药学学报  2021, Vol. 56 Issue (2): 432-444     DOI: 10.16438/j.0513-4870.2020-1248   PDF    
先导化合物结构优化策略(八)——药物转运体及其相关药物设计策略
宋晓翰1,2, 王江1,2, 柳红1,2     
1. 中国科学院上海药物研究所新药研究国家重点实验室, 上海 201203;
2. 中国科学院大学, 北京 100049
摘要: 转运体会对药物在人体中的转移和分布产生极大的影响。一方面可溶性载体转运体可以将药物转运进入组织器官, 从而提升药物生物利用度以及改变药物的组织分布; 另一方面, 细胞上的ATP结合盒转运体会将某些药物排出细胞, 从而降低细胞内药物浓度, 产生耐药性。本文总结了人体中几种重要的药物转运体的底物特征以及针对药物转运体进行药物设计的策略, 包括前药修饰提高生物利用度、引入酸性基团改善肝脏选择性、改善化合物极性降低外排比等。
关键词: 转运体    药物设计    先导化合物    
Lead compound optimization strategy(8)-drug transporters and related drug design strategies
SONG Xiao-han1,2, WANG Jiang1,2, LIU Hong1,2     
1. State Key Laboratory of Drug Research, Shanghai Institute of Materia Medica, Chinese Academy of Sciences, Shanghai 201203, China;
2. University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China
Abstract: Transporters have a great influence on the transportation and distribution of drugs in the body. On the one hand, solute carrier transporters could transport drugs into tissues and organs, which may improve the oral bioavailability or change the tissue-distribution of the drugs. On the other hand, the ATP-binding cassette could pump some drugs out of the cell, which decreases the intracellular drug concentrations and leads to drug resistance.This paper summarizes the distribution, substrate characteristics and drug design strategies of several important drug transporters, such as improving bioavailability by prodrug design, introducing acid group to improve hepatic selectivity and adjusting the polarity of compounds to decrease efflux ratio.
Key words: transporter    drug design    lead compound    

在药物研发过程中, 先导化合物的药代动力学性质优化是先导化合物成药性优化的重要部分。药物的药代动力学性质一方面受药物自身理化性质的影响, 另一方面, 人体中的代谢酶以及转运体也极大地影响了药物的药代动力学特性, 代谢酶可将药物代谢生成水溶性更强的代谢产物, 从而加速药物排出体外, 而膜转运体则通过对部分药物的选择性转运影响药物的体内分布。通常情况下, 脂溶性较强的药物以被动扩散的方式在体内进行跨膜转运, 因此该类药物在各器官组织分布较为均一; 但是亲水性的药物一般透膜性较差, 部分药物需要膜上的转运体参与进行跨膜转运, 由此导致药物的吸收转运受到转运体的类型和组织分布的影响, 进而引起药物在各个器官和组织之间的浓度水平产生较大差异, 同时也会导致血药浓度难以反映药物在靶器官或者靶细胞内的真实浓度水平。另一方面, 当两种药物竞争同一种转运体或者转运体活性被药物抑制时, 药物的药代动力学特性会发生极大改变, 导致药物-药物相互作用(drug-drug interaction, DDI)的发生。此外, 转运体还与肿瘤细胞耐药性的产生相关, 部分肿瘤细胞可以通过高表达外排转运体降低细胞内的药物浓度, 从而降低药物效能[1, 2]。因此, 了解各类转运体的性质与功能对于药物研发具有重要的指导意义。

人体中与药物相关的转运体可按照功能分为两大类(表 1): 一类是介导药物吸收进入细胞的可溶性载体(solute carrier, SLC)超家族, 其广泛分布于人体各个组织器官, 利用细胞膜两侧的离子浓度梯度作为动力进行底物的跨膜运输。大多数SLC转运体含有7~14个跨膜螺旋, 并且有一个胞内或胞外的柔性结构域, 它可以协助跨膜螺旋形成跨膜通道[3]。目前已发现和鉴定400多种SLC转运体, 分为65个亚家族, 其中与药物转运相关的SLC转运体主要包括: 寡肽转运体(peptide transporters, PEPTs)、有机阴离子转运体(organic anion transporters, OATs)、有机阴离子多肽转运体(organic anion transporting polypeptide, OATP)、有机阳离子转运体(organic cation transporters, OCTs)。另一类转运体是ATP结合盒转运体(ATP-binding cassette, ABC)超家族, ABC转运体可以通过水解ATP提供能量将药物转运出细胞。人类基因组中一共含有49个编码ABC转运体的基因, 按照进化差异分为A-G共7个亚家族。在结构上, ATP结合盒转运体一般由跨膜区(transmembrane domains, TMDs)和核苷酸结合区(nucleotide-binding domains, NBDs)组成, 其中TMDs由多个跨膜螺旋组成, 它们形成了跨膜通道并且可以识别结合底物, 而NBDs则可以水解ATP提供能量, 从而引起构象改变将药物分子排出细胞[4, 5]。参与药物转运的ABC转运体主要包括P糖蛋白(P-glycoprotein, P-gp)、乳腺癌耐药蛋白(breast cancer resistance protein, BCRP)、多药耐药相关蛋白(multidrug resistance protein, MRP)等。

表 1 Classification of drug transporters

小肠、肾脏、肝脏以及血脑屏障中含有多种转运体(图 1), 在药物的体内转运中发挥重要作用。小肠上的转运体主要负责吸收食物中的营养物质, 排出药物及其代谢物[6]; 而肾近曲小管上的转运体可以从尿液中重吸收营养物质, 并介导部分药物从尿液排出[7]; 肝细胞上的转运体负责将药物从血液中转运至肝脏, 促进药物分子的代谢和排出[8]。血脑屏障是由紧密连接的血管内皮细胞和神经胶质细胞构成的一道屏障, 作用于脑内靶标的药物一般需要具有较高的脂溶性以及较小的分子质量(小于400 Da)[9, 10], 从而可以通过被动扩散的方式透过血脑屏障入脑发挥药效。此外, 血脑屏障上含有多种转运体, 其中OATP转运体可以将部分阴离子型化合物转运进入大脑, 但其在血脑屏障中表达量较低, 转运的通量不高; 而表达P-gp、BCRP以及MRP则具有广泛的底物范围, 可以将多种药物泵出血脑屏障[11-13], 因此部分药物尽管具有较好的脂溶性却难以入脑, 目前可采用针对P-gp进行结构改造的策略促进药物透过血脑屏障[14, 15]。鉴于转运体对于药物的药代动力学特性具有重要影响, 研究人员需要考察药物是否是某种转运体的底物或者抑制剂, 进而推测其可能产生的不良反应或者相关的药物-药物相互作用; 此外, 近年来, 研究人员也试图通过将药物分子进行结构改造或前药修饰, 使其成为摄取转运体的底物或者避免被外排转运体排出, 从而增加药物的口服吸收, 使药物富集于靶器官增强药物疗效。本文旨在介绍人体中常见的药物相关转运体的研究进展, 以及针对转运体进行的药物改造和设计策略, 以期为转运体相关的药物设计提供新的研究思路。

Figure 1 (a) Transporters in plasma membrane domains of intestinal epithelia; (b) Transporters in plasma membrane domains of kidney proximal tubules; (c) Transporters in plasma membrane domains of hepatocytes; (d) Transporters in plasma membrane domains of brain capillary endothelial cells
1 可溶性载体超家族 1.1 寡肽转运体(peptide transporters, PEPTs)

PEPTs是一种质子耦合的转运蛋白, 人体的PEPTs分为两种亚型: PEPT1和PEPT2, 二者具有不同的动力学性质以及组织分布。PEPT1对底物的容量高、底物范围广, 但亲和力低, 主要分布于小肠上皮细胞, 用于转运膳食蛋白分解成的二肽以及三肽; 而PEPT2对底物的亲和力高, 但容量低、底物范围相对较窄, 对多肽的侧链具有一定的选择性, 主要在肾脏、脑和肺中表达, 可以从肾小球滤液中重吸收肽, 在生物体中分布较广[16-19]

PEPTs在药物转运过程中发挥重要作用, 小肠中的PEPT1含量丰富, 可以将底物从肠道中转运进入上皮细胞, 促进底物吸收。PEPTs的底物一般具有以下特点: ① PEPTs的底物大多含有肽键或者类似肽键的结构片段(亚甲基酮、硫代羰基等)[20]; ②含有α-氨基的化合物能够与PEPTs中保守的组氨酸残基形成氢键相互作用, 是该类转运体的常见底物[21, 22]; ③ PEPTs可以转运二肽以及三肽, 多肽氨基端和羧基端的距离为500~635 pm, 但PEPTs无法转运游离氨基酸以及四肽[23, 24]。研究结果表明, 多种类型的上市药物均是PEPTs的底物(图 2), 例如β-内酰胺类抗生素头孢氨苄(cefalexin 1), 该类药物存在脂溶性低、透膜性差的问题, 但它是PEPT1的转运底物, 可在肠道中被转运吸收, 具有较高的口服生物利用度[25]。因此, 利用PEPT1的底物特点, 可以拓宽药物设计思路, 使某些透膜性较差药物以口服方式给药成为可能。

Figure 2 Representative marketed drugs as the substrates of PEPT

许多药物并不具有PEPT底物的结构特征, 但可以通过设计成前药形式使其被PEPT识别和转运, 增强口服生物利用度(图 3)[26, 27]。氨基酸酯化是靶向PEPT1前药设计的首选方法, 因为药物的α-氨基酸酯在结构上类似于多肽, 容易被PEPT1所识别, 并且在肠道pH值范围中展现出良好的化学稳定性; 其次, 引入氨基酸后, 分子中会多出一个游离的氨基, 可以增加化合物的水溶性; 此外, L-型氨基酸类前药在被吸收进入人体后, 可在酯酶的催化下水解, 释放出原形药物, 所以一般选用L-型氨基酸制备前药[27, 28]

Figure 3 Strategy targeting PEPT for prodrug design

抗病毒药阿昔洛韦(acyclovirr 5)的口服生物利用度仅为10%~20%, 研究人员将其结构中的末端羟基与缬氨酸通过酯键连接, 得到前药伐昔洛韦(valaciclovir 4)。体外实验表明伐昔洛韦主要经PEPT1转运吸收, 人体内的口服生物利用度是阿昔洛韦的3~5倍, 且其被吸收进入人体后, 可以在伐昔洛韦水解酶的催化下, 水解生成阿昔洛韦, 发挥药效(图 4a)[29]。此外, 也有部分药物以自身氨基通过酰胺键与氨基酸相连设计获得前药, 例如抗精神疾病类药物LY354740通过分子上的游离的氨基与丙氨酸形成酰胺键, 得到前药LY544344, 该前药分子对PEPT展现出了高亲和力[30], 在大鼠体内的口服生物利用度达到了85%, 且给药30 min后前药全部水解转化为LY354740 (图 4b)[31]

Figure 4 Examples of prodrug design targeting PEPT

最近, He课题组[32]同样利用该种前药策略对抗肝炎药物JBP485进行结构改造, JBP485是一种环状二肽分子, 它可以被PEPT所识别, 但亲和力较低, 在大鼠体内的生物利用度仅有21%。研究人员尝试在分子中的游离的羟基上引入多种类型的L-氨基酸, 将分子设计成前药, 从而增强化合物对PEPT1的亲和力。结果表明在R1位置引入氨基酸酯可以有效提升化合物的口服生物利用度, 并且L-缬氨酸酯(J3V)的提升效果最强(表 2)。进一步实验结果表明, 优选前药J3V在大鼠体内可以迅速水解成原形药物JBP485, 其暴露量相比原形药物提升了近10倍(图 5)。

表 2 Prodrug design of JBP485 by introducing L-amino acids

Figure 5 PK profiles of oral administration of JBP485 and J3V in rats
1.2 有机阴离子转运体(organic anion transporters, OATs)

OATs主要负责转运人体中带负电荷的内源性代谢物, 目前已经发现了20多种OAT亚型, 其中OAT1、OAT2和OAT3负责将底物从血液中转运进入肾小管上皮细胞, 在药物分子的清除排泄过程中发挥重要作用[33, 34]。OAT1、OAT2和OAT3的底物范围均十分广泛, 转运底物主要是相对分子质量小于500的亲水性阴离子化合物(图 6)[33], 例如非甾体抗炎药以及β-内酰胺类抗生素等。此外, 当多种药物竞争同一种OAT或者OAT转运活性被药物抑制时会导致DDI的发生, 例如苯扎贝特(bezafibrate, 14)和咪唑立滨(mizoribine, 15)都是OAT1/3的底物, 当二者同时服用时会导致苯扎贝特的清除率降低, 药物暴露量增加, 极有可能导致横纹肌溶解等不良反应的发生[35, 36]。因此, 在药物研发过程中需要明确化合物是否是OATs的底物, 避免DDI所介导的不良反应。

Figure 6 Representative marketed drugs as the substrates of OATs

OATs可以促进其底物进入肾脏, 介导其从尿排出, 从而导致底物的肾脏清除率(CL)增加。OATs的底物一般极性较大, 因此可以通过对底物中的极性基团进行封闭和替换的策略来改善其清除率。PF-06409577是强效AMPK激动剂, 其AMPK激动活性为7 nmol·L-1(表 3), 但该分子是OAT3的底物并且在肾脏的清除率较高(大鼠体内CL=7.6 mL·min-1·kg-1), 限制了其进一步开发[37]。OATs的底物通常是极性较大的离子型化合物, 因此, 辉瑞公司研究人员[38]设想通过替换分子中的极性基团来降低化合物对OAT3的亲和力。前期研究结果表明, 分子中游离的羟基对于维持激动活性并不是必需的, 而羧基和吲哚则会和靶点中的赖氨酸残基形成关键的氢键相互作用, 所以研究人员选择对环丁醇片段进行封闭和替换, 尝试在保持化合物激动活性的基础上, 改善其肾脏清除率。研究人员首先将环丁醇替换为乙二醇, 以便进行后续改造, 所得化合物19极性增大且对OAT3的亲和力提升, 进一步将末端羟基封闭得到化合物20, 其hOAT3的摄取比例显著降低, 而在末端引入极性较大的吗啉环则会提升化合物对OAT3的亲和力(表 3)。研究人员将R3基团替换为极性较小且脂溶性强的四氢吡喃环, 得到兼有较好AMPK激动活性和较低hOAT3亲和力的化合物22, 在此基础上, 他们又通过替换R1和R2基团进一步提升化合物的渗透性, 最终得到化合物24 (PF-06679142), 其在大鼠体内肾脏清除率仅为0.03 mL·min-1·kg-1, 改善了该类化合物的成药性。

表 3 Optimization of PF-06409577 by replacing polar group to decreasing its affinity to hOAT3.aPassive permeability (Papp) from the apical to basolateral (AB) direction was measured in Ralph Russ canine kidney (RRCK) cells. bRatio of uptake in hOAT3 transfected HEK293 cells to uptake in vector-treated cells
1.3 有机阴离子多肽转运体(organic anion trans‐porting polypeptides, OATPs)

OATPs在结构上与OATs相似但转运底物略有不同, OATPs的底物主要是分子量较大的疏水阴离子而OAT则转运分子量较小的亲水阴离子(图 7)[33]。OATPs有多种亚型, 其中OATP1B1和OATP1B3主要分布于肝细胞基侧膜, 是肝脏中含量最丰富的转运体, 在许多药物肝摄取过程中发挥重要作用, 因此OATP1B1/1B3被竞争性或非竞争性抑制时, 可能会导致DDI的发生。另一方面, 某些药物的靶标存在于肝内, 设计肝脏选择性的药物可以降低不良反应以及提高疗效, 所以利用OATP1B1/1B3转运药物进入肝细胞也就成为了一种新型的药物设计策略。

Figure 7 Representative marketed drugs as the substrates of OATPs

葡萄糖激酶(glucokinase, GK)激动剂可以增强葡萄糖激酶的催化活性, 促进葡萄糖转化为6-磷酸葡萄糖, 从而降低血糖, 是一种新型的抗2型糖尿病药物。但研究表明该类药物会在较低血糖水平下激活胰腺中的GK, 从而引起胰岛素释放, 造成低血糖, 因此, 开发肝脏选择性的GK激动剂则有望避免低血糖风险[39]。化合物29是一种葡萄糖激酶激动剂, 辉瑞公司研究人员[40]设想通过结构改造将其变为OATP1B1/1B3的底物, 使其能够被OATP1B1/1B3转运进入肝细胞, 从而选择性的在肝中富集, 以避免不良反应的产生。OATPs的底物大部分是疏水性阴离子, 而且很多是含有羧基结构的化合物, 因此研究人员设想在化合物29的结构中引入羧基, 同时羧基也可以降低分子的渗透性, 避免化合物的被动扩散。通过对晶体复合物结构进行分析(图 8a), 研究人员发现化合物29中的咪唑环和环戊烷伸向口袋内部, 而吡啶环上的甲基暴露在溶剂区中, 是一个合适的改造位点。由此所得到的化合物30既保持了GK的激动活性, 同时也成为了OATP1B1和OATP1B3的底物(图 8b)。大鼠体内实验结果表明, 化合物30经口服进入大鼠体内后主要富集于肝内, 且在胰腺内的含量极低, 对肝脏展现出了良好的选择性(图 8c)。此外, 研究人员进行了后续的结构改造, 结果表明将羧基替换为磺酸、草胺酸以及四氮唑均可维持其对转运体的亲和力, 但是所得化合物的GK激动活性不高[40]

Figure 8 (a) Complex structure of compound 29 with glucokinase.(b) Increasing the affinity of GK activator to OATP1B1/1B3.(c) Acute tissue distribution time course of 22 in rat after oral administration

硬脂酰-CoA去饱和酶-1 (stearoyl-CoA desaturase-1, SCD1)抑制剂是一种新型的糖尿病和血脂异常治疗药物, 但临床前实验表明抑制皮肤和眼组织中的SCD会导致严重的不良反应, 因此开发肝脏选择性的SCD1抑制剂十分必要。默克公司研究人员[41]设想在SCD1抑制剂31上引入酸性基团使其成为OATPs的底物(图 9)。初步研究发现, 在31的苯环上进行结构改造导致化合物活性丧失(化合物32), 而在左侧的杂环上引入酸性基团则可以在保持活性的基础上使化合物成为OATP1B1/1B3的底物(化合物33)。随后, 研究人员进一步结构改造, 得到活性较强的化合物34。动物实验结果表明, 化合物34在恒河猴体内的肝脏/血浆浓度比达到39∶1, 皮肤组织中的药物浓度极低而眼组织中未能检测到药物, 为后续研发奠定基础。

Figure 9 Increasing the affinity of SCD1 inhibitors to OATP1B1/1B3

OATPs对于其底物也可能产生负面的影响, 许多药物的靶标并不仅存在于肝内, 在肝内富集即会导致治疗效果下降, 也会加速药物的代谢和排泄。化合物35是一种肝脏选择性的AMPK激动剂, 对肝中脂代谢具有较好的改善作用, 默克公司研究人员[42]试图对其进行结构改造, 降低其肝脏选择性, 增强其对骨骼肌中AMPK的激动活性, 以达到治疗糖尿病的目的。化合物35具有肝脏选择性的原因是它可以被OATP1B1/1B2所转运, 并且其极性较大、透膜性差, 进入肝脏后难以通过被动扩散离开肝脏。研究人员认为分子中的羧基是化合物维持其对OATP1B1/1B2亲和力的重要基团, 用极性较小的电子等排体对其进行替换既可避免化合物被OATP1B1/1B2转运, 又可以增加化合物的透膜性。替换后所得到的化合物36的渗透性提高, 肝脏选择性显著降低, 小鼠体内的肝脏骨骼肌浓度比例降为3, 并展示出了良好的降糖活性(图 10)[42]

Figure 10 Decreasing the affinity of AMPK activator to OATP1B1/1B2 by replacing acid group
1.4 有机阳离子转运体(organic cation transporters, OCTs)

OCT主要分为OCT1、OCT2和OCT3三个亚型。其中OCT1和OCT2分别分布于肝细胞和肾近曲小管细胞, 可以介导药物进入肝脏和肾脏, 促进药物的代谢和排泄; 而OCT3分布广泛, 在骨骼肌、小肠、脑、心脏和胎盘等多种组织中均有分布, 主要负责单胺类神经递质、激素以及类固醇在人体内的转运[43, 44]。许多药物例如顺铂、二甲双胍、拉米夫定等(图 11)是OCT1/2的转运底物; 当OCT1/2被竞争性或非竞争性抑制时, 可能导致DDI的发生。OCT1和OCT2具有较高的同源性, 底物主要是阳离子化合物以及在生理环境下带有正电荷的弱碱以及部分不带电荷的化合物, 而其抑制剂一般是在生理条件下带有正电荷的亲脂性化合物。此外, Hendrickx等[45]分析了354个化合物对OCT1/2的亲和力, 总结了OCT1/2底物的一般特征。首先, OCT1/2倾向于转运分子量和体积较小的化合物, 所有OCT1/2底物的分子体积均小于500 Å3; 其次, 化合物的极性表面积(PSA)越小, LogD越高, 则越有可能被OCT2转运, 但化合物对OCT1的亲和力和PSA以及LogD之间无相关性。

Figure 11 Representative structures of marketed drugs that are the substrates of OCTs

与OATP1B1/1B3相类似, OCT1也可通过增加化合物在肝内的浓度从而加强化合物的治疗作用, 例如二甲双胍(metformin, 37)极性较大, 透膜性差, 但是可以通过OCT1在肝细胞内富集, 激活AMPK, 抑制葡萄糖的产生[46]; 某些抗病毒药物如拉米夫定(lamivudine, 38)被证明是OCTs的底物, 可以经OCTs转运进入肝细胞, 抑制乙肝病毒[47]。OCTs也会导致部分药物在肾脏中富集, 例如顺铂(cis-platinum, 39)会被OCT2转运进入肾脏, 但肾脏上外排转运体却难以将顺铂转运至尿液, 因此顺铂会在肾脏中蓄积, 导致肾毒性的发生。而新一代的化疗药物卡铂则不是OCT2的底物, 所以肾毒性较轻, 安全性比顺铂更高[48]

2 ATP结合盒转运体(ATP-binding cassette, ABC)超家族 2.1 P糖蛋白(P-glycoprotein, P-gp)

P-gp由MDR1基因所编码, 广泛分布于小肠上皮细胞、血-组织屏障、肝内胆管上皮细胞以及肾脏近曲小管的上皮细胞。P-gp在限制药物透过血脑屏障、小肠药物吸收以及促进药物的尿排泄和胆汁排泄方面发挥重要作用。P-gp的转运底物一般具有以下特点: ① P-gp结合底物的空腔较大且特异性不高, 因此相对分子质量较小(MW < 250)的化合物通常情况下不会成为P-gp的底物, 而相对分子质量大于400的化合物则很有可能被P-gp转运[49]; ②对P-gp的晶体结构分析, 其底物结合区域中有一部分谷氨酰胺和丝氨酸等极性氨基酸残基, 它们可以和药物分子中的氢键受体形成氢键相互作用, 因此分子中含有氢键供体越多, 则越易成为P-gp的底物[49, 50]; ③药物分子所带的电荷类型也会影响其与P-gp结合的效率, 多项研究表明带有阳离子的碱性基团(pKa > 4的酸)会增加化合物成为P-gp底物的概率, 而带有阴离子的酸性基团(pKa < 8的碱)则会降低这种概率[49]; ④化合物的拓扑极性表面积(TPSA)越大, 则越有可能成为P-gp底物[50]

P-gp可以将毒性物质或者代谢产物转运出细胞, 对于维持细胞的正常生理功能具有重要作用, 但是如果药物分子本身是P-gp底物则可能导致一系列的不利影响。首先, 在药物-药物相互作用方面, 某些药物比如地高辛是P-gp的底物, 当其与其他P-gp底物或抑制剂同时服用时, 则会引起地高辛的暴露量的升高[51]。其次, 许多耐药反应与P-gp相关, 在NCI-60细胞系中, 有超过50%的肿瘤细胞系表达了P-gp, 特别是在肾癌和结肠癌中出现了P-gp高表达的情况[52]。此外, 小肠上皮细胞上表达的P-gp可能会阻碍药物分子的吸收, 而肝胆汁上皮细胞以及肾近曲小管的上皮细胞上的P-gp会加速药物分子从人体中排出。最后, 血脑屏障中的P-gp可能会阻碍药物入脑[13]

鉴于以上特点, 研究人员发展了一系列策略来避免P-gp介导的耐药性以及其对药物药代动力学特性的影响。其中, 最直接的策略就是研发P-gp小分子抑制剂[53], 但是目前尚未开发出P-gp小分子进入临床研究, 因此通过对药物分子进行结构改造来避免被P-gp转运可能是更加实用的研究策略。通常可以通过减少分子内氢键供体(HBD < 2)以及引入亲脂基团减小TPSA (TPSA < 90 Å2)的方法来避免小分子化合物被P-gp转运。化合物40是一种受体相互作用蛋白1(RIP1)抑制剂, 用于治疗神经退行性疾病, 但它是P-gp的底物, 难以穿过血脑屏障发挥药效。武田制药公司的研究人员[15]设想通过降低化合物的TPSA和减少HBD的方式避免P-gp对其的外排作用(图 12)。前期研究表明化合物结构中的红色部分不与靶点中的残基形成氢键作用, 引入亲脂性基团封闭HBD以及替换极性较大的三氮唑对化合物的活性影响较小。由此得到的化合物41的TPSA降低为79 Å2且仅有一个HBD, P-gp介导的外排比(efflux ratio, ER)降低到1.9。在此基础上, 研究人员将化合物41中的咪唑环替换为吲唑环来与苄基连接, 将分子中的HBD降为0个, 同时考察不同取代基对活性的影响, 最终得到了兼有较好活性与低外排比的化合物42

Figure 12 Decreasing TPSA and HBD to avoid the efflux mediated by P-gp

此外, 还可以通过降低分子pKa的方式来降低分子对P-gp的亲和力。化合物43是一种β-分泌酶1(BACE1)抑制剂, 可以用来治疗阿尔茨海默病, 但它受P-gp的外排影响难以入脑。盐野义制药公司的研究人员[14]分析后认为分子中游离的氨基是化合物发挥活性的关键, 不能对其进行修饰和替换, 但P-gp对在生理条件下(pH 7.4)带电荷的化合物有较高的亲和力, 因此将化合物的pKa降低到7.4以下则有可能降低P-gp的外排比(图 13)。基于以上策略, 他们考虑在氨基相连的环上引入双键, 使氨基上的孤对电子离域, 达到降低分子pKa的目的, 同时在双键上引入取代基, 考察构效关系。由此设计改造得到化合物44保持了对BACE1的抑制活性(IC50=59 nmol·L-1), 并且其pKa降低到6.9, P-gp介导的外排比例显著改善(ER值降低到12), 动物实验结果表明化合物在小鼠体内的B/P增加, 达到1.2, 并且将阿尔茨海默病小鼠脑内的Aβ降低了69%, 具有良好的治疗效果。

Figure 13 Decreasing pKa to reduce the efflux mediated by P-gp
2.2 多药耐药相关蛋白-1 (multidrug resistance protein 1, MRP1)

MRP1由ABCC1基因所编码, 广泛分布于人体的各个组织, 可以将有机阴离子以及药物或药物的II相代谢产物泵出细胞, 从而保护组织细胞免受外源性毒素的损伤。Gattass课题组[54]发现化合物的TPSA与对MRP1的亲和力之间有着显著的相关性, 并建立了底物米氏常数(Km)和TPSA的相关性曲线(图 14)。当化合物的TPSA大于150 Å2时, 其极有可能成为MRP1的底物; TPSA较小的化合物不易被MRP1所转运, 但是化合物被葡萄糖醛酸化、硫酸化或者与谷胱甘肽结合后, 产物的TPSA会极大增加, 从而成为MRP1的底物。因此, 降低化合物极性、减少II相代谢可能会有助于避免化合物被MRP1转运。目前, 已发现有多种化疗药物例如长春新碱、多柔比星、依托泊苷等均是MRP1的底物。研究表明, 在非小细胞性肺癌、胃肠癌和黑色素瘤等多种肿瘤细胞中均出现MRP1表达升高的情况, 进而导致细胞内化疗药物浓度降低, 引起肿瘤多药耐药(MDR)的产生, 而MRP1抑制剂则可以逆转MDR, 增强化疗药物的疗效[55, 56]

Figure 14 Relationship between TPSA and the Km of MRP1 substrates

传统的MRP1抑制剂主要包括非甾体抗炎药(吲哚美辛)[57]、白三烯受体拮抗剂(MK571)[58]、P-gp抑制剂(维拉帕米)[59]、天然黄酮类化合物[60]等, 但它们的选择性低而且抑制活性不高, 因此难以进行实际应用。许多研究人员试图通过对现有的MRP1抑制剂进行结构改造, 以期得到选择性较好且具有较高MRP1抑制活性的抑制剂(图 15)。MRP1具有假二聚体结构, Chan课题组[60]设想将两分子的黄酮类抑制剂连接在一起后使其同时结合在一个MRP1蛋白上, 从而增强抑制剂分子的结合活性和选择性, 所得到的化合物45对MRP1展现了高的抑制活性(EC50=73 nmol·L-1), 并且在体外试验中化合物能够逆转肿瘤耐药株对多柔比星的耐药性。Colabufo课题组[61]则是分析了传统的MRP1抑制剂结构, 发现大多数分子中均含有苯甲酰苯胺的核心结构, 他们将这一结构提取出来, 对苯环上的取代基进行逐步替换和考察, 得到了具有微摩尔级抑制活性的化合物46 (IC50=9.5μmol·L-1)。最近, Wiese课题组[62]利用虚拟筛选研发MRP1抑制剂, 他们首先对现有的MRP1抑制剂进行分析, 建立了药效团模型, 然后对ZNIC数据库中的16 403 865个化合物进行相似度搜索和药效团建模, 筛选得到了1 510个化合物; 在此基础上, 研究人员继续进行了类药性筛选和人工挑选, 得到了17个潜在的抑制剂进行实验测定, 结果表明, 噻吩并嘧啶类化合物47具有较好的抑制活性, 对MRP1的IC50达到了5.04μmol·L-1, 适合作为苗头化合物进行后续开发。

Figure 15 Representative structures of inhibitors of MRP1
2.3 乳腺癌耐药蛋白(breast cancer resistance protein, BCRP)

BCRP是一种外排转运体, 主要分布在胃肠道、肝脏、肾脏以及大脑内皮, 它的底物类型范围十分广泛, 可转运有机阳离子、中性分子以及疏水性化合物[63]。BCRP对于底物药物在人体中的转运具有重要影响, 它会限制药物口服生物利用度以及阻止药物透过大脑皮层, 同时它可以促进药物的胆汁排泄和尿排泄, 而BCRP被抑制则有可能导致DDI的发生[64]。此外, BCRP由ABCG2基因所编码, ABCG2上有多个单核苷酸突变位点, 其中最为常见的是c.421C > A, 这些基因突变会导致BCRP的表达量减少或者转运效能下降, 从而引起用药的个体差异[65], 例如瑞舒伐他汀是BCRP的底物, 它在BCRP c.421A/A纯合子患者体内的暴露量是c.421C/C纯合子患者的2.4倍[66]

BCRP是介导肿瘤细胞产生耐药性的重要机制之一, 目前已发现BCRP在多种实体瘤和血液瘤细胞中高表达, 许多重要的抗肿瘤药物例如米托蒽醌、甲氨蝶呤、拓扑替康等均是BCRP的底物, 而BCRP则会外排抗肿瘤药物, 导致肿瘤细胞内的药物浓度较低, 药物治疗效果下降[63], 因此, 开发药物设计新策略, 避免BCRP对药物治疗的不利影响十分重要。但是BCRP的底物范围十分广泛, 目前尚无针对BCRP进行药物结构改造的具体策略, 所以研究人员主要通过开发BCRP抑制剂来抑制其转运活性, 达到加强药物治疗疗效的目的[67]

烟曲霉毒素C是最早被发现的BCRP特异性抑制剂, 具有良好的抑制活性, 但是它的神经毒性较高。Allen等[68]提取得到FTC类似物Ko143, Ko143的抑制活性更强(EC90=26 nmol·L-1), 且对其他的ABC转运体的抑制剂活性较低, 显示出较好的选择性, 作为工具分子广泛使用。其后, 研究人员发现许多含有喹唑啉结构的酪氨酸激酶抑制剂(例如吉非替尼和埃罗替尼)均有BCRP抑制活性, Wiese课题组[69]将这一片段提取出来, 对芳环上的取代基进行构效关系考察(表 4), 结果表明X为氮原子时化合物活性较强, 将R2基团从苯环变成缺电子或者富电子芳环会导致活性丧失或下降, 在R1上引入吸电子基会导致活性下降, 而引入给电子基则可以维持活性。化合物54对BCRP展现出了最强的抑制活性(IC50=149 nmol·L-1), 适合作为先导化合物进行后续研究。

表 4 Structures modification of quinazoline as inhibitors of BCRP

此外, 有研究表明P-gp抑制剂tariquidar也具有BCRP抑制剂活性。Wiese课题组[70]对其进行初步的结构改造, 研究结果表明, 去除tariquidar结构中的四氢异喹啉环可以使化合物失去对P-gp的抑制作用, 而对BCRP抑制活性的影响较小, 这可能是因为四氢异喹啉环中的氮质子化后与P-gp形成较强的相互作用。但是所得到的化合物56的BCRP抑制活性仅有微摩尔水平(IC50=1.96μmol·L-1), 因此研究人员对其进一步进行结构改造, 以期提升化合物的BCRP抑制活性, 他们参考了新一代P-gp抑制剂HM30181的结构, 将其中的四氮唑片段引入到分子中, 同时对化合物中的苯环和喹啉环进行替代和考察, 最终得到了具有纳摩尔级抑制活性的化合物58 (IC50=64 nmol·L-1)(图 16)[71]

Figure 16 Structures modification of MRP1 selective inhibitors
3 总结与展望

转运体对于药物在人体中的转运和分布具有重要影响, 是一把双刃剑[72]。一方面它可以促进人体对药物的吸收, 改善药物的组织分布; 另一方面, 转运体也会介导肿瘤细胞的多药耐药, 导致DDI的产生, 促进药物的代谢与排泄。因此, 如何合理利用和针对转运体进行药物设计已经引起药物研发人员的高度重视, 并且已经有许多实用性的策略开发出来, 拓宽了药物设计的新思路和新方法。但是, 目前针对转运体设计报道的研发实例仍然较少, 应用范围也比较局限, 还需要研究人员开展更多的工作来对探索和拓展针对转运体研究的药物化学结构优化策略。目前, 利用转运体进行药物设计已经显现出巨大的潜力, 随着未来药物设计策略的不断完善, 它也将会成为药物研发的重要方法之一。

作者贡献: 宋晓翰负责调研文献, 整理撰写文章; 王江负责审阅、修改文章; 柳红负责审阅、修改文章。

利益冲突: 本文不存在任何与本稿件相关的利益冲突。

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