过氧化物酶体增殖物激活受体(peroxisome pro liferators activated receptors, PPARs)是一类由配体激活的核受体[1], 可分为PPARα、PPARβ (或PPARδ)及PPARγ三种亚型[2], 不同亚型具有不同的组织分布模式和代谢调控功能[3, 4]。PPARs调控靶基因的作用模式与其他核受体类似: PPARs首先与维甲酸X受体(retinoid X receptor, RXR)形成异二聚体, 然后在CBP/p300等共激活因子的辅助下, 特异性结合靶基因启动子中的过氧化物酶体增殖物反应元件(perox isome proliferator response elements, PPRE), 从而调控靶基因的转录[5]。研究发现, PPARs参与脂质代谢、脂肪生成、胰岛素敏感、炎症反应、细胞生长和分化等重要生化反应及生物调节过程[6]; 一系列代谢综合征与PPARs相关, 包括胰岛素抵抗、糖耐量受损、肥胖、高脂血症、高血压病、动脉粥样硬化症和微量蛋白尿等; PPARα和PPARγ与脂质代谢紊乱、糖尿病等代谢相关疾病密切相关, 分别为贝特类(fibrates)降脂药物和噻唑烷二酮类(thiazolidinediones, TZDs) 2型糖尿病药物的作用靶点[7, 8]。TZDs药物中罗格列酮(rosiglitazone)[9]激活PPARγ能力最强、吡格列酮(pioglitazone)[10]的作用相对较弱, 二者均于1990s成功上市, 成为2型糖尿病治疗的重要药物。虽然TZDs药物治疗了成千上万糖尿病患者, 但长期服用存在体重增加、浮肿、低密度脂蛋白胆固醇水平升高等不良反应[11]。因此, 理想PPARγ激动剂的发现, 已成为目前糖尿病领域的重要研究方向之一。
临床应用的TZDs类药物, 可认为由3个结构单元组成(图 1)。对TZDs药物的结构修饰, 至今主要集中在B和C结构单元。本实验室前期研究中, 设计合成了较多含TZD结构单元的化合物, 发现了不少体外PPRE相对激动活性超过100%的化合物(阳性对照为吡格列酮)[12, 13] (图 1)。
一般认为, A结构单元是TZD药物的药效团。为研究构效关系, 本研究首先尝试对前期获得的活性分子的A结构单元进行修饰, 考察TZD环的变化对PPAR活性的影响。基于此, 设计了目标分子TM1, TM1水解得TM2 (图 2)。
治疗糖尿病并发症的有效药物依帕司他(epalrestat)[14], 与TM2结构非常类似。依帕司他含有的绕丹宁结构单元, 是TZD的生物电子等排体。根据生物电子等排原理, 将TM2中的2位-C=O替换为-C=S, 即为目标化合物TM3(图 3)。为了研究取代基大小及亲疏水性对活性的影响, 进一步设计了TM3的衍生物TM4~TM6(图 3)。
为了研究分子各个结构单元对生物活性的影响, 同时保留A结构单元的3-NH修饰, 设计了C结构单元用疏水性大体积咔唑进行修饰的目标化合物TM7 (图 4)。TM7的结构接近于传统的TZDs药物。
活性测定发现, 目标分子PPRE激动活性与α-葡萄糖苷酶抑制活性均较弱, 但蛋白质酪氨酸磷酸酶-1B (PTP-1B)抑制活性很强。该研究对糖尿病药物的后续研究有一定的参考意义。
结果与讨论 1 目标化合物的合成 1.1 目标分子TM1与TM2的合成2-(5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮-3-基)乙酸(TM2)可由IM1与溴乙酸在碱性条件下直接反应得到(一步法); 也可用IM1与溴乙酸甲酯反应, 先得到2-(5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮-3-基)乙酸甲酯(TM1), 然后再水解得到(二步法)[15]。二步法的优势为可以同时得到目标化合物TM1和TM2, 且溴乙酸甲酯的反应活性高于溴乙酸, 收率也相对较高, 故选用第二种方法(合成路线1)。其中, IM1的合成采用固相合成法, 即SM、芳香醛和无水醋酸钠研磨后, 加热至熔融状态, 出现黏稠即停止加热, 加水后处理即可, 简便易行。
1.2 目标分子TM3~TM6的合成路线TM3~TM6有2条合成路线(合成路线2), 区别在于引入芳亚甲基或氨基酸的顺序:路线1以氨基酸与CS2、氯乙酸发生成环反应得到IM2, 再与芳醛缩合得到TM3~TM6, 该法简便易行, 原料易得; 路线2以绕丹宁为起始原料与芳醛缩合得到IM3, 再与α-溴代烃基乙酸甲酯发生取代反应得到IM4, 进一步水解得到TM3~TM6。路线2中手性原料α-溴代烃基乙酸甲酯不易得到, 且合成步骤长而繁琐, 故采用路线1合成TM3~TM6。
1.3 目标分子TM7的合成路线TM7a和TM7b的主要差别在右端杂环, 前者为TZD结构单元, 后者以绕丹宁为基本结构。它们都可以有多条合成路线, 考虑到原料的易得性、合成难易、反应步骤及反应位点数, TM7a的合成路线见合成路线3。与TM3相似, TM7b的合成路线如合成路线4所示。
本实验共合成51个目标化合物, 收率59.3%~96.4%。所得化合物经熔点测定、1HNMR或13CNMR确证(表 1)。分子中TZD的5位双键构型, 参照文献[16-18]确定。
分别以吡格列酮(0.39 μg·mL-1, 100%)、阿卡波糖(100 μg·mL-1, 74.12%)、矾酸钠(100 μg·mL-1, 93.31%)为阳性对照, 测定10 μg·mL-1目标化合物的PPRE相对激动活性、α-葡萄糖苷酶抑制活性、PTP-1B抑制活性, 测试结果见表 2~4。
10 μg·mL-1TM1~TM2的PPRE相对激动活性、α-葡萄糖苷酶抑制活性、PTP-1B抑制活性结果见表 2。10 μg·mL-1浓度下, TM1与TM2的PPRE相对激动活性在-3.30%~ 37.25%, 低于前期研究的活性分子, 表明在TZDs药物分子的A结构单元修饰, 不一定能达到提高活性的目的; 整体看, PPRE活性TM1系列(羧酸酯型)较TM2(羧酸型)好, 表明TZD型分子的酸性强弱不是决定其PPRE高低的主要因素。分析芳环上取代基对PPRE活性的影响, 发现含有供电子取代基化合物的活性普遍强于吸电子取代基者(图 5), 如PPRE相对激动活性TM1-1(4-NO2)为8.15%、TM1-14(4-HO)为33.62%;进一步, 吸电子作用越强PPRE相对激动活性越小, 如TM1-1(4-NO2, 8.15%) < TM1-2(3,4-2Cl, 17.89%) < TM1-3(4-Cl, 27.97%), 供电子作用越强PPRE相对激动活性越大, 如TM1-7(4-Me, 19.42%) < TM1-9(4-MeO, 27.45%), TM1-10(4-BuO, 30.96%) < TM1-12(3,4-OCH2O, 37.25%)。此外, 芳杂环(如TM1-5、TM1-6)的活性结果整体较好, 这与上市药物中亦含有杂环结构相一致。
α-葡萄糖苷酶抑制剂是通过抑制小肠α-葡萄糖苷酶来阻断碳水化合物分解, 延缓葡萄糖的生成和吸收, 降低餐后血糖峰值[19]。10 μg·mL-1测试浓度下, 目标分子α-葡萄糖苷酶抑制活性在-8.76%~52.82%, 其中TM1-4(4-Br)的抑制活性达到52.82%。比较目标化合物活性发现, TM1(羧酸酯型)活性较TM2(羧酸型)好, 且芳环上含有溴或供电子取代基时活性相对较好。对TM1而言, 同一类型的取代基, 其活性强度相近, 如TM1-1~TM1-3的活性在11%~14%之间, TM1-8~TM1-10及TM1-12的活性在30%~34%之间。
PTP-1B通过催化去磷酸作用阻碍胰岛素在体内的信号表达, 导致胰岛素抵抗, 而胰岛素抵抗是大多数糖尿病发生的原因。由于PTP-1B抑制剂可以提高机体对胰岛素的敏感度, 从而成为糖尿病治疗的药物[20]。10 μg·mL-1浓度下大部分化合物对PTP-1B有抑制活性; 分析构效关系发现, 同一类型的分子其PTP-1B活性相近, 如TM1-3与TM1-4、TM2-3与TM2-4、TM1-5与TM1-6、TM1-7~TM1-10与TM2-4及TM2-5, 表明电性不是影响PTP1-B的主要因素。TM2-6(3,4-OCH2O)抑制活性达到96.71%, 超过20倍浓度的阳性对照矾酸钠, 但其羧酸酯型的TM1-12的抑制活性仅有7.47%, 具体原因尚不清楚。虽然如此, 上述结果可以表明, 5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮结构单元对PTP-1B有一定的抑制作用, 为研发PTP-1B药物提供了新的思路。
2.2 目标化合物TM3~TM6的活性10 μg·mL-1TM3~TM6的PPRE相对激动活性、α-葡萄糖苷酶抑制活性、PTP-1B抑制活性结果见表 3, TM3~TM6系列分子的PPRE相对激动活性、α-葡萄糖苷酶抑制活性、PTP-1B抑制活性整体较弱。与TM2对比, TM3~TM6的α-葡萄糖苷酶抑制活性、PTP-1B抑制活性与TM2相近, 但PPRE活性顺序为TM5 > TM4-7~TM4-11 > TM6 > TM2 > TM3 > TM4-1~TM4-6, 表明C=O到C=S的生物电子等排, 对TM3~ TM6系列分子的PPRE活性影响为有的增强有的减弱, 并且无论分子右端为何种氨基酸结构, 只要左端苯环上的取代基为同一类型—供电子基或吸电子基时, 则每一系列分子的PPRE活性各自相近; 特别是TM4-1~TM4-6六个分子左端苯环上的取代基为吸电子基时, 它们的PPRE都为负值且差别不大。此外, 左端苯环上的取代基相同时, TM3~TM6系列分子的PPRE激动活性强弱顺序为TM5或TM4 > TM6 > TM3(图 5), 表明右端氨基酸的N-α取代基体积愈大则活性愈好。
2.3 目标化合物TM7活性结果与讨论目标化合物TM7结构更接近于传统的TZDs化合物, 仅TZD环上3位的N-H作了修饰, 活性数据见表 4。
对比TM7与TM1~TM6系列目标化合物的PPRE相对激动活性, 发现它们的活性数据差别较小, 表明在前6个系列的基础上引入大体积的咔唑基对活性的影响较小; 但对比IM7与TM1~TM7的PPRE相对激动活性数据, 发现IM7活性强于所有目标化合物, 这进一步表明在TZD环3位的N-H进行修饰以改变酸性, 并不能增强PPAR活性, 这可能就是TZDs上市药物及临床活性分子中无A结构单元修饰的原因。
TM7系列的α-葡萄糖苷酶抑制活性较弱, 与其他几类化合物的活性差别较小。但TM7系列化合物的PTP-1B抑制活性总体较好, 特别是TM7b-2与TM7b-4的抑制活性分别达到98.22%与92.35%。用SimBioSys公司的eHiTS软件计算活性分子与蛋白质(PTP-1B, PDB code 1XBO[21])的对接函数, 后用PyMOL软件获取对接图(图 6, a为蛋白复合物中配体分子[22]CAS: 745079-21-4, b为TM2-6, c为TM7b-2, d为TM7b-4)。
图 6显示高活性分子与蛋白质的结合区域同配体分子一致, 但作用的氨基酸残基有所不同。配体分子与氨基酸残基Gln262、Arg254、Arg221、Asp181、Tyr46、Arg24形成氢键。目标化合物TM2-6与氨基酸残基Arg221、Gly220、Ser216、Phe182、Asp181形成氢键, 目标化合物TM7b-2与氨基酸残基Arg221、Phe182形成氢键, 目标化合物TM7b-4与氨基酸残基Gln266、Gln262、Phe182形成氢键, 且目标化合物的B结构单元中的苯环结构与Phe182有疏水相互作用。目标化合物TM2-6与TM7b-2的羧基与Arg221之间的电荷-电荷相互作用是一种强驱动力的结合。这种相互作用模式在许多已知的PTP-1B抑制剂中是常见的[23]。
2.4 化合物PTP-1B抑制活性IC50值与毒性预测值本研究还测定了PTP-1B高活性分子的IC50值, 见表 5。
糖尿病是慢性疾病, 需要长期服药, 因而糖尿病类药物必须无毒或低毒性。为预知高抑制活性化合物的安全性, 使用美国Simulations Plus公司的毒性预测软件ADMET Predictor 8.0预测化合物的毒性(表 5)。
表 5表明, 大部分高活性目标化合物的最大抑制率高于钒酸钠, 且高活性目标化合物的IC50值均小于高浓度下钒酸钠。毒性预测结果也表明, 高抑制活性化合物可能无毒性, 因而有待更深层次的研究。
3 结论本文从TZDs类药物基本结构入手, 设计了7个系列目标化合物; 选用适宜的合成方法, 合成了51个目标化合物。体外抗糖尿病活性测试发现3个PTP-1B抑制活性很好的目标分子, 其中TM2-6抑制活性高达96.71%、IC50低至1.48 mg·L-1, 优于阳性对照物; 毒性预测显示, 高活性分子可能无毒性, 可作为新型抗糖尿病药物的先导分子进一步研究。
实验部分硫脲(成都化学试剂厂, AR); 无水醋酸钠(温州东升化学化工试剂厂, AR); 溴乙酸甲酯(西南合成制药股份有限公司赠送, > 98%); 溴乙酸(北京力德士化工有限公司, 99%); 二硫化碳、1, 2-二溴乙烷、氢氧化钠、4-硝基苯甲醛、4-溴苯甲醛(成都科龙化学试剂厂, AR); 碳酸钾(重庆川东化工有限公司, AR); 甘氨酸、丙氨酸、苯丙氨酸、天冬氨酸(成都凯泰新技术有限责任公司, CP); 3, 4, 5-三甲氧基苯甲醛、2-噻吩甲醛、4-甲基苯甲醛(Alfa Acear, AR); 2-呋喃甲醛(天津瑞金特化学品有限公司, CP); 氢化钠(J & K Chemical ltd., 60% mineral oil); 氢氧化锂(重庆东方红试剂厂, CP); DMF (Samsung Fine Chemicals, AR); 4-氯苯甲醛(Fluka, AR); 咔唑、4-甲氧基苯甲醛、2, 4-二氯苯甲醛、4-羟基苯甲醛、氯乙酸(国药集团试剂总厂, AR); 6-甲氧基-2-萘醛(浙江佳斯化工有限公司, CP); 氧化胡椒醛(上海双喜香料助剂厂, CP); 苯甲醛(上海试剂一厂, CP); 其余试剂均为市售化学纯或分析纯产品。
超导核磁波谱共振仪(AV-300, Bruker); 精密显微熔点测定仪(X-6, 福凯仪器有限公司)。
1 目标化合物的合成 1.1 噻唑烷2, 4-二酮(SM)的合成在1 L三颈瓶中加入氯乙酸236 g (2.5 mol)、硫脲209 g (2.75 mol)和浓盐酸625 mL, 搅拌下加热回流3 h, 冷却搅拌析晶, 过滤, 晶体用少量H2O洗涤2次, 得2-亚氨基-4-噻唑酮盐酸盐晶体; 向晶体中加入H2O 380 mL及活性炭6 g, 加热回流30 min, 趁热过滤, 滤液冷却搅拌析晶, 过滤, 晶体用少量H2O洗涤2次, 60 ℃干燥8 h, 得噻唑烷-2, 4-二酮白色针状晶体SM184.5 g。Yield: 60%; mp: 125.6~127.1 ℃; IR (KBr, cm-1): 3 134 (s, νNH), 3 047 (s, ν=CH), 2 949, 2 825 (s, νCH2), 1 739 (s, νC=O), 1 655 (s, νC=O), 618.0 (m, νC-S); 1H NMR (300 MHz, CDCl3): δ 4.14 (s, 2H, CH2), 12.02 (s, 1H, NH)。
1.2 目标分子TM1的合成通法于研钵中加入醛11 mmol、SM 10 mmol和无水NaOAc 10 mmol, 混合研磨至粉末状后, 转入100 mL圆底烧瓶, 油浴125 ℃反应, 固体原料迅速熔化, 随即变稠, 直到完全固化时停止反应, 趁热加入二甲基甲酰胺(DMF)使固体完全溶解, 再加50 mL H2O析出大量固体, 用2 mol·L-1 HCl溶液调节pH 5~6, 室温搅拌30 min后于4 ℃静置, 抽滤, 滤饼用H2O洗涤, 100 ℃干燥, 用Et2O-EA=2: 1 (v/v)混合溶剂6~8 mL分散过夜, 抽滤, 干燥, 即得中间体IM1。
5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮(IM1)、溴乙酸甲酯和K2CO3按物质量比1: 1.2: 2投料。于50 mL圆底烧瓶中依次加入IM1、DMF、K2CO3, 搅拌10 min后加入溴乙酸甲酯, 室温搅拌反应, TLC检测反应进程。反应完成后用H2O淬灭反应, 冷藏静置数小时, 抽滤, H2O洗2次。95%乙醇重结晶, 得目标化合物TM1。
1.3 目标分子TM2的合成通法50 mL圆底烧瓶中加入2-(5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮-3-基)乙酸甲酯(TM1) 1 mmol、HOAc 10 mL、HCl 3 mL, 80 ℃水浴加热反应, TLC检测反应进程。反应完成后, 冷却放置, 抽滤, 固体用50%乙醇重结晶, 得目标化合物TM2。
1.4 目标分子TM3~TM6的合成通法在250 mL反应瓶中依次加入NH3·H2O 60 mmol、CS2 60 mmol与0.192 g苄基三乙基溴化铵, 混合搅拌均匀后, 缓慢滴加15 mL氨基酸的NaOH水溶液(由60 mmol氨基酸, 70 mmol NaOH加蒸馏水在冰浴下溶解得到), 大约搅拌反应4 h后在70 ℃水浴下加热蒸馏除去多余的CS2。在冰浴下加入15 mL氯乙酸钠水溶液(冰浴下由72 mmol氯乙酸和72 mmol NaOH加蒸馏水溶解得到)。室温搅拌约2 h后在冰浴下浓盐酸调pH=1, 移入室温搅拌约1 h, 沸水浴加热约30 min, 停止反应, 冷藏静置至析出晶体, 抽滤。50%乙醇重结晶, 得中间体IM2。
将1.1 mmol芳香醛、1.0 mmolIM2和1.2 mmol无水NaOAc加入50 mL圆底烧瓶中, 加3~4 mL醋酸溶解, 90 ℃水浴回流, TLC监测反应进程, 反应完成后用H2O淬灭反应, 冷藏静置数小时, 抽滤, H2O洗2次。固体用50%乙醇重结晶, 得到目标化合物TM3~TM6。
1.5 目标分子TM7a的合成通法于100 mL圆底烧瓶中依次加入4-羟基苯甲醛1 mmol、DMF 3 mL、K2CO3 4 mmol、1, 2-二溴乙烷4 mmol, 室温搅拌反应, TLC监测反应进程, 约24 h反应结束, 抽滤, 加H2O 15 mL稀释, 2 mol·L-1 HCl溶液调至中性, EA萃取, 饱和NaCl洗涤, 有机相无水Na2SO4干燥, 旋蒸。PE/EA (v/v, 8:1) 柱色谱分离得无色晶体IM5。收率74.2%, mp 75~77 ℃。1H NMR (300 MHz, CDCl3) δ 3.68 (2H, t, J = 5.6 Hz, BrCH2), 4.38 (2H, t, J = 5.6 Hz, OCH2), 7.03 (2H, d, J = 8.6 Hz, Ar-H), 7.86 (2H, d, J = 8.6 Hz, Ar-H), 9.91 (1H, s, CHO)。
于100 mL圆底烧瓶中将NaH 1.2 mmol分散到2 mL DMF中, N2保护下加入1.2 mmol咔唑的DMF溶液, 加热至90 ℃搅拌1 h左右, 冰浴下加入1 mL IM5 1 mmol的DMF溶液, 50 ℃搅拌反应, TLC监测反应进程。反应毕, 加H2O淬灭反应, 加EA提取3次, 有机相饱和NaCl洗涤至中性。无水Na2SO4干燥, 旋蒸。PE/EA (v/v, 8:1) 柱色谱分离得纯品IM6。收率54.3%。mp 139~143 ℃。1H NMR (300 MHz, CDCl3) δ 4.43 (2H, t, J = 5.6 Hz, OCH2), 4.76 (2H, t, J = 5.6 Hz, NCH2), 6.89 (2H, d, J = 8.6 Hz, Ar2-H), 7.26~7.29 (2H, m, Ar1-H), 7.46~7.51 (4H, m, 2Ar1-H and 2Ar2-H), 7.75 (2H, d, J = 8.6 Hz, Ar1-H), 8.10 (2H, d, J = 7.7 Hz, Ar1-H), 9.84 (1H, s, CHO)。
以IM6和噻唑烷-2, 4-二酮为原料合成中间体IM7, 实验步骤同5-芳亚甲基噻唑烷-2, 4-二酮(IM1)的合成。收率86.2%。1H NMR (300 MHz, DMSO-d6) δ 4.41~4.45 (2H, m, OCH2), 4.83 (2H, t, J = 4.4 Hz, NCH2), 6.96 (2H, d, J = 8.5 Hz, Ar2-H), 7.19~7.23 (2H, m, Ar1-H), 7.44~7.49 (4H, m, 2Ar1-H and 2Ar2-H), 7.68~7.71 (3H, m, 2Ar1-H and ArCH=C), 8.14 (2H, d, J = 7.7 Hz, Ar1-H), 12.50 (1H, s, NH); 13C NMR (75 MHz, DMSO-d6) δ 41.9, 66.8, 109.6, 115.1, 115.2, 118.9, 120.1, 122.2, 125.7, 126.7, 131.2, 131.6, 140.2, 159.7, 167.5, 167.9。
TM7a的合成由IM7与溴乙酸甲酯反应得到, 实验步骤同TM1和TM2的合成。
1.6 目标分子TM7b的合成通法TM7b的合成由IM6与IM2反应得到, 实验步骤同TM3~TM6。
2 生物活性测试 2.1 PPRE-Luc报告基因筛选实验方法[24-27]HepG2细胞接种于96孔板, 培养过夜; 用转染试剂参照说明书将相应的质粒转染进细胞中, 24 h后换用含待测样品的低糖DMEM培养基, 同时设立正常对照(未转染的细胞)和模型对照(转染的细胞)不加样品。继续培养24 h后检测荧光素酶活性。根据检测到的化学发光强度L值计算激活率, 激活率= [(L样品-L正常) / (L模型-L正常)-1] × 100;每个样品每个浓度设双复孔, 重复两次。
2.2 α-葡萄糖苷酶抑制剂筛选实验方法[28]100 μL反应体系中含0.02 U葡萄糖苷酶(Sigma公司, G-0660) 或适量哺乳动物来源的葡萄糖苷酶(由大鼠小肠组织中提取)、67 nmol·L-1磷酸钠缓冲液(pH = 6.8) 和样品, 同时设立空白对照(不含酶和样品)和阴性对照(不含样品), 37 ℃反应10 min后, 加入0.1 mol·L-1麦芽糖, 室温反应10 min, 再加入200 μL的葡萄糖检测试剂(南京建成公司), 混匀后490 nm测定OD值。根据OD值计算抑制率, 抑制率= 1 -(OD样品-OD空白) / (OD阴性-OD空白)。
2.3 蛋白质酪氨酸磷酸酶1B抑制活性筛选实验方法[29]200 μL反应体系中含PTP-1B (重组表达)、100 mmol·L-1醋酸钠缓冲液(1 mmol·L-1 EDTA, 0.1% Triton-X-100, 15 mmol·L-1 β-巯基乙醇, pH = 6.0) 和样品, 同时设立空白对照(不含酶和样品)和阴性对照(不含样品), 37 ℃反应10 min, 加入蛋白质酪氨酸磷酸酶底物PNPP, 37 ℃继续反应30 min, 加入1 mol·L-1 NaOH终止反应, 405 nm测定OD值。根据OD值计算抑制率, 抑制率= [1-(OD样品-OD空白) / (OD阴性-OD空白)]×100%。初筛时每个样品单浓度设双复孔, 抑制率大于70%的样品测定IC50值, 每个样品梯度稀释6个浓度, 每个浓度设双复孔。根据抑制率, 应用Xlfit软件中的4 Parameter Logistic Model计算IC50。
致谢: 感谢王宁老师测试核磁数据; 感谢成都地奥晏菊芳等测试糖尿病活性数据。[1] | Filzen GF, Bratton L, Cheng XM, et al. Synthesis and SAR of selective benzothiophene, benzofuran, and indole-based peroxisome proliferator-activated receptor δ agonists[J]. Bioorg Med Chem Lett, 2007, 17: 3630–3635. DOI:10.1016/j.bmcl.2007.04.047 |
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