中国媒介生物学及控制杂志  2014, Vol. 25 Issue (5): 388-392

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郭文宗,辛正,刘政明,王蕾,朱文刚,李殿香
GUO Wen-zong, XIN Zheng, LIU Zheng-ming, WANG Lei, ZHU Wen-gang, LI Dian-xiang
96孔酶标板法检测家蝇血淋巴黑化反应的初步研究
A preliminary study on melanization of hemolymph in Musca domestica by 96-well microplate assay
中国媒介生物学及控制杂志, 2014, 25(5): 388-392
Chin J Vector Biol & Control, 2014, 25(5): 388-392
10.11853/j.issn.1003.4692.2014.05.002

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收稿日期:2014-04-24
96孔酶标板法检测家蝇血淋巴黑化反应的初步研究
郭文宗1, 辛正2, 刘政明1, 王蕾3,4, 朱文刚1, 李殿香1    
1. 济南大学生物科学与技术学院,济南250022;
2. 济南市疾病预防控制中心,济南250021;
3. 山东省医学科学院;
4. 济南大学-山东省医学科学院医学与生命科学学院
摘要目的 探讨用96孔酶标板法检测家蝇血淋巴黑化反应的可行性。方法 用大肠埃希菌、金黄色葡萄球菌、藤黄微 球菌单菌和大肠埃希菌与金黄色葡萄球菌混合菌分别体外刺激家蝇3龄幼虫的血淋巴,通过96孔酶标板法分析菌刺引 起的家蝇幼虫血淋巴酚氧化酶活性的变化,进一步探讨菌刺与家蝇黑化反应的关系。结果 相比正常对照的起始A490 值,1~3号样品的起始A490值随加菌量的增多依次递增,其增幅分别为大肠埃希菌1.33~1.38倍,金黄色葡萄球菌1.30~ 2.40倍,藤黄微球菌2.60~3.00倍,大肠埃希菌与金黄色葡萄球菌混合菌1.40~3.80倍。显然,菌刺可使家蝇血淋巴酚氧 化酶活性增高,菌刺浓度越大,黑化反应越强,单菌刺激的效果依次为藤黄微球菌>金黄色葡萄球菌>大肠埃希菌,大肠埃 希菌与金黄色葡萄球菌混合菌刺激的效果要比单菌好。结论 用96孔酶标板法检测菌刺家蝇血淋巴黑化反应的变化可行。
关键词家蝇血淋巴     96孔酶标板     黑化反应     酚氧化酶    
A preliminary study on melanization of hemolymph in Musca domestica by 96-well microplate assay
GUO Wen-zong1, XIN Zheng2, LIU Zheng-ming1, WANG Lei3,4, ZHU Wen-gang1, LI Dian-xiang3,4     
1 School of Biological Science and Technology, University of Jinan, Jinan 250022, Shandong Province, China;
2 Jinan Center for Disease Control and Prevention, Jinan 250021, Shandong Province, China;
3 Shandong Academy of Medical Sciences;
4 School of Medicine and Life Science, Shandong Academy of Medical Sciences, University of Jinan
Abstract:Objective To investigate the feasibility of 96-well microplate assay in determination of melanization responses of Musca domestica to different bacterial challenges. Methods The hemolymph from third - instar larvae of M. domestica was stimulated in vitro with Escherichia coli, Staphylococcus aureus, Micrococcus luteus, or the mixture of E. coli and S. aureus. The phendoxidase activity of hemolymph was determined with a 96-well microplate reader, and the relationship between bacterial stimulation and housefly melanization was further analyzed. Results Compared with the initial A490 values of normal control sample, those from the stimulated samples (numbered 1-3) constantly increased along with the increase in bacterial quantity. The fold changes in initial A490 values with stimulation by different bacteria were as follows: 1.33-1.38 times with E. coli, 1.30-2.40 times with S. aureus, 2.60-3.00 times with M. luteus, and 1.40-3.80 times with the mixture of E. coli and S. aureus. Obviously, stimulation with bacteria enhanced the phenoloxidase activity of hemolymph of M. domestica in vitro; meanwhile, the melanization responses of hemolymph got stronger with increase in bacterial quantity. The stimulating effects of single bacteria were as follows: M. luteusS. aureusE. coli, while the mixture of S. aureus and E. coli showed a better effect than single bacteria. Conclusion The 96-well microplate assay is a reliable method to determine the melanization responses in hemolymph of M. domestica during bacterial challenge.
Key words: Hemolymph of Musca domestica     96-well microplate     Melanization response     Phenoloxidase    

黑化反应是昆虫一种重要的先天性免疫防疫机 制[1,2],能够在感染或受伤的部位快速合成黑色素[3], 以便包裹病原物和促进伤口愈合,也参与昆虫卵壳褐 化、角皮硬化等多种反应[4,5]。黑化反应的关键是酚氧 化酶(phenoloxidase,PO)的激活,PO催化酚类物质氧 化为醌,醌被聚合生成黑色素[6]。在昆虫体内,PO一 般以非活化状态的酚氧化酶原(prophenoloxidase, proPO)形式储存在血细胞中,proPO一旦被激活便释 放到血淋巴,经限制性蛋白水解作用形成有活性的 PO,PO催化酚类形成不溶性的黑色素参与机体黑化 反应[7]。昆虫黑化反应的变化与昆虫血淋巴的PO活 性变化紧密相关。因此,探讨有效的昆虫血淋巴PO活 性检测方法,对了解昆虫的黑化反应机制有重要意义。

家蝇(Musca domestica)属于昆虫纲,双翅目,具有 独特而有效的免疫防御体系,酚氧化酶原系统 (prophenoloxidase-activating system,proPO 系统)是家 蝇重要的免疫组分,proPO系统激活直接引起家蝇的 黑化反应。目前,除少量的对lectins和PO生化性质的 研究报道[8,9],对家蝇proPO系统激活的黑化反应以及 其proPO系统关键基因的功能还缺乏研究。我们曾采 用分光光度计法对病原入侵引起的家蝇体内PO活性 变化进行检测[10],其检测结果虽然能够反映家蝇的黑 化反应变化,但是需要的反应液体积过大、家蝇样本 多、耗时长、灵敏度和重复性较差。为了进一步了解病 原在体外刺激对家蝇血淋巴PO活性变化的影响,本研 究探讨了简单、方便、灵敏的96孔酶标板法检测家蝇 血淋巴PO活性的可行性。 1 材料与方法 1.1 材料

家蝇,本实验室饲养。大肠埃希菌 (Escherichia coli)、金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、藤黄微球菌(Micrococcus luteus),本实验 室-20 ℃保存。 1.2 仪器

SW-CJ-JCU 超净工作台,苏州安泰空气技 术有限公司产品;酶标仪为Thermo Multiskan型号。 1.3 方法 1.3.1 试剂准备

多巴(L-DOPA)为美国进口分装,其 他试剂为国产分析纯。配制pH 7.0 的任氏液 (Ringer):NaCl 110.5 mmol/L、KCl2 mmol/L、NaHCO3 2.4 mmol/L、NaH2PO4 0.083 mmol/L、EDTA 20 mmol/L。 配制pH 7.0的1×PBS缓冲溶液:KH2PO4 1.76 mmol/L、 Na2HPO4 10.14 mmol/L、KCl 2.7 mmol/L、NaCl 140 mmol/L。20 mmol/L多巴溶液现用现配,与25 μg/μl 的抗生素(氨苄西林)都是抽滤除菌。170 mmol/L CaCl2、 1×PBS、Ringer液以及0.8%生理盐水均高压灭菌。 1.3.2 菌液准备

在超净工作台上用接种环取少量菌 液接种到5 ml 液体LB中,37 ℃水浴200 r/min振荡培 养12 h。4200×g 离心5 min,收集菌体,用计数器在显 微镜下计数,用LB调菌浓度为1.84×109 cfu/ml,混菌 1∶1混合,4 ℃保存。 1.3.3 家蝇3龄幼虫血淋巴的提取

挑取正常的3龄 幼虫,置于培养皿中,用0.8%生理盐水清洗2次,然后 取出幼虫,置于吸水纸上,吸净幼虫表面的生理盐水, 再移幼虫至倒扣在冰块上的培养皿上,剪去幼虫头端, 用移液枪在剪口处吸取幼虫的血淋巴置于预冷的 Ringer液中混匀,抽滤除菌,冰上放置待用。 1.3.4 样品与反应液准备

表 1准备待检测的样 品:先吸取家蝇3龄幼虫的血淋巴到预冷的Ringer液, 再迅速加入菌液。每种样品有3个重复和1个空白对 照(其中的血淋巴用Ringer液替代)。样品液体积为 150 μl。待检测样品包括3种含不同菌量的实验样品 和1种不加菌的正常对照样品。

表 1 样品配制方案 Table 1 The protocol for sample preparation

反应液准备:180 μl的体系,包括待检测的样品 30 μl、1×PBS 90 μl、170 mmol/L CaCl2 30 μl、20 mmol/L 多巴溶液30 μl(检测时现加)。 1.3.5 酶标仪检测反应液的A630A490

先把不含多巴 溶液的反应液混匀,放入96孔酶标板中,再将96孔酶 标板放回酶标仪中,让其在酶标仪中30 ℃振荡孵育 10 min,然后向反应液中加30 μl多巴溶液,在同样条 件下继续反应,读取反应时间内待测溶液的A630A490 值,每隔5 min重复检测1次。酶标仪设定程序:30 ℃ 孵育→检测A630→检测A490→振荡5 min重复检测。最 后,以反应时间为横坐标,以记录的每个样品3次重复 与空白的A 差值的平均数作纵坐标,绘制家蝇血淋巴 的A值随反应时间的变化曲线。 2 结果 2.1 混菌刺激对家蝇血淋巴黑化反应影响的检测

对加E. coliS. aureus 混菌不同量的3种样品和不加 E. coliS. aureus 混菌的正常样品用酶标仪进行检测, 记录样品在60 min内的A630A490值,根据这些数据做 它们的变化曲线(图 1)。

图 1 家蝇血淋巴的A630A490E. coliS. aureus混合菌体外 刺激不同时间的变化曲线 Figure 1 The changes in A630 and A490 with stimulation time in housefly hemolymph challenged by the mixture of E. coli and S. aureus in vitro

样品1~3含有E. coliS. aureus 混菌的起始个数 分别为2.76×107、8.28×107和1.38×108 cfu,正常为不 加E. coliS. aureus混菌的对照。

相比正常的起始A630 值,样品1~3 的A630 值为 0.17~0.44,含菌量越多的样品,其A630值也越大。在随 后的60 min反应时间内,所有检测品的A630值都随反应 时间的延长而不断增加,与起始A630值相比,60 min样 品1~3的A630值依次增加了3.80、2.40和3.50倍。样品 含菌量越多,其A630值越大,形成了从上到下类似平行 排列的随反应时间不断上升的3条曲线,含菌量越多 的样品曲线越靠上,最下面的是样品1的曲线。说明 样品1~3随反应时间延长,其中的细菌数不断增加, A630值越来越大。

样品1~3的A490值增加的趋势与其A630值增加的 趋势基本一致。就单一检测点来看,相比正常的A490 值,样品1~3中添加了E. coliS. aureus 混菌,其A490 值增加明显,加菌量越多,其A490值增加的也越多。检 测的起始数据显示:相比正常的A490 值,样品1~3的 A490值分别增加了1.40、2.40和3.80倍。另外,在检测 的60 min内,所有样品的A490值均随反应时间延长而增 长,相比它们各自起始的A490 值,60 min样品1~3 的 A490值增加的倍数依次为3.20、2.10和2.70倍。说明起 始样品中加入E. coliS. aureus 混菌的量越多,样品 起始A490值越大,同时,反应时间越长,样品的A490值也 不断增加,引起样品的PO活性增高,产生的黑色素增 多,引起的黑化反应越强。

显然,家蝇血淋巴受体外刺激的E. coliS. aureus 混菌浓度越大、时间越长,其PO活性提高越快,导致的 黑化反应越强。 2.2 单菌刺激对家蝇血淋巴黑化反应影响的检测

表 1准备了分别加E. coliS. aureusM. luteus 3种 单菌的样品,利用与检测混菌刺激对家蝇血淋巴黑化 反应影响的同样方法,用酶标仪记录不同菌量和不同 类型的单菌体外刺激家蝇血淋巴的A630A490值,并依 此制作相应的曲线图。样品1~3含有单菌的起始数 分别为2.76×107、8.28×107和1.38×108 cfu,正常为无 菌对照,抗生素为加氨苄西林的对照。 2.2.1 E. coli刺激对家蝇血淋巴黑化反应的影响

图 2 是酶标仪记录的样品在90 min反应时间内家蝇血淋巴 的A630 值与A490 值随不同量E. coli 体外刺激的变化曲 线。加E. coli 样品1~3的A630曲线起点比较集中,其 A490曲线的起点也相对集中,正常与加氨苄西林的曲线 起点相同,说明反应初期,1~3样品中的E. coli 菌数 差别不大,几乎检测不到黑化反应的差别。检测样品 的起始A490数据也证实了这点:相比正常的A490值,样品 1~3的A490值分别增加了1.33、1.36和1.38倍,E. coli菌 量越多的样品其A490A630值也越大,其增幅明显低于与 E. coliS. aureus 混菌刺激的效果。在90 min反应时 间内,无菌正常对照的A490值几乎不变,而加E. coli 的 样品1~3的A490A630值均随反应时间延长明显增加, 而且A490 值与A630 值增加趋势一致。相比E. coliS. aureus 混菌刺激,E. coli单菌刺激的样品A490A630值增 幅在60 min时更大,与对照的差别更明显,推测E. coli 单菌刺激的效果应在反应后期。显然,随反应时间延 长,样品1~3中的E. coli 量越来越多,引起样品中的 PO活性越来越高,产生的黑色素越来越多,样品的黑 化反应越来越强;加氨苄西林对照中的E. coli 被杀死, 检测到的样品A490值恒定,其PO活性几乎不变,产生的 黑色素一直未增加;正常对照随反应时间延长,其血淋 巴中的血细胞可能破裂,少量的proPO蛋白会被激活 使PO活性略有提高,检测到A490值有少许增加。因此, E. coli体外刺激较长时间后能明显引起家蝇血淋巴PO 活性的提高。

图 2 家蝇血淋巴的A630A490E. coli单菌体外刺激 不同时间的变化曲线 Figure 2 The changes in A630 and A490 with stimulation time in housefly hemolymph challenged by E. coli in vitro
2.2.2 S. aureus 刺激对家蝇血淋巴黑化反应的影响

用酶标仪记录按表 1加不同量S. aureus的样品在90 min 内的A630A490值,样品中的血淋巴没有抽滤除菌(图 3)。

图 3显示,样品1~3含有的起始S. aureus 菌量依 次增加,其起始A630值有明显不同,随反应时间延长,它 们的A630值也在不断增加,说明其中的菌不断增殖,但 是速度比图 2中的E. coli 要慢。同样,也比较了样品 1~3 的起始A490 值与正常的A490 值的比值,结果为 1.30~2.40倍,增幅略高于E. coli,但明显低于E. coliS. aureus混菌的增幅;在90 min内,正常样品起初少量 的菌也在增殖,但量低于加S. aureus 的样品1~3,引起 的PO活性略有提高,其A490值略有上升,幅度小于加 S. aureus 的样品1~3;加氨苄西林的抗生素样品A490值 略有下降,说明其中起始较高量的菌被氨苄西林抑杀, 使PO活性变低,引起A490值略有下降;样品1~3的A490 值增加趋势与其A630值相似。说明反应液中S. aureus浓 度越大,引起同量血淋巴的PO活性越高,产生的黑化反 应越强。

图 3 家蝇血淋巴的A630A490S. aureus单菌体外刺激 不同时间的变化曲线 Figure 3 The changes in A630 and A490 with stimulation time in housefly hemolymph challenged by S. aureus in vitro
2.2.3 M. luteus 刺激对家蝇血淋巴黑化反应的影响

用酶标仪记录按表 1 加不同量M. luteus 的反应液在 90 min内的A630A490值,根据这些数据做曲线图(图 4)。 样品中的血淋巴未抽滤除菌。

图 4 家蝇血淋巴的A630A490M. luteus单菌体外刺激 不同时间的变化曲线 Figure 4 The changes in A630 and A490 with stimulation time in housefly hemolymph challenged by M. luteus in vitro

样品1~3含有的M. luteus 浓度同前,也是依次增 加。在90 min内,测得的A630值与A490值也依次增加,增 加幅度比含S. aureus 的相同样品要高,比含E. coli 的 相同样品要低,但是,其起始A490值与正常A490值的比值 最大,分别为2.60、2.80和3.00倍,该数据在单菌刺激 中是最大的,其3 号样品的比值(3.00 倍)略低于E. coli 和S. aureus 混菌(3.80倍)。正常样品起初有少量 的菌,但未加S. aureus,其PO活性随反应时间略有提 高,A490值略有上升,幅度小于加S. aureus 的样品1~3; 加氨苄西林的抗生素样品起初含有的S. aureus 菌量与 样品2相当,但被氨苄西林有效抑杀后,样品的PO活 性基本不变,A490 值保持恒定。显然,反应液中起始 M. luteus 浓度越大,引起同量血淋巴的黑化反应越强, 其作用强度比S. aureusE. coli 强,略弱于E. coliS. aureus混菌。 3 讨论

黑化反应是家蝇重要的先天性免疫防御机制,当 外源性物质入侵时,家蝇体内的proPO系统被激活,使 proPO形成PO,引起黑色素和毒性物质生成,抵御入侵 物[10]。本研究发现,在体外,免疫刺激物不同,引起的 家蝇幼虫血淋巴的黑化反应不同。

当用E. coliM. luteusS. aureus 单菌或E. coliS. aureus 混菌体外刺激家蝇3龄幼虫的血淋巴时,96 孔酶标板法能够检测到菌刺血淋巴的PO活性快速提 高。在90 min的检测时间内,随时间延长,无菌刺的正 常家蝇血淋巴A490缓慢增加,而菌刺样品的A490快速增 加,增加的幅度与刺激菌的浓度成正比,加抗生素的样 品A490基本不变。从而证明:在体外,家蝇血淋巴受菌 刺激会促进其中的proPO激活产生大量的PO;没有病 原刺激,正常血淋巴中的proPO也会有少许被激活产 生少量的PO。PO催化反应液中的多巴生成黑色素而 使样品的A490增加。

另外,在一定的反应时间内,合适的菌浓度范围 (1.38×107~1.38×108 cfu)下,体外刺激菌的浓度越 大,对血淋巴中proPO的激活作用越强,导致的黑化作 用越明显。从4种菌刺的检测曲线来看,使用除菌血 淋巴检测菌刺效果更明显,E. coliS. aureus 混菌刺激 引起家蝇血淋巴A490的变化与单菌刺激的类似。从检 测到的4种菌刺样品起始A490值与正常的A490值比率来 看,3 种单菌刺激的效果是M. luteusS. aureusE. coli,而E. coliS. aureus 混菌刺激的效果要比单菌 刺激的效果好,而且,刺激菌的浓度越大,引起家蝇血 淋巴的黑化反应越明显。

王秀华等[11]曾探讨96孔酶标板法检测对虾血淋 巴过氧化物酶活性的优势,那些优势在本研究中也体 现得更为充分。①节约试剂。以前检测家蝇的黑化反 应用分光光度计法,反应液要3 ml,是96孔酶标板法 180 μl反应液的17倍,分光光度计法检测1个样品用 的血淋巴量为20 μl,若重复检测3次就需要至少60 μl 的血淋巴,是96孔酶标板法使用血淋巴量的7倍。② 简单快速。分光光度计法每次只能检测1个样品,而 96孔酶标板法1次可以同时检测多个样品。③稳定灵 敏。分光光度计法每次检测需要人工调试,获得的重 复数据间误差较大,96孔酶标板法只需将每个样品定 容,完全自动检测,数据稳定。总之,96孔酶标板法比 分光光度计法用于检测家蝇血淋巴的黑化反应更加方 便快捷。

参考文献
[1] Cerenius L,Lee BL,Soderhall K. The proPO-system:pros andcons for its role in invertebrate immunity[J]. Trends Immunol,2008,29:263-271.
[2] Tang H. Regulation and function of the melanization reaction inDrosophila[J]. Fly(Austin),2009,3(1):105-111.
[3] Binggeli O,Neyen C,Poidevin M,et al. Prophenoloxidase activationis required for survival to microbial infections in Drosophila[J].PLoS Pathog,2014,10(5):e1004067.
[4] An C,Zhang M,Chu Y,et al. Serine protease MP2 activatesprophenoloxidase in the melanization immune response ofDrosophila melanogaster[J]. PLoS One,2013,8(11):e79533.
[5] Nappi A,Poirie M,Carton Y. The role of melanization and cytotoxicby-products in the cellular immune responses of Drosophila againstparasitic wasps[J]. Adv Parasitol,2009,70:99-121.
[6] Cerenius L,Kawabata S,Lee BL,et al. Proteolytic cascades andtheir involvement in invertebrate immunity[J]. Trends Biochem Sci,2010,35(10):575-583.
[7] Chen K,Liu C,He Y,et al. A short-type peptidoglycan recognitionprotein from the silkworm: expression, characterization andinvolvement in the prophenoloxidase activation pathway[J]. DevComp Immunol,2014,45(1):1-9.
[8] Cao X,Zhou M,Wang C,et al. Musca domestica pupae Lectinimproves the immunomodulatory activity of macrophages byactivating nuclear factor-κ B[J]. J Med Food,2012,15(2):145-151.
[9] Sun SG,Liu WG,Wang JG,et al. Endonuclease activity of phenoloxidase from Musca domestica larvae[J]. Biol Bull,2008,215(1):108-114.
[10] 李殿香,刘晖,王军,等. 家蝇对病原入侵黑化反应的研究[J]. 中华卫生杀虫药械,2013,19(3):193-196.
[11] 王秀华,雷质文,黄倢,等. 96孔酶标板法测定对虾血淋巴的过氧化物酶相对活性的初步研究[J]. 海洋科学,2001,25(11):55-58.