中国公共卫生  2018, Vol. 34 Issue (4): 603-608   PDF    
水中16种邻苯二甲酸酯类稳定性同位素内标-自动固相萃取-气质联用测定
林麒, 王鹏, 林守二, 华永有    
福建省疾病预防控制中心理化检验科 福建省人兽共患病研究重点实验室 福建医科大学公卫学院教学基地,福州 350001
摘要目的 建立稳定性同位素内标-自动固相萃取-气质联用测定水中16种邻苯二甲酸酯类(PAEs)的方法,并应用于水质分析。方法 2016年1 — 2月采集福建省福州某医院血液透析科、闽江、居民家中和某大型超市水样各1 L,气相色谱-质谱联用(GC-MS)分析,内标法定量。测定透析水,江水、管网末梢水、地下水等实际水样,并以实际水样为本底,进行低、中、高3种浓度水平的加标实验(n = 6),计算回收率与相对标准偏差(RSD)。结果 4类水体均含有邻苯二甲酸二异丁酯(DIBP)、邻苯二甲酸二丁酯(DBP)、邻苯二甲酸二(2–乙基)己酯(DEHP)等PAEs,浓度0.041~0.843 μg/L,方法检出限(MDL)为0.005~0.017 μg/L,方法定量限(LOQ) 0.015~0.051 μg/L,回收率为74.0 % ~118 %,RSD为 1.1 % ~20 %。结论 该方法克服了手动固相萃取缺点,水样处理效率高,准确,可靠,适用于水中PAEs的检测。
关键词稳定性同位素内标     自动固相萃取仪     气相色谱质谱联用          邻苯二甲酸酯    
Determination of 16 phthalate esters in water by automatic solid-phase extraction and gas chromatography-mass spectrometer coupled with stable isotope internal standard
LIN Qi, WANG Peng, LIN Shou-er, et al     
Fujian Provincial Key Laboratory for Zoonosis Research, Physical and Chemical Laboratory, Fujian Provincial Center for Disease Control and Prevention, Fuzhou, Fujian Province 350001, China
Abstract: Objective To establish a gas chromatography-mass spectrometer (GC-MS) method with solid-phase extraction and stable isotope internal standard for the detection of 16 phthalate esters (PAEs) in water samples. Methods Four kinds of one liter water sample (hemodialysis water, ground water, tape water, and bottled underground water) were collected in a hospital, Min River, a residential house, and a super market in Fuzhou city of Fujian province; between January and Feburary 2016, and then the PAEs in the sample were detected with GC-MS. The samples were quantified with internal standard method and the samples were also spiked at low, medium and high levels to evaluate recovery rate and relative standard deviation (RSD) of the assays. Results PAEs, including diisobutyl phthalate (DIBP), dibutyl phthalate (DBP), and (2-ethylhexyl) phthalate (DEHP) ,were detected in the 4 kinds of water samples with the concentrations ranging from 0.041 μg/L – 0.843 μg/L. The method detection limits were 0.005 μg/L – 0.017 μg/L and the limits of quantitation were 0.015 μg/L – 0.051 μg/L. The recoveries of 3 spiked concentrations in 4 kinds of water were 74.0% – 118.4% and the RSD was 1.1% – 20.0%. Conclusion The method overcomes shortcoming of manual solid-phase extraction, and is of high efficiency, good accuracy, stability and practicability, could be used in detection of PAEs in water samples.
Key words: stable isotope internal standard     automatic solid-phase extraction apparatus     gas chromatography-mass spectrometer     water     phthalate esters    

邻苯二甲酸酯类(phthalate esters,PAEs)是典型内分泌干扰物,有急性毒性[1]、生殖发育毒性[23]、糖代谢紊乱疾病[45]等。其最常用于塑料产品的增塑剂,易于迁移,已经在粉尘、地表水和土壤等中检出。水中PAEs前处理技术包括固相萃取、微萃取、膜萃取,液相微萃取和搅拌棒吸附萃取等,检测技术主要有气相色谱法和液相色谱法,其中最普遍使用的是气相色谱–质谱联用仪(gas chromatography-mass spectrometer,GC-MS)[6]。本研究于2016年1 — 2月采集福建省福州某医院血液透析科、闽江、居民家中和某大型超市水样各1 L,参考邱歆磊[7]方法,建立水中16种PAEs稳定性同位素内标–自动固相萃取-GC-MS检测方法。

1 材料与方法 1.1 主要仪器和设备

全自动固相萃取仪AUTO SPE-06D(厦门睿科Reeko公司),气相色谱–质谱联用仪(美国Agilent公司,6890/5973i GC-MSD);色谱柱HP-5MS(0.25 mm × 30 m × 0.25 μm,美国Agilent公司);氮吹浓缩仪N-EVAP-111(美国Organomation Associates公司);马弗炉(北京美诚公司)。

1.2 试剂与耗材

正己烷(色谱纯,德国Merck公司),二氯甲烷(色谱纯,美国ACS恩科化学公司),甲醇(色谱纯,德国Merck公司)和丙酮(色谱纯,韩国Duksan公司);有机试剂均需重蒸处理。固相萃取柱Supelclean ENVI-18(6 mL/500 mg,美国Supelco公司),Welchrom C18E(6 mL/1 000 mg,上海Welch公司),HC-C18 glass(6 mL/1 000 mg,德国CNW公司),Florisil PR(6 mL/1 000 mg,美国Agilent公司),Sep-Pak C18(6 mL/500 mg,美国Waters公司),HLB(6 mL/500 mg,天津力瑞公司)。

1.3 外标储备液、中间液与使用液

16种PAEs混合标准品(1.0 mg/mL,custom phthalates mix, 116767-01-1ML上海安谱公司)包括:邻苯二甲酸二甲酯(dimethyl phthalate,DMP)、邻苯二甲酸二乙酯(diethyl phthalate,DEP)、邻苯二甲酸二异丁酯(diisobutyl phthalate,DIBP)、邻苯二甲酸二丁酯(dibutyl phthalate,DBP)、邻苯二甲酸二(2–甲氧基)乙酯(di(2-methoxyethyl) phthalate,DMEP)、邻苯二甲酸二(4–甲基–2–戊基)乙酯(bis(4-methyl-2-pentyl)phthalate,BMPP)、邻苯二甲酸二(2–乙氧基)乙酯(Di(2-ethoxyethyl) phthalate,DEEP)、邻苯二甲酸二戊酯(dipentyl phthalate,DPP)、邻苯二甲酸二己酯(dihexyl phthalate,DHXP)、邻苯二甲酸丁基苄基酯(benzyl butyl phthalate,BBP)、邻苯二甲酸二(2–丁氧基)乙酯(2-butoxyethyl)phthalate,DBEP)、邻苯二甲酸二环己酯(dicyclohexyl phthalate,DCHP)、邻苯二甲酸二(2–乙基)己酯(2-ethylhexyl)phthalate,DEHP)、邻苯二甲酸二苯酯(diphenyl phthalate,DPnP)、邻苯二甲酸二正辛酯(di-n-octyl phthalate,DNOP)、邻苯二甲酸二壬酯(dinonyl phthalate,DNP);移取1.0 mL的外标储备液(1.0 mg/mL),用丙酮定容至50.0 mL,即为浓度为20.0 μg/mL的中间液。移取1.0 mL中间液,用丙酮定容至10.0 mL,即为浓度为2.0 μg/mL的使用液。

1.4 内标储备液、中间液与使用液

分别称取D4–邻苯二甲酸二丁酯(D4-DBP,D4-DEHP,Dr.Ehrenstorfer GmbH,93 %)和D4–邻苯二甲酸二(2–乙基)己酯(D4-DEHP,Dr.Ehrenstorfer GmbH,93 %)标准11.31 mg,丙酮定容至10.0 mL,配制成内标储备液,浓度1.13 mg/mL。再用丙酮梯度稀释为11.3 μg/mL的内标使用液。

1.5 样品采集、处理与分析(表1

2016年1 — 2月于福州某医院血液透析科、闽江、居民家中和某大型超市分别采集透析水(reverse osmosis, RO反渗)、闽江水(地表水源水)、管网末梢水(生活饮用水)和瓶装饮用水(地下水)。参考GB/T 5750.8–2006《生活饮用水标准检验方法 有机物指标》附录B[8],采样容器为玻璃容器,采样量为1 L,4 ℃保存与运输,2周内测定。如果水样有杂质,要经过0.45 μm孔径的滤膜过滤,采集自来水样时加入约40~50 mg亚硫酸钠脱氯。在水样采集、运输、储存和处理过程中,尽量使用玻璃容器或器皿。普通玻璃器皿在350 ℃下烘烤6 h,而计量器皿使用时用丙酮清洗3次。GC-MS分析时源于样品基质中的共流离子可能会影响分析物的鉴定,采用质谱全扫描(50~350 m/z)的方式进行确证。确认全自动固相萃取仪的溶剂与气路连接正常,移取200.0 mL的水样,并加入4 μL C18同位素内标使用液(11.3 μg/mL),混匀后上样。GC-MS参数进样口温度:250 ℃;进样模式:不分流进样,恒流模式;载气:He;流量:1.0 mL/min;升温条件:60 ℃(1 min),以15 ℃/min升至220 ℃,再以5 ℃/min升至290 ℃(8 min)。离子源:EI;电子能量:70 eV;接口温度:280 ℃;离子源温度:150 ℃;四极杆温度:150 ℃;溶剂延迟:8.0 min;选择离子监测(selectedion monitoring, SIM)。

表 1 全自动固相萃取参数

1.6 统计分析

保留时间(RT)与质谱定性,内标法定量,计算方法检出限(method detection limit, MDL)、定量限(limit of quantitation, LOQ)。同时计算加标回收率(%)与相对标准偏差(Relative standard deviation, RSD)进行方法验证。水样中邻苯二甲酸酯各个含量按公式(1)计算,结果以μg/L表示。(前6个按内标1计算,后10个按内标2计算)

$\rho = \frac{{{\rho _1} \times {V_1}}}{V}$ (1)

ρ为水样中各邻苯二甲酸酯化合物的质量浓度(μg/L);ρ1相当于标准曲线的质量浓度(μg/L);V1为样品定容体积(mL);V为水样体积(mL)。

2 结 果 2.1 定性分析与定量离子选择(图1表2

PAEs内标和外标进行GC-MS分析,根据PAEs标准色谱图与质谱图确定各物质保留时间、定量离子和定性离子。

注:1. DMP,2. DEP,3. DIBP,4. DBP,5. DMEP,6. BMPP,7. DEEP,8. DPP,9. DHXP,10. BBP,11. DBEP,12. DCHP,13. DEHP,14. DPnP,15. DNOP,16. DNP。 图 1 PAEs混合标准溶液色谱图(2 000 μg/L)

表 2 16种邻苯二甲酸酯类化合物保留时间与监测离子

2.2 固相萃取柱选择

对HC-C18 glass,Supelclean ENVI-18、Welchrom C18E、Sep-Pak C18、HLB和Florisil PR萃取柱进行选择,活化柱子后,直接加入内标使用液4 μL,外标使用液50 μL,用10 mL二氯甲烷以2.0 mL/min洗脱,浓缩定容至1.0 mL,上机测定,外标单点法计算同位素内标与混标的绝对回收率,内标单点法计算混标的相对回收率(n = 2)。柱子选择原则如下:(1)同位素内标绝对回收率好;(2)本底干扰小,外标相对回收率好;(3)重现性稳定。

自动固相萃取仪与玻璃固相萃取内径不配套、密封性差,剔除HC-C18 glass。各萃取柱中内标D4-DBP与D4-DEHP绝对回收率(n = 2),HLB为24.5 % ~29.8 %,Florisil PR 46.1 % ~60.5 %,且两者洗脱液均混浊,因此排除HLB和Florisil PR。Supelco ENVI-18、Sep-Pak C18 和Welchrom C18E为72.5 % ~134.3 %。Supelco ENVI-18、Sep-Pak C18 和Welchrom C18E外标相对回收率比较:Sep-Pak C18中DBP达到439.2 % ~806.1 %;Welchrom C18E中DNOP为132.3 %,DNP146.2 %;而Supelco ENVI-18,除DMEP70.7 %,DEEP60.4 %,其余在82.5 %~112.6 %,且洗脱液澄清无杂质。综合考虑内标绝对回收率与本底干扰,选择Supelco ENVI 18萃取柱。

2.3 二氯甲烷的洗脱体积与洗脱速度

Supelco ENVI 18固相萃取柱活化、加标(2.2),二氯甲烷溶液以2.0 mL/min的速度洗脱,以2 mL为一段,分段收集洗脱液。以体积V为横坐标,各段洗脱液中待测物峰面积A为纵坐标绘制回收曲线。10 mL时,16种待测物均充分洗脱。故洗脱体积定为10 mL。二氯甲烷10 mL分别以2.0, 5.0和10.0 mL/min的洗脱速度,洗脱加标萃取柱(n = 2),收集洗脱液浓缩定容至1 mL。以洗脱速度为横坐标,各待测物峰面积为纵坐标,比较不同洗脱速度的洗脱效果。大部分物质,洗脱效果无明显差别,但DBP随着洗脱速度的增加,其峰面积明显下降。所以选择洗脱速度为2.0 mL/min。

2.4 萃取柱氮吹

萃取柱活化、加标(2.2),N2压力25 psi,吹干10 min,然后10 mL二氯甲烷2.0 mL/min速度洗脱,氮吹浓缩至1.0 mL,单点内标法定量。BMPP由97.0 % 降至66.9 % (n = 3),其余变化不大。说明氮吹对样品中目标化合物测定影响较小。

2.5 样品瓶吸附作用

对6份透析水水样加标,加标浓度0.500 μg/L, 按1.5步骤处理,3份有二氯甲烷荡洗样品瓶步骤,另外3份无此步骤,上样分析,内标法定量。结果表明二氯甲烷荡洗后,内标D4-DBP绝对回收率差别不大,在84.4 % ~99.4 %,而D4-DEHP内标从18.2 % ~48.9 % 升至84.7 % ~94.2 %。待测物中BMPP的绝对回收率从22.4 % ~33.0 % 升至74.0 % ~78.3 %,DHXP从30.3 % ~50.2 %升至87.5 %~112.0 %,DNOP从22.7 % ~39 % 升至74.5 % ~96.1 %。同时由于内标D4-DEHP绝对回收率提高,DEEP相对回收率由166.0 % ~193.3 % 降至88.1 % ~116.5 %,其余无明显变化。因此为了消除样品瓶对待测物的吸附作用,样品瓶用二氯甲烷荡洗。

2.6 各试剂材料本底

检测重蒸前后试剂PAEs本底,发现重蒸试剂后本底干扰有较大改善。本研究的分析物为环境污染物,所使用的试剂材料均存在本底干扰。同时各类水体均含有DIBP、DBP、DEHP等PAEs,会对样品特别是低浓度水平的样品产生影响。因此需重蒸试剂,并采取试剂空白、分析过程空白、水样空白等措施进行本底消除,以使实验结果更加准确、可靠。

2.7 标准曲线与方法检出限(表3

移取2.0 μg/mL混合标准使用液10 、50 、100、250、500和1 000 μL,加入内标使用液20 μL,正己烷定容至1.0 mL,配制成20~2 000 μg/L浓度标准曲线。平行进样(n = 2),计算同位素内标与各待测物峰面积。以各待测物系列浓度为横坐标x(μg/L),各组分与相应内标响应值比值为纵坐标y(As/Ai)绘制各组分的标准曲线。根据文献[9],参考仪器检出限(instrument detection limit,IDL),以透析水为基质进行加标,浓度为0.020~0.030 μg/L,重复制备7个样品,计算多次测定结果的标准偏差s,代入公式MDL = st(n-1, 1-α。其中:s为加标样品测试结果的标准偏差;t是自由度为n-1时的Student' s值,可查t值表得到,当n = 7时,在99 %置信区间(α = 0.01)下,t = 3.14;n = 加标样品数量,n ≥ 7。3倍MDL即为定量限(LOQ)。

表 3 PAEs线性范围、回归方程、相关系数(r)、方法检出限(MDL)和定量限(LOQ)(n = 7)

2.8 实际水样测定、方法准确度与精密度(表4图2

各种水体本底不同,分别对透析水(RO反渗)、闽江水(地表水源水)、管网末梢水(生活饮用水)、瓶装饮用水(地下水)等进行PAEs本底调查(n = 6),并进行低、中、高3种浓度水平的加标实验(n = 6),计算回收率与相对标准偏差(relative standard deviation, RSD)。4类水体PAEs本底:透析水DIBP 0.089 μg/L、DBP 0.196 μg/L;闽江水含多种PAEs,以DEHP最高(0.246 μg/L),其余浓度0.025~0.201 μg/L;管网末梢水DIBP 0.112、DBP 0.843和DEHP 0.110 μg/L;瓶装饮用水DBP 0.151 μg/L和DEHP 0.115 μg/L。方法检出限为0.005~0.017 μg/L,方法定量限0.015~0.051 μg/L,回收率74.0 % ~118.4 %,RSD 1.1 % ~20.0 %,说明4类水体中PAEs的测定方法可靠,稳定。

表 4 4种水样加标回收率和RSD(n = 6,%)

注:A透析水空白与加标;B闽江水空白与加标;C管网末梢水空白与加标。 图 2 各种水体的PAEs加标色谱图(加标浓度为0.500 μg/L)

3 讨 论

世界卫生组织(World Health Organization, WHO)规定饮用水中DEHP的最大允许浓度为8 μg/L;美国环保局(United States Environment Protection Agency, USEPA)规定限值为6 μg/L;我国《生活饮用水卫生标准》(GB 5749-2006)DEHP、DEP和DBP的限值分别为8 μg/L、300 μg/L和3 μg/L。

国内外水体中PAEs以DBP、DEHP和DIBP为主。水源水国内[10](DBP 0.08~9.8 μg/L,DEHP 0.05~12.6 μg/L和DIBP 0.196 μg/L)低于印度[11]与尼日利亚[12](DBP 46.79~212.52 μg/L,DEHP 2.67~5.94 μg/L)。瓶装水国内[7](DBP 164.51 μg/L,DEHP 129.17 μg/L和DIBP 309.29 μg/L)高于国外[1315](DBP 0.062~6.5 μg/L,DEHP 0.02~1.68 μg/L和DIBP 0.1~1.89 μg/L)。国内生活饮用水中[1617]DBP(0.21~124.29 μg/L),DEHP(1.18~3.90 μg/L)和地下水[1819]DBP(5.0~8.3 μg/L),DEHP(1.1~6.5 μg/L)。本研究4类水体PAEs也主要以DIBP、DBP和DEHP为主,且均处于较低水平(0.041~0.843 μg/L)。

PAEs检测方法目前有固相萃取–高效液相色谱法,MDL 0.18~1.86 μg/L[20],固相萃取–超高效液质联用法,LOQ 0.002 μg/L~0.632 μg/L[21],磁性多壁碳纳米管(MWCNTs)固相萃取–GC–MS法,MDL 0.04~0.47 μg/L[2223],固相萃取–GC–MS/MS法,MDL 0.007~0.012 μg/L[7]。上述方法均为手动固相萃取,上样量大、操作不便、重现性差,而自动固相萃取法仅见C18膜的全自动固相萃取– GC–MS法[24],MDL 0.1~0.9 μg/L。本研究使用稳定性同位素内标–全自动固相萃取–GCMS法测定水中16种PAEs,MDL为0.005~0.017 μg/L,其准确度、精密度和自动化程度高,适用于水中PAEs的检测。

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