药学学报  2016, Vol. 51 Issue (10): 1558-1563   PDF    
黄芩汤对溃疡性结肠炎大鼠TLR4/MyD88通路调控作用研究
王敦方1, 王彦礼1, 王怡薇1,2, 郭姗姗1, 庄帅星1, 徐航宇1, 李涛3, 杨伟鹏1     
1. 中国中医科学院中药研究所, 北京 100700 ;
2. 国家食品药品监督管理总局高级研修学院, 北京 100073 ;
3. 中国中医科学院医学实验中心, 北京 100700
摘要: 研究黄芩汤对溃疡性结肠炎(UC)大鼠TLR4/Myd88通路及下游细胞因子表达的影响,探讨其治疗效果及作用机制。运用复合法(三硝基苯磺酸+乙醇)制备细胞免疫反应UC大鼠模型;将大鼠随机分为正常对照组、模型组、阳性药柳氮磺胺吡啶组(SASP)和黄芩汤(HQT)高中低剂量组(20、10、5 g·kg-1)。治疗3天后,采用Griess法测定血清中NO含量,ELISA法测定血清中炎症介质IL-4、IL-10、IL-17和PGE2含量;治疗5天后,处死大鼠取结肠,运用免疫组化法检测COX-2、iNOS蛋白的阳性表达,采用Western blot法检测大鼠结肠TLR4、MyD88的蛋白表达。结果显示,模型组血清中NO、IL-17、PGE2水平,结肠组织TLR4、MyD88蛋白表达量及COX-2、iNOS阳性表达均高于正常组(P < 0.05);黄芩汤高剂量组大鼠上述指标均较模型组显著好转(P < 0.05)。说明黄芩汤对溃疡性结肠炎的治疗作用可能是通过抑制TLR4/Myd88/NF-κB通路活化,进而下调促炎细胞因子NO、IL-17和PGE2表达实现的。
关键词: 黄芩汤     溃疡性结肠炎     TLR4     MyD88     细胞因子    
Effect of Huangqin Tang on the function of regulatory TLR4/MyD88 signal pathway in rats with ulcerative colitis
WANG Dun-fang1, WANG Yan-li1, WANG Yi-wei1,2, GUO Shan-shan1, ZHUANG Shuai-xing1, XU Hang-yu1, LI Tao3, YANG Wei-peng1     
1. Institute of Chinese Materia Medica, China Academy of Chinese Medical Sciences, Beijing 100700, China ;
2. China Food and Drug Administration Institute of Executive Development, Beijing 100073, China ;
3. The Experimental Research Center, China Academy of Chinese Medical Sciences, Beijing 100700, China
Abstract: This study was designed to investigate the effect of Huangqin Tang (HQT) on TLR4/Myd88 pathway and the downstream cytokines in rats with ulcerative colitis (UC) to explore its underlying mechanisms of action. The model of UC rats with cell immunoreactivity was made using a compound method (trinitrobenzene sulfonic acid plus ethanol). Rats were randomly divided into the control group, the model group, the salazosulfapyridine (SASP) group, high, medium and low dose (20, 10, 5 g·kg-1) of HQT groups. After a three-day treatment, production of NO in serum was detected by Griess assay, the levels of interleukin (IL)-4, IL-10, IL-17 and prostaglandin E2 (PGE2) in serum were detected by ELISA. After a five-day treatment, the positive protein expressions of COX-2 and iNOS in the colon tissue were determined by ICH method, the protein expressions of TLR4 and MyD88 in colon tissue were determined by Western blot. Compared with the control group, the levels of NO, IL-17, PGE2, the protein expressions of TLR4, MyD88 and the protein positive expressions of COX-2, iNOS were apparently higher in the model group. Compared with model group, the above indexes were significantly improved in the SASP and high-dose HQT groups (P < 0.05). These results show that HQT has a definite effect on UC in rats. Its mechanisms of action may be achieved by inhibiting the activity of TLR4/MyD88/NF-κB signal pathway and down-regulation of NO, IL-17 and PGE 2 production.
Key words: Huangqin Tang     ulcerative colitis     TLR4     MyD88     cytokine    

溃疡性结肠炎(UC)是常见的炎症性肠病, 以腹痛腹泻、黏液脓血便持续或反复发作为主要症状。目前该病病因病机不明确, 尚缺乏有效治疗方法[1]。近年来, 本课题组研究证实黄芩汤(HQT, 由黄芩、芍药、炙甘草和大枣组成)来源于汉代张仲景《伤寒论》, 为历代清热止痢、和中止痛的经典方剂, 对UC大鼠模型肠黏膜炎症有较好的改善作用。NF-κB作为重要的转录因子是UC发生发展过程中多种信号传导途径的汇聚点, 在调节炎症反应相关的基因中起关键作用[2]。而作为NF-κB重要的上游通路TLR4/ MyD88是否参与UC的发病机制, 以及黄芩汤对此通路是否有调节作用则不清楚。本实验通过观察HQT对UC大鼠结肠组织TLR4/MyD88蛋白表达, COX-2、iNOS阳性表达及血清细胞因子的影响, 进一步探讨其治疗UC的可能作用机制。

材料与方法

动物  6~8周龄、体重180~200 g的雄性清洁级SD大鼠, 由北京维通利华实验动物技术有限公司提供。许可证号: SCXK (京) 2012-0001。动物饲养室保持(23±1.5) ℃, 相对湿度(45±15) %。

药品与试剂  黄芩(Scutellaria baicalensis Georgi)、芍药(Paeonia lactiflora Pall.)、炙甘草(Glycyrrhiza uralensis Fisch.)和大枣(Ziziphus jujuba Mill.)均购自北京仟草药业有限公司, 经中国中医科学院中药研究所李先端研究员鉴定为合格药材。HQT水提物按照文献[3]方法提取得到。经指纹图谱相似度和多成分含量分析控制, 提取率约为39.39%, 与对照图谱相似系数为0.998, 主要含黄酮和萜类化合物, 黄酮类成分占水提物总重量的(22.60±9.95) %, 其中主要活性成分质量分数黄芩苷为10.414 9%, 汉黄芩苷为2.417 9%, 千层纸素A-苷为0.822 9%, 符合课题组确定的质量要求[3]。柳氮磺胺吡啶肠溶片(salazosulfapyridine, SASP, 批号: 09150403, 上海信谊天平药业有限公司); 2, 4, 6-三硝基苯磺酸(TNBS, 美国Sigma公司); IL-17、PGE2、IL-4和IL-10 ELISA试剂盒(上海泛柯实业有限公司); 免疫组化及DAB显色试剂盒(武汉博士德生物工程有限公司); TLR4山羊多克隆抗体(美国Santa Cruz公司); MyD88兔单克隆抗体(美国CST公司); 兔抗鼠COX-2多克隆抗体(美国CST公司); 兔抗鼠iNOS多克隆抗体(英国Abcam公司)。

造模方法  采用Morris等[4]报道的方法制备大鼠UC模型, 大鼠禁食24 h后一次性将TNBS (100 mg·kg−1)和50%乙醇溶液0.25 mL用橡胶输液管缓慢注入距肛门约8 cm处的肠腔内, 捏紧肛门, 倒置几分钟。正常组注入相同体积的生理盐水, 术后常规饲养。

实验分组及样品采集  大鼠按体重随机分为正常组、模型组、阳性药SASP组和HQT高、中、低剂量组, 每组7只。造模3天后开始给药, HQT高、中、低剂量组分别按20、10、5 g·kg−1灌胃给药(生药量/大鼠体重, 按照临床人用剂量27 g/70 kg/天, 大鼠给药剂量相当于临床人用剂量的7.2、3.6、1.8倍), 阳性药SASP混悬液组按0.5 g·kg−1灌胃给药, 正常组和模型组灌胃等剂量的生理盐水, 每日1次, 连续5天。末次给药后大鼠禁食24 h, 其中在第3天各组大鼠眼眶取血, 以3 000 r·min−1离心15 min分离血清, 置−20 ℃冰箱冷冻保存。给药5天后处死大鼠, 取出距肛门8 cm处结肠组织, 沿肠系膜缘剪开肠腔, 用生理盐水冲洗肠内容物, 剪成2段, 一段置于−80 ℃冰箱内保存待用, 另一段置于中性甲醛溶液内固定, 石蜡包埋进行常规病理切片及免疫组化染色。

指标检测及方法

外观指标  造模前、造模后和给药后分别观察大鼠精神及活动状况, 记录饮食量。

病理学指标  肉眼及镜下观察结肠组织形态。按常规包埋、切片, 厚度为4 μm, 进行HE染色, 高倍显微镜下选取视野, 根据溃疡大小、炎症浸润和结构损伤程度等进行结肠组织病变损伤程度统计和比较[5, 6]

血清中炎症因子的测定Griess法测定NO含量, ELISA试剂盒测定IL-17、PGE2、IL-4和IL-10含量, 具体按试剂盒说明书进行操作。

结肠中蛋白的表达  取采集好的大鼠结肠样本, 采用BCA法检测蛋白浓度, 将制备好的蛋白样品SDS-PAGE行电泳分离条带, 转膜, 封闭, TBST (Tris-buffered saline with Tween)洗膜, 加入TLR4和MyD88抗体, 4 ℃反应过夜, 洗涤, 加入二抗并室温下孵育2 h, 洗涤, X线胶片曝光, 图片扫描, 采用凝胶图像处理系统分析条带的灰度值。

免疫组化染色  采用S-P法检测大鼠结肠组织中COX-2和iNOS表达。结肠组织用中性甲醛固定24 h后, 常规脱水、浸蜡、包埋、切片, 然后常规二甲苯脱蜡, 梯度酒精水化, 采用复合消化液和抗原修复液进行抗原修复, PBS洗3次, 用3% H2O2溶液孵育15 min (去除内源性过氧化氢酶活性), 滴加1:600浓度的兔抗鼠COX-2单克隆抗体和iNOS多克隆抗体, 4 ℃过夜, PBS洗3次, 滴加聚合HRP标记抗兔IgG 37 ℃孵育30 min, PBS冲洗, DAB显色, 常规脱水, 用中性树胶封片。每张切片在高倍镜下(400×)随机选取4个视野, 以出现棕黄色染色为阳性信号, 检测COX-2、iNOS积分吸光度值, 以均值表示每个标本积分吸光度值。

统计学方法  实验数据用SPSS 19.0统计软件进行分析, 数据以x±s表示, 各组数据间比较采用t检验进行分析, P < 0.05为差异有统计学意义, P < 0.01为差异极具统计学意义。

结果 1 HQT对UC大鼠精神、活动状况及饮食量的影响

经TNBS造模给药的大鼠3天内先后出现不同程度的精神萎靡, 双目暗淡、嗜卧扎堆、竖毛、毛泽无光、体重减轻、进食饮水减少、大便溏或软粒状伴黏冻、个别出现脓血。HQT给药(20、10、5 g·kg−1) 5天后, 上述症状均得到不同程度的改善, 精神萎靡好转、体重增加、大便脓血消失。尤以阳性药SASP混悬液组(0.5 g·kg−1)及HQT高剂量组(20 g·kg−1)改善明显, 而模型组大鼠症状未出现显著改善。

2 病理学指标

UC大鼠结肠组织HE染色见图 1, 高倍镜下各组大鼠结肠组织病变损伤情况的统计比较结果见表 1

Figure 1 Microscopic damage of colon tissue of rats (10×40). Effects of Huangqin Tang (HQT) on colon tissue damage of rats. A: Normal control; B: Model control; C: Salazosulfapyridine (SASP) 0.5 g·kg−1; D: HQT 20 g·kg−1; E: HQT 10 g·kg−1; F: HQT 5 g·kg−1

Table 1 Microscopic damage of colon tissue of rats (10 ×40). n=7. "−": Normal colonic mucosa and colonic mucosal gland structure; "±": No focal inflammation under the colonic mucosa; "+": Limited focal inflammation under colonic mucosa gland; "++": Large inflammatory infiltration under colonic mucosa gland

肉眼观察大鼠结肠组织:正常对照组结肠外观正常, 未见充血, 颜色正常, 浆膜面、黏膜面和肌层未见明显病变; 模型组部分结肠明显充血、瘀血, 并有肠黏膜颜色变褐色, 粪便有节段性充满肠道, 部分味恶臭, 结肠粘连; 阳性药SASP组大鼠结肠未见明显充血、瘀血, 病变明显减轻。HQT各剂量组大鼠结肠充血、瘀血, 肠颜色及肌层厚度与模型组相比有不同程度减轻。

镜下观察大鼠结肠组织:正常组大鼠结肠黏膜完整, 肌层结构正常, 黏膜下没有炎症现象; 模型组大部分大鼠结肠黏膜均有炎症, 肠黏膜内细胞排列紊乱, 且可能由于结肠炎的反复性导致内部细胞大小不均一。部分结肠腺体消失, 被浸润的炎症细胞替代, 以单核细胞、淋巴细胞、嗜酸性细胞代替了正常细胞, 有的黏膜层明显变薄, 个别大鼠结肠的肌层组织炎症较重, 失去了正常结构。与模型组相比, SASP组大鼠结肠黏膜炎症浸润、肠腺溃疡、病变明显减轻; HQT高、中剂量组大鼠黏膜炎症浸润、肠腺溃疡等病变均有不同程度减轻。而HQT低剂量组改善程度不明显。此病理学结果与本课题组前期实验结果一致[2], 说明HQT对改善UC造成的病理损伤具有较好的修复作用。

3 HQT对UC大鼠血清中NO、IL-17、PGE2、IL-4、IL-10含量的影响

造成UC模型后, 大鼠连续给药3天, 血清中NO、IL-17、PGE2、IL-4、IL-10含量变化结果如表 2所示。模型组血清中促炎因子NO、IL-17、PGE2含量均显著高于正常组; 抑炎因子IL-4、IL-10含量低于正常组, 但无统计学差异。与模型组相比, 阳性药SASP组与黄芩汤各组血清中NO均有不同程度的降低, 其中HQT高剂量组(20 g·kg−1)较为明显(P < 0.05); HQT各组IL-17、PGE2均显著降低, 其中HQT高剂量组最为明显(P < 0.05, P < 0.01); HQT高、中剂量组血清中IL-4水平有升高的趋势, 但阳性药SASP组和HQT高剂量组的IL-4水平均低于模型组; 阳性药、HQT高、中剂量组血清中IL-10均高于模型组, 但无统计学意义。结果显示, HQT对促炎因子NO、IL-17、PGE2具有抑制作用, 对抑炎因子IL-10具有升高的作用趋势。

Table 2 Effects of Huangqin Tang (HQT) on concentrations of nitrogen monoxide (NO), interleukin (IL)-4, IL-10, IL-17 and prostaglandin E2(PGE2) after 3 days oral administration on ulcerative colitis rats. n=7, x±s. *P < 0.05, **P < 0.01 vs normal control; P < 0.05, △△P < 0.01 vs model control
4 HQT对溃疡性结肠炎大鼠结肠组织中TLR4/MyD88蛋白表达的影响

Western blot结果如图 2表 3所示, 模型组TLR4、MyD88表达均显著高于正常组(P < 0.05)。与模型组相比, 阳性药SASP与HQT高剂量组TLR4表达均显著降低(P < 0.01, P < 0.05); HQT高、中剂量组MyD88表达显著性降低(P < 0.01, P < 0.05)。HQT中、低剂量组TLR4和HQT低剂量组MyD88表达均降低, 但无统计学差异。

Figure 2 TLR4 and MyD88 protein expression in colon tissue of rats infected by Western blot

Table 3 Toll-like receptor 4 (TLR4) and myeloid differentiation factor 88 (MyD88) protein expression in colon tissue of rats infected by Western blot. Protein levels were standardized against GAPDH levels. n=3, x±s.*P < 0.05 vs normal control; P < 0.05, △△P < 0.01 vs model control
5 HQT对UC大鼠结肠组织中COX-2、iNOS表达的影响

免疫组化检测发现, 各组COX-2和iNOS阳性染色主要位于细胞浆。在正常对照组大鼠结肠组织中仅可见棕黄色颗粒, 模型组可见大量棕黄色和褐色颗粒, 且有由黏膜层向肌层蔓延的趋势, 表达与正常组相比均有显著性升高(P < 0.01)。与模型组相比, 阳性药SASP和HQT高剂量组COX-2表达中棕黄色颗粒向肠外壁蔓延趋势不明显, 表达显著性降低(P < 0.01, P < 0.05), 说明炎症得到了有效控制; 阳性药SASP组和HQT高、中剂量组iNOS表达显著性降低(P < 0.05), HQT低剂量组中COX-2和iNOS表达均无差异性。表明HQT能够抑制UC疾病中COX-2、iNOS的过量表达, 并呈现一定的量效关系。结果见图 3图 4

Figure 3 Effects of Huangqin Tang (HQT) on express and concentration of COX-2 protein in colon tissue of rats (×400). A: Normal control; B: Model control; C: SASP 0.5 g ·kg−1; D: HQT 20 g·kg−1; E: HQT 10 g·kg−1; F: HQT 5 g·kg−1. n=7, x±s. **P < 0.01 vs normal control; P < 0.05 vs model control

Figure 4 Effects of Huangqin Tang (HQT) on express and concentration of iNOS protein in colon tissue of rats (×400). A: Normal control; B: Model control; C: SASP 0.5 g ·kg−1; D: HQT 20 g·kg−1; E: HQT 10 g·kg−1; F: HQT 5 g·kg−1. n=7, x±s. ** P < 0.01 vs normal control; P < 0.05 vs model control
讨论

研究发现, 具有清热止痢和中止痛作用的HQT对UC具有良好的治疗作用[7], 但其防治UC的分子生物学机制尚不明了, 本实验研究HQT对TLR4/ MyD88信号转导通路及IL-4、NO、PGE2等炎症因子的影响, 研究其可能的抗炎机制。

细胞因子可分为促炎细胞因子和抗炎细胞因子两类。抗炎细胞因子主要包括IL-4、IL-10等。促炎细胞因子和抗炎细胞因子之间的平衡失调被视为UC的一个主要发病机制[8, 9]。在体内, PGE2、NO、IL-17均有强烈的促炎反应。COX-2和iNOS是PGE2和NO合成的上游关键酶, 其表达丰度会直接限速下游PGE2和NO的产生[10]。本研究表明, HQT高剂量组IL-4表达低于模型组, Ding等[11]研究结果显示, HQT有效成分配方能升高UC大鼠血清中的IL-4水平, 本研究与其结果相反, 可能与HQT给药时间短, 药物未及充分发挥药效及样本数量有限有关。对于IL-10, HQT对其具有升高的作用。同时, HQT抑制NO、IL-17、PGE2细胞因子及COX-2和iNOS蛋白的表达, 与文献[12, 13]报道一致, 说明HQT能够较好地抑制与UC发病有关的促炎因子及相关蛋白的表达。但有一点值得注意的是, 与课题组前期实验结果[2]对比发现, NO和PGE2虽然呈现的药效趋势基本一致, 但数值有较大出入, 分析不同批次之间大鼠的个体差异可能是造成此差异的主要原因, 推测这也可能是大鼠药理实验重现性差的原因之一。综上所述, 推测HQT能够通过抑制或促进相关细胞因子起到治疗UC的作用。

UC患者存在肠道菌群失调, 在各种微生物抗原刺激下, 各种炎症细胞活化, 产生肠组织的慢性炎症反应。TLR4可通过启动髓样分化因子MyD88进行细胞内信号转导, 最终激活核因子-κB (NF-κB), 引发一系列炎症因子如IL-1β、NO、PGE2表达。破坏机体免疫稳态, 最终导致UC发生[14, 15]。本课题组前期研究显示, HQT组大鼠结肠组织NF-κB p65的表达较模型组显著降低, 说明HQT对溃疡性结肠炎的治疗作用与抑制NF-κB p65活化, 进而下调炎症介质表达有关[16]。本研究发现, 模型组TLR4、MyD88表达均显著高于正常组, 说明UC大鼠结肠中TLR4/ MyD88/NF-κB p65通路被激活。给予不同剂量HQT治疗后, TLR4及MyD88蛋白表达明显降低, 说明HQT对此通路具有较好的抑制作用。

研究表明COX-2基因启动子上具有5' (−455~−428 kb)、NF-κB-3' (−232~−205 kb)两个NF-κB结合位点, iNOS基因24.7 kb上游59-侧翼区也具有NF-κB应答元件[17], 这说明COX-2与iNOS可能是作为炎症相关基因受NF-κB调控。本实验研究显示, COX-2、iNOS与TLR4、MyD88之间的表达密切相关。推测作为上游调节因子的TLR4、MyD88, 在炎症情况下激活NF-κB, 并通过结合这些位点, 从而增强COX-2、iNOS基因转录及蛋白表达, 进而刺激NO、PGE2等炎症因子的释放。而经HQT治疗后的大鼠炎症损伤程度明显减轻, 因此, HQT对TLR4/MyD88通路具有一定的调节作用, 对UC的治疗是有效的, 并从细胞因子和蛋白角度说明了本方剂的作用机制, 反映出中药多环节、多途径和多靶点的作用特点。

综上所述, HQT治疗UC可能通过抑制TLR4蛋白的表达, 影响MyD88引发信号通路下游的基因表达, 从而抑制NF-κB的活化, 减少COX-2及iNOS位点的结合, 减少NO、PGE2和IL-17等促炎因子的释放以及机体免疫系统的过度活化, 这可能是HQT治疗UC的机制之一, 为UC临床机制研究及药物干预提供了参考, 同时由于本研究标本数量较少, 亦缺乏与临床UC患者样本研究的结合, 期待后续大样本与临床UC患者样本深入研究, 以加深对UC机制认识。

参考文献
[1] Wang B, Zhu X, Duan Y, et al. Effect of paeoniflorin on colon tissue pathological morphology and the balance of antiinflammatory and proinflammatory factors in rats with ulcerative colitis[J]. Chin J Integr Tradit West Med Dig (中国中西医结合消化杂志) , 2013, 21 :1–4.
[2] Wang YW, Zhang HH, Wang YL, et al. Effect of Huangqin Tang on the regulatory NF-κB p65 signal pathway in rats with ulcerative colitis[J]. Acta Pharm Sin (药学学报) , 2015, 50 :21–27.
[3] Li T, Zhuang SX, Wang YW, et al. Flavonoid profiling of a traditional Chinese medicine formula of Huangqin Tang using high performance liquid chromatography[J]. Acta Pharm Sin B , 2016, 6 :148–157. DOI:10.1016/j.apsb.2016.01.001
[4] Morris GP, Beck PL, Herridge MS, et al. Hapten-induced model of chronic inflammation and ulceration in the rat colon[J]. Gastroenterology , 1989, 96 :795–803. DOI:10.1016/S0016-5085(89)80079-4
[5] Vigorita VJ. Practical surgical pathology[J]. Bull NY Acad Med , 1986, 62 :287–288.
[6] Yuan BJ, Wang ZQ. The Preclinical Safety Evaluation and Practice[M]. Beijing: Malitary Medical Sciences Publishing House, 1997 : 78 -80.
[7] Yang M, Wu D. The granule of Huangqin Tang combines Mesalamine on the clinical curative effect of ulcerative colitis[J]. Chin J Integr Tradit West Med Dig (中国中西医结合消化杂志) , 2016, 24 :221–223.
[8] MacDonald TT, Monteleone G, Pender SLF. Recent developments in the immunology of inflammatory bowel disease[J]. Scand J Immunol , 2000, 51 :2–9. DOI:10.1046/j.1365-3083.2000.00658.x
[9] Podolsky DK. Inflammatory bowel disease[J]. New Engl J Med , 1991, 325 :928–937. DOI:10.1056/NEJM199109263251306
[10] Zhao HG, Luo FL. Effects of tetrandrine on COX-2/PGE2, iNOS/NO expression in LPS-stimulated RAW264.7 cells[J]. J China Pharm Univ (中国药科大学学报) , 2011, 42 :141–144.
[11] Ding XG, Fu YL. Experimental research on the effects of the formula consisting of active components of Huangqin decoction on experimental ulcerative colitis in rats[J]. J Beijing Univ Tradit Chin Med (北京中医药大学学报) , 2003, 26 :45–48.
[12] Chi HG, Zou Y, Dai SX, et al. Effect of Huangqin Tang on IL23/IL17 pathway in TNBS induced colitis[J]. Chin J Exp Tradit Med Form (中国实验方剂学杂志) , 2013, 19 :211–215.
[13] Zhang K, Deng CS, Zhu YP, et al. Significance of nuclear factor-κB, cyclooxygenase 2 and inducible nitrcoxide synthase expression in human ulcerative colitis tissues[J]. World Chin J Digestol (世界华人消化杂志) , 2002, 10 :575–578.
[14] Baldwin AS Jr. Series introduction:the transcription factor NF-κB and human disease[J]. J Clin Invest , 2001, 107 :3–6. DOI:10.1172/JCI11891
[15] Li XL, Cai YQ, Qin H, et al. Therapeutic effect and mechanism of proanthocyanidins from grape seeds in rats with TNBS-induced ulcerative colitis[J]. Canadian J Physiol Pharm , 2008, 86 :841–849. DOI:10.1139/Y08-089
[16] Zhang HH. Anti-inflammatory Effect and Mechanism of Huangqin Tang (黄芩汤抗炎药效及其作用机制研究)[D]. Beijing:China Academy of Chinese Medical Sciences, 2014.
[17] Tak PP, Firestein GS. NF-κB:a key role in inflammatory diseases[J]. J Clin Invest , 2001, 107 :7–11. DOI:10.1172/JCI11830