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文章信息
- 林勇文, 陈燕玲, 王联德
- LIN Yong-wen, CHEN Yan-ling, WANG Lian-de
- 德国小蠊病原真菌传播及致病机制
- Propagation and pathogenicity of entomogenous fungi for controlling Blattella germanica
- 中国媒介生物学及控制杂志, 2015, 26(1): 100-103
- Chin J Vector Biol & Control, 2015, 26(1): 100-103
- 10.11853/j.issn.1003.4692.2015.01.029
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文章历史
- 收稿日期:2014-08-29
- 网络出版日期:2014-12-17
2. 农业部闽台作物有害生物综合治理重点实验室, 福建福州350002;
3. 江西省贵溪市林业局
2. Key Laboratory of Integrated Pest Management of Fujian and Taiwan, Chinese Ministry of Agriculture, Fuzhou 350002, Fujian Province, China;
3. Guixi Forestry Bureau
德国小蠊(Blattella germanica)是一种全球性分布的害虫,公寓、居家和食物加工场所是其主要藏匿地点[1, 2]。德国小蠊会造成人们的过敏反应,外出觅食时传播可引起过敏的物质[3]。同时,它们在动物粪便和食物之间活动时,会将病原菌携带并传播给人类[4]。随着德国小蠊对化学杀虫剂的抗药性越来越高[5, 6, 7, 8],用于杀蟑的杀虫剂浓度和剂量也相应提高,而大剂量、高浓度的杀虫剂将严重地影响到生态环境。利用生物农药(如含有昆虫病原真菌的生物农药)及其代谢产物替代化学农药防治害虫,是一种极具潜力的方法[9, 10, 11]。国内外已有一些关于利用病原真菌防制德国小蠊的报道[12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19]。本文针对德国小蠊病原真菌种类、传播、侵染及致病机制做一综述,探讨昆虫病原菌防制德国小蠊的未来研究方向,旨在为德国小蠊生物防治研究提供参考。 1 德国小蠊病原真菌的种类
德国小蠊的病原菌种类较少,目前发现对德国小蠊有较强侵染力和毒力的是绿僵菌(Metarrhizium anisopliae)和球孢白僵菌(Beauveria bassiana)。在实验室生物测试中发现,绿僵菌SH小孢变种菌株能使德国小蠊试虫全部变为僵虫,并且体表全部产生孢子堆;复壮5代后的SH菌株对德国小蠊成虫有较高的毒力;同时还发现,德国小蠊雌成虫对SH菌株的敏感性明显高于雄成虫[20]。而美国生态科学公司则将绿僵菌ESC-1菌株制成生物杀虫剂,德国小蠊接触该杀虫剂后,ESC-1菌株孢子粉可黏在其身上,在环境条件适合时孢子萌发,最终将其杀死[17]。通过实验室实验表明,ESC-1菌株能在7和13 d内分别杀死所有德国小蠊雄虫和雌虫,而在模拟现场防制实验中发现,ESC-1在30 d内对德国小蠊达到100%防制效果,并且雌虫的死亡速度仍然较雄虫慢[18]。此外,分离自红火蚁(Solenopsis invicta)的绿僵菌ESALQ1037菌株对德国小蠊也有较强的侵染力,其用腻子粉为助剂做成的粉剂,通过德国小蠊接触传染,在6.5×106/cm2的孢子浓度下,15 d后德国小蠊成虫和幼虫的死亡率分别达到100%和76.1%[19]。
农向群等[21]用10个球孢白僵菌菌株对德国小蠊的毒力测定表明,10个菌株均有一定的毒力,其中有若干菌株毒力较强,能在6~7 d内产生僵虫,并具备一定的传染能力,但侵染过程较长,达到50%死亡率需要20 d左右。由于具备较强毒力和侵染能力,白僵菌也被制成毒饵商品,中国科学院植物保护所廊坊农药试产的50亿孢子/g白僵菌饵剂在实验室生物测试中能在6 d内感染并杀死所有供试德国小蠊,而在现场试验中50亿孢子/g白僵菌饵剂能使德国小蠊密度指数(RPI)在2个月内均维持在10%以下,可见已经取得明显的控制效果[22]。 2 病原真菌在德国小蠊种群的传播
病原真菌可在德国小蠊种群中进行纵向和横向传播。用亚致死剂量(LD60)的绿僵菌注射带卵荚的德国小蠊(雌雄同时做喷雾处理),结果卵荚出现率降低了46%左右,而卵荚中幼虫的孵化率降低了22%左右[1],表明病原真菌能在德国小蠊种群中纵向传播。研究还发现,沙蝇(Lutzomyia longipalpis)体内的病原微生物Ascogregarina chagasi能将其配子囊密封,并以胶囊形式通过寄主的免疫反应,而且胶囊随着体液接触到卵壳并黏附其上,随后侵入[23]。由于德国小蠊产卵方式的特异性,使病原真菌孢子在幼虫还未孵化离开母体之前有足够时间侵染卵荚,这种病原菌在母体中侵染后代的现象也可能存在于德国小蠊中,表明昆虫病原菌通过母体侵染胚胎,进行纵向传播。
此外,昆虫病原菌在德国小蠊个体间亦存在横向传播,在处理感染病原菌虫口与健康虫口比例为1∶10的实验中,观察到德国小蠊平均死亡率达到87.5%,LT50值为12.2 d,表明病原菌能在德国小蠊个体间迅速传播[24]。活动性差的德国小蠊1龄幼虫在巢穴中以成虫的粪便为食。Kopanic和Schal[24]发现取食了氟蚁腙毒饵的德国小蠊成虫不会当场死亡,它们将粪便排放到巢穴中,1龄和2龄幼虫取食该粪便后也会出现中毒死亡现象。因此,活动性差的德国小蠊1龄幼虫可能通过取食感染病原菌的成虫粪便而感染病原真菌。 3 昆虫病原真菌对德国小蠊的侵染机制及致病机制
3.1 侵染机制
昆虫病原真菌对德国小蠊的侵染,可通过穿透表皮、消化道和呼吸道来完成,其中通过穿透表皮是最主要的侵染方式,该途径可分为附着、穿透和穿透后的发展过程[25]。
通过表皮的侵染方式是最普遍的。昆虫病原真菌侵染寄主昆虫的第一步就是黏附和识别。分生孢子在昆虫体表的黏附比例最大,因为体表密布刚毛,即使是对昆虫进行脱脂处理,孢子在体表的黏附依然不受影响[26]。此外,昆虫体表附着一层疏水的油脂,而这通常被认为是病原真菌黏附的良好基础[26, 27]。人们进一步研究发现,Mad1和MaMK1是病原真菌识别寄主和黏附的关键基因。Wang和 St Leger[28]发现绿僵菌的Mad1基因在酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)中表达后,变异的酿酒酵母能够黏附在蝗虫体壁,还发现Mad1基因对孢子的生长和绿僵菌的毒力均有一定影响。此外,MaMK1基因也被发现与病原真菌穿透体壁有关,从该基因表达模式分析发现,MaMK1调节Mad1基因。昆虫病原真菌分生孢子在黏附德国小蠊体壁时,通过寄主体壁诱导产生Mad1基因,随后该基因调控分生孢子产生一系列的黏附行为[29]。
侵染的第二个步骤是穿透,穿透过程中病原菌分生孢子会分泌大量的酶(包括几丁质酶、蛋白酶和脂酶),用于溶解表皮,同时还需要一定的机械作用来最终完成穿透[30, 31, 32]。附着后的病原菌分生孢子在一定的条件下萌发,虫体自身的活动可能是形成分生孢子萌发的微生态环境条件的因素[33]。有些形成附着胞进行穿透,有些直接以芽管穿透[34]。在芽管的穿透过程中,分生孢子聚集在一起,形成环状附着于体表节间膜,使节间膜形成微小缝隙,从缝隙进入昆虫体腔,从而完成穿透[33]。
附着胞是由分生孢子分化出的一种特化的侵染结构,普遍存在于植物病原菌、虫生真菌和线虫真菌等[35]。芽管极性伸长,直到接触到寄主表皮为止,末端膨胀形成特异结构,也就是附着胞[36]。附着胞一般形成于芽管顶端,也有部分着生于顶点下端,一般每个芽管分化出一个附着胞,但也有少数着生多个(复合附着胞)的情况,但不是所有种类的虫生菌均能产生附着胞[36, 37, 38, 39]。附着胞能在体表的各个位置生成,即使是头部和胸部这样的坚硬部位[39]。附着胞能分泌黏液(有些虫生菌附着胞不分泌黏液)和蛋白酶,有些种类黏液的作用很明显是用来黏附在寄主体表,而这些蛋白酶的作用是溶解寄主表皮[31, 37, 39, 40]。有些病原菌孢子即使能够在昆虫体表正常萌发,但是无法形成侵染结构(附着胞)。绿僵菌菌株孢子在沙漠蝗(Schistocerca gregaria)体表能够完整地完成从发芽到形成附着胞及侵染的过程,而在德国小蠊体表则无法分化形成附着胞,在十七年蝉(Magicicada septendecim)体表虽然能萌发,但仅有少量形成附着胞[41],这种寄主的专化型选择可能与德国小蠊表皮结构、表皮上的抗菌肽以及表皮的共生微生物有关。附着胞穿透表皮的过程需要两种机制的组合,其一是机械力,附着胞会产生侵染钉,牢牢固定在昆虫体表,而侵染钉的机械力来源于胞内甘油所产生的膨压[42]。另一方面,附着胞会分泌黏性物质和酶,黏性物质协助侵染钉将附着胞固定在昆虫体表,并维持这样的状态;而酶则用于降解昆虫体壁,一方面能使体壁与附着胞接触位置平滑化,这就更有利于附着[39],另一方面则是溶解和破开体壁,使芽管能顺利进入体腔[43, 44]。特别值得一提的是,壳溶解酶(pr1)在附着胞形成阶段就在胞内产生,一直到侵染钉之后都保持着较高的水平[31, 45]。
在研究病原菌的穿透相关基因时,Jin等[29]发现MaMK1基因起到至关重要的作用,他们对绿僵菌MaMK1进行基因干扰,发现变种的绿僵菌无法在蝗翅上形成附着胞,同时菌丝也无法穿透蝗虫体壁进行侵染,但菌丝却可以正常生长。说明MaMK1基因可能与寄主识别和附着胞的形成有关,同时还调控菌丝毒性物质(溶解酶等)的释放。昆虫病原菌分生孢子芽管成功穿透表皮后,在昆虫体内生长为菌丝,菌丝利用寄主体内营养物质迅速增殖,进而布满体腔和各个器官,以及寄主体内的卵块[46]。
另外,病原菌分生孢子也能通过昆虫的取食作用进入其体内,进而感染寄主消化道。分生孢子进入昆虫消化道后大量繁殖,大量菌丝体缠绕肠壁组织,并将其作为增殖营养而消化掉[47]。对于一般昆虫来说,病原菌体壁侵染方式远比消化道侵染重要得多,但对于德国小蠊来说却恰好相反。德国小蠊生活在居室、餐馆和酒店等有人类活动的地方,并且藏匿于隐蔽位置,这些位置一般禁止使用药剂喷洒,即使能够使用,也很难接触其体表。因而,目前用于防治德国小蠊的药剂多为毒饵,即通过消化道毒杀。虽然目前病原真菌对消化道侵染方面的研究较少,但却值得探讨。Lopes和Alves[19]用奶粉、酵母膏和绿僵菌分生孢子做成的毒饵,经德国小蠊口服后,15 d后发现德国小蠊成虫和幼虫死亡率较低(<30%)。解剖发现一部分孢子在消化道内失活;而用云英粉和绿僵菌分生孢子配制成的粉剂,将其涂抹在瓷砖上,德国小蠊通过在瓷砖上活动感染绿僵菌,15 d后发现德国小蠊的死亡率较高,成虫最高可达100%。可能的原因,其一是口服的方法,在相同浓度下,德国小蠊接触到绿僵菌孢子的数量较少,其二是有部分绿僵菌孢子在德国小蠊消化道内失活(受到寄主体内抗菌肽的影响)。 3.2 致病机制
病原菌对德国小蠊的致病机制方面可归为两类:物理伤害和化学毒害。病原真菌通过一系列的附着、穿入、穿出的过程,对昆虫体壁和内部器官造成致命的伤害,同时病原菌也从寄主体内摄取营养用于生长,这些统称为物理伤害。而化学伤害方面,则是病原菌在侵染寄主过程中释放出来的毒性物质,可抑制寄主先天免疫,也可对寄主的发育产生一定影响。
昆虫病原真菌毒素种类较多,目前研究比较多的有黑僵菌素、白僵菌素、玫烟色拟青霉毒素、恩镰孢菌素和环孢菌素等。感染德国小蠊的绿僵菌能产生绿僵菌素的环肽毒素,目前已知有39种,均由5个氨基酸和1个羟基酸构成[48, 49, 50]。昆虫注射绿僵菌素后肌肉麻痹,随后肌肉松弛乏力,低剂量注射试虫能复苏,而高剂量则直接导致试虫死亡[51, 52, 53]。由于德国小蠊体内有大量共生菌,并且能产生活性较高的抗菌肽,这些都对病原真菌感染该虫造成了麻烦,毒素作为真菌的分泌物伴随侵染过程产生,如果能够更好地加以利用,则能够增强病原真菌的致病能力。 4 结 论
目前报道用于防治德国小蠊的昆虫病原菌并不多。和其他昆虫一样,虽然德国小蠊不具获得性免疫,但其具备有效的先天免疫以保护自身免受病原菌侵染[54]。可能是由于德国小蠊长期生活在潮湿、阴暗和多菌的环境中,使其体内存在数量较大的抗菌肽,进而使其自身免疫能力较强,削弱病原真菌对寄主的侵染[55, 56, 57]。通过对台湾高雄地区德国小蠊携带的细菌研究发现,其携带的多种细菌对抗生素有抗性[58],这也从侧面说明德国小蠊对病原菌具有较强的免疫力,可能与德国小蠊体内存在的抑制病原真菌的肠道菌群有关[59]。研究发现德国小蠊肠道菌群中的BGI-1对白僵菌有明显的抑制作用,能显著削弱其对寄主的侵染[60, 61]。然而,随着转基因技术的日渐成熟,可以将德国小蠊寄生蜂的某些毒素表达基因转入病原真菌,提高其侵染力和毒力。此外,考虑到德国小蠊的粪食性,受病原菌感染的德国小蠊,其排泄物是否存在侵染能力也值得探究。
[1] | Quesada-Moraga E,Santos-Quirós R,Valverde-García P,et al. Virulence,horizontal transmission,and sublethal reproductive effects of Metarhizium anisopliae (Anamorphic fungi) on the German cockroach (Blattodea:Blattellidae)[J]. J Invertebr Pathol,2004,87(1):51-58. |
[2] | Menasria T,Moussa1 F,El-Hamza1 S,et al. Bacterial load of German cockroach (Blattella germanica) found in hospital environment[J]. Pathog Glob Health,2014,108(3):141-147. |
[3] | Page K,Lierl KM,Herman N,et al. Differences in susceptibility to German cockroach frass and its associated proteases in induced allergic inflammation in mice[J]. Resp Res,2007,8: 91. |
[4] | Nojima S,Schal C,Webster FX,et al. Identification of the sex pheromone of the German cockroach,Blattella germanica[J]. Science,2005,307(5712):1104-1106. |
[5] | Scharf ME,Neal JJ,Bennett GW. Changes of insecticide resistance levels and detoxication enzymes following insecticide selection in the German cockroach,Blattella germanica(L.)[J]. Pestic Biochem Phys,1997,59(2):67-79. |
[6] | 白淑萍,孙晨熹,李培羽,等. 德国小蠊对常用杀虫剂的抗性 监测[J]. 中华卫生杀虫药械,2007,13(3):197-200. |
[7] | 葛军旗,张洪江,张政,等. 北京市朝阳区德国小蠊对杀虫剂 抗性分布情况调查[J]. 中国媒介生物学及控制杂志,2009, 20(6):525-527. |
[8] | 赵霞,张仁利,张韶华,等. 德国小蠊抗药性及抗性机理的研 究进展[J]. 热带医学杂志,2009,9(4):455-459. |
[9] | 王利军,谭万忠,罗华东,等. 虫生真菌及其在害虫生物控制 中的应用现状与展望[J]. 河南农业科学,2010(4):119-125. |
[10] | 刘丽娟,王利磊,公茂庆. 虫生真菌防治卫生害虫的研究进 展[J]. 中国病原生物学杂志,2009,4(5):395-399. |
[11] | Olombrada M,Martínez-del-Pozo Á,Medina P, et al. Fungal ribotoxins:natural protein-based weapons against insects[J]. Toxicon,2014,83:69-74. |
[12] | Pachamuthu P,Kamble ST. In vivo study on combined toxicity of Metarhizium anisopliae (Deuteromycotina:Hyphomycetes) strain ESC-1 with sublethal doses of chlorpyrifos, propetamphos, and cyfluthrin against German cockroach (Dictyoptera:Blattellidae)[J]. J Econ Entomol,2000,93(1): 60-70. |
[13] | Zukowski K, Bajan C, Popowska-Nowak E. The effect of infestation by mixed culture of Beauveria bassiana and Paecilomyces farinosus on reduction in numbers of experimental culture Blattella germanica L.[J]. Rocz Panstw Zakl Hig,1999, 50(3):321-327. |
[14] | Zukowski K,Bajan C. Studies of the usefulness of Beauveria bassiana for eradication of cockroaches(Blattella germanica L.)[J]. Rocz Panstw Zakl Hig,1996,47(3):343-349. |
[15] | Zukowski K,Bajan C,Popowska-Nowak E. Evaluation of effect of Metarhizium anisopliae on reduction in the number of Blattella germanica L.[J]. Rocz Panstw Zakl Hig,1998,49(1):67-72. |
[16] | Zurek L,Watson DW,Schal C. Synergism between Metarhizium anisopliae (Deuteromycota:Hyphomycetes) and boric acid against the German cockroach(Dictyoptera:Blattellidae)[J]. Bio Cont,2002,23(3):296-302. |
[17] | 张刚应,杨怀文. 用绿僵菌防治德国小蠊[J]. 植保技术与推 广,1995(6):33-34. |
[18] | 张刚应,杨怀文,黄钢. 绿僵菌防治德国小蠊的初步研究[J]. 中国生物防治,1996,12(3):100-102. |
[19] | Lopes RB,Alves SB. Differential susceptibility of adults and nymphs of Blattella germanica(L.)(Blattodea:Blattellidae)to infection by Metarhizium anisopliae and assessment of delivery strategies[J]. Neotrop Entornal,2011,40(3):368-374. |
[20] | 任向辉,焦名琼,张艳,等. 德国小蠊感染绿僵菌的组织病理 研究[J]. 中国媒介生物学及控制杂志,2005,16(3): 171-173. |
[21] | 农向群,高松,邓春生,等. 球孢白僵菌对德国小蠊侵染力的 初步研究[J]. 中国生物防治,1996,12(3):97-99. |
[22] | 王永明,辛正,刘慧媛,等. 白僵菌控制蟑螂的效果观察[J]. 中华卫生杀虫药械,2009,15(2):102-103. |
[23] | Warburg A, Ostrovska K. An immune response-dependent mechanism for the vertical transmission of an entomopathogen [J]. Experientia,1989,45(8):770-772. |
[24] | Kopanic RJ Jr, Schal C. Relative significance of direct ingestion and adult-mediated translocation of bait to German cockroach (Dictyoptera: Blattellidae) nymphs[J]. J Econ Entoml,1997,90(5):1073-1079. |
[25] | 翟锦彬,黄秀梨,许萍. 杀虫真菌:球孢白僵菌的昆虫致病机 理研究近况[J]. 微生物学通报,1995,22(1):45-48,35. |
[26] | Sosa-Gomez DR, Boucias DG, Nation JL. Attachment of Metarhizium anisopliae to the Southern green stink bug Nezara viridula cuticle and fungistatic effect of cuticular lipids and aldehydes[J]. J Invertebr Pathol,1997,69(1):31-39. |
[27] | Ortiz-Urquiza A, Keyhani NO. Action on the surface: entomopathogenic fungi versus the insect cuticle[J]. Insects, 2013,4(3):357-374. |
[28] | Wang C, St Leger RJ. The MAD1 adhesin of Metarhizium anisopliae links adhesion with blastospore production and virulence to insects,and the MAD2 adhesin enables attachment to plants[J]. Euk Cell,2007,6(5):808-816. |
[29] | Jin K,Han LR,Xia YX. MaMk1,a FUS3/KSS1-type mitogen-activated protein kinase gene,is required for appressorium formation, and insect cuticle penetration of the entomopathogenic fungus Metarhizium acridum[J]. J Invertebr Pathol,2014,115(1):68-75. |
[30] | Clarkson JM,Charnley AK. New insights into the mechanisms of fungal pathogenesis in insects[J]. Trends Microbiol,1996,4 (5):197-203. |
[31] | Goettel MS, St Leger RJ,Rizzo NW, et al. Ultrastructural Localization of a Cuticle-degrading protease produced by the entornopathogenic fungus Metarhizium anisopliae during penetration of host(Mmduca sexta)cuticle[J]. J Gen Microbiol, 1989,135:2233-2239. |
[32] | 孙鲁娟,吴孔明. 棉铃虫感染白僵菌后的组织病理变化[J]. 中国生物防治,2000,16(3):102-106. |
[33] | 卢辉,张礼生,张泽华,等. 绿僵菌侵染椰心叶甲的部位及侵 染过程的电镜观察[J]. 植物检疫,2005,19(4):201-204. |
[34] | 王音,雷仲仁,张青文,等. 绿僵菌侵染小菜蛾体表过程的显 微观察[J]. 昆虫学报,2005,48(2):188-193. |
[35] | Bidochka MJ,Burke S,Ng L. Extracellular hydrolytic enzymes in the fungal genus Verticillium:adaptations for pathogenesis [J]. Can J Microbiol,1999,45(10):856-864. |
[36] | Dean RA. Signal pathways and appressorium morphogenesis[J]. Annu Rev Phyto,1997,35(1):211-234. |
[37] | 樊美珍,李增智. 营养物和培养条件对虫生真菌附着胞形成 的影响[J]. 安徽农业大学学报,1994,21(2):123-130. |
[38] | 樊美珍,黄勃,王建林,等. 几种虫生真菌附着胞的荧光显微 及扫描电镜观察[J]. 菌物系统,1999,18(3):249-253. |
[39] | Hatzipapas P,Kalosak K,Dara A,et al. Spore germination and appressorium formation in the entomopathogenic Alternaria alternata[J]. Mycol Res,2002,106(11):1349-1359. |
[40] | 姚剑,李增智,樊美珍. 虫生真菌入侵过程中酶的研究(综述)[J]. 安徽农业大学学报,1996,23(3):303-308. |
[41] | Wang CS,St Leger RJ. Developmental and transcriptional responses to host and nonhost cuticles by the specific locust pathogen Metarhizium anisopliae var. acridum[J]. Euk Cell, 2005,4(5):937-947. |
[42] | Howard RJ,Ferrari MA,Roach DH,et al. Penetration of hard substrates by a fungus employing enormous turgor pressures[J]. Proc Natl Acad Sci USA,1991,88(24):11281-11284. |
[43] | St Leger RJ,Cooper RM,Charnley AK. Cuticle-degrading enzymes of entomopathogenic fungi:regulation of production of chitinolytic enzymes [J]. Microbiology,1986,132 (6) : 1509-1517. |
[44] | Samuels RI, Paterson IC. Cuticle degrading proteases from insect moulting fluid and culture filtrates of entomopathogenic fungi[J]. Com Bio Physio Part B:Bio Mol Bio,1995,110(4): 661-669. |
[45] | Barranco-Florido E,García-Hernández LA,Rodríguez-Navarro S,et al. Regulation of gene expression in entomopathogenic fungi in three different environmental conditions:a review[J]. Afr J Biotechnol,2013,12(10):989-995. |
[46] | 李茂业,林华峰,金立,等. 黄绿绿僵菌对褐飞虱侵染过程的 扫描电镜观察[J]. 应用昆虫学报,2011,48(5):1412-1416. |
[47] | 曹伟平,王刚,甄伟,等. 球孢白僵菌不同感染方式侵染棉铃 虫幼虫的毒性比较及组织病理变化[J]. 昆虫学报,2011,54 (4):409-415. |
[48] | Yeh SF,Pan W,Ong GT,et al. Study of structure-activity correlation in destruxins, a class of cyclodepsipeptides possessing suppressive effect on the generation of hepatitis B virus surface antigen in human hepatoma cells[J]. Biochem Biophys Res Commun,1996,229(1):65-72. |
[49] | Kershaw MJ,Moorhouse ER,Bateman R,et al. The role of destruxins in the pathogenicity of Metarhizium anisopliae for three species of insect[J]. J Invertebr Pathol,1999,74(3): 213-223. |
[50] | Wang B,Kang Q,Lu Y,et al. Unveiling the biosynthetic puzzle of destruxins in Metarhizium species[J]. Proc Nat Acad Sci USA,2012,109(4):1287-1292. |
[51] | Samuels RI,Charnley AK,Reynolds SE. The role of destruxins in the pathogenicity of 3 strains of Metarhizium anisopliae for the tobacco hornworm Manduca sexta[J]. Mycopathologia,1988, 104(1):51-58. |
[52] | Samuels RI, Charnley AK,Reynolds SE. Application of Reversed-Phase HPLC in separation and detection of the cyclodepsipeptide toxins produced by the entomopathogenic fungus Metarhizium anis[J]. J Chromatogr Scien,1988,26(1): 15-19. |
[53] | Samuels RI,Reynolds SE,Charnley AK. Calcium channel activation of insect muscle by destruxins, insecticidal compounds produced by the entomopathogenic fungus Metarhizium anisopliae[J]. Com Bio Physio Part C:Com Phar, 1988,90(2):403-412. |
[54] | Li YM, Xiang Q, Zhang QH, et al. Overview on the recent study of antimicrobial peptides: Origins, functions, relative mechanisms and application[J]. Peptides,2012,37(2): 207-215. |
[55] | Cruden DL,Markovetz AJ. Microbial aspects of the cockroach hindgut[J]. Arch Mic,1984,138(2):131-139. |
[56] | 宋秀平,刘起勇,吕京静. 北京地区2种常见蜚蠊带菌情况调 查[J]. 中国媒介生物学及控制杂志,2007,18(5):366-368. |
[57] | 蓝江林,周先治,卓侃,等. 美洲大蠊(Periplaneta americana L.)抗菌肽杀菌作用初步观察[J]. 福建农林大学学报:自然 科学版,2004,33(2):166-168. |
[58] | Pai HH,Chen WC,Peng CF. Isolation of bacteria with antibiotic resistance from household cockroaches(Periplaneta americana and Blattella germanica)[J]. Acta Trop,2005,93(3):259-265. |
[59] | Huang CY,Sabree ZL,Moran NA. Genome sequence of Blattabacterium sp. strain BGIGA,endosymbiont of the Blaberus giganteus cockroach [J]. J Bacteriol,2012,194 (16) : 4450-4451. |
[60] | Huang YH,Wang XJ,Zhang F, et al. The identification of a bacterial strain BGI-1 isolated from the intestinal flora of Blattella germanica,and its anti-entomopathogenic fungi activity [J]. J Econ Entomol,2013,106(1):43-49. |
[61] | Zhang F,Huang YH,Liu SZ, et al. Pseudomonas reactans,a bacterial strain isolated from the intestinal flora of Blattella germanica with anti-beauveria bassiana activity[J]. Environ Entomol,2013,42(3):453-459. |