药学学报  2016, Vol. 51 Issue (8): 1257-1262   PDF    
基于肝窦内皮细胞功能评价隐丹参酮抑制血管新生的作用
黄恺1, 赵志敏1, 刘洪亮2, 孙鑫2, 吕靖2, 陶艳艳2, 刘成海1,2,3     
1. 上海市中医临床重点实验室, 上海 201203 ;
2. 上海中医药大学附属曙光医院, 肝病研究所, 上海 201203 ;
3. 上海高校中医内科学E-研究院, 上海 201203
摘要: 观察隐丹参酮调控人肝窦内皮细胞(human hepatic sinusoidal endothelial cells,HHSEC)功能抑制血管新生的作用。本文以CCK8法测定隐丹参酮对HHSEC毒性;以内皮细胞生长因子(endothelial cell growthsupplements,ECGS)诱导HHSEC增殖,以索拉非尼为阳性对照药,CCK8法、5-乙炔基-2’-脱氧尿苷(5-ethynyl-2’-deoxyuridine,EdU)检测细胞增殖;免疫荧光法观察胞内血管性血友病因子(von willebrand factor,vWF)的表达;荧光探针法测定胞内一氧化氮(nitric oxide,NO)水平;管腔形成实验、斑马鱼血管新生实验评价其抑制血管新生的作用。与空白组比较,ECGS显著诱导HHSEC增殖,升高vWF表达和NO水平,10μmol·L-1隐丹参酮能够显著抑制HHSEC的增殖,降低vWF表达和胞内NO水平;对管腔形成及转基因斑马鱼血管新生具有显著抑制作用。结果提示,隐丹参酮具有调节内皮细胞功能抑制血管新生的活性。
关键词: 隐丹参酮     肝窦内皮细胞     管腔形成     斑马鱼     血管生成     肝纤维化    
Evaluation of cryptotanshinone inhibition of angiogenesis in human hepatic sinusoidal endothelial cells
HUANG Kai1, ZHAO Zhi-min1, LIU Hong-liang2, SUN Xin2, LÜ Jing2, TAO Yan-yan2, LIU Cheng-hai1,2,3     
1. Shanghai Key Laboratory of Traditional Chinese Clinical Medicine, Shanghai 201203, China ;
2. Institute of Liver Diseases, Shuguang Hospital, Shanghai University of Traditional Chinese Medicine, Shanghai 201203, China ;
3. E-institute of TCM Internal Medicine, Shanghai Municipal Education Commission, Shanghai 201203, China
Abstract: To investigate the effects of cryptotanshinone (an active ingredient of Salvia Miltiorrhiza) inhibition of angiogenesis, the toxicity of cryptotanshinone was assayed in human hepatic sinusoidal endothelial cells (HHSEC) by CCK8 method. Max dose without toxicity is 10 μmol·L-1. The proliferation of HHSEC were induced by the endothelial cell growth supplement (ECGS), with 2.5 μmol·L-1 sorafenib as the positive control. Cell proliferation was analyzed by EdU assay. Cell viability was analyzed by CCK8 method. The expression of vWF was analyzed by immunofluorescence method. Fluorescence probe method was used to detect the intracellular nitric oxide (NO) levels. Tube formation of HHSEC and transgenic zebrafish were also observed to evaluate the effects of cryptotanshinone against angiogenesis. Compared with normal control, there is a proliferation of HHSEC induced by ECGS. The expression of vWF and the NO levels increased significantly. Cryptotanshinone inhibited the proliferation, down regulated the expression of vWF and the NO levels. Further, cryptotanshinone inhibited the tube formation of HHSEC and reduced the number of fu nctional vessels in transgenic zebrafish. The results suggest that cryptotanshinone could inhibit angiogenesis by regulating the HHSEC cell function.
Key words: cryptotanshinone     liver sinusoidal endothelial cell     tube formation     zebrafish     angiogenesis     liver fibrosis    

肝纤维化的发生、发展与异常血管生成和重构密切相关[1],肝窦损伤及其肝窦毛细血管化是肝血管新生的主要形式,其发生于纤维化之前[2],是纤维化病理的特殊形式及组成部分。肝窦内皮细胞是这一病理变化的重要细胞学基础[3]。病理性肝血管新生会加重肝纤维化活动性,物质交换产生障碍,进一步影响肝细胞功能,使肝纤维化更加难以逆转。动物实验表明,采用血管新生抑制剂索拉非尼后,能有效减缓肝硬化的发展[4, 5]。抗肝窦毛细血管化是防治肝纤维化、肝硬化及其并发症的重要治疗策略,因此,本实验采用索拉非尼作为阳性对照药。

丹参为中国传统中药材,具有活血祛瘀、通经止痛和凉血消痈等功效。研究发现,其可通过抗过氧化、抑制炎性因子释放和改善肝脏微循环达到抗肝纤维化的作用[6]; 还能调节血管内皮生长因子 (vascular endothelial growth factor,VEGF) 及其受体 (vascular endothelial growth factor receptor 2,VEGFR2)、基质金属蛋白酶 (matrix metalloproteinases) 和NO等调节血管新生[7]。其脂溶性成分隐丹参酮可改善肝功能和抗肝纤维化[8, 9],并可从多途径调节血管新生[10],对肿瘤血管[11]、鸡胚尿囊膜的血管生成[12]、人脐静脉内皮细胞和人胃癌SGC-7901细胞等具有抑制作用[13-15]。本研究采用人肝窦内皮细胞 (human hepatic sinusoidal endothelial cells,HHSEC) 增殖模型,观察药物对细胞增殖、表型、NO水平及生成血管能力的影响,并通过斑马鱼血管新生模型在整体水平上进行验证,进一步对隐丹参酮抗肝纤维化血管新生的活性进行评价,探讨其抑制血管新生作用是否与调节肝窦内皮细胞功能有关。

材料与方法

药物与试剂 隐丹参酮 (CAS#35825-57-1,上海融禾医药科技发展有限公司,纯度≥98%); 索拉非尼 (sorafenib,Bayer公司); 内皮细胞培养液 (ECM,Cat#1001)、胎牛血清 (Cat#0025)、内皮细胞生长因子 (ECGS,Cat#1052) (Scinecell公司); DMSO (Cat #0231,Sigma公司); 胞内血管性血友病因子 (vWF) 抗体(Cat#ab6994,Abcam公司); 5-乙炔基-2'-脱氧尿苷 (EdU) 细胞增殖试剂盒 (Cat#C10310,广州锐博生物科技有限公司); CCK8 (Cat#C0037)、一氧化氮 (NO) 荧光探针 (Cat#S0019) (碧云天生物技术研究所); Matrigel (Cat#356234,BD Biosciences公司)。

细胞培养 HHSEC购自Sciencell公司,以含5% 胎牛血清 (FBS) 和5% ECGS的ECM培养液37 ℃培养,每3~4天传代1次。

斑马鱼模型 转基因斑马鱼 (VEGFR:GFP) 由山东省科学院提供。

细胞模型 2% (v/v) ECGS诱导HHSEC增殖,以不添加ECGS为对照。

细胞毒性 HHSEC以每孔6 000个接种于96孔板中,待生长至亚单层,弃原细胞培养液,分别加入2.5、5、10、20和40 μmol·L-1隐丹参酮条件培养基,每组设6个复孔,孵育24 h后弃培养液,每孔加入CCK8溶液100 μL,孵育2 h后于450处检测吸收度值 (A)。

细胞增殖 HHSEC以每孔7 500个接种于96孔板中,待生长至亚单层,弃原细胞培养液,除对照组外,各组加入2% ECGS诱导细胞增殖,以2.5 μmol·L-1索拉非尼与10 μmol·L-1隐丹参酮组孵育24 h, 每组设 4个复孔,孵育后弃原培养液,每孔加入50 μmol·L-1 EdU溶液100 μL,孵育2 h,弃上清,4% 多聚甲醛4 ℃固定15 min,0.2% 甘氨酸孵育10 min,磷酸盐缓冲 液(PBS) 洗涤5 min×2次,0.5% Triton X-100透膜 10 min,PBS洗涤5 min,EdU染色反应液避光孵育 30 min,PBS洗涤5 min,Hoechst (1∶2 000) 避光孵育5 min,PBS洗涤5 min×2次,Thermo scientific varioskan flash采集图像并分析。CCK8法检测细胞活力,方法同细胞毒性。

免疫荧光法检测vWF表达 取对数生长期HHSEC,除对照组外,各组加入2% ECGS诱导细胞增殖,以2.5 μmol·L-1索拉非尼与10 μmol·L-1隐丹 参酮孵育24 h,每组设4个复孔,孵育后弃原培养液,多聚甲醛固定15 min,PBS洗2次,2.5%小牛血清白蛋白室温封闭1 h,一抗4 ℃孵育过夜,PBS洗3次,二抗37 ℃避光孵育1 h,Hoechst染核5 min,PBS洗 涤3次,50% 甘油封片,激光共聚焦观察并采集图像,Image-Pro Plus6.0对vWF荧光表达进行半定量分析,计算积分光密度值 (integrated option density,IOD)。

荧光探针法检测胞内NO水平 取对数生长期HHSEC,除对照组外,各组加入2% ECGS诱导细胞增殖,以2.5 μmol·L-1索拉非尼与10 μmol·L-1隐丹参酮组孵育24 h,每组设3个复孔,孵育后弃培养液,每孔加入NO探针100 μL,孵育20 min后,PBS洗涤3次。Thermo scientific varioskan flash (激发波长495 nm,发射波长515nm) 读板并计算平均荧光强度。

管腔形成 96孔板中每孔预先加入Matrigel Matrix 100 μL,37 ℃聚合1 h; 调节HHSEC数至1×105/mL,2.5 μmol·L-1索拉非尼组与10 μmol·L-1隐丹参酮组培养液中预先加入2% ECGS,与细胞悬液按1∶1混合,每孔200 µL铺在基质胶上,每组设3复孔,孵育8 h,Olympus倒置显微镜下观察管腔形成情况并采集图像,并统计完整管腔数。

斑马鱼实验 转基因斑马鱼 (VEGFR:GFP) 受精卵发育24 h,96孔板中培养,每孔预加入100 μmol·L-1索拉非尼与10 μmol·L-1隐丹参酮,以不含药物胚胎培养用水为对照,每组10条,置于光照培养箱 (28 ℃) 内继续发育24 h,显微镜下观察,记录节间血管的血流数。采用三卡因甲磺酸盐麻醉,荧光显微镜下对节间血管进行计数并拍照。观察结束后,4%多聚甲醛中固定,甲醇脱水,丙酮透化,碱性磷酸酶染色,显微镜下拍照。

统计学处理 计量资料用x± s表示,所有数据均使用SPSS 17.0软件包进行统计学分析,组间比较使用单因素方差分析,以P < 0.05为差异具有统计学意义。

结果 1 隐丹参酮对HHSEC毒性测定

采用CCK8法检测结果显示,隐丹参酮浓度超过10 μmol·L-1后细胞数量显著减少 (P < 0.01,图 1A),具有明显毒性。故后续实验设定药物剂量小于10 μmol·L-1

Figure 1 Effects of cryptotanshinone on the proliferation of human hepatic sinusoidal endothelial cells (HHSEC) induced by endothelial cell growth supplements (ECGS). Cells were treated for 24 h. A: Cytotoxicity (CCK8,A450 nm),n = 6,x± s; B: Cell proliferation (CCK8,A450 nm),n = 4,x± s; C: The quantitative results of the mean fluorescence intensity detected by EdU; D: Cell proliferation (5-ethynyl-2'-deoxyuridine,EdU,x100). Model: 2% ECGS; Sorafenib: 2.5 μmol·L-1; Cryptotanshinone: 10 μmol·L-1. P < 0.05,**P < 0.01 vs control; P < 0.05,△△P < 0.01 vs model
2 隐丹参酮对ECGS诱导的HHSEC增殖的影响

采用CCK8法检测结果显示,与空白对照组比 较,ECGS诱导的HHSEC活力和细胞增殖明显 (P < 0.05); 2.5 μmol·L-1索拉非尼和10 μmol·L-1隐丹参酮使细胞活力和增殖显著下降 (P < 0.01) (图 1B)。EdU法检测结果显示,与空白对照组比较,ECGS诱导的 HHSEC胞内平均荧光强度显著增高 (P < 0.05); 与模型组相比,2.5 μmol·L-1索拉非尼组与10 μmol·L-1隐丹参酮组平均荧光强度显著下降 (P < 0.05) (图 1C,D)。结果表明隐丹参酮能够显著抑制ECGS诱导的HHSEC增殖。

3 隐丹参酮对ECGS诱导的HHSEC细胞vWF表达及NO水平的影响

vWF免疫荧光染色显示,与空白对照组相比,ECGS诱导的HHSEC中vWF平均荧光强度显著升 高 (P < 0.01); 与模型组相比,2.5 μmol·L-1索拉非尼和10 μmol·L-1隐丹参酮组平均荧光强度显著降低 (P < 0.01) (图 2A,B)。荧光探针法检测NO水平显示,与空白对照组相比,ECGS诱导的HHSEC平均荧光强度显著升高 (P < 0.05); 与模型组相比,2.5 μmol·L-1索拉非尼组与10 μmol·L-1隐丹参酮组平均荧光强度显著降低 (P < 0.05) (图 2C)。结果表明,隐丹参酮对HHSEC表型标志物vWF表达及胞内NO水平具有调节作用。

Figure 2 Effects of cryptotanshinone on von willebrand factor (vWF) expression and nitric oxide (NO) levels in HHSEC induced by ECGS. Cells were treated for 24 h. A: Immunofluorescence staining of vWF (x100); B: The quantitative results of vWF expression analyzed by integrated option density (IOD); C: The quantitative results of NO levels analyzed by mean fluorescence intensity,n = 3,x± s. Model: 2% ECGS; Sorafenib: 2.5 μmol·L-1; Cryptotanshinone: 10 μmol·L-1. P < 0.05,**P < 0.01 vs control; P < 0.05,△△P < 0.01 vs model
4 隐丹参酮对HHSEC管腔形成及转基因斑马鱼血管新生的影响

管腔形成实验结果显示,ECGS诱导的HHSEC在底物胶作用下形成管腔样结构,在2.5 μmol·L-1索拉非尼、10 μmol·L-1隐丹参酮作用下HHSEC形成的管腔结构显著减少 (P < 0.01) (图 3AC)。斑马鱼实验结果显示,与空白对照组相比,100 μmol·L-1索拉非尼组与10 μmol·L-1隐丹参酮组斑马鱼功能血管数显著减少 (P < 0.01) (图 3BD)。结果表明,隐丹参酮在细胞和整体水平对血管新生具有抑制作用。

Figure 3 Effects of cryptotanshinone onthe tube formation of HHSEC induced by 2% ECGS,n = 3. A: Tube formation in Matrigel (x40). B: Observation of the intersegmental vessels of transgenic zebrafish. C: The tube formation numbers of HHSEC were quantified by manual counting. D: The quantitative results of numbers of function vessels in transgenic zebrafish. n = 10,x± s. **P < 0.01 vs control
讨论

肝纤维化是多种慢性肝病引起的损伤修复反应,缺氧或肝脏微环境改变在肝纤维化发生中起到重 要作用[16]。肝窦内皮细胞对缺氧十分敏感,而血管 增生常常是缺氧的代偿性反应。肝组织缺氧时,缺氧诱导因子-1α (hypoxia-inducible factor-1α,HIF-1α)/ VEGF/丝裂原活化蛋白激酶 (mitogen-activated protein kinase,MAPK) 等信号通路激活可导致肝窦内皮细胞增殖。在体外模型筛选中,本研究选用含VEGF因子的ECGS诱导HHSEC增殖,预实验中探索了2.5、5和10 μmol·L-1浓度下隐丹参酮的药效,最后以 10 μmol·L-1为实验药物浓度。EdU检测结果显示隐丹参酮对细胞增殖具有显著抑制作用。

同时,在ECGS刺激下,HHSEC中的内皮型一氧化氮合酶 (endothelial nitric oxide synthasee,eNOS)活性增强,催化更多的NO产生,引起内皮细胞通透性及窗孔结构发生改变[17-19],在加入索拉非尼、隐丹参酮干预后,胞内NO水平随之显著降低,表明药物对细胞增殖时合成NO的能力具有调节作用。肝窦内皮细胞在增殖和迁移过程中表型也同时发生改变: 窗孔减少或消失、内皮下连续性基底膜形成,同时第八因子相关抗原 (factor Ⅷrelated antigen)/vWF等肝窦内皮细胞标志物重新表达[20],最终导致肝窦毛细血管化与新血管芽生。因此,选择vWF作为观察肝窦内皮细胞表型变化的标记物,结果显示,在HHSEC增殖的同时,细胞vWF平均荧光强度显著升高,隐丹参酮可以显著降低vWF的表达,对细胞表型具有一定的调节作用。

HHSEC是血管生成的理想的细胞载体,本实验通过管腔形成模拟体外血管形成过程。血管荧光标 记的转基因斑马鱼作为一种新型的模式生物,在鉴定新生血管上具有直观性强和定量简便等优势[21, 22],广泛应用于血管活性药物的筛选。本研究采用以上两种模型,分别从细胞和整体水平上验证药物。结果表明,ECGS诱导的HHSEC在底物胶作用下可形成管腔样结构,隐丹参酮可显著抑制HHSEC管腔形成,并对斑马鱼功能血管数具有显著抑制作用。

综上所述,隐丹参酮能够抑制HHSEC增殖,下调vWF表达及胞内NO水平,抑制HHSEC形成管腔样结构及斑马鱼功能血管数,以调节肝窦内皮细胞功能从而抑制血管新生。本研究仅观察了隐丹参酮对肝窦毛细血管化所相关的细胞增殖、表型、NO水平及成血管能力等指标的影响,有关涉及更深层次的信号通路尚待后续研究进一步完善。

参考文献
[1] Wu XX, Zhang CZ, Wang X, et al. Targeting angiogenesis and vascular remodeling as a novel therapeutic approach to liver fibrosis[J]. Acta Pharm Sin (药学学报) , 2015, 50 :535–540.
[2] Straub AC, Stolz DB, Ross MA, et al. Arsenic stimulates sinusoidal endothelial cell capillarization and vessel remodeling in mouse liver[J]. Hepatology , 2007, 45 :205–212. DOI:10.1002/(ISSN)1527-3350
[3] Wang BY, Fu BY, Zhang J, et al. The influence of alcohol on the liver sinusoids endothelial cell fenestrae of rats[J]. Chin J Hepatol (中华肝脏病杂志) , 2004, 12 :479–481.
[4] Tugues S, Fernandez-Varo G, Munoz-Luque J, et al. Antiangiogenic treatment with sunitinib ameliorates inflammatory infiltrate,fibrosis,and portal pressure in cirrhotic rats[J]. Hepatology , 2007, 46 :1919–1926. DOI:10.1002/hep.21921
[5] Mejias M, Garcia-Pras E, Tiani C, et al. Beneficial effects of sorafenib on splanchnic,intrahepatic,and portocollateral circulations in portal hypertensive and cirrhotic rats[J]. Hepatology , 2009, 49 :1245–1256. DOI:10.1002/hep.22758
[6] Tao YY, Liu CH. Progress of research on mechanism of salvia miltiorrhiza and its chemical ingredients against liver fibrosis[J]. J Chin Integr Med (中西医结合学报) , 2004, 2 :145–148. DOI:10.3736/jcim
[7] Chi XX, Gao XY. Progress on Radix Salviae Miltiorrhiae modulating angiogenesis and its mechanisms[J]. Strait Pharm J (海峡药学) , 2010, 22 :3–6.
[8] Fang Y, Zhu BL, Zhang Y. Improvement of cryptotanshinone on hepatic encephalopathy in rats with cirrhosis induced by lipopolysaccharide[J]. Drugs Clin (现代药物与临床) , 2016, 31 :11–16.
[9] Xu JK, Kurihara H, Zheng JJ, et al. Protective effect of tanshinones against liver injury in mice loaded with restraint stress[J]. Acta Pharm Sin (药学学报) , 2006, 41 :631–635.
[10] Zhuang Q, Mao W. Research Advances in mechanism of bioactive tanshinones in Salviae Miltiorrhiae regulating angiogenesis[J]. J Zhejiang Chin Med Univ (浙江中医药大学学报) , 2014, 38 :506–510.
[11] Ye H, Ruan JS, Wang SM. Research progress on anti-tumor metastasis of cryptotanshinone[J]. Chin Pharmacol Bull (中国药理学通报) , 2014, 30 :893–896.
[12] Bian WP, Xu Y, Wang J, et al. The antiangiogenesis effect of cryptotanshinone on chick embryo chorioallantoic membrane[J]. J Chin Microcirc (中国微循环) , 2007, 11 :23–26.
[13] Fan XM, Ren GX, Liang QL, et al. Study on inhibitory effects and mechanism of lipophilic components in Salvia miltiorrhiza on angiogenesis in vitro[J]. China J Chin Mater Med (中国中药杂志) , 2014, 39 :744–747.
[14] Zhu ZJ.The Effect and Mechanism of Cryptotanshinone on Angiogenesis (基于生物网络调控下丹参抗肿瘤血管生成研究——隐丹参酮对血管生成的影响及机制研究)[D].Jiangsu:Nanjing University of Chinese Medicine,2014.
[15] Deng FC, Yu ZJ, Yang Y, et al. Effect of cryptotanshinone on the proliferation and vascular endothelial growth factor mRNA expression in human gastric cancer cell line SGC-7901[J]. China Med Her (中国医药导报) , 2015, 12 :7–10.
[16] Liu CH, Lv J. Liver fibrosis project meeting report of AASLD[J]. Chin Hepatol (肝脏) , 2007, 12 :138–142.
[17] Zhang ZL, Zhang F, Lu Y, et al. Update on implications and mechanisms of angiogenesis in liver fibrosis[J]. Hepatol Res , 2015, 45 :162–178. DOI:10.1111/hepr.12415
[18] Iwakiri Y, Grisham M, Shah V. Vascular biology and pathobiology of the liver:report of a single-topic symposium[J]. Hepatology , 2008, 47 :1754–1763. DOI:10.1002/hep.22203
[19] Deleve LD. Liver sinusoidal endothelial cells in hepatic fibrosis[J]. Hepatology , 2015, 61 :1740–1746. DOI:10.1002/hep.27376
[20] Lee JS, Semela D, Iredale J, et al. Sinusoidal remodeling and angiogenesis:a new function for the liver-specific pericyte?[J]. Hepatology , 2007, 45 :817–825. DOI:10.1002/(ISSN)1527-3350
[21] Ding LL, Liu M, Zhang SH, et al. Lidamycin inhibits angiogenesis of zebrafish embryo via down-regulation of VEGF[J]. Acta Pharm Sin (药学学报) , 2010, 45 :456–461.
[22] Cross LM, Cook MA, Lin S, et al. Rapid analysis of angiogenesis drugs in a live fluorescent zebrafish assay[J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 2003, 23 :911–912. DOI:10.1161/01.ATV.0000068685.72914.7E