中国公共卫生  2016, Vol. 32 Issue (6): 870-873   PDF    
活性氧通过MAPKs和PI3K/AKT通路激活Nrf2研究进展
陈晨, 殷园园, 武夏芳, 武瑞瑞, 徐苑苑     
中国医科大学公共卫生学院环境毒理学研究室, 辽宁 沈阳 110122
摘要: 机体在应对过量活性氧(ROS)时能够通过一些细胞信号转导通路, 增强细胞内许多保护性蛋白的表达。核因子E2相关因子2(Nrf2)是细胞对抗氧化应激的重要调控因子之一, 在ROS诱导的抗氧化蛋白表达中具有重要作用。然而ROS激活Nrf2的具体机制并不完全清楚。有研究表明ROS可通过丝裂原活化的蛋白激酶(MAPKs)和磷脂酰肌醇-3-激酶/蛋白激酶B(PI3K/AKT)细胞信号通路激活Nrf2, 以应对氧化应激对细胞造成的损伤。提示, MAPKs、PI3K/AKT 2个重要的信号通路在ROS诱导的Nrf2活化中具有重要作用。
关键词活性氧     核因子E2相关因子2(Nrf2)     丝裂原活化蛋白激酶(MAPKs)     磷脂酰肌醇-3-激酶(PI3K/AKT)    
Advance in researches on role of MAPK and PI3K/AKT pathways in ROS-induced activation of nuclear factor erythroid 2-related factor 2
CHEN Chen, YIN Yuan-yuan, WU Xia-fang, et al     
Department of Environmental Toxicology, School of Public Health, China Medical University, Shenyang, Liaoning Province 110122, China
Abstract: When exposed to excessive reactive oxygen species (ROS), living organism can enhance the expression of many protective proteins through activation of a series of complex cellular signal transductions.Nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2) is a master transcription factor in cellular defense against oxidative stress, which is the key to ROS-induced overexpression of antioxidant proteins.Nevertheless, the mechanisms, by which ROS activate Nrf2, are not completely understood.Some researches show that ROS can activate Nrf2 through mitogen-activated protein kinases (MAPKs) and phosphatidylinositol-3-kinase/protein kinase B (PI3K/AKT) pathways, protecting cells from oxidative stress.It indicates that MAPKs and PI3K/AKT pathways play an important role in ROS-meditated activation of Nrf2.
Key words: reactive oxygen species     nuclear factor erythroid 2-related factor 2     mitogen-activated protein kinase     phosphatidylinositol-3-kinase    

活性氧(reactive oxygen species,ROS)包括臭氧(O3)、单线态氧(1O2)、过氧化氢(H2O2)、超氧阴离子自由基(O2-)和羟自由基(·OH)等。许多正常的细胞活动均会持续产生ROS,生理情况下ROS会被广泛表达的抗氧化蛋白如超氧化物歧化酶、过氧化氢酶(catalase,CAT)和谷胱甘肽过氧化物酶(glutathione peroxidase,GPx)等所拮抗,因而不会造成细胞损伤。多种外源性因素如环境毒物、低氧、高氧、应力拉伸等可刺激机体产生过量ROS。当ROS不能被抗氧化酶有效清除时,则会导致氧化应激,对细胞造成损伤。许多疾病发生过程中均存在氧化应激过程,然而氧化应激与疾病的关系尚存争议。这主要与ROS的双面性作用有关,一方面,ROS可通过对细胞大分子(如DNA、蛋白质、磷酯等)的破坏损伤细胞的生理功能,继而导致一些病理过程[1];另一方面,ROS可以作为第二信使在细胞信号转导和调节中发挥重要作用,如导致氧化还原敏感蛋白激活,或修饰蛋白质使其活性增高或降低,由此间接参与免疫反应或其他细胞保护作用过程[2]。核因子E2相关因子2(nuclear factor erythroid 2-related factor 2,Nrf2)是对抗氧化应激的上游转录因子,调控抗氧化酶、Ⅱ相解毒酶等多种保护性蛋白的转录表达[3]。研究认为ROS通过对Kelch样环氧氯丙烷相关蛋白1(Kelch-like ECH2 associated protein 1,Keap1)进行修饰,导致Keapl的构像发生改变,使Nrf2与Keapl解耦联,从而使Nrf2活化[4]。但近年来,实验证据提示丝裂原活化的蛋白激酶(mitogen-activated protein kinases,MAPKs)和磷脂酰肌醇-3-激酶/蛋白激酶B(phosphatidylinositol-3-kinase/protein kinase B,PI3K/AKT)等一些重要信号转导通路参与ROS对Nrf2的激活,以应对氧化应激对细胞造成的损伤。本文针对活性氧通过MAPKs和PI3K/AKT通路激活Nrf2研究进展综述如下。

1 ROS对Nrf2的激活

Nrf2是细胞对抗氧化应激最重要的转录因子之一。正常情况下,Nrf2在细胞质中与其负调节者Keap1结合,并被泛素化降解,从而维持在一个很低的水平。当细胞处于氧化应激状态时,Nrf2与Keap1解离,进入核内,与小Maf蛋白共同结合于抗氧化反应元件(antioxidant response element,ARE)。ARE是位于许多细胞保护性基因启动子区域的一段DNA结合序列,这些细胞保护性基因包括Ⅱ相解毒酶类、多药耐药相关蛋白、抗氧化蛋白类及抗炎蛋白等[5]。因此,Nrf2与ARE的结合能激活上述细胞保护性基因的转录,启动或增强细胞的抗氧化应激、药物代谢和抗炎症反应等功能。

研究发现ROS主要通过下列途径激活Nrf2:(1)对Keap1中干预区域(IVR)的C273、C288或C151半胱氨酸残基的巯基基团进行修饰,引起Keap1构象改变,导致其与Nrf2解离或Nrf2的泛素化降解减少[6],Nrf2即可进入细胞核发挥作用,这也是Nrf2激活的经典机制;(2)直接作用于Nrf2半胱氨酸残基,使Nrf2的核定位信号激活或促进Nrf2与Keap1分离,从而使Nrf2在细胞核中的含量增多,活性升高;(3)通过激活MAPKs、PI3K/AKT等信号通路,继而磷酸化Nrf2蛋白或增强Nrf2的核转位,激活Nrf2。

2 MAPKs在ROS激活Nrf2中的作用

MAPKs是一类丝一苏氨酸激酶家族,其中研究较清楚的3个亚族分别是c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)、细胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)和p38 MAPK信号分子。

2.1 ROS激活MAPKs

ROS能诱导MAPK通路活化,研究证据分为如下3类:(1)多种细胞接受外源刺激产生ROS后,同时细胞内MAPK信号分子活化。(2)抗氧化剂可以阻止MAPK磷酸化。(3)将细胞直接暴露于外源性H2O2来模拟氧化应激,可导致MAPK通路激活。

2.1.1 不同细胞中ROS的过量产生伴有MAPK信号通路活化

在人肺腺癌A549细胞中2-甲氧基-1, 4-萘并醌诱导产生的ROS可激活JNK和p38 MAPK信号通路[7]。鸡胚胎心肌细胞在低氧条件下,ROS生成显著升高,并参与p38信号分子的磷酸化[8]。中国仓鼠肺成纤维细胞中吩嗪硫酸甲酯诱导产生的O2-可以使p38信号通路激活[9]。小鼠胰腺β细胞中棕榈酸酯诱导产生的ROS可使JNK的183Thr/185Tyr磷酸化,激活JNK[10]

2.1.2 降低细胞内ROS水平可以抑制MAPKs通路的激活

抗氧化剂N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)预处理人结肠癌SW620细胞后,ROS诱导的JNK磷酸化水平明显降低[11]。谷胱甘肽可阻止绿脓菌素诱导的人肺癌A549细胞中ERK1/2的磷酸化[12]。采用软脂酸处理人肝细胞后,ROS产生增加,p38和ERK磷酸化增加,而NAC或过氧化氢酶预处理,可明显降低p38和ERK的磷酸化水平[13]。此外,Ruffels等[14]用1 mmol/L的H2O2刺激人SH-SY5Y神经母细胞瘤细胞,发现ERK1/2的202Thr/204Tyr和JNK的183Thr/185Tyr的磷酸化水平均明显增加,提示ROS对于MAPK信号通路具有激活作用。

2.1.3 ROS介导MAPKs信号分子磷酸化机制

有研究报道ROS可以磷酸化大鼠胸主动脉原代血管平滑肌细胞的表皮生长因子受体(epithelial growth factor receptor,EGFR),继而诱导Src蛋白的磷酸化,最终使ERK1/2磷酸化,激活ERK1/2[15]。另有研究发现ROS激活JNK/p38是由于ROS氧化上游信号分子ASK1的结合蛋白,使其与ASK1分离,ASK1被激活,进而使JNK/p38磷酸化[16]。Day等[17]报道H2O2可以直接氧化MAPKs信号分子的半胱氨酸残基而激活MAPKs。此外,ROS还可以氧化MAPK磷酸酶,使其失活,导致JNK的持续磷酸化而持续激活[18]

2.2 MAPKs激活Nrf2

MAPK通路的活化可以使Nrf2磷酸化、促进Nrf2的核转位或增加Nrf2的表达,继而促进Nrf2的下游基因转录表达。高氧能诱导小鼠Ⅱ型肺上皮细胞中ERK和Nrf2的磷酸化,而ERK抑制剂U0126使高氧条件下的Nrf2磷酸化明显下降;采用ERK1/2突变体转染细胞发现,突变ERK抑制了Nrf2的核转位[19]。原儿茶酸处理的小鼠巨噬细胞系J774 A.1细胞中,Nrf2 mRNA和蛋白表达水平上升、磷酸化及核转位增强、下游基因GPx、GR表达上升;使用JNK抑制剂或使JNK基因沉默后,不仅Nrf2的蛋白水平降低,而且原儿茶酸诱导的Nrf2磷酸化以及核转位明显被抑制,GPx、GR表达上升的现象也消失,提示JNK激酶参与Nrf2的活化[20]。在U87和U251胶质瘤细胞中,抑制p38 MAPK的磷酸化降低替莫唑胺处理细胞中Nrf2蛋白表达水平,表明Nrf2的激活依赖于p38 MAPK的激活[21]。此外,银杏提取物可引起酒精暴露的小鼠C2C12成肌细胞中ERK和JNK的活化,Nrf2核积累增强及下游基因HO-1表达上升,ERK抑制剂PD98059和JNK抑制剂SP600125则使Nrf2核蛋白积累及HO-1表达抑制[22]。Wang等[13]采用软脂酸处理人肝细胞0.5 h后发现,细胞质中Nrf2蛋白的表达快速增加,1 h后观察到明显的Nrf2核转位。p38 MAPK抑制剂SB202190和ERK抑制剂U0126均明显抑制Nrf2蛋白表达以及核积累,提示软脂酸可以通过ERK和p38 MAPK刺激Nrf2的表达及核转位。

3 PI3K在ROS激活Nrf2中作用

PI3K活化可磷酸化质膜上的磷脂酰肌醇环,产生第二信使3、4、5-三磷酸磷脂酰肌醇,与细胞内丝-苏氨酸激酶AKT结合,激活AKT,而活化的AKT通过磷酸化多种酶、激酶和转录因子等调节细胞的功能[23]。多项研究证实Nrf2是AKT的靶蛋白之一,AKT或其上游PI3K抑制剂均可抑制Nrf2活性,同时,抑制ROS可抑制AKT的活性,因此ROS可以通过PI3K/AKT信号通路激活Nrf2。

3.1 ROS通过PI3K激活Nrf2直接证据

Papaiahgari等[24]报道在ROS生成抑制剂二联碘苯存在时,周期性拉伸(cyclic stretch,CS)小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞诱导的PI3K/AKT通路激活被抑制,提示PI3K/AKT的激活是ROS依赖的;PI3K抑制剂LY294002预处理肺泡上皮细胞后,Nrf2与ARE的结合被明显抑制,且Nrf2下游基因Gclc的转录表达明显降低;在AKT低表达的突变细胞株中CS诱导的Nrf2的核积累明显被抑制,表明CS作用下肺泡上皮细胞中Nrf2的活化是通过ROS/PI3K/AKT通路介导的。萝卜硫素处理的人间皮瘤MSTO-211H细胞中ROS和磷酸化AKT水平均明显增加,当用NAC预处理细胞后,磷酸化AKT水平增强现象消失,提示ROS介导PI3K/AKT的激活,而PI3K抑制剂Ly294002预处理细胞抑制了萝卜硫素暴露情况下细胞质中Nrf2蛋白水平的增加和HO-1表达的升高,表明萝卜硫素诱导产生的ROS可通过激活PI3K/AKT导致Nrf2表达及活性增加[25]。在人肺癌细胞A549中,PM2.5诱导ROS产生并导致Nrf2蛋白核转位及HO-1转录表达上升,其中Nrf2及HO-1的改变也被证实是由PI3K/AKT磷酸化介导[26]

3.2 ROS通过PI3K激活Nrf2间接证据

正常人乳腺上皮细胞经17β雌二醇的主要代谢产物4-羟雌二醇处理后,细胞内ROS水平快速增加,且PI3K和AKT的磷酸化水平升高,ROS抑制剂降低PI3K/AKT磷酸化水平[27],提示4-羟雌二醇诱导的ROS的产生可以激活PI3K/AKT途径。而在大鼠视神经元细胞中观察到17β雌二醇可以提高AKT的磷酸化水平、增加Nrf2的mRNA和蛋白水平以及核转位,PI3K抑制剂LY294002预处理则明显抑制Nrf2的活化,表明PI3K/AKT激活能活化Nrf2[28]。高糖可以诱导鼠原代成骨细胞内ROS的产生和AKT的磷酸化,NAC可抑制AKT的磷酸化[29]。Hamdulay等[30]发现抗炎药塞来昔布可以使人血管内皮细胞AKT的Ser473残基磷酸化并诱导Nrf2的核转位以及HO-1的mRNA及蛋白表达,PI3K抑制剂及AKT突变则抑制Nrf2的核转位以及HO-1的表达。

3.3 ROS通过PI3K激活Nrf2机制

ROS激活PI3K使Nrf2活化的机制可能与酪氨酸激酶受体有关,内源性或外源性的ROS均可通过激活EGFR、anexelekto(Axl)等酪氨酸激酶受体使PI3K/AKT磷酸化,从而使Nrf2的核转位增多、与ARE的结合能力增强,即激活Nrf2。在小鼠Ⅱ型肺泡上皮细胞中诱导ROS产生可使EGFR和AKT磷酸化水平明显提高,而EGFR抑制剂AG1478预处理可降低AKT的磷酸化水平[24],提示ROS可通过磷酸化EGFR激活PI3K/AKT信号通路。另有研究发现H2O2提高AKT的磷酸化水平机制为H2O2使酪氨酸激酶受体Axl的酪氨酸磷酸化,从而延长磷酸化AKT的半衰期,使其水平提高。Axl抑制剂R428可削弱磷酸化AKT半衰期延长的现象,表明H2O2诱导的磷酸化AKT水平升高与活化Akl而延长磷酸化AKT的半衰期有关[31]。此外,ROS可以氧化蛋白酪氨酸磷酸酶家族成员中的phosphatase and tensin homologue(PTEN),进而增加PI3K/AKT的磷酸化水平,导致PI3K/AKT活化[32]

尽管有大量实验表明ROS可以通过激活MAPK或PI3K而活化Nrf2,也有实验得出相反的结论。如,抑制肿瘤坏死因子α诱导的大鼠血管平滑肌细胞ERK的激活则使细胞内Nrf2的核积累增多且Gclc表达增加[33];在糖尿病羊动物模型中观察到ROS的过量产生明显抑制AKT的磷酸化[34];人鼻中隔癌细胞暴露于镉24 h,虽然发现ROS产生增加、AKT磷酸化增强以及Nrf2激活,但NAC和PI3K抑制剂分别预处理后,尽管镉诱导的AKT磷酸化被抑制,Nrf2的激活却不受PI3K抑制剂的影响[35]。这些结果的不一致性可能与刺激类型、刺激持续时间、实验模型、细胞类型、细胞培养环境和观测时间等因素有关。此外,尚有其他信号通路被证实在ROS介导的Nrf2活化中发挥作用,如Cullinan等[36]证实蛋白激酶样内质网激酶(RNA-dependent protein kinase-like endoplasmic reticulum kinase,PERK)信号通路依赖的Nrf2的激活在维持细胞氧化还原稳定状态中发挥重要作用;Huang等[37]、Zhang等[38]分别证实PKC通路在ROS诱导的Nrf2蛋白磷酸化以及核转位过程中发挥促进作用。

4 展望

鉴于Nrf2在抵抗外源性因素所致氧化应激中的重要作用,其调控机制的深入研究,将为氧化应激相关疾病的防治提供理论依据。大量实验证据直接或间接表明MAPKs、PI3K/AKT 2个重要的信号通路在ROS诱导的Nrf2活化中发挥作用。这些证据一方面为深入研究ROS对Nrf2的活化作用提供了线索,另一方面现有研究大多来自体外实验,有待在体内实验中进一步验证。

参考文献
[1] 李勇, 孔令青, 高洪, 等. 自由基与疾病研究进展[J]. 动物医学进展,2008 (4) :85–88.
[2] Reth M. Hydrogen peroxide as second messenger in lymphocyte activation[J]. Nat Immunol, 2002, 3 (12) :1129–1134 .
[3] 王宁, 马慧萍, 漆欣筑, 等. Nrf2-ARE信号通路在机体氧化应激损伤防护中的研究进展[J]. 解放军医药杂志,2015,12 :21–27.
[4] 童海达, 王佳茗, 宋英. Keap1-Nrf2-ARE在机体氧化应激损伤中的防御作用[J]. 癌变·畸变·突变,2013 (1) :71–75.
[5] 李航, 段惠军. Nrf2/ARE信号通路及其调控的抗氧化蛋白[J]. 中国药理学通报,2011 (3) :300–303.
[6] 钟敏. Nrf2-Keap1抗氧化系统研究进展[J]. 中国公共卫生,2006,22 (3) :360–362.
[7] Ong JYH, Yong PVC, Lim YM, et al. 2-Methoxy-1, 4-naphthoquinone(MNQ) induces apoptosis of A549 lung adenocarcinoma cells via oxidation-triggered JNK and p38 MAPK signaling pathways[J]. Life Sci, 2015, 135 :158–164 .
[8] Kulisz A, Chen N, Chandel NS, et al. Mitochondrial ROS initiate phosphorylation of p38 MAP kinase during hypoxia in cardiomyocytes[J]. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol, 2002, 282 (6) :L1324–L1329 .
[9] Han MJ, Kim BY, Yoon SO, et al. Cell proliferation induced by reactive oxygen species is mediated via mitogen-activated protein kinase in Chinese hamster lung fibroblast(V79) cells[J]. Mol Cells, 2003, 15 (1) :94–101 .
[10] Yuan H, Zhang X, Huang X, et al. NADPH oxidase 2-derived reactive oxygen species mediate FFAs-induced dysfunction and apoptosis ofβ-cells via JNK, p38 MAPK and p53 pathways[J]. PLoS One, 2010, 5 (12) :e15726.
[11] Xu DG, LV W, Dai CY, et al. 2-(Pro-1-ynyl)-5-(5, 6-dihydroxypenta-1, 3-diynyl) thiophene induces apoptosis through reactive oxygen species-mediated JNK activation in human colon cancer SW620 cells[J]. Anat Rec, 2015, 298 (2) :376–385 .
[12] Xu Y, Duan C, Kuang Z, et al. Pseudomonas aeruginosa pyocyanin activates NRF2-ARE-mediated transcriptional response via the ROS-EGFR-PI3K-AKT/MEK-ERK MAP kinase signaling in pulmonary epithelial cells[J]. PLoS One, 2013, 8 (8) :e72528.
[13] Wang X, Liu JZ, Hu JX, et al. ROS-activated p38 MAPK/ERK-AKT cascade plays a central role in palmitic acid-stimulated hepatocyte proliferation[J]. Free Radic Biol Med, 2011, 51 (2) :539–551 .
[14] Ruffels J, Griffin M, Dickenson JM. Activation of ERK1/2, JNK and PKB by hydrogen peroxide in human SH-SY5Y neuroblastoma cells:role of ERK1/2 in H2O2-induced cell death[J]. Eur J Pharmacol, 2004, 483 (2) :163–173 .
[15] Meng D, Shi X, Jiang BH, et al. Insulin-like growth factor-I(IGF-I) induces epidermal growth factor receptor transactivation and cell proliferation through reactive oxygen species[J]. Free Radic Biol Med, 2007, 42 (11) :1651–1660 .
[16] Niso-Santano M, González-Polo RA, Bravo-San Pedro JM, et al. Activation of apoptosis signal-regulating kinase 1 is a key factor in paraquat-induced cell death:modulation by the Nrf2/Trx axis[J]. Free Radic Biol Med, 2010, 48 (10) :1370–1381 .
[17] Day AM, Veal EA. Hydrogen peroxide-sensitive cysteines in the Sty1 MAPK regulate the transcriptional response to oxidative stress[J]. J Biol Chem, 2010, 285 (10) :7505–7516 .
[18] Kamata H, Honda S, Maeda S, et al. Reactive oxygen species promote TNFα-induced death and sustained JNK activation by inhibiting MAP kinase phosphatases[J]. Cell, 2005, 120 (5) :649–661 .
[19] Papaiahgari S, Kleeberger SR, Cho HY, et al. NADPH oxidase and ERK signaling regulates hyperoxia-induced Nrf2-ARE transcriptional response in pulmonary epithelial cells[J]. J Biol Chem, 2004, 279 (40) :42302–42312 .
[20] Varì R, D'Archivio M, Filesi C, et al. Protocatechuic acid induces antioxidant/detoxifying enzyme expression through JNK-mediated Nrf2 activation in murine macrophages[J]. J Nutr Biochem, 2011, 22 (5) :409–417 .
[21] Ma L, Liu J, Zhang X, et al. p38 MAPK-dependent Nrf2 induction enhances the resistance of glioma cells against TMZ[J]. Med Oncol, 2015, 32 (3) :1–6 .
[22] Wang J, Zhang L, Zhang Y, et al. Transcriptional upregulation centra of HO-1 by EGB via the MAPKs/Nrf2 pathway in mouse C2C12 myoblasts[J]. Toxicol Vitro, 2015, 29 (2) :380–388 .
[23] 李远, 刘起展. 砷化物所致细胞恶性转化的信号通路研究进展[J]. 中华预防医学杂志,2011,45 (7) :657–660.
[24] Papaiahgari S, Yerrapureddy A, Hassoun PM, et al. EGFR-activated signaling and actin remodeling regulate cyclic stretch-induced NRF2-ARE activation[J]. Am J Respir Cell Mol Biol, 2007, 36 (3) :304–312 .
[25] Lee YJ, Jeong HY, Kim YB, et al. Reactive oxygen species and PI3K/AKT signaling play key roles in the induction of Nrf2-driven heme oxygenase-1 expression in sulforaphane-treated human mesothelioma MSTO-211H cells[J]. Food Chem Toxicol, 2012, 50 (2) :116–123 .
[26] Deng X, Rui W, Zhang F, et al. PM2.5 induces Nrf2-mediated defense mechanisms against oxidative stress by activating PIK3/AKT signaling pathway in human lung alveolar epithelial A549 cells[J]. Cell Biol Toxicol, 2013, 29 (3) :143–157 .
[27] Okoh VO, Felty Q, Parkash J, et al. Reactive oxygen species via redox signaling to PI3K/AKT pathway contribute to the malignant growth of 4-hydroxy estradiol-transformed mammary epithelial cells[J]. PLoS One, 2013, 8 (8) :e54206.
[28] Zhu C, Wang S, Wang B, et al. 17β-Estradiol up-regulates Nrf2 via PI3K/AKT and estrogen receptor signaling pathways to suppress light-induced degeneration in rat retina[J]. Neuroscience, 2015, 304 :328–339 .
[29] Zhang Y, Yang JH. Activation of the PI3K/AKT pathway by oxidative stress mediates high glucose-induced increase of adipogenic differentiation in primary rat osteoblasts[J]. J Cell Biochem, 2013, 114 (11) :2595–2602 .
[30] Hamdulay SS, Wang B, Birdsey GM, et al. Celecoxib activates PI-3K/AKT and mitochondrial redox signaling to enhance heme oxygenase-1-mediated anti-inflammatory activity in vascular endothelium[J]. Free Radic Biol Medi, 2010, 48 (8) :1013–1023 .
[31] Huang JS, Cho CY, Hong CC, et al. Oxidative stress enhances Axl-mediated cell migration through an AKT1/Rac1-dependent mechanism[J]. Free Radic Biol Medi, 2013, 65 :1246–1256 .
[32] Rodrigues MS, Reddy MM, Sattler M. Cell cycle regulation by oncogenic tyrosine kinases in myeloid neoplasias:from molecular redox mechanisms to health implications[J]. Antioxid Redox Signal, 2008, 10 (10) :1813–1848 .
[33] Li M, Liu RM, Timblin CR, et al. Age affects ERK1/2 and NRF2 signaling in the regulation of GCLC expression[J]. J Cellular Physiol, 2006, 206 (2) :518–525 .
[34] Li X, Ma XY, Feng YF, et al. Osseointegration of chitosan coated porous titanium alloy implant by reactive oxygen species-mediated activation of the PI3K/AKT pathway under diabetic conditions[J]. Biomaterials, 2015, 36 :44–54 .
[35] Lee YJ, Lee GJ, Baek BJ, et al. Cadmium-induced up-regulation of aldo-keto reductase 1C3 expression in human nasal septum carcinoma RPMI-2650 cells:involvement of reactive oxygen species and phosphatidylinositol 3-kinase/AKT[J]. Environ Toxicol Pharmacol, 2011, 31 (3) :469–478 .
[36] Cullinan SB, Diehl JA. PERK-dependent activation of Nrf2 contributes to redox homeostasis and cell survival following endoplasmic reticulum stress[J]. J Biol Chem, 2004, 279 (19) :20108–20117 .
[37] Huang HC, Nguyen T, Pickett CB. Phosphorylation of Nrf2 at Ser-40 by protein kinase C regulates antioxidant response element-mediated transcription[J]. J Biol Chem, 2002, 277 (45) :42769–42774 .
[38] Zhang X, Xiao Z, Yao J, et al. Participation of protein kinase C in the activation of Nrf2 signaling by ischemic preconditioning in the isolated rabbit heart[J]. Mol Cell Biochem, 2013, 372 (1-2) :169–179 .