2. 山西大学 化学化工学院, 山西 太原 030006;
3. 中国科学院过程工程研究所, 北京 100190;
4. 山西健硕食品药品研究院有限公司, 山西 太原 030000
2. College of Chemistry and Chemical Engineering, Shanxi University, Taiyuan 030006, China;
3. Institute of Process Engineering, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100190, China;
4. Shanxi Jianshuo Food and Drug Research Institute Co. Ltd., Taiyuan 030000, China
黄芪是我国古老的补益中药材, 为豆科植物蒙古黄芪Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao或膜荚黄芪Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge.的干燥根[1], 始载于《神农本草经》, 市场用量大, 素有“十方八芪”之说, 具有补气升阳、固表止汗、利水消肿、敛疮生肌等功效。
目前蒙古黄芪产量较大, 为市场上的主流商品。依据其种植方式的不同, 分为了仿野生芪和移栽芪, 其中主产于山西恒山山脉的6~8年生仿野生黄芪为业界公认的道地药材, 具有“主根粗长、少分支、绵性大、粉性强、甜味足、豆腥味浓”等特点, 占据高端市场, 价高且供不应求, 主要用于出口及食用。由于黄芪用量不断增加, 移栽芪以其生长年限短(2~3年)、成本低(平地移栽, 机械化采挖)、产量大等特点, 迅速占领市场。其外观与仿野生黄芪有较大差别, 呈现“主根短, 分枝多, 质坚硬, 鸡爪形, 微甜而淡”等特征。2015版《中国药典》将黄芪甲苷与毛蕊异黄酮葡萄糖苷作为评价黄芪的质控指标, 然而研究结果表明虽然仿野生芪中毛蕊异黄酮葡萄糖苷含量明显高于移栽芪, 但移栽芪中黄芪甲苷含量并不低, 甚至超过仿野生芪的特等、一等[2-4]。本课题组前期通过抗疲劳及抗心衰药效实验证明了仿野生芪要优于移栽芪[5, 6]。因此建立更加合理的质控指标, 对于探明道地药材黄芪的物质基础, 保障市场的优质优价, 促进优质中药材资源的发展均具有重要的意义。
黄芪多糖是黄芪药材中含量最多、免疫活性最强的一类物质[7], 应该作为质控指标用于黄芪的品质评价。然而, 由于其分离制备困难、糖链序列及分支结构等尚无法准确测定, 限制了其应用。近年来, 随着色谱填料技术的发展, 多糖分子量分布特征可以通过糖谱形式直接表征。该方法避免了直接测定多糖结构的技术瓶颈, 可以从整体上表征中药材多糖的结构特点[8]。因此, 该方法不仅可鉴别出不同种属、不同基原、不同生长方式及环境下药材的差异, 而且为阐明道地药材的物质基础特征奠定了基础。此外, 结合公认的、成熟的生物活性评价方法, 即可建立以黄芪总多糖为指标的黄芪药材品质评价方法。目前, 抗凝类药物低分子肝素(LMWH)已采用分子量特征图谱与效价评价法相结合的方法, 来规范和完善现行的LMWH质量标准[9]。
因此, 在本研究中采用高效凝胶过滤色谱法建立不同黄芪药材的多糖特征图谱, 并通过总多糖的酸降解方法, 结合柱前衍生化, 采用HPLC-UV建立不同黄芪药材的单糖特征图谱, 通过对36批黄芪总多糖及单糖图谱的分析, 结合多元统计分析和聚类分析等类似评估来处理数据, 找出不同产地及种植方式的蒙古黄芪中黄芪多糖(APS)的相似性和差异性, 并通过技术成熟的、方法公认的小鼠腹腔巨噬细胞吞噬中性红实验比较了3种蒙古黄芪中APS的免疫调节活性。本方法不仅具有样品消耗较低, 预处理步骤较少和重现性良好的优点, 为不同来源黄芪品质的评价和其他植物多糖的质量控制提供了新的策略, 而且为探明道地药材的物质基础提供了技术支撑。
材料与方法材料 本实验所需植物材料包括蒙古黄芪Astragalus membranaceus (Fisch.) Bge. var. mongholicus (Bge.) Hsiao的仿野生黄芪和移栽黄芪, 其中编号1~12为来自山西浑源(Shanxi Hunyuan, SXHY)的仿野生黄芪, 采收时间为2017年, 生长年限为5年; 编号13~24为山西五寨(Shanxi Wuzhai, SXWZ)的移栽黄芪, 采收时间为2017年, 生长年限为2年; 编号25~36为甘肃陇西(Gansu Longxi, GSLX)的移栽黄芪, 采收时间为2017年, 生长年限为2年, 药材均由山西大学秦雪梅教授鉴定。
仪器 华谱S6000高效液相色谱仪; Chromachem蒸发光散射检测器; ACstation色谱工作站; 华谱S6000紫外检测器; Mettler Toledo万分之一分析天平; IKA RH digital磁力搅拌器; EYELA N-1100旋转蒸发仪; 湘仪TL5R离心机; FD-1D-80真空冷冻干燥机(北京博医康实验仪器有限公司); Infinite M200酶标仪; 细胞培养箱(力康生物医疗科技控股有限公司)。
试剂 系列分子量右旋糖酐对照品(Mw: 180、2 700、5 250、9 750、13 050、36 800、64 650、135 350、300 600、2 000 000 Da)均购自中国食品药品检定研究院; 葡萄糖(Glu)、半乳糖醛酸(GalA)、半乳糖(Gal)、甘露糖(Man)、N-乙酰葡糖胺(GlcNAc)、岩藻糖(Fuc)、鼠李糖(Rha)和阿拉伯糖(Ara)均购自Meilun Biotechnology Co., Ltd. (中国大连); 木瓜蛋白酶购自Solarbio (美国); 三氯乙酸、三氟乙酸(TFA)购自阿拉丁(中国上海); 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)购自Sigma (美国); HPLC级乙腈购自Merck (德国); 所有其他试剂均为分析级; RAW264.7 (小鼠单核巨噬细胞白血病细胞)来源于美国模式培养物研究所; RPMI-1640培养基购自美国Cellgro; 中性红试剂购自Solarbio (美国)。
黄芪多糖的制备 将每批干燥的仿野生、移栽蒙古黄芪粉碎成粉末, 过100目筛, 取黄芪细粉约15 g, 置于500 mL烧杯中, 按照料液比1:20比例加入去离子水300 mL, 置于IKA RH digital磁力搅拌器上搅拌, 热提温度为90 ℃, 提取时间为4 h。经水提后样品置于离心机中离心(4 000 r·min-1, 30 min), 抽滤后浓缩至150 mL, 用酶解方法(加入木瓜蛋白酶200 U, 45 ℃下恒温水浴反应6 h), 结合三氯乙酸法(加10%三氯乙酸至总体积200 mL, 反应体系置于冰浴中搅拌15 min后静置30 min, 4 000 r·min-1离心15 min, 弃沉淀)用于去除蛋白质。离心上清中缓缓加入无水乙醇至最终醇浓度为90%, 静置过夜。收集沉淀, 冷冻干燥得多糖粗粉, 备用。通过冻干APS与干燥黄芪粉末重量的比率计算得率。
黄芪多糖总糖含量的测定 采用苯酚-硫酸法测定总糖含量, 使用不同浓度的葡萄糖来构建标准曲线。
标准液制备 精密称取无水葡萄糖对照品10 mg于100 mL量瓶中稀释至刻度, 即得100 μg·mL-1的葡萄糖对照品溶液。
标准曲线绘制 精密量取上述葡萄糖标准液0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8和1 mL, 分别置于具塞试管中加水至1 mL, 加5%苯酚溶液1 mL, 涡旋, 加入浓硫酸5 mL, 涡旋, 沸水浴15 min, 取出冰浴至室温, 采用分光光度法, 于波长490 nm处测定吸光度(A)值。以A值为纵坐标, 葡萄糖浓度(C)为横坐标, 得葡萄糖的线性回归方程A = 7.603 1 C + 0.033 7 (r = 0.996 3), 结果表明, 葡萄糖溶液在0.01~0.1 mg·mL-1浓度内呈良好的线性关系。
样品多糖的含量测定 称取黄芪多糖粗制品1 mg溶解于10 mL的蒸馏水中, 摇匀得100 μg·mL-1的供试品溶液。精密吸取供试品1.0 mL, 按标准曲线制备项下自“加5%苯酚水溶液1.0 mL起”依法操作, 测定A值并由回归方程计算样品溶液中糖含量。
黄芪多糖分子量的测定
色谱条件 色谱柱为TSK- GMPWXL (10 μm, 7.8 mm×300 mm)凝胶柱(日本Tosoh公司); 漂移管温度90 ℃, 雾化器(N2)压力26 psi (1 psi ≈ 6.9 kPa); 流动相为水; 流速为0.5 mL·min-1; 柱温30 ℃; 进样量20 μL。
标准曲线绘制 取10个已知相对分子质量的右旋糖酐对照品, 分别加流动相稀释制成约含5 mg·mL-1的单标溶液作为对照品溶液, 分别进样。以保留时间(tR)为横轴, 以lgMw为纵轴, 作图, 得到右旋糖酐对照品线性回归方程logMw= -0.533 6 tR+14.898 (r = 0.990 1)。
供试品溶液的配制 取APS粉末, 加水配制成5 mg·mL-1的供试品溶液, 即得。
单糖组成的测定
色谱条件 色谱柱为华谱Unitary C18 (250 mm×4.6 mm, 5 μm); 流动相为A相-磷酸二氢钾缓冲液(pH 6.7, 50 mmol·L-1), B相-乙腈; 流速为1.0 mL·min-1; 柱温为35 ℃; 检测波长250 nm; 进样量20 μL。
多糖的水解 称取5 mg待测样品置于水解管中, 加入2 mol·L-1三氟乙酸3 mL溶解, 密封, 置于120 ℃烘箱中加热水解2 h。取出放置冷至室温后, 转移至25 mL圆底烧瓶中。45 ℃减压条件下反复加入少量甲醇, 去除残余的三氟乙酸。
单糖对照品的衍生化 分别精密称取甘露糖、半乳糖醛酸、葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖、岩藻糖、N-乙酰葡糖胺和鼠李糖对照品0.09、0.106、0.099、0.09、0.075、0.082、0.111和0.091 g, 将各单糖对照品称至同一个10 mL离心管中, 加5 mL超纯水, 溶解并混匀, 至终浓度为100 mmol·L-1, 即得混合对照品溶液。取1 mL浓度为100 mmol·L-1的混合对照品, 加入9 mL超纯水, 将混合对照品稀释成10 mmol·L-1。置于20 mL量瓶中加水溶解, 并加至刻度, 即得混合对照品溶液。取混合对照品0.2 mL至2 mL EP管中, 与0.5 mol·L-1 PMP溶液0.24 mL及0.3 mol·L-1 NaOH溶液0.2 mL溶液混合, 充分振摇, 放至恒温金属浴中, 70 ℃、300 r·min-1反应70 min。冷却至室温, 加入0.3 mol·L-1 HCl溶液0.2 mL进行中和, 加入氯仿1 mL萃取, 离心, 弃去有机层, 重复萃取3次, 得上层水液, 经0.45 μm微孔滤膜滤过, 备用。
多糖样品的衍生化 精密吸取多糖水解液0.2 mL, 按“单糖对照品的衍生化”项下方法处理后, 即得。
黄芪多糖对RAW264.7细胞免疫功能的影响
细胞培养 RAW264.7细胞在37 ℃、5% CO2饱和湿度下, 于含10%胎牛血清、100 g·L-1青霉素及100 g·L-1链霉素的RPMI1640培养液中进行培养, 待细胞生长至对数期时进行实验。
药物配制 精密配制浓度为100、90、75、60、50、40和25 μg·mL-1的APS溶液, 用直径为0.22 μm的微孔滤膜过滤除菌备用。
APS对RAW264.7细胞吞噬活性的影响 将1×105个·mL-1 RAW264.7细胞悬液接种于96孔板中, 200 μL/孔, 设8个平行孔。培养板置5% CO2、37 ℃孵箱中24 h使细胞完全贴壁。吸去培养液, 用PBS洗去除未贴壁细胞, 加入不同浓度多糖200 μL/孔, 阳性对照组加入0.4 μg·mL-1 LPS溶液, 对照组只加培养液, 继续培养24 h, 作用结束后, 吸出培养液。每孔加200 μL中性红生理盐水(0.075%), 培养1 h后弃去中性红, PBS洗3次, 再加细胞裂解液每孔200 μL, 室温静置过夜。在酶标仪540 nm处测定A值。
数据处理 黄芪多糖和单糖糖谱数据用Sigmaplot 14.0处理。在HPGFC-ELSD (凝胶过滤色谱-蒸发光散射)多糖特征图谱中, 两个谱图之间的相似性被表示为cos θ式(1)和R式(2)。
$\begin{array}{l} \cos \theta = \frac{{A \cdot B}}{{|A| \cdot |B|}} = \\ \;\;\;\;\;\;\;\;\;\frac{{\sum\limits_{i = 1}^n {{A_i}} {B_i}}}{{\sqrt {\sum\limits_{i = 1}^n {A_i^2} } \times \sqrt {\sum\limits_{i = 1}^n {B_i^2} } }}[\theta \in (0, \pi /2)] \end{array} $ | (1) |
$R = \frac{{\sum\limits_{i = 1}^n {\left( {{A_i} - \bar A} \right)} \left( {{B_i} - \bar B} \right)}}{{\sqrt {\sum\limits_{i = 1}^n {{{\left( {{A_i} - \bar A} \right)}^2}} } \times \sqrt {\sum\limits_{i = 1}^n {{{\left( {{B_i} - \bar B} \right)}^2}} } }} $ | (2) |
其中, 1 ≤ i ≤ n, n为两个不同样品特征图谱中的共有峰的色谱峰数, Ai, Bi分别代表两个不同样品中i成分的峰面积或峰高值, A和B分别表示它们的平均值。
使用SIMCA-P 14.0软件对糖特征图谱进行多元统计分析。用PLS对模型进行建立和预测时, 在SXHY、SXWZ和GSLX的各12批黄芪多糖中, 选取每种黄芪多糖样本的1/3为验证集, 即SXHY APS 4批(9~12号), SXWZ APS 4批(21~24号)、GSLX APS 4批(33~36号), 剩下的则为训练集。先将APS 24批训练集导入SIMCA-P14.0软件中进行PLS分析。
运用SPSS 16.0软件对单糖的种类及量进行聚类分析; 采用Graphpad Prism 6对细胞活性测定数据进行t检验分析组间差异, 检验水准α=0.05, P < 0.05表示具有统计学意义。
结果与讨论 1 黄芪多糖得率和总糖含量的测定不同产地及不同种植方式黄芪中多糖得率和含量测定结果见表 1。结果显示不同产地及不同种植方式黄芪中多糖含量略有差异, SXHY的平均多糖含量为71.28%, 平均得率为9.8%, SXWZ的平均多糖含量为69.34%, 平均得率为9.6%, GSLX的平均多糖含量为69.32%, 平均得率为9.8%, SXHY的仿野生黄芪多糖含量相对较高, 这可能是由于不同地区阳光、雨水和土壤质量对植物生长的影响。
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Table 1 Yield and content of Astragalus polysaccharides (APS) |
采用高效凝胶过滤色谱法(HPGFC)对提取得到的36批黄芪多糖进行分子量分布分析, 其结果如图 1及表 2所示, 图 1的色谱峰上的数据为各切割部分的最高点的相对分子量(Mp)。不同产地、不同批次的黄芪多糖样品的HPGFC图谱均按图 1的峰起伏切割成4个部分(或称级分), 每个部分的峰面积占总峰面积的百分比数据列于表 2中。比较表 2可知, 各个样品的分子量分布有比较显著的差异。
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Figure 1 Chromatogram of crude polysaccharides from SXHY(A), SXWZ(B), GSLX(C) by HPGFC |
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Table 2 Relative molecular mass distribution of polysaccharides from different Astragali Radix. Fraction 1-2: > 2 MDa; fraction 3: ≈10 kDa; fraction 4: < 300 Da (No.1-12: SXHY APS; 13-24: SXWZ APS; 25-36: GSLX APS) |
一般来说, 不同的提取方法可能导致不同的分子量分布。从图 2中可以看出, 在相同的提取条件下, 来自SXHY、SXWZ和GSLX的黄芪多糖都具有相似的分子量分布, 均可分为4个部分, 其中第1、2部分分子量大于2 MDa (超出线性范围), 第3部分分子量约为10 kDa, 第4部分分子量约为300 Da。但每个部分的峰面积占总峰面积的百分比具有明显差异。
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Figure 2 The molecular weight peak area of each part of different Astragalus polysaccharides accounts for the percentage of total peak area |
从图 2中可以看出, SXHY仿野生黄芪和SXWZ移栽黄芪总多糖中10 kDa左右的分子量约占总体的50%, 大于2 MDa的分子量约占总体的40%, 小于300 Da的分子量约占总体的10%, 而GSLX的仿野生黄芪总多糖中10 kDa左右的分子量约占总体的30%, 大于2 MDa的分子量约占总体的50%, 小于300 Da的分子量约占总体的20%。目前已上市的注射用黄芪多糖是20世纪90年代初山西省中医药研究院根据山西省黄芪资源现状研发的中药静脉用粉针剂。该药能明显促进造血细胞再生和调节免疫功能, 是当时国内首个全面改善放化疗病人血象、提高肿瘤患者生存质量的中成药。图 3为注射用黄芪多糖(生产批号: 180801)的HPLC-ELSD图, 根据不同浓度葡萄糖绘制的标准曲线, 可计算出注射用黄芪多糖的分子量主要集中在10 kDa左右, 说明10 kDa左右的分子量是其发挥药效的主要部分, 而在山西黄芪总多糖中10 kDa左右的分子量所占百分比远远高于甘肃黄芪。从总多糖分子量分布上, 可以明显区分山西黄芪和甘肃黄芪, 可作为初步区分不同地区黄芪的依据。
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Figure 3 HPLC-ELSD diagram of Astragalus polysaccharide for injection |
基于从HPGFC-ELSD特征图谱中获得的样本变量可计算出cos θ值和R值, SXHY、SXWZ和GSLX的平均cos θ值和R值分别为0.988 7、0.964 5; 0.991 9、0.975 8和0.984 2、0.962 5。而SXHY、SXWZ之间的平均cos θ值和R值为0.978 2和0.937 2, SXHY、GSLX的平均cos θ值和R值分别为0.942 4和0.870 2, SXWZ和GSLX的平均cos θ值和R值分别为0.951 5和0.880 7。结果表明, 相同产地APS之间的相似性高于不同产地之间的相似性。
2.3 多元统计分析PCA的得分散点图能直观地显示不同样品之间的整体差异, 反映数据的原始状态, 观察到实验样品的自然分布和组别关系, 但不能忽略组内误差, 消除与研究目的无关的随机误差[10]。为了保留数据的整体特征与变化规律, 确定不同栽培方式黄芪之间的化学差异成分, 可以采用有监督的OPLS-DA分析对数据进行进一步分析[11]。采用PLS可进行建模和预测, 统计其判别的准确率。
在训练集所建立的模型中, 以t1的得分值(t[1])和t2的得分值(t[2])分别作为横纵坐标进行得分散点图绘制, 即图 4A。从图 4A中能看出, 第一主成分和第二主成分能将3种不同的APS分开。将APS训练集和验证集样品导入SIMCA-P14.0软件中进行分析, 得到得分散点图, 即图 4B。从图 4B中能看出不同种类的APS有较好的区分度, 验证集9~12号、21~24号、33~36号分别与SXHY、SXWZ和GSLX的APS聚集在一起, 说明所建模型可以较好的判别不同种类的APS。
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Figure 4 PLS-derived score plot of the training set (A), PLS-derived score plot of overall APS samples (B), PLS-derived relationship between true value and estimate value of training set (C) and validation set (D), PCA (E) and OPLS-DA (F) scores plots, permutations (G) and VIP-plots (H) of Astragali Radix samples based on polysaccharide specific chromatogram |
图 4C和4D显示了PLS模型中作为训练集与验证集的3种APS之间的真实值与估计值之间的关系。在图 4C中, 训练集以真实值为纵坐标、估计值为横坐标, 绘制散点图, 且两者之间的差异由评估均方差(RMSEE)表示。从图中能得出, RMSEE的值为0.296 609, 且可以看出三者能较明显分开。为了验证PLS训练集模型, 将3种APS的验证集带入训练集所创建的模型中进行验证。预测3种不同种类APS的模型能力由验证集产生的预测均方差(RMSEP)表示。从图 4D中看出RMSEP值为0.323 89, 且3种APS也明显地被预测出来。另外由于RMSEP值与RMSEE值相差不大, 这也说明了所建模型的效果非常好。图 4E为3种黄芪的HPSGFC-ELSD多糖特征图谱PCA得分散点图。由图可见, 山西黄芪与甘肃黄芪可得到较好分离, 而山西仿野生芪和移栽芪能分开但分离不明显。说明不同产地黄芪之间的差异要大于种植方式间差异, 表明土壤、气候、环境等不同的生长条件对黄芪中多糖的分子量分布情况影响较大。进行有监督的正交偏最小二乘判别分析(OPLS-DA) (图 4F)发现三者有较明显的分离趋势, 但存在组间差异。排列实验表明随机变量y变量产生的R2、Q2均小于原始值(其中, R2和Q2值分别表示对数据的解释程度和对模型的预测能力), 证明模型有效可靠(图 4G)。由VIP值(图 4H)可知, 使山西黄芪与甘肃黄芪分开的主要分子量片段为10 kDa左右的部分。
3 黄芪多糖单糖组成的测定 3.1 HPLC-UV单糖特征图谱分析用PMP柱前衍生化-高效液相色谱法测定了8种标准单糖混合物色谱图(图 5A)和样品黄芪单糖特征图谱(图 5B~5D)。将单糖混合对照品图谱与样品黄芪单糖特征图谱进行对照, 发现3种蒙古黄芪多糖的HPLC-UV单糖特征图谱具有相似的保留时间, 可以确定三者都是由鼠李糖、葡萄糖、半乳糖、阿拉伯糖和半乳糖醛酸5种单糖组成的。而相对峰面积不同, 表示3个产地的APS具有不同的单糖物质的量比。以阿拉伯糖的物质的量为1, 求鼠李糖、葡萄糖、半乳糖和半乳糖醛酸的物质的量比, 所得结果如表 3所示。其中含葡萄糖是最多的, 其次是阿拉伯糖和半乳糖。
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Figure 5 HPLC chromatograms of monosaccharide reference substances (A), SXHY (B), SXWZ(C), and GSLX(D). 1: Mannose; 2: Rhamnose; 3: Galacturonic acid; 4: N-Acetylglucosamine; 5: Glucose; 6: Galactose; 7: Arabinose; 8: Fucos |
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Table 3 Determination results of monosaccharide components in APS. No.1-12: SXHY APS; 13-24: SXWZ APS; 25-36: GSLX APS |
采用PLS训练集散点图(图 6A)对所有数据进行分析, 观察3组样本的分离趋势, 可以看出SXHY、SXWZ、GSLX明显分离; 进一步分析APS样品训练集和验证集散点图(图 6B), 发现验证集与训练集能聚集在一起, 说明所建模型能很好判别3种不同的APS。从图 6C中能得出, RMSEE的值为0.164 703, 且可以看出SXHY、SXWZ和GSLX能明显分开。从图 6D中可以看出RMSEP的值为0.251 807, 且3种APS也明显的被预测出来。由于RMSEP值与RMSEE值相差不大, 说明了所建模型的效果非常好。
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Figure 6 PLS-derived score plot of the training set (A), PLS-derived score plot of overall APS samples (B), PLS-derived relationship between true value and estimate value of training set (C) and validation set (D), PCA (E) and OPLS-DA (F) scores plots, permutations (G) and VIP-plots (H) of Astragali Radix samples based on monosaccharides specific chromatogram |
采用PCA散点图(图 6E)对所有数据进行分析, 观察3组样本的分离趋势, 可以看出SXHY、SXWZ、GSLX明显分离; 进一步采用OPLS-DA分析(图 6F), 发现与主成分分析(PCA)图基本一致。用外部模型验证方法排列实验来证明模型成立(图 6G)。由VIP值(图 6H)可知使山西黄芪与甘肃黄芪分开的主要成分为半乳糖醛酸、鼠李糖和葡萄糖(VIP > 1)。
结合表 3分析, 山西黄芪鼠李糖-阿拉伯糖的比值> 0.35:1, 葡萄糖-阿拉伯糖的比值< 21:1, 而甘肃黄芪鼠李糖-阿拉伯糖的比值< 0.35:1, 葡萄糖-阿拉伯糖的比值> 21:1。山西仿野生黄芪半乳糖醛酸-阿拉伯糖的比值> 0.18:1, 鼠李糖-阿拉伯糖的比值< 0.55:1, 山西移栽芪半乳糖醛酸-阿拉伯糖的比值< 0.18:1, 鼠李糖-阿拉伯糖的比值> 0.55:1, 由此推测, 测定黄芪中可溶性的鼠李糖、半乳糖醛酸、葡萄糖和阿拉伯糖, 求算其物质的量的比值, 可用于判断黄芪的产地及种植方式。
3.3 聚类分析将黄芪中的单糖特征图谱数据标准化后导入SPSS 16.0进行聚类分析, 结果如图 7所示。由图可知, 根据黄芪的单糖特征图谱可以很好地区分山西黄芪与甘肃黄芪, 与PCA结果一致。
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Figure 7 Hierarchical cluster analysis on carbohydrates in Astragali Radix samples from different habitats and different planting methods based on monosaccharides fingerprint |
结果表明, SXHY、SXWZ和GSLX的APS基于单糖的含量仍然具有显著的差异, 图 7直观地显示了山西黄芪和甘肃黄芪之间的差异。单糖组成的测定需要完全酸水解, 然后进行柱前衍生化, 虽然样品预处理复杂, 然而, 单糖特征图谱分析仍然是必要的, 并且是确定APS的单糖组成和含量比的有效方法。
4 黄芪多糖免疫活性的测定黄芪多糖是一种免疫调节剂。巨噬细胞(Mφ)是机体免疫系统的重要细胞成分, 具有吞噬、杀伤、递呈抗原、分泌生物活性物质、调控机体免疫以及抑制肿瘤等多种功能[12-14]。检测Mφ吞噬能力, 在了解机体免疫功能和筛选Mφ吞噬功能调节成分等工作中广泛应用。本文使用RAW264.7来研究APS对吞噬活性的影响。
图 8显示APS在0.025~0.1 mg·mL-1的剂量内均能显著增强RAW264.7细胞的吞噬活性, 强弱依次为SXHY > SXWZ > GSLX。且在低浓度时随浓度增加而增强, 一定浓度时增强作用达到最强, 之后随着浓度的进一步增加增强作用逐渐降低, 量效曲线呈“钟罩型”[15]。说明多糖调节免疫功能呈双向调节性, 并不是浓度越大功能越强, 而是存在某一最佳剂量。0.05、0.06和0.075 mg·mL-1的浓度下, 3种不同APS使RAW264.7细胞的吞噬活性分别增加66.6%、65.9%和63.1%; 60.6%、61.3%和61.5%; 57.8%、60.8%和59.8%, 显著高于阳性对照组(LPS)。LPS是一种强大的巨噬细胞活化剂, 在1 μg·mL-1的剂量下, 巨噬细胞吞噬活性增加至99.31%[16]。这种增强的吞噬作用可以加速抗原向其他免疫细胞的递送并引发免疫反应。相比之下, SXHY的黄芪多糖对RAW264.7细胞吞噬功能的增强作用高于SXWZ和GSLX。
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Figure 8 Effect of different concentrations of SXHY(A), SXWZ(B) and GSLX(C) Astragalus polysaccharides on phagocytic activity of RAW264.7 cells. *P < 0.05, **P < 0.01, ***P < 0.001 vs the positive control. n= 8, x ± s |
本实验通过测定36批不同产地和不同种植方式的黄芪样品, 发现SXHY的仿野生黄芪中多糖含量高于SXWZ和GSLX的移栽芪, 且在最适浓度下对巨噬细胞吞噬能力的增强作用是最显著的。说明山西仿野生黄芪的优势性和不可替代性。在本研究中, 仿野生黄芪的产地为道地产区山西浑源, 它生长在土质疏松的半坡环境(宜芪坡), 这些宜芪坡土壤由花岗岩和片麻岩分化而成, 有机质含量高, 土质疏松, 土层深厚, 富含微量元素硒。此外, 这里夏季日照充足, 干旱少雨, 昼夜温差大, 冬季寒冷, 仿野生黄芪在此环境中生长多达6年以上, 独特的生态环境使恒山黄芪具有道地性。而移栽黄芪则是农户选择肥沃土地, 经移栽施肥生长1~2年后采收。相比之下, 仿野生黄芪较移栽黄芪生长环境恶劣。大量研究表明, 植物通常以细胞和整个生物有机体抵抗胁迫。逆境下, 植物会在形态结构、生理生化、渗透调节、植物激素水平、膜保护物质及活性氧平衡、逆境蛋白等诸多环节发生变化, 涉及到植物水分、光合、呼吸、物质代谢等多项生理过程[17-21]。因此, 仿野生黄芪中的次生代谢产物多糖含量高于移栽黄芪, 可能是在环境影响下, 仿野生黄芪比移栽黄芪经受更多的胁迫因素所造成的。
从黄芪的多糖和单糖特征图谱来看, SXHY仿野生芪和SXWZ的移栽芪之间的相似度较高, 而GSLX的移栽芪与前两者的差异性较大。说明对于多糖分子量分布情况和组成单糖的比例, 不同产地的影响要大于不同种植方式。中药材的疗效与产地有关, “离其本土, 则质同而效异”, 故而有药材道地性之说[22]。而不同产地的生态因子对药用植物品质的影响和道地药材的形成是道地药材研究的重要内容。其中气候因子能直接或间接影响药用植物的生长、发育、生殖、行为和分布[23, 24], 土壤无机元素能够影响植物根系营养及生理代谢活动, 促进植物的生长, 影响药用植物化学成分积累, 最终影响中药材品质[25, 26]。但这些影响并不是孤立的, 而是多种因子综合作用的结果。不同产地的各种环境因素可能是导致山西黄芪和甘肃黄芪多糖分子量分布情况和组成单糖比例不同的重要原因。
本实验利用多糖和单糖特征图谱技术, 找出了山西黄芪与甘肃黄芪中多糖分子量分布和单糖组成比例上的差异, 并发现了导致山西黄芪与甘肃黄芪差异的不同分子量片段和单糖比例, 这为不同种植方式黄芪的鉴别提供了依据。同时SXHY仿野生黄芪的多糖含量和增强巨噬细胞吞噬活性的能力高于移栽芪, 且具有显著性差异, 说明仿野生黄芪是不能被移栽芪替代的。因此, 本研究所建立的多糖、单糖特征图谱结合免疫活性评价方式为中药材多糖的质量控制方法提供了新的研究思路。同时, 本研究也为探明道地药材黄芪的物质基础奠定了基础, 对于建立更加合理的多糖质控标准用于黄芪品质评价, 保障市场的存优淘劣, 促进优质中药材资源的发展均具有重要的意义。然而, 本研究还未对不同产地黄芪多糖结构上的差异进行深入地比较分析, 接下来将进一步对其进行研究, 找出不同产地黄芪多糖的差异性结构, 并探讨其与活性之间的关系。
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