白纹伊蚊（Aedes albopictus）是重要的病媒生物防制对象之一^{[1, 2]}，是驱蚊实验的主要试虫^{[3, 4]}，是卫生杀虫剂室内药效实验中评价驱避剂的基本实验素材^[5]。农药登记用卫生杀虫剂室内实验试虫白纹伊蚊（简称白纹伊蚊）的质量直接影响着驱蚊产品的药效检测结果，而药效检测结果是驱蚊产品配方筛选及质量定级的主要依据。我国农业部已于2010年12月发布了白纹伊蚊的室内养殖标准，并规定饲养控制指标^[6]，但是对具体的评价方法，包括样本采集、体重称量方法以及体重计算方法等均未作规定。本研究应用统计推断方法中的大样本平均数的假设检验——u检验方法^[7]，以白纹伊蚊室内养殖标准规定的雌蚊体重≥1.6 mg/♀的白纹伊蚊试虫为总体，建立了试虫白纹伊蚊质量评价体系，并结合实例，进行进一步阐述。

所用白纹伊蚊引自广东省疾病预防控制中心，在本实验室标准化饲养8年。试虫养殖条件：温度（26±2）℃，湿度（75±10）%，光照14 h∶10 h （L∶D）。饲养笼规格为30 cm×30 cm×30 cm，控制每笼成蚊的密度为500～600只。成虫羽化第3～6天，在饲养笼中放入用固定夹固定的小白鼠，供雌蚊吸血6～12 h，使其产卵。

德国Sartorius CPA225D 1/105电子天平〔赛多利斯科学仪器（北京）有限公司生产〕；30 mm×50 mm称量瓶、培养皿、镊子、捕蚊器、乙醚。

以笼为单位，在试虫用于测试之前，对用于驱蚊测试的白纹伊蚊进行质量评价。白纹伊蚊实验用成蚊体重控制指标为雌蚊体重≥1.6 mg/♀。

随机抽取3笼成蚊，抖动蚊笼，使蚊虫飞舞，充分混匀，用捕蚊器在每笼成蚊中随机捕捉雌蚊30只。

每笼雌蚊分开称重，将待测雌蚊用乙醚麻醉后，将30只雌蚊随机分成6组，每组5只，以组为单位称量试虫体重（精确至0.01 mg），并记录体重值。

数据处理与计算均采用Excel软件。

计算每组雌蚊的体重平均值和各样本的平均值，然后再计算样本平均数及样本标准差，见表 1。

总体方差σ²未知，但样本为大样本（n＝90），可用样本方差s²代替总体方差，采用u检验，检验所取样本平均数（x）的总体平均数（μ）是否属于某一平均数（μ₀，体重≥1.6 mg/♀）的指定总体。u检验公式：

质量评价的具体过程及结果：（1）由于试虫体重只有≥1.6 mg/♀时才符合要求，故用单尾检验。假设H0：μ＜1.6 mg，即待测试虫达不到标准中规定的试虫体重，对于H_A：μ≥1.6 mg；（2）确定显著水平α＝0.05；（3）检验计算：s_x＝＝0.003；u＝（2.17－1.6）/0.003＝190；（4）推断：当α＝0.05时，单尾检验临界值u_0.05＝1.64。样本的|u|＞u0.05，则P＜0.05，那么在0.05显著水平上否定H0，接受HA，认为待测试虫的体重符合标准试虫的体重要求，试虫合格。

在室内饲养白纹伊蚊时，一般会使用蚊笼来收集同一天羽化的成虫。本研究提出以每笼白纹伊蚊成虫为评价单位，分别对用于驱蚊药效测试的白纹伊蚊成虫进行质量评价。充分保证用于驱蚊药效测试的白纹伊蚊为合格试虫，进一步保证驱蚊药效测试结果的可靠性。

对于样本容量为30只的选择，首先是考虑统计推断的可靠性，因为抽样调查是用局部对整体进行估计和判断的一种方法，抽样的样本容量越大，抽样误差就越小^[7]，在生物统计中，样本容量30已属于大样本范畴；其次是考虑操作简易及避免资源浪费等因素，因为如果样本太大，会造成称量时间过长、蚊虫苏醒且不易控制等困难，而且取出的成虫已不能再用于药效测试，抽取太多会造成资源浪费。 在生物学实验和研究中，所得实验数据往往存在一定差异，这种差异可能是由随机误差引起的，也可能是由实验处理的效应所造成，二者往往混淆在一起，从表面上不容易分开，因此必须通过概率的计算，采用假设检验的方法，才能做出正确的推断^[7]。本研究正是应用了假设检验方法，建立了一套关于试虫白纹伊蚊的质量评价体系，提出样本采集、试虫体重数据收集及处理、统计推断等具体评价步骤，而且操作简便、快速、高效，能有效评价试虫白纹伊蚊的质量，对于驱蚊类药物的配方筛选和质量评级均有重要的应用意义。