2. 郑州大学药学院, 河南 郑州 450001
2. School of Pharmaceutical Sciences, Zhengzhou University, Zhenzhou 450001, China
目前, 肿瘤仍是经久不衰的热点话题[1]。面临肿瘤细胞的高度转移性, 对肿瘤的高效治疗是关键。化疗药物虽是重点, 但其具有特异性差、多药耐药性和毒副作用大等缺陷。纳米递药系统以纳米粒为载体, 在其内部或表面负载治疗药物, 同时在纳米粒表面可功能化修饰, 利用实体瘤的高通透性和滞留效应或受体-配体功能实现定点靶向递送及药物控释的目的[2-5]。纳米材料除了运载药物外, 有些纳米材料在一定的物理条件刺激下也具有治疗作用, 如纳米材料在近红外光(NIR)、超声、交变磁场和X-射线等物理条件下产生特定的具有疗效的分子, 可与化疗药物达到联合治疗, 极大提高抗肿瘤疗效[6-8]。
近年来, 硫化铜(CuS)纳米粒作为一种新型的近红外光响应型材料[9, 10], 对NIR有很强的局部表面等离子共振效应(localized surface plasmon resonances, LSPR), 具有光热转换效果[11, 12]; 同时, 在NIR下CuS泄漏的铜离子可与肿瘤周围环境的缓冲液基质通过Haber-Weiss循环发生氧化还原反应产生羟自由基(·OH)进行光动力学治疗(photodynamic therapy, PDT)。因此, CuS可以在NIR下同时达到光热治疗(photothermal therapy, PTT)和光动力学治疗(PDT)[13]。其中, 中空介孔硫化铜(HMCuS)纳米粒的中空空腔和孔道结构均可荷载客体物质, 比表面积大, 载药能力强[14, 15]。可选择HMCuS作为化疗药物载体, 实现热疗-光动力学治疗-化疗的联合作用。对于未修饰的介孔纳米递药系统来说, 在体内运输过程中药物分子可能会从孔道中泄漏, 降低靶部位的药物浓度, 且到达肿瘤部位后药物能否从介孔内部有效释放也是亟需解决的问题, 故需对HMCuS表面加以修饰[12]。
透明质酸(HA)作为内源性黏多糖, 在生理环境中呈现扩大的不规则螺旋结构[16], 可作为“盖帽剂”修饰在HMCuS表面, 形成紧密的层状结构, 有效防止HMCuS内部药物分子在体循环过程中泄漏。此外, 药物转运过程中, HA作为配体可与大多数肿瘤细胞表面高表达的CD44受体特异性结合, 通过CD44受体介导的内吞作用进入肿瘤细胞[17-19]。据报道, 大多数恶性肿瘤细胞的溶酶体内高表达透明酸酶, 可以将HA降解为小分子四糖, 继而将HMCuS的孔洞打开, 药物释放, 实现酶响应型释药特征。
本研究选用盐酸多柔比星(DOX)抗癌药物为模型药物[11, 12], 制备基于HMCuS的多功能纳米递药系统, 有望实现热疗-光动力学治疗-化疗的协同治疗。
材料与方法材料与仪器 氯化铜(天津市光复科技发展有限公司); 硫化钠(天津市风船化学试剂有限公司); 聚乙烯吡咯烷酮(PVP-K30) (北京索莱宝科技有限公司); 水合肼、巯基乙胺(国药集团化学试剂有限公司); DOX (大连美仑生物科技有限公司); HA (相对分子质量12 000, 山东福瑞达生物医药有限公司); 碳二亚胺盐酸盐(EDC·HCl)、N-羟基琥珀酰亚胺(NHS)和亚甲基蓝(MB) (阿拉丁试剂有限公司); 透明质酸酶(上海生工生物工程有限公司); 其余试剂均为分析纯。
JY 92-II DN超声波细胞粉碎机(宁波新芝生物科技股份有限公司); Waters e2695高效液相色谱仪(美国Waters公司); Nano-ZS90型激光粒度分析仪(英国马尔文公司); UV-2550型紫外-可见分光光度计(日本岛津公司); Tecnai G2 20型透射电子显微镜(美国FEI公司); 808 nm激光仪(长春镭仕光电科技有限公司)。
HMCuS纳米粒的合成 称取聚乙烯吡咯烷酮(PVP-K30) 480 mg溶解于50 mL水中, 加入CuCl2溶液(0.5 mol·L-1) 200 μL, 搅拌5 min后加入NaOH溶液(pH 9) 50 mL及水合肼16 μL。反应5 min后, 再加入Na2S溶液(320 mg·mL-1) 400 μL, 60 ℃下油浴搅拌2 h。反应结束后, 离心得沉淀, 用超纯水洗涤至中性, 干燥后即得HMCuS纳米粒。
HMCuS纳米粒的表征形态观察 将HMCuS的乙醇溶液滴到铜网上制样, 待溶剂挥发完全后置于透射电子显微镜下观察并记录图片, 同时对样品进行元素信号采集并记录。
X-射线衍射(XRD) 取HMCuS粉末置于X-射线衍射仪中进行信号采集, 记录数据并绘制XRD图谱, 与标准卡片进行比对分析。
DOX/HMCuS-HA递药系统的制备 将HMCuS 50 mg借助探头超声分散于200 mL超纯水中, 加入巯基乙胺100 mg, 搅拌24 h, 离心得沉淀, 用超纯水洗2~3遍, 直至中性。冷冻干燥, 得到氨基化HMCuS复合物(HMCuS-NH2)。
取HMCuS-NH2 10 mg借助探头超声分散于10 mL磷酸盐缓冲液(PBS)中, 加入10 mL含20 mg DOX的PBS溶液, 室温搅拌24 h, 离心洗涤后即得DOX/HMCuS。
称取HA 100 mg溶于20 mL PBS中, 按照HA:EDC·HCl:NHS摩尔比1:1:1依次加入EDC·HCl和NHS, 室温搅拌活化30 min。之后将以上溶液逐滴加入10 mg DOX/HMCuS分散液中, 搅拌反应24 h。离心得沉淀, 冷冻干燥后即得DOX/HMCuS-HA。
DOX/HMCuS-HA递药系统的表征载药量测定 制备DOX/HMCuS-HA时收集离心上清液, 测定上清中游离DOX含量, 荷载药物量=投药量-游离药物量。按以下公式计算载药量:载药量(%) = [荷载药物量/ (荷载药物量+载体量)] × 100。DOX的检测方法按照HPLC测定法(中国药典2015版二部), 检测波长为254 nm。DOX标准曲线的建立:精密称取DOX 5.0 mg, 配制成质量浓度为1 mg·mL-1的DOX储备液, 并稀释成浓度梯度为100、50、20、10、5、1和0.5 μg·mL-1标准溶液, 以DOX浓度为横坐标, 峰面积为纵坐标作图得到DOX的标准曲线。
光谱表征 紫外可见吸收光谱:将HMCuS和DOX/HMCuS-HA溶液分别采用紫外-可见分光光度计在200~1 000 nm下进行全波长扫描并记录光谱图。红外光谱:取适量HMCuS、HMCuS-NH2和HMCuS-HA粉末, 分别采用KBr压片法制样, 于红外光谱仪下采集样品信号得红外光谱。
透射电镜观察 取HMCuS、DOX/HMCuS、DOX/HMCuS-HA及用透明质酸酶孵育2 h后的DOX/HMCuS-HA样品的乙醇溶液滴到铜网上制样, 待溶剂挥发完全后置于透射电子显微镜下观察并记录图片。
氮气吸附脱附实验 将适量HMCuS、DOX/HMCuS和DOX/HMCuS-HA样品分别置于样品管中, 150 ℃脱气干燥4 h, 测定纳米粒的孔径和比表面积。
泄漏率实验 分别取DOX/HMCuS和DOX/HMCuS-HA样品置于含10%胎牛血清的PBS (pH 7.4)中, 在37 ℃环境下保存, 于第0、2、4、6、8和10天连续监测各组样品的DOX泄漏率。
粒径分布与zeta电位测定 配置一定浓度的DOX/HMCuS-HA溶液, 使用激光粒度分析仪测定粒径分布与zeta电位。
HMCuS-HA的光热转换性质考察 配置不同浓度的HMCuS及HMCuS-HA分散液, 在808 nm激光仪的不同功率下照射8 min, 使用红外热成像仪记录各组样品温度随时间的变化。
光动力学实验电子自旋共振(ESR)波谱法 取2 mg·mL-1 HMCuS纳米粒进行不同时间的NIR照射(808 nm, 2 W·cm-2), 之后置于ESR谐振腔内, 待温度平衡后, 记录ESR图谱。
化学探针紫外-可见分光光度计法 采用MB作为羟自由基捕捉剂, MB本身含有发色团具有紫外吸收, 但当遇到·OH后反应生成稳定的无色加合产物(MB-OH), 故可通过紫外-分光光度法来检测·OH的产生。取1 mg·mL-1 HMCuS纳米粒进行不同时间的NIR照射(808 nm, 2 W·cm-2), 之后离心取上清后加入MB, 使得MB浓度调整为20 μmol·L-1, 于紫外-可见分光光度计下进行紫外可见吸收光谱扫描。
DOX/HMCuS-HA体外释药实验 将含1.5 mg DOX和透明质酸酶(150 U·mL-1)的DOX/HMCuS-HA样品装入透析袋(MWCO 3 500)内, 把上述透析袋分别置于100 mL含/不含透明质酸酶(150 U·mL-1)的PBS溶液(pH 7.4/4.5)中, 放置摇床上进行释药实验(37 ℃, 100 r·min-1)。该实验设置激光组, 使用808 nm激光(2 W·cm-2)照射10 min。每隔2 h后取1 mL样品并补加相同体积的释药介质。按载药量测定的方法测定释药浓度, 对释药数据进行拟合并探讨释药机制。
结果 1 HMCuS纳米粒的合成与表征本研究采用置换法合成了HMCuS纳米粒, 图 1a的透射电镜图观察到其中空介孔球状结构, 纳米粒大小均一, 分散良好, 粒径约为100 nm左右。HMCuS的元素分析图如图 1b所示, 检测到样品中主要含有Cu和S元素, 为HMCuS的形成提供依据。图 1c为HMCuS的X-射线衍射图谱, 2θ在29.49μ、31.98μ和48.14μ时的衍生峰所对应的晶面分别是102、103和110, 与铜蓝相硫化铜的晶格面一致(Joint Committee on Powder Diffraction Standards : No. 06-0464)[4]。
采用紫外-可见分光光度计对制剂进行全波长扫描, 如图 2a所示。HMCuS在近红外区(λ = 700~1 000 nm)有较强的吸收, 该结果与文献报道一致[8, 9]。DOX/HMCuS-HA则出现了HA的末端吸收及DOX在254和480 nm处的特征吸收峰。在投料比(DOX:HMCuS)为2:1时, DOX/HMCuS中载药量为33.6%。由于HMCuS具有的中空空腔和孔道结构均可荷载客体物质, 比表面积大, 故载药能力强。红外光谱表征如图 2b所示, 结果表明, HMCuS与巯基乙胺反应后在1 640 cm-1处出现-NH2的特征峰, 之后对纳米粒进行HA共价修饰, 于~1 650 cm-1出现-NH-CO-的特征峰, 证实了HA已成功修饰到HMCuS骨架上。
图 3a为各制剂的透射电镜图。与HMCuS [图 3a(1)]相比, DOX/HMCuS的中空空腔中出现不均匀的团聚物, 推测为所负载的药物分子DOX [图 3a(2)]。观察到DOX/HMCuS-HA表面被一层紧密的层状物质所包裹, 推测HA可作为“盖帽剂”修饰在纳米粒表面[图 3a(3)]。当被透明质酸酶孵育2 h后, DOX/HMCuS-HA表面的HA逐渐被酶降解, 显露出HMCuS载体的中空空腔结构[图 3a(4)]。通过氮气吸附-脱附实验考察介孔材料的比表面积和孔径分布情况。如图 3b所示, HMCuS的氮气吸附脱附曲线属于经典的第Ⅴ类等温线, 具有较高的比表面积(155.8 m2·g-1), 平均孔径为5.1 nm, 允许小分子药物通过介孔通道负载入载体内部。而负载DOX和修饰HA后, 比表面积分别下降到78.3和23.6 m2·g-1。同时, 孔径也依次降到3.8和~0 nm左右。该氮气吸附脱附曲线结果表明HA的修饰起到封堵孔洞的效果。为进一步验证HA的盖帽效果, 分别对DOX/HMCuS和DOX/HMCuS-HA进行了泄漏率实验考察, 如图 3c所示。两种制剂在体内模拟环境(10%胎牛血清的PBS溶液, pH 7.4, 37 ℃)下放置10天后, DOX/HMCuS和DOX/HMCuS-HA的泄漏药物量分别为42.6%和8.2%, 表明HA作为“盖帽剂”可有效降低药物泄漏率。
DOX/HMCuS-HA等样品的粒径分布和zeta电位如图 4所示, HMCuS、DOX/HMCuS和DOX/HMCuS-HA的平均粒径分别为102 ± 2.3、104 ± 3.6和113.8 ± 6.9 nm; 平均zeta电位分别为-11.5 ± 0.6、26.8 ± 3.2和18.4 ± 2.8 mV, 证明DOX/HMCuS-HA制剂的分散性和稳定性较好, 与透射电镜结果一致, 并且更易被细胞膜表面呈负电性的癌细胞所摄取。
HMCuS和HMCuS-HA在808 nm激光下的光热转换效应如图 5所示, 其产热效能具有CuS浓度、激光照射时间和功率依赖性, 且HA的修饰并未影响HMCuS的产热效果。其中100 μg·mL-1 HMCuS在808 nm激光(2 W·cm-2)下照射8 min可升高温度51 ℃。因此, HMCuS-HA可用于肿瘤光热治疗。
本研究采用NIR照射, 然后分别用ESR波谱法和化学探针紫外-可见分光光度计法进行活性氧的检测。其中, ESR法使用5, 5-二甲基-1-吡咯啉-N-氧化物和2, 2, 6, 6-四甲基哌啶作为自旋捕获剂, 检测二者分别与·OH和1O2加合物的ESR信号。图 6a表明, 在无NIR照射时未发现ESR信号。而在NIR照射下, ESR图谱中出现了·OH加合物信号, 由1:2:2:1的四重特征峰组成, 且特征峰强度随着NIR照射时间延长而增强。在实验过程中, ESR波谱并没有检测到1O2加合物的信号。此结果说明HMCuS在NIR照射下可以产生活性氧, 且活性氧种类主要是·OH。
另外, 使用MB作为羟自由基捕捉剂, MB本身含有发色团具有紫外吸收, 但当遇到·OH后反应生成稳定的无色加合产物(MB-OH), 故可通过紫外-分光光度法来检测·OH的产生。图 6b为HMCuS处理后的MB紫外可见吸收光谱。随NIR照射时间延长, MB在290和680 nm处的特征吸收峰强度逐渐下降, 说明HMCuS在NIR照射下产生·OH。因此, HMCuS可作为一种优良的光敏剂介导光动力学治疗。
5 DOX/HMCuS-HA体外释药实验DOX/HMCuS-HA的体外释药结果如图 7所示。释药实验进行14 h后, 在无透明质酸酶存在时, DOX/HMCuS-HA在pH 4.5 PBS溶液中较pH 7.4 PBS溶液的释药率仅高4.4%, 激光组较非激光组释药率高11.1%;而在有透明质酸酶存在时, DOX/HMCuS-HA在pH 4.5 PBS溶液中较pH 7.4 PBS溶液的释药率高26.6%, 激光组较非激光组释药率高39.7%。结果说明, HA的修饰具有盖帽效应, 当透明质酸酶将HMCuS表面修饰的HA降解后, 打开中空介孔材料的孔洞, 释放药物, 达到多刺激响应型门控释药的目的。由此可见, DOX/HMCuS-HA具有透明质酸酶、pH值和NIR敏感释药特性。
目前化疗药物与纳米递药系统的联合已成为肿瘤研究的热点。本研究成功构建了基于中空介孔硫化铜的多功能纳米递药系统DOX/HMCuS-HA。HMCuS作为空穴型半导体通过局部表面等离子共振效应(LSPR)在NIR区有很强的光热转换效应。在近红外光下HMCuS泄漏的铜离子可与肿瘤周围环境的缓冲液基质通过Haber-Weiss循环发生氧化还原反应产生·OH进行光动力学治疗。
HA作为靶向分子和“盖帽剂”, 阻止载体负载的化疗药物在转运途中的泄漏, 有利于降低毒副作用。pH值敏感释药特性是由于酸性环境使得DOX结构中的氨基发生质子化导致氢键断裂, 促进药物释放[20]; 在NIR照射下, HMCuS产热从而降低了周围介质黏度, 促进药物扩散。释药结果发现, 若没有透明质酸酶的响应, pH值和NIR敏感都不能促进DOX的释放, 即HA只有经肿瘤细胞内的透明质酸酶降解后, 包封的药物才得以释放, 而酸性pH值和NIR光刺激则使得DOX的释放更有效[21]。
综上所述, 本研究得到的透明质酸修饰的中空介孔硫化铜纳米递药体系(DOX/HMCuS-HA)具有NIR照射下同时产热和活性氧性质, 有望实现热疗-光动力学治疗-化疗的协同治疗, 为肿瘤高效治疗带来了福音。
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