中国公共卫生  2009, Vol. 25 Issue (2): 201-203   PDF    
酒精对大鼠胰岛素受体及底物-1基因表达影响
赵要武, 赵立娜, 郝丽萍, 曲巍, 刘烈刚, 孙秀发     
华中科技大学同济医学院公共卫生学院营养与食品卫生学系, 武汉 430030
摘要: 目的 研究慢性酒精摄入对雄性大鼠脂肪组织胰岛素受体(insulin receptor, IR)、胰岛素受体底物-1(insulin receptor substrate-1, IRS-1) mRNA表达的影响, 探讨酒精与胰岛素敏感性的关系及相关分子机制. 方法 清洁级雄性Wistar大鼠40只, 按体重随机分为对照组和低、中、高酒精剂量组, 每天分别给予0, 0.8, 1.6和2.4g/(kg·bw)的酒精灌胃.第19周末, 断头处死大鼠, 测定空腹血糖和血胰岛素, 计算胰岛素抵抗指数(HOMA-IR).提取脂肪组织总RNA, 通过半定量聚合酶链式反应方法测定IR、IRS-1mRNA表达水平. 结果 与对照组相比, 中、高剂量组空腹血糖(葡萄糖)浓度升高, 差异有统计学意义(P < 0.05);低、中剂量组胰岛素浓度升高, 差异有统计学意义(P < 0.05);各剂量组胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)的升高差异均有统计学意义(P < 0.05).低、中、高酒精剂量组IR、IRS-1mRNA表达水平分别为(0.588±0.039), (0.504±0.070);(2.678±0.031), (1.178±0.177);(0.761±0.137), (0.515±0.037).与对照组相比, 各酒精剂量组IR、IRS-1mRNA表达水平均增加, 差异有统计学意义(P < 0.05). 结论 慢性酒精摄入可以引起雄性大鼠胰岛素抵抗, 酒精造成脂肪组织IR、IRS-1mRNA表达的改变可能是引起胰岛素抵抗的分子机制之一.
关键词酒精     胰岛素受体     胰岛素受体底物-1     胰岛素抵抗    
Effect of chronic ethanol intake on insulin receptor, insulin receptor subsrate-1 mRNA expression in rat adipose tissue
ZHAO Yao-wu, ZHAO Li-na, HAO Li-ping, et al     
Department of Nutrition and Food Hygiene, School of Public Health, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology Wuhan 430030, China
Abstract: Objective To investigate the influence of chronic ethanol intake on insulin receptor (IR), insulin receptor substrate 21(IRS 21) mRNA exp ression in adipose tissue of rats and explore the possible molecular mechanism of the effect of alcohol on insulin sensitivity. Methods Fourty male Wistar rats were randomly divided into four groups on the basis of body weight:control group (C), low (L), moderate (M) and high alcohol group (H).The rats were adm in istrated with ethanol by gastric in tubation and the dose of each group was 0(control), 0.8(L), 1.6(M) and 2.4(H) g/kg·bw daily, respectively.Nineteen weeks later, serum was collected for testing of fasting plasm a glucose and insulin and HOMA-IR index of each group was calcu lated.Total adipose tissue RNA was extracted.The expression levels of IR, IRS-1 mRNA in adip ose tissue were detected by RT-PCR. Results Compared with the control group, the glucose concentration significantly increased in H ethanol group (P < 0.05) and the insulin concentration significantly increased in Land Methanol groupd (P < 0.05).HOMA-IR significantly increased in ethanol groups (P < 0.05).IR, IRS-1 mRNA exp ression remarkably increased in ethanol groups (P < 0.05). Conclusion The study showed that chronic ethanol intake could induce insulin resistance.The increase of IR, IRS-1 mRNA expression in adiposetissue may be involved in the molecular mechanism of ethanol effects on insulin sensitivity.
Key words: ethanol     insulin receptor     insulin receptor substrate-1     insulin resistance    

研究表明,饮酒与2型糖尿病的发病存在一定的相关关系1-5,同时脂肪组织在机体胰岛素抵抗的重要地位备受关注6-8。为了探讨酒精与胰岛素抵抗的关系及其可能的分子机制,本实验观察了不同剂量酒精对大鼠胰岛素敏感性的影响以及对脂肪组织中胰岛素信号途径中关键分子胰岛素受体(insulin receptor, IR)、胰岛素受体底物-1(insulin receptor substrate-1, IRS-1)表达水平的影响。结果报告如下。

1 材料与方法 1.1 材料

(1)实验动物:清洁级雄性Wistar大鼠40只,体重140~160 g (湖北省医学实验动物中心,批号:医动字第19-084号)。(2)试剂与仪器:无水乙醇(武汉江夏中南精细工厂);血糖试剂盒(中生北控生物科技股份有限公司);碘〔125〕I胰岛素放射免疫试剂盒(北京科美东雅生物技术有限公司);Trizol试剂,逆转录酶(AMV-RT)、随机引物、RNA酶抑制剂、dNTPs、Taq DNA聚合酶及DNA marker (100-1 000 bp)(美国Promega公司);IR、IRS-1、β-actin引物由北京奥科生物技术公司合成;Elx-800酶标仪(美国Bio-Tek公司);PCR仪、TI1全自动凝胶成像及分析系统(美国Biometra公司);5 804 R低温高速离心机与核酸蛋白质分析仪(德国Eppendorf公司)。

1.2 方法 1.2.1 实验方法

动物适应性喂养1周后,按体重随机分为4组。每组10只。正常对照组:蒸馏水灌胃;低剂量酒精组:10%酒精灌胃;中剂量酒精组:20%酒精灌胃;高剂量酒精组:30%酒精灌胃;各组灌胃剂量均为10 ml/(kg·bw),每天各组灌胃酒精剂量分别为0,0.8,1.6,2.4 g/(kg·bw)。灌胃于每日上午进行。每5只/笼饲以粉状饲料,自由进水进食。环境温度18~22 ℃,湿度45%~50%,自然采光。每周称重,并根据体重的变化调整灌胃量;实验时间为19周。

1.2.2 空腹血糖、血胰岛素及HOMA-IR的计算

实验19周末,大鼠禁食8 h后断头处死,分离血清于-70 ℃冰箱保存。血糖、血胰岛素分别用葡萄糖酶氧化法、竞争性放射免疫分析法检测。HOMA-IR=FINS×FPG/22.5。FPG为空腹血糖、FINS为空腹胰岛素。由于HOMA-IR不呈正态分布,取其自然对数后进行统计分析。

1.2.3 RT-PCR检测骨骼肌IR、IRS-1mRNA的表达水平

大鼠处死后迅速分离相同位置的脂肪组织,置液氮冷冻后转移至-70 ℃冰箱保存。按Trizol试剂盒说明书方法提取组织总RNA,将mRNA逆转录为cDNA,逆转录产物进行β-actin、IR、IRS-1基因扩增。扩增产物经1.5%琼脂糖凝胶电泳后,用Biometra全自动凝胶成像分析系统对各组间mRNA表达进行处理和灰度比较。结果均经β-actin校正。各基因由基因库中查得相应的cDNA的序列,引物由北京奥科公司合成。(1)引物序列IR:5′-TTC ATT CAG GAA GAC CTT CGA-3′5′-AGG CCA GAG ATG ACA AGT GAC-3′扩增产物长度(222 bp);IRS-1:5′-AGA GTG GTG GAG TTG AGT TG-3′5’-GGT GTA ACA GAA GCA GAA GC-3′扩增产物长度(277 bp);β-actin:5′-CAT CAC TAT CGG CAA TGA GC-3′5′-GAC AGC ACT GTG TTG GCA TA-3′扩增产物长度(156 bp)(2)反应条件如下:94 ℃ 5 min;94 ℃ 1 min,54 ℃(IR,IRS-1,β-actin)45 s,72 ℃,50 s,30 cycles;72 ℃ 7 min。

1.3 统计分析

采用SPSS 12.0软件进行多组间的方差(ANOVA)分析。

2 结果 2.1 大鼠体重变化

实验期间雄性各组大鼠体重呈上升的增长趋势。与对照组相比,低、中剂量组体重增长速度稍快,高剂量组稍慢,但差异均无统计学意义。表明实验期间酒精摄入对大鼠体重无明显影响。

2.2 大鼠血糖、血胰岛素浓度及胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)的变化(表 1)
表 1 酒精对胰岛素浓度、胰岛素抵抗指数的影响(x±s)

表 1可见,与对照组相比,各剂量组血糖浓度随剂量增加而增加,高剂量组血糖升高差异有统计学意义(P < 0.05);低、中剂量组血胰岛素浓度升高(P < 0.05),高剂量组升高,但差异无统计学意义;各剂量组HOMA-IR值均显著高于对照组(P < 0.05)。

2.3 酒精对雄性大鼠脂肪组织IR、IRS-1mRNA表达的影响(图 1表 2)
注:Maker:100-1000 bp; C:对照组;L:低剂量酒精组;M:中剂量酒精组;H:高剂量酒精组。 图 1 慢性酒精摄入对脂肪组织IR IRS-1mRNA表达水平的影响

表 2 酒精对雄性大鼠脂肪组织IR、IRS-1 mRNA表达的影响(x±s, n=3)

表 2可见,各剂量组IR,IRS-1mRNA表达均较对照组升高,差异均有统计学意义,酒精剂量组IR IRS-1 mRNA表达呈先升高后降低的趋势,中剂量组IR IRS-1 mRNA表达升高最为显著。

3 讨论

分析结果可见,酒精作用大鼠19周,酒精剂量≥0.8 g/(kg·bw)时,大鼠胰岛素抵抗指数(HOMA-IR)明显升高,雄性大鼠胰岛素敏感性降低,大鼠发生胰岛素抵抗。本文结果与文献9, 10结果不一致,原因可能是酒精的剂量和作用时间不同所致。提示在进行酒精与胰岛素敏感性关系的研究中,酒精剂量和酒精作用时间是2个重要的参数。

胰岛素受体(insulin receptor, IR)与胰岛素受体底物-1(insulin receptor substrate-1, IRS-1)是胰岛素信号转导过程中关键分子。有文献证明,IR和IRS-1活性和表达的改变与胰岛素抵抗和2型糖尿病有关11。本文结果显示,各酒精剂量组均发生胰岛素抵抗,而各组脂肪组织IR IRS-1mRNA表达升高。可能是在酒精引起机体胰岛素抵抗初期机体的一种代偿反应,然而脂肪组织中这种代偿现象并不能拮抗酒精对大鼠胰岛素敏感性的损害。根据本次结果认为,慢性酒精摄入引起脂肪组织IR,IRS-1mRNA表达水平的改变可能是酒精引起机体胰岛素抵抗的分子机制之一。

参考文献
[1] 陈爱民, 徐耀初. 吸烟, 饮酒因素与糖尿病关系的病例对照研究[J]. 中国公共卫生, 1999, 15(11) : 973–974.
[2] Wei M, Gibbons LW, Mitchell TL, et al. Alcohol intake and incidence of type 2 diabetes in men[J]. Diabetes Care, 2000, 23 : 18–22. DOI:10.2337/diacare.23.1.18
[3] Vegt F, Dekker JM, Groeneveld WJ, et al. Moderate alcohol consumption is associsted with lower risk for incident diabetes and mortality:the Hoorn Study[J]. Diabetes Research and Clinical Practice, 2002, 57 : 53–60. DOI:10.1016/S0168-8227(02)00013-X
[4] Carlsson S, Hammar N, Grill V, et al. Alcohol consumption and the incidence of type 2 diabetes:a 20-year follow-up of the Finnish twin cohort study[J]. Diabetes Care, 2003, 26(10) : 2785–2790. DOI:10.2337/diacare.26.10.2785
[5] Nakanishi N, Suzuki K, Tatara K. Alcohol consumption and risk for development of impaired fasting glucose or type 2 diabetes in middle-aged Japanese men[J]. Diabetes Care, 2003, 26(1) : 48–54. DOI:10.2337/diacare.26.1.48
[6] Rosen ED, Spiegelman BM. Adipocytes as regulators of energy balance and glucose homeostasis[J]. Nature, 2006, 444(7121) : 847–853. DOI:10.1038/nature05483
[7] Smith U. Impaired ('diabetic') insulin signaling and action occur in fat cells long before glucose intolerance-is insulin resistance intiated in the adipose tissue?[J]. Int J Obes Relat Metab Disord, 2002, 26(7) : 897–904. DOI:10.1038/sj.ijo.0802028
[8] Urich E. Insulin resistance:the adipose tissue in the focus[J]. Orv Hetil, 2005, 146(43) : 2199–2207.
[9] Furuya DT, Binsack R, Machado UF. Low ethanol consumption increases insulin sensitivity in Wistar rats[J]. Braz J Med Bio Res, 2003, 36(1) : 125–130. DOI:10.1590/S0100-879X2003000100017
[10] 张旭照, 应晨江, 刘烈刚, 等. 酒精对大鼠胰岛素敏感性和骨骼肌胰岛素受体底物mRNA表达的影响[J]. 中华预防医学杂志, 2004, 38 : 335–338.
[11] Shirakami A, Toyonaga T, Tsuruzoe K, et al. Heterozygous knockout of the IRS-1 gene in mice enhances obesity-linked insulin resistance:a possible model for the development of type 2 diabetes[J]. Edocrinol, 2002, 174(2) : 309–319.