4. Guo T J. Implement the scientific concept of development to expand the recycling industry to promote the use of biomass. Renewable Resources Research, 2005, 2:1-4.
[40] 常振明,韩平,曲春洪.可再生能源利用现状与未来展望.当代石油化工, 2004, 12(12):19-25. Chang Z M, Han P, Qu C H. Renewable energy utilization status and future prospects. Petroleum & Petrochemtcal Today, 2004, 12(12):19-25.
[41] 翔实.植物燃料的研究现状与发展.科技与经济, 1996, 12:43-45. Xian S. Research status and development of plant fuel. Science &Technology and Economy, 1996, 12:43-45.
[42] 秦向华.能源植物姗姗走来.森林与人类, 2004, 11:49. Qing X H. The coming of energy plant. Forest & Humankind, 2004,11:49.
[43] Bouvier D. Yvoire M, Bouchabke-Coussa O, et al. Disrupting the cinnamyl alcohol dehydrogenase 1 gene (BdCAD1) leads to altered lignification and improved saccharification in Brachypodium distachyon. Plant J, 2013, 73(3):496-508.
[44] Fornal E S, Shi X, Chai C, et al. ZmMYB31 directly represses maize lignin genes and redirects the phenylpropanoid metabolic flux. Plant J, 2010, 64(4):633-644.
[45] Saathoff A J, Sarath G, Chow E K, et al. Downregulation of cinnamyl-alcohol dehydrogenase in switchgrass by RNA silencing results in enhanced glucose release after cellulase treatment. PLoS One, 2011, 6(1):e16416.
[46] Chen F, Dixon R A. Lignin modification improves fermentable sugar yields for biofuel production. Nature Biotechnology, 2007, 25(7):759-761.
[47] Van Acker R, Leple J C, Aerts D, et al. Improved saccharification and ethanol yield from field-grown transgenic poplar deficient in cinnamoyl-CoA reductase. Proc Nat Acad Sci, 2014, 111(2):845-850.
[48] 谷振军,张党权,黄青云.木质素合成关键酶基因与造纸植物转基因改良应用研究.中南林业科技大学学报, 2010, 30(3):68-75. Gu Z J, Zhang D Q, Huang Q Y. Transgenic modification on pulp plants by key genes regulating lignin biosynthesis. Central South University of Forestry and Technology, 2010, 30(3):68-75.
[49] Leple J C, Dauwe R, Morreel K, et al. Downregulation of cinnamoyl-coenzyme A reductase in poplar:multiple-level phenotyping reveals effects on cell wall polymer metabolism and structure. Plant Cell, 2007, 19(11):3669-3691.