中国辐射卫生  2019, Vol. 28 Issue (5): 480-484  DOI: 10.13491/j.issn.1004-714x.2019.05.002

引用本文 

刘丽波, 朴春姬. 放射性性腺疾病诊断解析[J]. 中国辐射卫生, 2019, 28(5): 480-484. DOI: 10.13491/j.issn.1004-714x.2019.05.002.
LIU Libo, PIAO Chunji. Diagnostic analysis of radiational gonad disease[J]. Chinese Journal of Radiological Health, 2019, 28(5): 480-484. DOI: 10.13491/j.issn.1004-714x.2019.05.002.

通讯作者

朴春姬, E-mail:piaocj@jlu.edu.cn

文章历史

收稿日期:2019-06-19
放射性性腺疾病诊断解析
刘丽波 , 朴春姬     
吉林大学公共卫生学院, 国家卫生健康委员会放射生物学重点实验室, 吉林 长春 130021
摘要:电离辐射所致的性腺疾病称为放射性性腺疾病。包括放射性不孕症及放射性闭经。放射性性腺疾病主要发生于事故照射、职业照射和医疗照射。为了更深入的了解放射性性腺疾病并对其进行正确的诊断和治疗,本文将从放射性性腺疾病发病机理、临床表现、实验室检查、诊断、鉴别诊断、治疗与预后几个方面进行解析。
关键词放射性性腺疾病    发病机理    临床表现    诊断    
Diagnostic analysis of radiational gonad disease
LIU Libo , PIAO Chunji     
School of Public Health Jilin University, NHC Key Laboratory of Radiobiology, Changchun 130021 China
Abstract: The gonadal diseases caused by ionizing radiation are called radiational gonad disease which include radiation infertility and radiation amenorrhea. Radiation induced gonad disease mainly occure in accidental exposure, occupational exposure and medical exposure. In order to better understand radiation induced gonad disease and correct diagnosis and treatment in this paper, we analyzed the pathogenesis, clinical manifestations, laboratory examination, diagnosis, differential diagnosis, treatment and prognosis of radiation induced gonad disease.
Key words: Radiation Induced Gonad Disease    Pathogenesis    Clinical Manifestation    Diagnosis    

性腺是对电离辐射比较敏感的器官,无论是在大剂量事故照射、核恐怖袭击以及小剂量职业照射情况下均可诱发性腺的损伤,另外,医疗中恶性肿瘤的盆腔照射也可导致性腺的损伤,为了能够对放射性性腺疾病进行正确的诊断和处理,国家制定并颁布实施了职业性放射性性腺疾病诊断标准。为了进一步提高人们对放射性性腺疾病的认识水平,促进该病的早期诊断和及时治疗,避免并发症发生,减轻病人痛苦,本文将对放射性性腺疾病诊断进行解析。

1 发病机理 1.1 电离辐射对男性生殖细胞的损伤 1.1.1 电离辐射对精子数量和活动能力的影响

睾丸是对电离辐射敏感的器官之一[1],男性全身或睾丸局部受到一定剂量照射后,可导致精子数量减少、活动力降低及畸形增加[2-3]。精子由睾丸产生,经历了精原干细胞增殖分化、精母细胞减数分裂和精子形成3个阶段,在附睾中成熟,在该过程中受到一定剂量的电离辐射照射可导致不同程度的损伤。生精细胞对电离辐射非常敏感,以精原干细胞最为敏感,精母细胞次之,而精子细胞和成熟精子具有较高的耐受力[4]。电离辐射可通过多种途径诱发生精细胞的凋亡。一方面,电离辐射可以直接作用于睾丸,引起睾丸生精上皮微环境的改变,生精细胞退化变性、脱落、凋亡,使精子产生受到抑制,精子质量和活动能力下降;此外,电离辐射还可以直接或间接地作用于附属性腺如附睾等,使精子失去成熟的机会,从而进一步影响精子的受精能力,导致不孕的发生。另一方面,电离辐射可通过直接或间接作用产生自由基,而自由基通过过氧化作用损害精子细胞膜,并改变精子细胞膜的流动性,影响精子的活动能力[5]。再者,电离辐射通过破坏精子细胞核DNA中的氢键结构,引起局部单、双链断裂等,从而引起精子的凋亡。由于电离辐射的直接损伤作用以及诱导生精细胞的凋亡,导致精子数量的减少。

电离辐射可致生殖细胞损伤,引起人暂时不孕或永久不孕。造成这种后果,取决于照射剂量、剂量率、射线种类、照射方式、年龄等因素,其中照射剂量尤为重要。已证实,较低的照射剂量即可影响精子的生成。当受照剂量为0.15~0.35 Gy,精子中度减少,可引起暂时性不孕;剂量为1 Gy,精子严重减少;3~5 Gy的剂量照射下,由于精原干细胞存活下来的数目极少,而且生精上皮恢复得很慢,通常发生永久性的精子缺乏[6-9]。研究表明,电离辐射导致精子数量降低存在剂量阈值,照射剂量大于剂量阈值时,精子数量开始减少并随着剂量的增加而加重,直到完全没有精子产生,在一定剂量范围内,这种情况可以恢复,但是超过这个剂量范围则将导致永久性的不孕。

一般,男性受照射后初期仍保持生育力,因为受照射的精子和精子细胞(可能还包括精母细胞)仍继续发育,然后由于精原细胞的杀伤而出现暂时不孕期,其持续时间取决于辐射剂量。照射剂量愈大,不孕期出现愈早,持续时间愈长。剂量较大时,由于精母细胞被杀伤,不孕期开始较早;由于精原细胞的存活分数降低,生精上皮再生减慢,不孕期延长。只要有足够的精原细胞存活,生精上皮即可以再生,恢复其生育力,反之,生育力则不可恢复[10]

1.1.2 电离辐射对精子形态的影响

精子形态是预测受精潜力最好的指标[11]。在精子发生的后期即精子细胞阶段,精子形态开始有明显的变化并逐渐分化为具有正常形态的精子,此时的精子由于对电离辐射相对不敏感,所以受电离辐射的影响相对较小。Woon等[12]研究结果显示,黑线姬鼠接受超过0.5 Gy的高剂量率照射,精子异常形态率开始增加,以卷曲和短尾为主,而低剂量率照射时没有发现类似的变化。Kumar等[13]对电离辐射职业暴露人群的研究显示,长期低剂量的电离辐射可导致精子形态异常,以头部畸形和空泡增加为主。

1.1.3 电离辐射对染色体及DNA的影响

多项研究认为电离辐射对精子染色体有一定的影响。Kamiguchi等[14]分别用0.23、0.45、0.91和1.82 Gy X射线对正常人的精子进行体外照射,发现X射线导致的精子染色体畸变发生率与照射剂量呈正相关。傅宝华等[15]对两名60Co事故性全身受照者照后6、7年的精子染色体进行分析,并模拟该剂量对健康人的精子进行体外照射,发现两者的精子染色体畸变率均增高。随着分子生物学的发展,电离辐射对精子DNA损伤的研究逐渐增多[16-17]。认为电离辐射能够引起各种DNA损伤,包括DNA-DNA交联、DNA-蛋白质交联、碱基损伤和DNA单链断裂与双链断裂等,其中DNA双链断裂被认为是电离辐射引起细胞程序性死亡的最主要原因。

1.2 电离辐射对女性生殖细胞的损伤

卵巢是女性生殖系统的性腺,具有产生卵细胞和分泌雌激素、孕激素、促卵泡生成素等的双重功能[18]。研究表明,卵巢中的卵泡细胞、颗粒细胞对X射线尤为敏感[19],卵原细胞通过增殖和分化形成卵母细胞,卵母细胞经过减数分裂形成卵细胞,此期间若受到一定剂量电离辐射照射,卵巢中卵泡数目将减少,颗粒细胞同时也会发生凋亡,更促使卵泡闭锁,影响卵巢分泌功能,导致卵巢可逆或不可逆损伤,而影响孕育功能[20-21]。电离辐射所致人生殖功能障碍与剂量有关。较小剂量照射的卵泡(随同卵母细胞)未完全破坏,生殖力一时丧失后可以恢复;照射剂量较大时卵泡全部破坏,则可发生永久性不孕[22]。人接受一次照射1.7~6.4 Gy(最低剂量0.65 Gy)可引起暂时性不孕,3.2~10 Gy(最低剂量2.5 Gy)则引起永久性不孕,分次照射要达到相同效应需要更高的总剂量[10]。卵巢的放射敏感性取决于其成熟程度,永久性不育的剂量阈值随年龄增长而下降,年轻女性的卵巢对辐射有较大耐受性。这是由于出生后卵巢内无卵原干细胞,卵母细胞无法再补充,随时间推移而减少。因此,要破坏所有的卵母细胞,年轻女性所需的辐射剂量要大于年长者。经2.5~4.0 Gy照射后,50%以上的青春期和年轻女性卵巢功能障碍。受到4 Gy照射后,约1/3的年轻女性出现了永久性闭经和不孕,而40岁以上的妇女则全部出现了此类症状[10]

1.3 电离辐射对内分泌激素的影响

睾丸具有双重功能,即生精功能和内分泌功能,受下丘脑-垂体-睾丸轴的负反馈作用调节。垂体对睾丸的调节主要是通过黄体生成素(luteinizing hormone, LH)和滤泡刺激素(follicle stimulating hormone, FSH)实现的,而两者又同时受下丘脑促性腺激素释放激素(gonadotropin-releasing hormone, GnRH)调节。睾丸间质的Leydig细胞合成和分泌睾丸酮(testosterone),主要受LH的调节,而睾丸酮又对下丘脑和垂体GnRH和LH的合成和释放发生负反馈作用。睾丸生精上皮Sertoli细胞合成和分泌抑制素,抑制素主要受FSH调节。反过来,抑制素又对垂体FSH发生负反馈作用。电离辐射作用后,睾丸受损,抑制素的分泌减少。由于血中抑制素水平的降低,使其对腺垂体的负反馈作用减弱,导致FSH水平上升。睾丸放射损伤时,血中睾丸酮水平多不出现显著变化,这与Leydig细胞的放射抗性较高有关,所以LH水平的变化也多不如FSH变化明显。

卵巢也具有双重功能,即产生卵子和分泌性激素,但其内分泌调节比睾丸更为复杂。在下丘脑-腺垂体-卵巢轴系统的调控下,成熟女性生殖系统的活动形成明显的生殖周期,即月经周期。雌激素由卵泡的颗粒细胞、内膜细胞和黄体细胞合成,孕激素主要由黄体细胞合成,少量由颗粒细胞合成,抑制素主要由卵巢的颗粒细胞合成。在月经周期各阶段中,卵泡成熟、排卵和黄体化与激素变化协调,受下丘脑(GnGH)和腺垂体(LH和FSH)的调节。电离辐射作用后,卵巢颗粒细胞核固缩,卵泡变性,可引起卵巢衰竭、FSH和LH水平增高、雌激素和孕激素水平降低、闭经和第二性征不发育。

2 临床表现 2.1 放射性不孕症

夫妇同居1年以上未采取任何避孕措施性生活正常未怀孕[23-26]。受照射后晚期男性可出现睾丸萎缩、变软,性功能低下等,女性可出现卵巢、输卵管、子宫、阴道、乳房萎缩变小。辐射致女性不孕的同时可引起闭经,影响到第二性征,出现类似更年期综合征临床表现。

2.2 放射性闭经

分为暂时性闭经和永久性闭经(绝经),表现为月经停止。长期闭经可合并生殖器官萎缩及第二性征改变。

3 实验室检查 3.1 精液检查

急性照射后应及时常规检查精液作为患者精液的本底值,照射后1~2个月复查。慢性照射可根据诊断需要随时检查。每次检查间隔时间要大于1周,至少进行3次。收集精液前的2~7 d避免房事,将精液直接收集于清洁、干燥的玻璃瓶内,保持和体温一致,并在1 h内送检。精液检查结果显示,精子数量减少,精子活动度降低和正常形态精子数量减少。

3.2 卵巢功能检查

卵巢功能正常,有排卵者,基础体温呈双相性。正常生育年龄排卵期妇女的阴道脱落细胞主要为表层细胞,中层细胞极少,看不到底层细胞;宫颈粘液含水分多,清澈透明,涂片检查出现典型结晶物。性腺受到照射后基础体温测定为单相,阴道脱落细胞中底层细胞占20%以上,宫颈粘液少、粘稠,无结晶物形成,为卵巢功能减退的表现。

3.3 内分泌激素测定

① 垂体促卵泡激素(FSH),性腺受到照射后FSH随精子减少或卵巢功能降低而明显升高;②垂体促黄体激素(LH),性腺受到照射后LH变化规律同FSH,但较FSH对性腺激素反馈调控反应弱,敏感性差;③男性性腺受到照射后睾丸酮含量可能减少,女性性腺受到照射后可出现雌激素及孕激素水平降低。

4 诊断 4.1 放射性不孕症

性腺受到一定剂量电离辐射照射后所致的不孕称为放射性不孕,根据受照剂量大小可表现为暂时性不孕症和永久性不孕症。

应根据受照史、受照剂量、临床表现和实验室检查结果等进行综合分析,排除其他因素和疾病方可做出诊断。

4.1.1 受照史及受照剂量

机体受到一次急性或长期慢性外照射,性腺受照剂量达到或超过表 1中放射性不孕症阈剂量值。

表 1 放射性不孕症阈剂量值
4.1.2 临床表现

夫妇同居1年以上未怀孕。受照射后晚期男性可出现睾丸萎缩、变软,女性可出现卵巢、输卵管、子宫、阴道、乳房萎缩变小。辐射致女性不孕的同时可引起闭经,影响到第二性征,出现类似更年期综合征临床表现。

4.1.3 实验室检查

(1) 精液检查

具备下述三项中一项者可诊断为精液检查异常:①3次精液检查中有2次精子数 < 15×109/L;②3次精液检查中有2次活精子百分率 < 58%;③3次精液检查中有2次正常形态的精子百分率 < 4%。

(2) 卵巢功能检查

卵巢受到照射后基础体温测定为单相;阴道脱落细胞中底层细胞占20%以上,宫颈黏液少、黏稠、无结晶形成;B超监测卵巢功能显示卵巢无排卵。

(3) 内分泌激素测定

辐射致不孕的同时需要做垂体内分泌激素测定以判断其变化情况。包括垂体促卵泡激素、垂体促黄体激素、睾酮、雌激素和孕激素(有条件时测定抗苗勒氏管激素):①垂体促卵泡激素(follicle-stimulating hormone,FSH),性腺受到照射后基础FSH随精子减少或卵巢功能降低而升高;②垂体促黄体激素(lutenizing hormone,LH),性腺受到照射后LH变化规律同FSH,但较FSH对性腺激素反馈调控反应弱,敏感性差;③睾酮(testosterone,T),男性性腺受到照射后T含量可减少;④雌激素(estrogen,E)及孕激素(progesterone,P),女性性腺受到照射后可出现E及P水平降低;⑤抗苗勒氏管激素(anti-mullerian hormone,AMH),女性性腺受到照射后基础AMH水平降低。

4.2 放射性闭经

电离辐射所致卵巢功能损伤或合并子宫内膜破坏、萎缩、停经6个月或3个月经周期以上称为放射性闭经[23, 27]

除具备放射性闭经的临床表现外,其他同放射性不孕症的诊断。

5 鉴别诊断 5.1 放射性不孕症

男性放射性不孕症应与先天性睾丸发育不全、输精管阻塞、阳萎、早泄、精索静脉曲张、腮腺炎后引起的睾丸炎、前列腺炎、全身消耗性疾病及免疫性不孕症相鉴别。女性放射性不孕症应与输卵管阻塞、子宫畸形、卵巢肿瘤、子宫肿瘤、子宫内膜炎症、子宫颈炎症、子宫颈息肉、阴道病变及其他影响卵巢正常功能而导致不孕的疾病相鉴别。

5.2 放射性闭经

放射性闭经应与因精神因素、先天性卵巢或子宫发育不良、卵巢肿瘤、脑垂体肿瘤、慢性炎症及全身消耗性疾病等引起的闭经加以鉴别。

判断闭经是否伴有子宫内膜病变,可采用孕激素及雌孕激素试验,观察停药后是否有撤药性出血,若试验2次皆无出血,提示伴有子宫内膜受损;如有出血,提示子宫内膜无明显损伤。

6 治疗与预后 6.1 一般治疗 6.1.1 放射性不孕症

对暂时性不孕症患者应暂时脱离放射工作,积极治疗全身性放射损伤,加强营养,定期复查,各项检查正常后可逐渐恢复放射工作。对永久性不孕症患者,目前无特殊有效的治疗方法,应调离放射工作,进行中西医结合治疗,加强营养,定期随访复查。男性性腺受到照射后精子检查结果未恢复正常前避免生育。

6.1.2 放射性闭经

脱离或暂时脱离放射工作,进行中西医结合治疗,加强营养,提高机体抵抗力。

6.2 对症治疗 6.2.1 放射性不孕症

根据患者的临床症状,予以对症、支持治疗和心理疏导。

6.2.2 放射性闭经

根据患者的临床症状,予以对症和支持治疗,同时进行适当的心理治疗。

6.3 远后效应医学随访 6.3.1 放射性不孕症

包括进行常规项目复查、内分泌激素测定、精液检查、外周血淋巴细胞染色体畸变分析和遗传效应观察。

6.3.2 放射性闭经

参照放射性不孕症。

参考文献
[1]
Grignard E, Guéguen Y, Grison S, et al. Testicular steroidogenesis is not altered by 137 cesium Chernobyl fallout, following in utero or post-natal chronic exposure[J]. Comptes Rendus Biol, 2010, 333(5): 416-423. DOI:10.1016/j.crvi.2010.02.003
[2]
杨增明, 孙青原, 夏国良. 生殖生物学[M]. 北京: 科学出版社, 2005.
[3]
王玉珏, 岳敏, 林继红, 等. 不同剂量X射线辐射对睾丸生物学效应的影响[J]. 实用医学杂志, 2015, 31(1): 17-20. DOI:10.3969/j.issn.1006-5725.2015.01.006
[4]
Gliki G, Ebnet K, Aurrand-Lions M, et al. Spermatid differentiation requires the assembly of a cell polarity complex downstream of junctional adhesion molecule-C[J]. Nature, 2004, 431(7006): 320-324. DOI:10.1038/nature02877
[5]
Madani A H, Falahatkar S, Heidarzadeh A, et al. Sensitivity and specificity of serum FSH and testis size in predicting the existence of spermatogenesis in azoospermic infertile men[J]. Andrologia, 2012, 44(3): 205-209. DOI:10.1111/j.1439-0272.2010.01130.x
[6]
Colpi G M, Contalbi G F, Nerva F, et al. Testicular function following chemo-radiotherapy[J]. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol, 2004, 113(Suppl 1): S2-S6.
[7]
Howell S J. Spermatogenesis after cancer treatment:damage and recovery[J]. J Natl Cancer Inst Monogr, 2005(34): 12-17.
[8]
Gurkan H, Kucukdurmaz F, Akman T, et al. Screening for y chromosome microdeletion in a nonobstructive azoospermic male patient with allogeneic bone marrow transplantation from his sister[J]. Case Rep Med, 2010, 2010: 541061.
[9]
Tran S, Boissier R, Perrin J, et al. Review of the different treatments and management for prostate cancer and fertility[J]. Urology, 2015, 86(5): 936-941. DOI:10.1016/j.urology.2015.07.010
[10]
龚守良. 医学放射生物学[M]. 北京: 原子能出版社, 2015.
[11]
Verstegen J, Iguer-Ouada M, Onclin K. Computer assisted semen analyzers in andrology research and veterinary practice[J]. Theriogenology, 2002, 57(1): 149-179. DOI:10.1016/S0093-691X(01)00664-1
[12]
Woon J H, Shin S C, Kang Y M, et al. Sperm abnormalities in high- and low-dose-rate Gamma-irradiated Korean dark-striped field mice, Apodemus agrarius coreae[J]. Radiat Prot Dosimetry, 2011, 146(1-3): 280-282. DOI:10.1093/rpd/ncr170
[13]
Kumar D, Salian S R, Kalthur G, et al. Semen abnormalities, sperm DNA damage and global hypermethylation in health workers occupationally exposed to ionizing radiation[J]. PLoS One, 2013, 8(7): e69927. DOI:10.1371/journal.pone.0069927
[14]
Kamiguchi Y, Tateno H, Mikamo K. Types of structural chromosome aberrations and their incidences in human spermatozoa X-irradiated in vitro[J]. Mutat Res, 1990, 228(2): 133-140.
[15]
傅宝华, 刘金荣, 吕玉民, 等. 60Co全身照射诱发人精子染色体畸变的研究[J]. 中华放射医学与防护杂志, 1995, 15(1): 10-13.
[16]
Adiga S K, Upadhya D, Kalthur G, et al. Transgenerational changes in somatic and germ line genetic integrity of first-generation offspring derived from the DNA damaged sperm[J]. Fertil Steril, 2010, 93(8): 2486-2490. DOI:10.1016/j.fertnstert.2009.06.015
[17]
Barratt C L, Aitken R J, Björndahl L, et al. Sperm DNA:organization, protection and vulnerability:from basic science to clinical applications——a position report[J]. Hum Reprod, 2010, 25(4): 824-838. DOI:10.1093/humrep/dep465
[18]
高伟.X射线对子宫内膜及卵巢生殖功能影响的分子机制的研究[D].大连: 大连医科大学, 2015.
[19]
Jang H, Hong K, Choi Y. Melatonin and fertoprotective adjuvants:prevention against premature ovarian failure during chemotherapy[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18(6): E1221. DOI:10.3390/ijms18061221
[20]
Aktas C, Kanter M, Kocak Z. Antiapoptotic and proliferative activity of curcumin on ovarian follicles in mice exposed to whole body ionizing radiation[J]. Toxicol Ind Health, 2012, 28(9): 852-863. DOI:10.1177/0748233711425080
[21]
Teng P N, Bateman N W, Darcy K M, et al. Pharmacologic inhibition of ATR and ATM offers clinically important distinctions to enhancing platinum or radiation response in ovarian, endometrial, and cervical cancer cells[J]. Gynecol Oncol, 2015, 136(3): 554-561. DOI:10.1016/j.ygyno.2014.12.035
[22]
龚守良. 电离辐射生殖遗传效应[M]. 北京: 原子能出版社, 2009.
[23]
谢幸, 苟文丽. 妇产科学[M]. 第8版. 北京: 人民卫生出版社, 2013.
[24]
世界卫生组织著, 曹坚, 等. 不孕夫妇标准检查与诊断手册[M]. 北京: 科学出版社, 1995.
[25]
[26]
乐杰. 妇产科学[M]. 第7版. 北京: 人民卫生出版社, 2008.
[27]
中华医学会妇产科学分会内分泌学组. 闭经诊断治疗指南[J]. 中华妇产科杂志, 2011, 46(9): 712-716. DOI:10.3760/cma.j.issn.0529-567x.2011.09.018