2. 扬子江药业集团有限公司, 江苏 泰州 225300
2. Yangzijiang Pharmaceutical Group Co., LTD., Taizhou 225300, China
玻璃化转变是指无定形物质玻璃态与橡胶态(高弹态) 之间的转变, 对应的转变温度称为玻璃化转变温度(glass transition temperature, Tg)。Tg为玻璃化转变现象中的关键参数, 影响产品的加工及贮存性能[1]。当物质处于玻璃态时, 体系黏度大而自由体积小, 运动阻力大, 分子处于被冻结状态, 松弛时间几乎无穷大, 使玻璃态物质的分子扩散速率和化学反应速率极低, 具有很高的物理和化学稳定性; 而玻璃化转变后, 分子链段运动解冻、体系黏度迅速下降、扩散系数迅速上升, 从而导致各种反应速率加快, 体系稳定性下降[2]。
由于药物制剂原料及其辅料中常含有无定形成分, 如无定形糖类、脂类和蛋白质等[3], 因此当其达到一定的温度或含水量时, 具有玻璃化转变现象, 即无定形成分由玻璃态转变成橡胶态而具有黏性并结块的现象, 不利于制剂中间体及产品的生产及贮存[4]。研究发现, 利用玻璃化转变现象指导制剂的制备过程, 避免物料发生玻璃化转变, 可显著改善产品质量和贮存稳定性, 目前已在固体分散体(solid dispersion, SD)[5]、微囊[6]、脂质体[7]和微粒[8]等制剂中间品及其产品中广泛应用。因此, 玻璃化转变现象在药剂学中具有重要研究意义和应用前景。
目前, 研究者围绕Tg进行了广泛研究, 主要集中在解释理论、测量方法及其对制剂过程及产品稳定性的影响, 已有学者针对玻璃化转变的解释理论[9]、测定方法[10]、影响因素以及食品应用[11, 12]方面进行了总结与分析, 但未涉及玻璃化转变在药剂学中的应用。本课题组前期初步分析讨论了中药浸膏粉的玻璃化转变[3], 在此基础上, 本文对玻璃化转变现象在制剂过程中的应用, 及其对制剂中间体和制剂产品的影响进行详细分析和系统总结归纳。
1 玻璃化转变现象在制剂过程中的应用玻璃化转变在多个制剂操作单元均有广泛应用, 如干燥、制粒、压片、包衣、热熔挤出和低温粉碎工艺等(表 1)[13-31]。
目前, 常见的干燥工艺有鼓风干燥、减压干燥、喷雾干燥和流化床干燥等[32]。在干燥过程中常会出现各种问题, 如含糖量较高的中药提取液在喷雾干燥时易出现黏壁现象[33]、冷冻干燥过程的结构崩塌[34]、浓缩液在减压干燥时易表面结壳而出现“假干”现象、丸剂在干燥过程中出现裂纹[35]等现象。研究发现, 上述现象均与Tg有关。
干燥过程可分为3个阶段(预热、恒速干燥和降速干燥), 其中降速干燥阶段直接影响产品的质量。在喷雾干燥过程中, 若微粒表面温度远高于其Tg, 将会使颗粒表面软化变为黏流态, 在塔壁出现黏壁现象; 但表面温度仅高于Tg 20℃以下时仍呈玻璃态, 不会出现黏壁现象。因此, 研究者常通过添加辅料提高物料Tg值, 以避免喷雾干燥过程中黏壁现象的发生。如Shi等[13]发现, 与桑葚汁直接喷雾干燥相比, 在桑葚汁中加入麦芽糊精(maltodextrin, MD) (以干燥物计, 65/35, w/w) 可显著改善喷雾干燥产物的收率(0→43%), 这主要是由于桑葚汁含有大量低分子质量糖类, Tg值较低, 在干燥后呈橡胶态, 导致喷雾干燥过程中黏壁严重, 粉末收率为零; 而加入MD后, Tg值显著增加(13.03 ℃→67.88 ℃), 从而收率提高。Chang和Liu等[14, 15]关于Tg对干燥过程影响的研究也获得了相似结果, 均证实加辅料提高物料Tg后, 不仅减少了喷雾干燥过程中的黏连现象, 同时增加了收率, 且显著改善了粉末的物理化学性质, 如流动性、抗黏性和整体抗潮解能力等。
冻干产物一般呈多孔结构, 但若干燥温度高于样品的Tg, 药品黏度迅速降低, 物质流动性增强并在毛细作用下浓缩而团聚, 导致表面萎缩, 多孔结构被破坏, 不能支持自身重量而发生结构塌陷现象。因此, Tg常被作为干燥温度的参考标准。如Hancock等[36]认为药品的干燥温度必须低于Tg, Bosca等[37]也认为在冷冻干燥过程中药品的温度必须低于塌陷温度或冷冻溶液的Tg。但若样品Tg太低, 会导致干燥时间长且能源浪费等问题。有文献[38]报道, 样品Tg每升高1 ℃, 冷冻干燥时间将缩短13%。因此, 研究者通常加入一些高Tg辅料来提高样品整体Tg, 如海藻糖和蔗糖等。此外, 随着干燥时间增加, 含水量减少, 样品Tg逐渐升高, 因此可以适当提高温度以缩短干燥时间。如Furlan等[16]在牛血浆蛋白中添加菊粉(以干燥物计, 95/5, w/w) 以提高Tg (16.31 ℃→48.35 ℃), 从而允许加工过程中更高的冷冻温度, 降低生产成本。
丸剂干燥过程中易出现表面结壳或裂纹等现象, 严重影响制剂的药效发挥。Yue等[39]应用玻璃化转变现象发现, 在干燥过程中, 随着丸剂表面快速脱水, 物料内部水分来不及扩散到表面以补充失去的水分, 其表面Tg快速升高, 迅速由高弹态转变为玻璃态而结壳, 且在收缩时表面产生拉应力, 当拉应力超过丸剂本身的极限强度时表面将产生裂纹。此外, 减压干燥过程中, 药液处于负压状态下, 水分较易蒸发, 更易出现上述现象。研究表明, 及时调整干燥温度, 避免玻璃化转变, 可有效改善表面结壳和裂纹现象。如Hou等[17]采用60 ℃和80 ℃作为杞菊地黄丸的干燥变温点, 很好地防止了丸剂表面玻璃态的形成, 利于中药丸剂内部水分的充分扩散, 最大程度地保证丸剂的干燥品质, 未出现结壳或裂纹等现象。
1.2 制粒黏轮与颗粒得率低是干法制粒最常见的问题, 均与物料Tg有关。干法制粒时需要控制环境湿度, 导致室内温度较高, 而且干压过程中机械能会转化为热能使压轮表面温度升高, 且在压制条带物时的高压促进大分子链段运动, 显著降低物料的Tg, 使物料由玻璃态快速转变为橡胶态, 从而导致黏轮和颗粒得率低[3]。研究者和生产工作者常通过添加高Tg的辅料或调整工艺参数解决该难题。如Liu等[18]研究发现, 巨安神制剂干法制粒时易出现黏轮现象, 颗粒得率 < 30%, 而添加MD后物料的Tg由22.07℃提高到58.88 ℃, 高于滚轮温度(42 ℃), 显著减少黏轮现象的发生, 并增加颗粒得率(65.3%~71.1%)。连续双螺杆干法制粒能够通过调节工艺参数而不损害压缩性能, 且让加工条件低于制剂成分的Tg, 改善黏轮现象及提高颗粒得率, 为常规干法制粒技术(如辊压) 提供了潜在的替代方法[40]。
而对于流化床制粒, 研究者一般选择高于物料Tg值20 ℃~30 ℃作为制粒的操作温度, 以制备形貌较好的颗粒。这是由于流化床制粒是通过热空气将药液雾化, 在颗粒表面形成黏性区域, 制备颗粒。研究发现, 颗粒表面黏性与其非晶态组分的Tg有关, 当含水量增加或温度高于Tg时, 发生玻璃化转变, 橡胶态时颗粒表面黏性增加[41]。如Avilés-Avilés等[19]发现葡萄糖当量(glucose equivalent, DE) 12的MD在流化床制粒温度不变的条件下, 含水量增加使MD的Tg降低, 发生玻璃化转变从而促进制粒过程, 粒径与其增长率均随含水量增加而增加。
1.3 压片研究表明, 材料特性会影响片剂质量。片剂中所用的辅料大多是无定形聚合物, 在压制过程中自发地从周围环境中吸收水分, 导致其Tg降低。若压制过程中物料温度大于Tg, 则会引起粉末内部发生玻璃化转变, 使粒子形变和微烧结作用增强, 导致粒子间固体桥和抗张强度增加。如Patel等[42]研究发现压片过程中发生可逆的玻璃化转变(压片时转变为橡胶态, 压完后回到玻璃态), 可形成具有较高抗张强度的稳定片剂。
同时研究发现, 玻璃化转变会减慢片剂的溶出行为。如Mitchell等[20]发现MD在压片过程中, 粒子间及其与模壁间的摩擦使温度升高, 当超过物料的Tg 10 ℃时, 会发生玻璃化转变, 产生更强的形变和粒子间作用力及接触面积, 从而导致片剂孔隙率降低、拉伸强度增加和溶出变慢等。Steendam等[21]研究了玻璃化转变对聚右旋乳酸片剂的药物释放机制的影响, 发现在相对湿度为95%条件下, 片剂的Tg降低了11 ℃, 平均弛豫时间随着Tg-T的差值降低呈指数增长, 药物的释放度降低。因此, 研究者可通过选用高Tg的辅料, 以避免物料发生玻璃化转变, 获得机械稳定的片剂。
1.4 包衣研究发现, 在包衣过程中, 可根据Tg选择最佳包衣温度, 避免出现黏片、橘皮膜、架桥和裂膜等问题。薄膜是包衣材料在高于其Tg的温度下发生变形和黏性流动形成的, 最低成膜温度(minimum molding temperature, MFT) 通常比其Tg高5 ℃~10 ℃[43, 44], 因此, 为形成连续衣膜, 包衣温度应高于聚合物Tg。如Kondo等[22]使用乙基纤维素(ethyecellulose, EC) 纳米粒对茶碱颗粒进行干法包衣, 发现当包衣温度(80 ℃) 高于EC的Tg (73.7 ℃) 时, EC转变为橡胶态, 包衣量显著增加, 从而包衣层变厚, 茶碱颗粒得到有效包覆。同时, 包衣材料颗粒聚结, 包衣层致密化和孔隙率降低, 防止了固化期间包衣膜出现裂纹现象。
但包衣温度过高, 也会对包衣过程产生不利影响。如薄膜包衣时包衣温度过高, 雾滴尚未到达片芯表面就被干燥成粉状, 造成部分包衣材料损失, 且由于过早干燥, 阻碍了胶粒变形所需的毛细管压的产生, 使胶粒间的结合力变弱, 从而使胶粒在片芯表面伸展程度降低, 薄膜衣层表面粗糙, 严重时出现皱皮和衣膜开裂等现象[45]。干法包衣时, 温度过高则会使包衣颗粒发生玻璃化转变, 附着力和变形性提高, 在颗粒上形成不均匀的涂层, 甚至出现黏片。然而, 在实际操作过程中, 控制工艺温度条件的成本相对较高, 因此研究者通常在包衣处方中加入增塑剂, 如硬脂酸、聚乙二醇(polyethylene glycol, PEG) 6000/8000等。增塑剂分子嵌入到成膜剂聚合物的分子链间, 在很大程度上阻断了聚合物分子间的相互作用, 并与成膜剂中的特殊分子形成氢键, 使膜弹性和柔韧性增强, 降低Tg和MFT, 从而解决包衣过程中的问题[46]。
Yasunaga等[23]考察了包衣温度(80 ℃) 恒定时, 不同Tg值(30 ℃~80 ℃) 的包衣材料对氯芬酸钠颗粒包衣性能的影响, 发现包衣材料的Tg值越高, 黏性低, 不易在氯芬酸钠颗粒表面形成包衣层。反之, 包衣材料的Tg值越低, 包衣越均匀, 但当Tg低于一定范围时, 包衣材料易相互作用形成团聚体, 反而包衣越不均匀, 导致包衣效果下降, 综合考虑Tg为60 ℃时成膜效果最好, 证实包衣材料的Tg是影响包衣过程的关键因素。Qiao等[24]使用增塑剂(柠檬酸三乙酯)降低丙烯酸树脂的Tg, 使其在布洛芬片上包衣均匀。但需控制增塑剂加入量, 当包衣材料Tg降低到室温以下时, 可能会出现黏片和老化现象。Liu等[25]在阿莫西林缓释微丸包衣过程中, 选用肠溶丙烯酸树脂II包衣材料, 并加入一定量的PEG6000作为增塑剂调节Tg, 可有效改善包衣层的成膜性能与薄膜的拉伸强度。同样, Fulzele等[26]将癸二酸二丁酯作为增塑剂, 降低了材料的Tg和弹性模量, 发现材料即使在干燥状态下弯曲也不会断裂。此外, 包衣过程完成后, 包衣产物需立即放置于高于聚合物Tg的环境下, 进一步促进薄膜的聚结, 并确保增塑剂的均匀分散[47]。
1.5 热熔挤出与传统的固体分散技术相比, 热熔挤出(hot melt extrusion, HME) 具有可连续化操作、无需有机溶剂和稳定性更高等优点[48]。HME技术制备SD过程中, 虽然高黏度的聚合物会影响SD的相容性, 但熔体的高黏度及在挤出过程中保持较高的Tg, 在热力学上能有效防止SD的重结晶[49]。因此, 需关注物料的加工性能和热稳定性(如Tg), 从而解决SD稳定性不高等难题。
当载体的Tg较低时, SD的稳定性差; 而Tg过高时, 则需在较高的挤出温度下操作, 易引起药物降解。因此, 研究者采用Tg初步筛选载体。如Zhu等[27]利用Tg对聚维酮KollidonVA64、丙烯酸树脂L100、羟丙甲纤维素、PEG6000和聚乙烯己内酰胺-聚乙酸乙烯酯-PEG接枝共聚物Soluplus (其Tg分别为101 ℃、130 ℃、170 ℃、-60 ℃和70℃) 进行泊沙康唑SD的载体初筛, 其中PEG6000的Tg较低, 不利于SD的稳定。
一般情况下, 挤出温度越高, 药物熔融越完全, 且黏度随温度的增加而降低, 流动性得到改善, 在载体中的分散程度越好, 但药物受热降解的可能性亦随之增加。目前, 研究者多通过添加增塑剂降低体系Tg解决这一难题。Desai等[28]通过添加增塑剂(PEG8000) 以降低吲哚美辛的Tg和加工温度, 从而减少热熔挤出对药物稳定性的影响。Zhu等[27]在制备泊沙康唑SD时, 从热稳定性和能源消耗角度出发, 加入增塑剂(10%柠檬酸三乙酯) 以降低挤出温度(170 ℃→150 ℃), 观察到熔融物黏度降低、操作性高, 且挤出物的溶出度略微提高。虽然热机械效应会对样品的弹塑性造成不利影响, 但影响较弱, 且可通过一定的方法弥补。如Partheniadis等[29]发现热熔挤出粉末(聚乙烯醇基和聚甲基丙烯酸甲酯) 的Tg及其制备的片剂的抗张强度较低, 且压缩过程中弹性复原率和屈服压力较高; 于是通过“热”压缩改善样品的压缩性, 当压缩温度接近Tg时, 可减少在压缩过程中的能量储存, 显著降低屈服压力, 得到以塑性形变为主的片剂。
1.6 低温粉碎药用高分子材料、含有大量糖类成分的中药浸膏及含挥发油的中药等低Tg制剂原料, 在常温条件下粉碎困难, 且易造成有效成分的损失。研究者通常采用低温粉碎法, 将其冷却至Tg以下, 其强韧性转变为高脆性, 易于粉碎, 且粉碎产物的粒度较细、形貌更接近球形, 其理化性质也不易被破坏, 同时能耗低、污染少。Yu等[30]研究发现, 与普通超微粉碎技术相比, 低温超微粉碎制备的黑蒜粉出粉率(32.5%→95.5%)、流动性(休止角: 56°→49°) 和溶解性(96.7%→98.4%) 更优, 且其1, 1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH) 自由基清除能力(66.1%→76.8%) 和超氧阴离子自由基清除能力(42.1%→45.6%) 均得到显著提高, 体外抗氧化能力更高; 此外, 其颜色呈浅棕色, 更易被服用者接受。Wu等[31]对心宝丸中蟾酥的粉碎工艺进行相关研究, 也获得了相似结果。
2 玻璃化转变现象在制剂中间体和产品中的应用玻璃化转变能指导多种制剂中间体和产品的合成, 如制备SD、微囊、脂质体和微球等(表 2)[50-71]。
将难溶性药物制成SD, 可在一定程度上抑制药物结晶, 解决其生物利用度难题。但由于无定形药物处于热力学高能态, 体系不稳定, 易在生产和贮存过程中出现重结晶和相分离等现象, 从而影响药物疗效[72]。研究发现, Tg可作为SD制备过程及贮存过程的重要参数, 预测分子流动性、药物载体相容性以及分子作用力等, 为制定适合的工艺及贮存条件提供指导。
当环境温度高于Tg时, 无定形物质的分子链段自由运动能急剧增加, 导致SD处于不稳定状态; 而当环境温度在Tg以下时, 可减慢无定形药物分子迁移速率, 延缓药物分子重结晶。根据经验法则, 对大多数物质而言, T0值(分子迁移速率为零时的温度) 约在Tg值的50 K以下[73, 74], 因此, (Tg-50) K是SD的最佳贮存温度。但对于低Tg值的SD, 此规则操作困难, 且温度过低易引起SD脆性增加, 形成新表面而诱发重结晶[75]。因此, 研究者可通过筛选合适的载体材料, 提高SD的Tg值, 降低分子流动性, 从而提高热稳定性。Frank等[50]将6种具有不同Tg值的载体材料与奈丁美酮制备SD, 进行比较发现, 载体材料Tg值越高, 则SD的Tg值越高, 稳定性越好。
研究发现, 药物与载体相容性也会影响SD稳定性[76], 若药物和载体完全互容, 形成同质单相的稳定混合体系, 否则形成多相体系, 药物易聚集, 导致重结晶和相分离。Tg可用来表征SD中药物与载体的相容性, 若存在多个Tg, 表明药物与载体的相容性差; 若存在1个Tg, 则表明两者具有良好的相容性。如Li等[51]在制备洛匹那韦SD时发现, 洛匹那韦与载体材料丙烯酸树脂在不同比例下的物理混合物可检测出两个Tg值, 而洛匹那韦与EC在不同比例下的物理混合物只能检测出1个Tg值。结晶实验证明, 检测出两个Tg值的体系, 均在16 h内发生结晶现象, 说明洛匹那韦与丙烯酸树脂相容性较差。同样, Tho等[52]以比卡鲁胺和聚乙烯吡咯烷酮为载体制备SD时, 发现当药物-聚合物比例为1∶10、2∶10和3∶10 (w/w) 时, 所有的SD均具有单一的Tg, 表明药物和聚合物的相容性好。
当药物和载体处于理想混合状态时, SD的Tg预测值可通过Gordon-Taylor (GT) 公式计算[77] (
针对受光、热、氧、水分等影响极大或有异味、易挥发、风化的药物, 一般将其作为包埋芯材, 制成微囊, 降低芯材(药物) 对光、热、氧及水分的影响, 增强其稳定性, 并掩盖不良气味等。玻璃化转变现象在微囊的制备过程、包埋率的预测和药物释放等方面均有广泛应用[54-56], 具有重要的指导意义。
2.2.1 微囊的制备当微囊壁处于玻璃态时, 自由体积极小, 大约仅占总容积的2%~13%, 体系黏度高达1012~1014 Pa·s, 分子流动阻力较大, 体系中分子扩散速率较小, 分子间相互接触及反应速率亦很慢, 在一定程度上阻止了氧化、褐变和气味散失等现象, 从而起到对芯材的有效保护。但是, 当温度大于Tg时, 分子链段运动解冻、体系黏度迅速下降和扩散系数迅速上升, 从而导致各种反应速率加快, 不利于对芯材的保护[79]。因此, 微囊壁材包埋芯材后, 需及时将体系温度降至Tg以下, 使微囊壁处于玻璃态, 从而减少加工过程中环境的影响与破坏。如Zhang等[54]以阿拉伯胶或MD为复合壁材, 将在40 ℃条件下不稳定的葡萄籽提取物制成微囊, 得到了Tg为141.4 ℃的葡萄籽微囊, 稳定性显著提高。Gao等[55]采用喷雾干燥法制备山楂果微囊, 发现玻璃态的微囊在光、热和氧条件下贮存5周后的稳定性显著高于提取物粉末, 且保存率达90%以上。
2.2.2 包埋率微囊的包埋率受乳状液含水量和干燥温度等因素影响, 均与Tg有关。乳状液是壁材、芯材和水的混合物, 其Tg介于各组分Tg之间。当乳状液含水量过低时, 体系Tg增加, 乳状液黏度增大、自由体积和分子流动性降低, 其包埋率偏低; 含水量过高时, Tg随之减小, 稳定性与包埋率下降。Xie等[48]研究了复合壁材浓度(0.5%→1.0%→1.5%→2.0%→2.5%) 对微囊的包埋率的影响, 发现其呈先增加后下降的变化趋势(67%→75%→83%→81%→72%)。Zhang等[56]研究亦发现藻油微囊的包埋率随含水量(50%→60%→70%→80%→90%) 增加呈先增加后下降趋势(66%→74%→93%→87%→75%)。因此, 在制备微囊时需合理控制其含水量。
此外, 研究表明包埋率会随温度的升高呈先升高后降低的变化趋势。在一定温度范围内, 较高的进风温度会加快干燥速率, 缩短恒速干燥阶段, 促进玻璃体形成, 提升包埋率; 但过高的进风温度会对芯材造成不利影响。因此, 需将进风温度控制在适当范围内。如Zhang等[57]研究了进风温度(160 ℃、170 ℃、180 ℃、190 ℃和200 ℃) 对鱼油微囊包埋率的影响, 发现包埋率随进风温度升高逐渐增加而后逐渐减小(56%→79%→80%→85%→76%)。而Nomura等[58]将包埋温度提高到Tg以上, 聚乳酸-羟基乙酸共聚物(polylactic acid-glycolic acid copolymer, PLGA) 微囊达到最佳包埋率, 且微囊表面光滑。
2.2.3 释药与晶型药物相比, Tg是无定形药物的特有性质, 因此可通过判断药物是否存在玻璃化转变, 从而预测药物释放。如Luan等[59]研究利培酮微球中结晶型药物对药物释放的影响。结果表明, 相比于结晶型药物, 无定形药物易溶解, 从而释放较快(42 d以上→37 d), 时滞期较短(21 d→8~18 d)。同时, 制备温度也会影响药物释放, 如Vay等[60]分析了制备温度对PLGA微球特性的影响, 在10 ℃下制备的颗粒显示出开孔结构, 有利于药物释放; 而当温度高于Tg时, 则会导致形成致密基质和光滑表面, 阻碍药物释放。
2.3 脂质体近年来, 玻璃化转变现象在脂质体的研究中也发挥着越来越重要的作用, 如脂质体制备过程中条件的选择[61]、热稳定性的表征[62]及贮存[79]等。
首先, Tg可作为脂质体制备材料的选择依据。在制备脂质体时, 共聚物疏水性嵌段的刚性或柔韧性改变会影响脂质双层膜的性质。而刚性和柔韧性均与Tg有关, 刚性越大, 柔韧性越小, Tg越高。Flandez等[61]研究了两亲性二嵌段共聚物聚乳酸(polylactic acid, PLA) 和聚己内酯(polycaprolactone, PCL) 的比例对L-α-二棕榈酰磷脂酰胆碱脂质体双层脂质体理化性质的影响, 发现随PLA (Tg 45℃)/PCL (Tg -60 ℃) 升高, 疏水嵌段的刚性增强, 双分子层内极性降低, 酰基链的有序度增加, 最终脂质体的水和钙黄体释放量减少、包封程度增加。
其次, Tg值可以判断脂质体热稳定性的优劣, Tg值越大, 热稳定性越好。如Jeon等[62]研究发现, 相比未被涂覆的槲皮素脂质体, 被涂覆聚电解质(壳聚糖与透明质酸钠) 的多层脂质体热稳定性更高(Tg: 127.2 ℃→141.5 ℃)。Balanč等[63]将Tg作为白藜芦醇、空白脂质体及白藜芦醇脂质体热稳定性的判断依据, 发现其Tg值分别为271.8 ℃、174 ℃和241.5 ℃。结果表明, 白藜芦醇有良好的热稳定性, 但与脂质双分子层结合不稳定。Ghatnur等[64]运用Tg对沙棘叶提取物及其脂质体的热稳定性进行了相关研究, 获得了类似结果。
再次, Tg亦可作为脂质体冻干保护剂的选择依据。当样品Tg较低时, 脂质体冻干品常出现明显的囊泡融合现象, 导致有效成分渗漏, 研究者通常选用高Tg材料作为保护剂以避免此现象。如Sylvester等[65]将Tg作为普伐他汀冻干脂质体的关键质量属性, 并选择Tg较高的海藻糖作为首选冻干保护剂。此外, 降低冻结速率, 减少玻璃基质中的含水量, 可获得更高的Tg (85.91 ℃→132.18 ℃), 从而产生更好的保护效果, 得到的脂质体光滑紧密、无渗漏现象。
研究者使用低温保护剂[如二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide, DMSO)], 使脂质体在解冻后保存活性, 但需在液氮中长期保存, 成本高。目前通常使用DMSO与高Tg材料结合提高Tg, 如双糖(蔗糖、海藻糖) 和聚合物(聚蔗糖、羟乙基淀粉、聚乙烯吡咯烷酮) 等, 增强分子间相互作用、延长弛豫时间和降低分子迁移率, 防止重结晶, 使其在-80 ℃的冷冻柜中也能稳定贮存。如Yuan等[79]在DMSO配方中添加25%聚蔗糖70, 提高多能干细胞Tg (-118.2 ℃→-67.0 ℃), 从而降低储存过程中重结晶率, 在-80 ˚C下保存可长达1年。Sydykov等[80]发现添加了5% DMSO的羧荧光素脂质体Tg为-101 ℃时, 在-80 ℃条件下贮存1天后保留率仅为30%, 后期加入蔗糖将样品的Tg提高到-77 ℃, 第1天保留率提高到98%, 3个月后保留率仍达90%。
此外, 糖类的玻璃化转变对脂质体的制备过程及性质有显著影响。Chen等[66]认为糖类的玻璃化可以阻止脂质体膜在干燥过程中融化导致溶质泄漏。这是由于脂质体膜细胞内玻璃态的糖类可保护脂类和细胞膜, 防止发生相变或结晶; 同时, 糖类玻璃化后, 还可以防止糖键合在细胞膜的极性基团上, 从而降低了膜在干燥过程中融合的可能性。Sun等[67]也研究发现, 当温度低于糖类Tg时, 溶质从脂质体中泄漏非常慢; 当温度升至接近或高于Tg时, 泄漏率以指数形式增长。同时还发现溶质泄漏的活化能在温度低于Tg时更高, 初步分析是由于玻璃态糖类提高了脂质体融化的活化能, 从而防止溶质泄漏。
2.4 微粒研究者常通过提高微粒Tg以改善其热稳定性, 如①引入共聚单体(马来酸酐、丙烯腈、α-甲基苯乙烯、4-金刚烷基苯乙烯和甲基丙烯酸异冰片酯等); ②在分子链上引入极性、刚性或大体积的取代基团, 增加聚合物分子链相互作用力或内旋转阻力; ③对交联微球的尺寸和结构进行调控, 提高交联密度等。Yao等[81]将苯乙烯和二乙烯基苯自由基共聚, 并对其产物采用热交联方法进行高温热处理, 在热能作用下苯环上残留的-CH=CH2生成大分子自由基, 进一步聚合交联, 提高交联密度, 从而阻碍链段运动, 制备了耐热型聚苯乙烯(PS) 微球(Tg: 94.5 ℃→116 ℃)。
研究发现, 可通过Tg控制微粒表面形态。如Avilés-Avilés等[19]发现高Tg (低DE) MD的液滴表面表现出显著的弹性, 能够承受表面压缩, 形成具有空穴但表面光滑的颗粒; 而低Tg (高DE) MD液滴表面没有弹性, 由于表面压缩而发生变形, 引起折叠或起皱现象。此外, Zhang等[68]将Tg作为判断共聚反应的终点, 以外形不规则、表面粗糙的PS粉末为原料, 通过丙烯酸乙酯与微球中残存的苯乙烯共聚, 得到Tg可控的光滑PS微球。
此外, 聚合物微球的释放也与Tg有关。当温度在Tg以上时, 聚合物微球的分子迁移率和自由体积增加, 促进聚合物的降解与药物通过聚合物基质的扩散, 加快微球释药速度, 且随水分渗入微球Tg下降, 进一步促进药物释放。如Lappe等[69]考察了PLGA载药纳米粒在不同温度下的释放行为, 在高于Tg的温度下, 观察到纳米粒药物的突释, 而在较低温度下, 药物释放量较少(93%→40%)。同时, Rawat等[70]发现利培酮微球的释放度主要由Tg触发, 最初利培酮的Tg (50 ℃) 大于体温(37 ℃), 随着水分渗透, 含水量增加, Tg下降到体温以下, 聚合物柔韧性增加, 扩散系数随之增加3~4个数量级。Santoveña等[71]对人体生长激素-PLGA可降解植入式片剂的释放研究也获得类似结果。
3 玻璃化转变现象在制剂贮存中的应用在贮存过程中, 制剂原料、中间体与产品常会出现结晶、黏连、结块、坍塌、氧化及非酶褐变等现象, 严重影响其品质, 如感官性能下降, 货架寿命缩短等。研究发现, 上述现象均与Tg有关。玻璃态物质处于亚稳态, 当贮存温度(temperature, T) > Tg时可能发生结晶, 结晶速率随△T (△T= T- Tg) 的增大而升高; 而结晶导致物料吸湿性增强, 吸入的水分引起Tg降低, 再次促进结晶, 且结晶过程释放的水被邻近的粒子吸收形成液体桥, 引起结块。当贮存湿度和T较高时(即T > Tg), 体系黏度降至106~108 Pa·s内, 无定形物质发生结构塌陷和黏连现象, 随着在高湿、高温环境中接触时间的延长, 黏连和结块的程度逐渐加剧[82, 83]。
Liu等[84]发现, 当T高于Tg时, 鱼油微囊壁材的褐变反应和重结晶加剧, 壁材从玻璃态转变为高弹态, 进而出现结晶、结构塌陷、芯材加速扩散而损失等现象, 且温度差越大, 结晶和结块速度越快; 进一步研究证实, 使用壳聚糖和大豆分离蛋白制备Tg为71 ℃的鱼油微囊, 在4 ℃和37 ℃贮存条件下, 氧化程度比前者分别降低了24%和27%, 提高了稳定性。Wang等[85]对洋葱精油微囊进行了类似研究, 制备了Tg为46 ℃的微囊, 使其在常温下具有良好的贮存稳定性。Lu等[86]用扫描电子显微镜观察喷雾干燥微囊形态时, 发现环境相对湿度在43%~64%时, 微囊未发生深度变化; 从64%上升到75%后, 水分开始吸收, 壁材溶胀, 微囊间开始出现搭桥现象, 芯材损失严重; 在75%~92%时, 壁材开始溶解; 到97%时壁材已完全形成浆糊状、完全损失。Bley等[44]研究亦证实包衣片的吸湿率随着贮藏温度、湿度的增加而增加, 其本质原因为样品发生了玻璃化转变。
因此, 制剂原料、中间体及产品贮存时, 需保证有利的贮存条件(表 3)[4, 15, 79, 80, 83, 84, 87-90]。研究发现, 临界贮存条件对制剂的品质具有重要意义, 当贮存温度、含水量与湿度低于其对应临界值, 稳定性显著提高。如微囊在Tg以下存放, 以维持其玻璃态, 囊壁才能对芯材起到有效的保护, 从而延长货架期。同时, 基于水分活度(water activity, aw)、平衡吸湿量(equilibrium moisture content, EMC) 与Tg绘制aw-EMC-Tg状态图, 能有效预测其稳定性及最佳贮存条件, 假设制剂的Tg为25℃ (室温) 时, 预测出相应的临界相对湿度和临界含水量, 在此临界条件下, 各成分处于性质稳定的玻璃态, 各种变化反应均被抑制, 有利于制剂中间体及其制剂的储存。Rascón等[87]采用Tg与aw的相关性确定了胡萝卜素微囊贮存的临界条件, 即在35 ℃时, aw为0.241时, 系统处于玻璃态, 胡萝卜素降解最低; 在aw ≤ 0.627条件下贮存的微囊都能够保持其结构完整性而不会发生黏结和结块现象。Palma-Rodriguez等[88]使用改性淀粉作为基质制备抗坏血酸微囊时, 发现在25 ℃条件下, aw为0.328时淀粉基质的结构随贮存时间的变化最小, 表明在此条件下抗坏血酸微囊的贮存稳定性最好。Liu等[15]利用aw-EMC-Tg状态图预测五味子储存在39.2%以上的临界湿度(25 ℃时) 或更高的温度下会吸湿结块。He等[89]为提高贮存稳定性, 利用aw-EMC-Tg状态图预测了口炎清在25 ℃时的贮存条件: 水分含量≤3.42%, 且贮藏的环境相对湿度≤18.8%。Song等[90]在制剂贮存方面也获得了类似的结果。
综上所述, 药物制剂原料、中间体及其产品基本上都存在玻璃化转变现象, 且与环境的温度和水分的变化密切相关。因此, 玻璃化转变现象在药物制剂的研发与生产过程中具有重要的意义和应用前景, 如指导制剂工艺于处方的选择与优化、预测中间产物及产品的贮存条件、提升制剂产品质量等。
但目前还存在一些难点: ①玻璃化转变的内在机制尚不明晰, 现有理论主要从自由体积、动力学及热力学等角度解释, 且其应用有限; ② Tg的测定与结果受测试条件、仪器设备和计算方法等影响, 测定结果的准确性有待进一步提高; ③目前关于物质构成与其Tg的关联性规律研究主要集中在宏观层面, 如低分子糖类、水分和小分子酸等低Tg物质引起混合体系Tg的降低; MD、海藻糖等高Tg物质引起混合体系Tg的升高, 通过单一物质的Tg对多元混合物的Tg进行预测等。而对于物质结构如何影响Tg的内在机制的微观研究较少, 且现有研究主要集中在材料学领域, 即分析单一成分的化学结构对Tg的内在影响, 如链的长短、取代基的大小等, 而对于成分复杂的中药研究尚未开展。因此, 在未来的研究中, 研究者可进一步完善并阐明玻璃化转变的内在机制, 促进玻璃化转变理论的发展, 并对物质结构对Tg的内在影响及其关联性规律进行深层次的探究, 同时探索并建立统一的、准确性更高的Tg测定与计算方法, 为其在药剂学中的应用提供更坚实的理论基础, 并进一步拓展其在药物制剂方面的应用。
作者贡献: 曹秋芳负责全文的撰写及图表等的制作; 饶小勇和张尧参与文章相关资料的调研; 张爱玲和李敏参与文章的校正与修改; 李哲和罗晓健提供文章的撰写思路, 负责文章的审阅与修改。
利益冲突: 所有作者声明无利益冲突。
[1] |
Abiad MG, Carvajal MT, Campanella OH. A review on methods and theories to describe the glass transition phenomenon: applications in food and pharmaceutical products[J]. Food Eng Rev, 2009, 1: 105-132. DOI:10.1007/s12393-009-9009-1 |
[2] |
Sanditov DS, Ojovan MI, Darmaev MV. Glass transition criterion and plastic deformation of glass[J]. Physica B, 2020, 582: 411914. DOI:10.1016/j.physb.2019.411914 |
[3] |
Luo XJ, Liu H, Liang HB, et al. Glass transition of Chinese medicine extract powder and its application[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志), 2017, 42: 192-197. |
[4] |
Fongin S, Granados AEA, Harnkarnsujarit N, et al. Effects of maltodextrin and pulp on the water sorption, glass transition, and caking properties of freeze-dried mango powder[J]. J Food Eng, 2019, 247: 95-103. DOI:10.1016/j.jfoodeng.2018.11.027 |
[5] |
Blaabjerg LI, Bulduk B, Lindenberg E, et al. Influence of glass forming ability on the physical stability of supersaturated amorphous solid dispersions[J]. J Pharm Sci, 2019, 108: 2561-2569. DOI:10.1016/j.xphs.2019.02.028 |
[6] |
Bielas R, Surdeko D, Kaczmarek K, et al. The potential of magnetic heating for fabricating Pickering-emulsion-based capsules[J]. Colloids Surf B, 2020, 192: 111070. DOI:10.1016/j.colsurfb.2020.111070 |
[7] |
Rieth MD, Lozano A. Preparation of DPPC liposomes using probe-tip sonication: investigating intrinsic factors affecting temperature phase transitions[J]. Biochem Biophys Rep, 2020, 22: 100764. |
[8] |
Luo YJ, Yang L, Chen YC, et al. Study on redispersibility of drug nanocrystals particles during storage: novel understanding based on water adsorption and glass transition of amorphous matrix formers[J]. Int J Pharm, 2020, 575: 118945. DOI:10.1016/j.ijpharm.2019.118945 |
[9] |
Ren YK, Li YT, Li LB. A theoretical interpretation of free volume at glass transition[J]. Chin J Polym Sci, 2017, 35: 1415-1427. DOI:10.1007/s10118-017-1968-8 |
[10] |
Si DC, Li J, Wang HF, et al. Measurement technology of glass transition temperature of high polymer[J]. Meas Tech (计量技术), 2019, 7: 76-79. |
[11] |
Zhang W, Song RH, Liu F. Influence of plasticizer on glass transition temperature of PLA[J]. New Chem Mater (化工新型材料), 2019, 47: 203-206. |
[12] |
Zhao XW, Mao DB. Effects of glass transition on food stability[J]. Food Sci (食品科学), 2007, 28: 539-546. |
[13] |
Shi QL, Wang RY, Zhao Y, et al. Effect of whey protein isolate as complementary drying aid of maltodextrin on spray drying behavior of mulberry juice[J]. Trans Chin Soc Agr Mach (农业机械学报), 2017, 48: 337-343, 311. |
[14] |
Chang YX, Yang JJ, Pan YR, et al. Anti-hygroscopic effect of leucine on spray-dried herbal extract powders[J]. Powder Technol, 2014, 266: 388-395. DOI:10.1016/j.powtec.2014.06.058 |
[15] |
Liu H, Luo XJ, He Y, et al. Effect of different DE values of malto-dextrin on properties for Schisandrae Chinensis Fructus spray-dried powder[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志), 2016, 41: 3016-3021. |
[16] |
Furlan LTR, Lecot J, Padilla AP, et al. Effect of saccharides on glass transition temperatures of frozen and freeze dried bovine plasma protein[J]. J Food Eng, 2011, 106: 74-79. DOI:10.1016/j.jfoodeng.2011.04.010 |
[17] |
Hou XY, He FH, Sun XM, et al. On-line moisture determination and optimization of drying process of Qiju Dihuang pills by time-domain reflection method[J]. Chin Tradit Herbal Drugs (中草药), 2020, 51: 2767-2772. |
[18] |
Liu QL, Luo XJ, Liang HB, et al. Effect of glass transition temperature of traditional Chinese medicine extract powder and excipients blends on dry granulation of Ju'anshen preparation[J]. Chin J Exp Tradit Med Form (中国实验方剂学杂志), 2017, 23: 13-17. |
[19] |
Avilés-Avilés C, Dumoulin E, Turchiuli C. Fluidised bed agglomeration of particles with different glass transition temperatures[J]. Powder Technol, 2015, 270: 445-452. DOI:10.1016/j.powtec.2014.03.026 |
[20] |
Mitchell WR, Forny L, Althaus T, et al. Compaction of food powders: the influence of material properties and process parameters on product structure, strength, and dissolution[J]. Chem Eng Sci, 2017, 167: 29-41. DOI:10.1016/j.ces.2017.03.056 |
[21] |
Steendam R, van Steenbergen MJ, Hennink WE, et al. Effect of molecular weight and glass transition on relaxation and release behaviour of poly (DL-lactic acid) tablets[J]. J Control Release, 2001, 70: 71-82. DOI:10.1016/S0168-3659(00)00342-4 |
[22] |
Kondo K, Ando C, Niwa T. Mechanical particle coating using ethylcellulose nanoparticle agglomerates for preparing controlled release fine particles; effect of coating temperature on coating performance[J]. Int J Pharm, 2019, 554: 387-398. DOI:10.1016/j.ijpharm.2018.11.061 |
[23] |
Yasunaga T, Nakamura K, Andoh T, et al. Binder-free dry particulate coating process using a mild vibration field: effects of glass-transition temperature and powdering method of polymeric coating agents on coating performance[J]. Int J Pharm, 2019, 561: 206-218. DOI:10.1016/j.ijpharm.2019.02.031 |
[24] |
Qiao M, Luo Y, Zhang L, et al. Sustained release coating of tablets with Eudragit® RS/RL using a novel electrostatic dry powder coating process[J]. Int J Pharm, 2010, 399: 37-43. DOI:10.1016/j.ijpharm.2010.07.047 |
[25] |
Liu AP, You XQ. Preparation of amoxicillin sustained release capsules[J]. Strait Pharm J (海峡药学), 2018, 30: 8-10. |
[26] |
Fulzele SV, Satturwar PM, Dorle AK. Study of novel rosin-based biomaterials for pharmaceutical coating[J]. AAPS J, 2002, 3: 45-51. |
[27] |
Zhu L, Yang M, Zhang Q, et al. Preparation of posaconazole solid dispersion via hot-melt extrusion and preliminary evaluation in vitro[J]. J Chin Pharm Univ (中国药科大学学报), 2015, 46: 309-315. |
[28] |
Desai D, Sandhu H, Shah N, et al. Selection of solid-state plasticizers as processing aids for hot-melt extrusion[J]. J Pharm Sci, 2018, 107: 372-379. DOI:10.1016/j.xphs.2017.09.004 |
[29] |
Partheniadis I, Karantzalis AE, Shah RR, et al. Influence of compression at elevated temperature on the compactibility of thermo-mechanically processed polymers[J]. Chem Eng Res Des, 2020, 156: 64-75. DOI:10.1016/j.cherd.2020.01.035 |
[30] |
Yu KX, Li FR, Lu LY, et al. A comparative study on the properties of garlic superfine powder prepared by common superfine comminution technology and low temperature superfine comminution technology[J]. J Shandong Agri Eng College (山东农业工程学院学报), 2019, 36: 32-34. |
[31] |
Wu LQ, Cai RQ, Jiang XS, et al. Studies on cryogenic comminution of toad venom in Xinbao pills[J]. Pharm Today (今日药学), 2018, 28: 674-677. |
[32] |
Li HL, Liu H, Xiong LL, et al. Influences of andrographolide on the glass transition temperature of different polymer-based precipitation inhibitors[J]. Res Pract Chin Med (现代中药研究与实践), 2020, 34: 39-43. |
[33] |
Fan FY, Yang ZL, Li H, et al. A review of the effects of spray drying on the processing characteristics of fruit and vegetable powder[J]. Food Res Dev (食品研究与开发), 2020, 41: 169-176. |
[34] |
Zhou X, Li F, Wang B, et al. Stability of the new type of L. Bulgaricus microcapsule[J]. Acta Pharm Sin (药学学报), 2017, 52: 1165-1169. |
[35] |
Qi YR, Li YH, Han L, et al. Effect and regulation of drying on quality of traditional Chinese medicine pills[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志), 2017, 42: 2208-2213. |
[36] |
Hancock BC, Shamblin SL, Zografi G. Molecular mobility of amorphous pharmaceutical solids below their glass transition temperatures[J]. J Pharm Sci, 1995, 12: 799-806. |
[37] |
Bosca S, Barresi AA, Fissore D. Fast freeze-drying cycle design and optimization using a PAT based on the measurement of product temperature[J]. Eur J Pharm Biopharm, 2013, 85: 253-262. DOI:10.1016/j.ejpb.2013.04.008 |
[38] |
Pikal M. Use of laboratory data in freeze drying process design: heat and mass transfer coefficients and the computer simulation of freeze drying[J]. J Pharm Sci Technol, 1985, 39: 115-139. |
[39] |
Yue PF, Xu JN, Xie YB, et al. Arying mechanism of "like-glass transition" and quality control strategy on Chinese materia medica pills[J]. Chin Tradit Herbal Drugs (中草药), 2016, 47: 1825-1829. |
[40] |
Raman KV, Hemlata P, Roshan T, et al. Exploratory studies in heat-assisted continuous twin-screw dry granulation: a novel alternative technique to conventional dry granulation[J]. Int J Pharm, 2019, 555: 380-393. DOI:10.1016/j.ijpharm.2018.11.045 |
[41] |
Marreto RN, Cardoso G, Souza BDS, et al. Hot melt-extrusion improves the properties of cyclodextrin-based poly (pseudo) rotaxanes for transdermal formulation[J]. Int J Pharm, 2020, 586: 119510. DOI:10.1016/j.ijpharm.2020.119510 |
[42] |
Patel S, Kou X, Hou HH, et al. Mechanical properties and tableting behavior of amorphous solid dispersions[J]. J Pharm Sci, 2017, 106: 217-223. DOI:10.1016/j.xphs.2016.08.021 |
[43] |
Yu PP, Yang QX, Hou L, et al. An overview of dry powder coating technique and its recent application[J]. Chin J Pharm (中国医药工业杂志), 2019, 50: 471-477. |
[44] |
Bley O, Siepmann J, Bodmeier R. Importance of glassy-to-rubbery state transitions in moisture-protective polymer coatings[J]. Eur J Pharm Biopharm, 2009, 73: 146-153. DOI:10.1016/j.ejpb.2009.05.001 |
[45] |
Song YF, Schad B. Difficulties and solutions of film coating technique[J]. China J Pharm Economics (中国药物经济学), 2015, 1: 27-30. |
[46] |
Albertini B, Melegari C, Bertoni S, et al. A novel approach for dry powder coating of pellets with ethylcellulose. Part II: evaluation of caffeine release[J]. AAPS J, 2018, 19: 1426-1436. |
[47] |
Chvatal A, Wang Y. Non-adhesive dry coating technology using mild vibration field[J]. Chin J Pharm (中国医药工业杂志), 2019, 50: 498. |
[48] |
Xie HW, Fang YJ, Wu LZ, et al. Preparation and characterization of microencapsulation of tachyplesin[J]. Sci Technol Food Ind (食品工业科技), 2016, 37: 112-116. DOI:10.1590/1678-457x.09416 |
[49] |
Song H, Gao LF, Fu Q, et al. Improvement of in vitro dissolution and physical stability for spironolactone solid dispersion formulated with Soluplus[J]. Acta Pharm Sin (药学学报), 2019, 54: 14-21. |
[50] |
Frank DS, Matzger AJ. Probing the interplay between amorphous solid dispersion stability and polymer functionality[J]. Mol Pharm, 2018, 15: 2714-2720. DOI:10.1021/acs.molpharmaceut.8b00219 |
[51] |
Li N, Taylor LS. Tailoring supersaturation from amorphous solid dispersions[J]. J Control Release, 2018, 279: 114-125. DOI:10.1016/j.jconrel.2018.04.014 |
[52] |
Tho I, Liepold B, Rosenberg J, et al. Formation of nano/micro-dispersions with improved dissolution properties upon dispersion of ritonavir melt extrudate in aqueous media[J]. Eur J Pharm Sci, 2010, 40: 25-32. DOI:10.1016/j.ejps.2010.02.003 |
[53] |
Ueda H, Wu W, Löbmann K, et al. Application of a salt coformer in a co-amorphous drug system dramatically enhances the glass transition temperature: a case study of the ternary system carbamazepine, citric acid, and l-arginine[J]. Mol Pharm, 2018, 15: 2036-2044. DOI:10.1021/acs.molpharmaceut.8b00174 |
[54] |
Zhang L, Mou D, Du Y. Procyanidins: extraction and micro-encapsulation[J]. J Sci Food Agr, 2010, 87: 2192-2197. |
[55] |
Gao WW, Zhang ZS, Qian J, et al. Study on the microencapsulation of proanthocyanidins from hawthorn fruit[J]. Food Ferment Ind (食品与发酵工业), 2010, 36: 68-72. |
[56] |
Zhang M, Zhang L, Shi XM, et al. Study on the optimization of preparation for the micro algae oil DHA capsule by response surface methodology[J]. Cereal Food Ind (粮食与食品工业), 2015, 22: 14-18. |
[57] |
Zhang AM, Yang XB, Wang S, et al. Preparation technology optimization and stability of microcapsule of fish oil from Decapterus maruadsi[J]. Sci Technol Food Ind (食品工业科技), 2017, 38: 181-186. |
[58] |
Nomura T, Routh AF. Benign preparation of aqueous core poly lactic-co-glycolic acid (PLGA) microcapsules[J]. J Colloid Interface Sci, 2018, 513: 1-9. DOI:10.1016/j.jcis.2017.11.007 |
[59] |
Luan HS, Xu FL, Yang L, et al. Effect of crystalline drug content on drug release from risperidone microspheres[J]. Chin J Pharm (中国医药工业杂志), 2015, 46: 369-374. |
[60] |
Vay K, Frieß W, Scheler S. A detailed view of microparticle formation by in-process monitoring of the glass transition temperature[J]. Eur Food Pharm Biopharm, 2012, 81: 399-408. DOI:10.1016/j.ejpb.2012.02.019 |
[61] |
Flandez K, Bonardd S, Soto-Arriaza M. Physicochemical properties of L-alpha dipalmitoyl phosphatidylcholine large unilamellar vesicles: effect of hydrophobic block (PLA/PCL) of amphipathic diblock copolymers[J]. Chem Phys Lipids, 2020, 230: 104927. DOI:10.1016/j.chemphyslip.2020.104927 |
[62] |
Jeon S, Yoo CY, Park SN. Improved stability and skin permeability of sodium hyaluronate-chitosan multilayered liposomes by layer-by-layer electrostatic deposition for quercetin delivery[J]. Colloids Surf B, 2015, 129: 7-14. DOI:10.1016/j.colsurfb.2015.03.018 |
[63] |
Balanč B, Trifković K, Đorđević V, et al. Novel resveratrol delivery systems based on alginate-sucrose and alginate-chitosan microbeads containing liposomes[J]. Food Hydrocolioid, 2016, 61: 832-842. DOI:10.1016/j.foodhyd.2016.07.005 |
[64] |
Ghatnur SM, Sonale RS, Balaraman M, et al. Engineering liposomes of leaf extract of seabuckthorn (SBT) by supercritical carbon dioxide (SCCO2)-mediated process[J]. J Liposome Res, 2012, 22: 215-223. DOI:10.3109/08982104.2012.658576 |
[65] |
Sylvester B, Porfire A, Achim M, et al. A step forward towards the development of stable freeze-dried liposomes: a quality by design approach (QbD)[J]. Drug Dev Ind Pharm, 2017, 44: 385-397. |
[66] |
Chen T, Bhowmick S, Sputtek A, et al. The glass transition temperature of mixtures of trehalose and hydroxyethyl starch[J]. Cryobiology, 2002, 44: 301-306. DOI:10.1016/S0011-2240(02)00025-1 |
[67] |
Sun WQ, Leopold AC, Crowe LM, et al. Stability of dry liposomes in sugar glasses[J]. Biophys J, 1996, 70: 1769-1776. DOI:10.1016/S0006-3495(96)79740-0 |
[68] |
Zhang YP, Zhang XH. The preparation of polystyrene microspheres with controllable surface glass transition temperature for selective laser sintering[J]. Synth Mater Aging Appl (合成材料老化与应用), 2015, 44: 67-70. |
[69] |
Lappe S, Mulac D, Langer K. Polymeric nanoparticles-influence of the glass transition temperature on drug release[J]. Int J Pharm, 2017, 517: 338-347. DOI:10.1016/j.ijpharm.2016.12.025 |
[70] |
Rawat A, Bhardwaj U, Burgess DJ. Comparison of in vitro-in vivo release of Risperdal Consta microspheres[J]. Int J Pharm, 2012, 434: 115-121. DOI:10.1016/j.ijpharm.2012.05.006 |
[71] |
Santoveña A, Alvarez-Lorenzo C, Llabrés M, et al. hGH release from directly compressed hGH-PLGA biodegradable implantable tablets: influence of physicomechanical factors[J]. Eur Polym J, 2009, 45: 2830-2838. DOI:10.1016/j.eurpolymj.2009.07.007 |
[72] |
Lavan M, Knipp G. Correction to: effects of dendrimer-like biopolymers on physical stability of amorphous solid dispersions and drug permeability across Caco-2 cell monolayers[J]. AAPS PharmSciTech, 2018, 19: 3908. DOI:10.1208/s12249-018-1109-x |
[73] |
Chavan RB, Lodagekar A, Yadav B, et al. Amorphous solid dispersion of nisoldipine by solvent evaporation technique: preparation, characterization, in vitro, in vivo evaluation, and scale up feasibility study[J]. Drug Deliv Transl Res, 2020, 10: 903-918. DOI:10.1007/s13346-020-00775-8 |
[74] |
Fu TT, Zuo WB, Guo YL, et al. Research advances in dissolution mechanism and physical stability of solid dispersions[J]. Chin J New Drugs (中国新药杂志), 2020, 29: 275-280. |
[75] |
Zhang JJ, Wang W, Li C, et al. Development of new preparation technology of orally disintegrating tablets[J]. China J Chin Mater Med (中国新药杂志), 2020, 29: 738-743. |
[76] |
Liang Q, Wang YR, Deng YY. Effect of HPMCAS/curcumin amorphous solid dispersion in enhancing dissolution and chemical stability of curcumin[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志), 2019, 44: 3305-3311. |
[77] |
Yao J, Shi YQ, Wang XL. The development of co-amorphous drug systems[J]. Acta Pharm Sin (药学学报), 2013, 48: 648-654. |
[78] |
Chatterjee S, Judeh ZMA. Impact of encapsulation on the physicochemical properties and gastrointestinal stability of fish oil[J]. LWT Food Sci Technol, 2016, 65: 206-213. DOI:10.1016/j.lwt.2015.08.010 |
[79] |
Yuan Y, Yang Y, Tian Y, et al. Efficient long-term cryopreservation of pluripotent stem cells at -80 ℃[J]. Surf Sci Rep, 2016, 6: 34476. DOI:10.1038/srep34476 |
[80] |
Sydykov B, Oldenhof H, Sieme H, et al. Storage stability of liposomes stored at elevated subzero temperatures in DMSO/sucrose mixtures[J]. PLoS One, 2018, 13: e0199867. DOI:10.1371/journal.pone.0199867 |
[81] |
Yao M, Ning TM, Jiang ZG. Preparation of heat-resisting polystyrene microspheres[J]. Polym Mater Sci Eng (高分子材料科学与工程), 2017, 33: 121-124. |
[82] |
Bhandari BR, Howes T. Implication of glass transition to drying and stability of dried foods[J]. J Food Eng, 1999, 40: 71-79. DOI:10.1016/S0260-8774(99)00039-4 |
[83] |
Zhang QX. Study on Preparation of Nimodipine Solid Dispersion and Its Tablets by Hot Melt Extrusion Technology (利用热熔挤出技术制备尼莫地平固体分散体及其片剂的研究)[D]. Liaocheng: Liaocheng University, 2019.
|
[84] |
Liu XL, Wei CQ, Zhan XB, et al. Ultrasonic-assisted preparation, stability, and reducting blood lipid of fish oil microcapsue from grass carp[J]. Food Mach (食品与机械), 2019, 35: 163-168. |
[85] |
Wang YY, Duan X, Ren GY, et al. Optimization of preparation technology and quality of onion essential oil microcapsules[J]. Food Sci (食品科学), 2018, 39: 232-238. |
[86] |
Lu RR, Zhang GR. The glass transition in spray drying microencapsulation[J]. China Dairy Ind (中国乳品工业), 2001, 29: 24-27. |
[87] |
Rascón MP, Bonilla E, García HS, et al. Tg and aw as criteria for the oxidative stability of spray-dried encapsulated paprika oleoresin[J]. Eur Food Res Technol, 2015, 241: 217-225. DOI:10.1007/s00217-015-2446-6 |
[88] |
Palma-Rodriguez HM, Agama-Acevedo E, Gonzalez-Soto RA, et al. Ascorbic acid microencapsulation by spray-drying in native and acid-modified starches from different botanical sources[J]. Starch, 2013, 65: 584-592. DOI:10.1002/star.201200200 |
[89] |
He Y, Xie Y, Zheng LJ, et al. Effect of air humidity on traditional Chinese medicine extract of spray drying process and prediction of its powder stability[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志), 2015, 40: 424-429. |
[90] |
Song HH, Chen QQ, Bi JF, et al. Study on storage stability of Lyciumbarbarum powder based on vitrification transformation and flow characteristics[J]. J Chin Inst Food Sci Technol (中国食品学报), 2020, 20: 209-218. |