2. 中国农业大学动物医院, 北京 100193
2. China Agricultural University Veterinary Teaching Hospital, Beijing 100193, China
脊索瘤起源于脊索残留,在人和动物中发病率较低[1]。在动物中,脊索瘤最常见于雪貂[2],也可发生于犬[3]、大鼠[4]、猫[5]、水貂[6]、斑马鱼(Danio rerio)[7]、小鼠(Peromyscus Poliontus trissyllepsis)[8]、八齿鼠[9]、虎[10],多发于颈椎、胸椎、腰椎及尾椎等中轴骨。肿瘤生长缓慢,呈局部侵袭性、浸润性,破坏椎体并侵犯临近组织,被认为是潜在的恶性肿瘤。一般通过手术切除治疗,术后局部复发率较高,发生远处转移的风险较低,但也见有雪貂皮肤转移[11]、大鼠肺部转移[11]以及猫淋巴结转移[12]的报道。
本研究联合H. E.染色、免疫组织化学染色及PAS染色,对一例安德鲁貂尾部肿物进行组织病理学观察分析,诊断为软骨样脊索瘤,在兽医临床上较为罕见,国内未报道过安格鲁貂的软骨样脊索瘤病例,本文提供其病例资料,为兽医临床诊治和研究提供参考。
1 材料与方法安德鲁貂,雄性,3岁,体重1.16 kg。主诉:尾尖肿大有1年左右,半年前有过踩伤,导致伤口感染,饮食欲正常,二便正常,精神状态尚可。
体格检查未见明显异常,直接手术切除治疗,肿物固定于10%福尔马林中。固定好的组织经石蜡包埋后制作2 μm切片,分别进行苏木素-伊红(hematoxylin-eosin,HE)染色、PAS(Periodic Acid-Schiff stain)染色和免疫组织化学(immunohistochemistry)染色,使用Olympus显微镜观察,采集数码图像。
2 结果 2.1 大体观察肿物位于尾尖,有皮肤覆盖,肿物顶端无毛(图 1A),呈棒状肿胀,质地柔软,大小约1 cm×3 cm×1 cm(图 1B),切面湿润,呈白色,质地似脂肪组织(图 1C)。手术切除半年后尾部完全恢复(图 1D)。
低倍镜下,可见表皮完整无破溃,肿物分界清楚,位于真皮层,中央有一空腔,是由于制片过程中尾椎缺失所致(图 2A);增生细胞被纤维结缔组织分割为多个小叶状(图 2B);空腔周围有大量蓝染的钙化灶,可见残存的粉染的软骨组织,也可见少量蓝染的黏液基质(图 2C)。高倍镜下,可见肿瘤细胞呈圆形或椭圆形,大小不一,胞核致密蓝染,呈椭圆形或不规则形,位于细胞边缘,细胞质呈空泡状,有些细胞胞浆中有多个空泡,呈气球样细胞(图 2D)。
免疫组化(immunohistochemistry)可见肿瘤细胞呈细胞角蛋白CK(图 3A)、细胞波形蛋白(vimentin)(图 3B)以及中枢神经特异蛋白S-100(图 3C)呈强阳性。
PAS染色可见阳性颗粒(图 3D)。
3 讨论脊索瘤是一种极为罕见的肿瘤,起源于残留的胎儿脊索组织[13],国内未见报道,本研究以期对今后该类肿瘤的诊断治疗和研究提供参考。哺乳动物的脊索只在胚胎时期起作用,在成年动物中,退化的脊索以髓核的形式存在于椎间盘内[14]。然而,在某些情况下,残留的脊索细胞仍然存在于椎间盘外,并可能形成肿瘤。脊索瘤只发生在中轴骨骼,且在光镜和电镜下,其表现出的液泡状细胞(physaliphorous)与脊索相似,因此,被认为来源于脊索[15]。雪貂的脊索瘤常发于尾部末端[11],通常为良性的,预后较好,也可发生在颈部、胸部的中轴骨。啮齿类动物脊索瘤可发生在轴向骨骼的颅段、颈段、胸段、腰段、骶段和尾段之间,大鼠腰骶区发病率较高[4],小鼠胸椎发病率高[8]。除了肿瘤转移之外,中轴骨外的脊索瘤只在斑马鱼的肠道发生过[7]。
世界卫生组织(WHO)确认了人脊索瘤的3种亚型:经典脊索瘤、低分化脊索瘤以及去分化脊索瘤[16],软骨样脊索瘤被认为是经典脊索瘤的一种特殊亚型。组织形态学和免疫组织化学分析是脊索瘤诊断的金标准。有人认为,雪貂脊索瘤与人脊索瘤软骨样亚型相似,且通常为良性,其组织学特征:肿瘤细胞胞核偏于一侧,细胞质内有多个空泡,肿物内有软骨组织及黏液基质[2]。经典脊索瘤组织学特征与软骨样脊索瘤相似,鉴别诊断要点在于前者通常不含有软骨组织[17]。低分化脊索瘤的特征是缺乏气球样细胞和黏液基质,并且表现为核多形性、核仁明显[17]。去分化脊索瘤较为罕见,该肿瘤具有经典型脊索瘤和高级别肉瘤两种成分(去分化成分,通常表现出高级别未分化梭形细胞瘤、多形性肉瘤或高级别骨肉瘤的特征)[18]。此外,低分化脊索瘤和去分化脊索瘤表现出明显的核分裂象增多[17-18]。本病例组织形态学与人脊索瘤软骨样亚型表现一致,免疫组织化学分析也证实符合脊索瘤的特征。
根据肿瘤的组织学形态及发生部位,软骨样脊索瘤主要需要与透明细胞型软骨肉瘤、黏液肉瘤及黏液样脂肪肉瘤进行鉴别诊断[3]。脊索瘤PAS染色可见阳性颗粒,免疫组织化学分析CK、S-100、Vimentin为阳性,而软骨肉瘤、黏液肉瘤与黏液样脂肪肉瘤CK为阴性[8],且表现出恶性肿瘤特征,如核异型性和核分裂象。一项研究对雪貂脊索瘤的免疫组织化学特性进行了详尽的描述,表明肿瘤细胞表达brachyury[2],它是脊索形成的主要调节因子,也是诊断人脊索瘤最常用的标志物[19]。
手术切除是脊索瘤的主要治疗手段,头部、胸部中轴骨的肿瘤可能切除不彻底,因此,人脊索瘤通常会结合放射、质子治疗和/或常规化疗进行治疗[20],但兽医尚未采用手术切除之外的治疗手段。尾尖脊索瘤因远离身体重要部位,手术治疗效果非常理想,预后良好,本病例在术后半年身体状况良好,没有局部复发和远处转移的迹象。
4 结论本研究利用HE染色、免疫组织化学和PAS染色方法,确诊了1例安格鲁貂的软骨样脊索瘤,手术切除后恢复良好。
[1] |
TAUZIÉDE-ESPARIAT A, BRESSON D, POLIVKA M, et al. Prognostic and therapeutic markers in chordomas: a study of 287 tumours[J]. J Neuropathol Exp Neurol, 2016, 75(2): 111-120. DOI:10.1093/jnen/nlv010 |
[2] |
YUI T, OHMACHI T, MATSUDA K, et al. Histochemical and immunohistochemical characterization of chordoma in ferrets[J]. J Vet Diagn Invest, 2015, 77(4): 467-473. |
[3] |
MUNDAY J S, BROWN C A, RICHEY L J. Suspected metastatic coccygeal chordoma in a ferret (Mustela putorius furo)[J]. J Vet Diagn Invest, 2004, 16(5): 454-458. DOI:10.1177/104063870401600516 |
[4] |
STEFANSKI S A, ELWELL M R, MITSUMORI K, et al. Chordomas in Fischer 344 rats[J]. Vet Pathol, 1988, 25(1): 42-47. DOI:10.1177/030098588802500106 |
[5] |
BROCAL J, GAMINO V, GUEVAR J, et al. Imaging diagnosis-magnetic resonance imaging and histopathological features of a skull base chordoma in a cat[J]. Vet Radiol Ultrasound, 2017, 58(2): E11-E15. DOI:10.1111/vru.12373 |
[6] |
HADLOW W J. Vertebral chordoma in two ranch mink[J]. Vet Pathol, 1984, 21(5): 533-536. DOI:10.1177/030098588402100516 |
[7] |
COOPER T K, MURRAY K N, SPAGNOLI S, et al. Primary intestinal and vertebral chordomas in laboratory zebrafish (Danio rerio)[J]. Vet Pathol, 2015, 52(2): 388-392. DOI:10.1177/0300985814537531 |
[8] |
TAYLOR K R, GARNER M M, RUSSELL K, et al. Chordomas at high prevalence in the captive population of the endangered Perdido Key beach mouse (Peromyscus polionotus trissyllepsis)[J]. Vet Pathol, 2016, 53(1): 163-169. DOI:10.1177/0300985815575051 |
[9] |
SAUTIER L, GUILLIER D, COSTE M, et al. Coccygeal chordoma in a degu: case report and review of the literature[J]. J Vet Diagn Invest, 2019, 31(1): 142-145. DOI:10.1177/1040638718814584 |
[10] |
KURAMOCHI M, IZAWA T, HORI M, et al. Chordoma of the thoracic vertebrae in a Bengal tiger (Panthera tigris tigris)[J]. J Vet Med Sci, 2015, 77(7): 893-895. DOI:10.1292/jvms.14-0658 |
[11] |
DUNN D G, HARRIS R K, MEIS J M, et al. A histomorphologic and immunohistochemical study of chordoma in twenty ferrets (Mustela putorius furo)[J]. Vet Pathol, 1991, 28(6): 467-473. DOI:10.1177/030098589102800602 |
[12] |
CARMINATO A, MARCHIORO W, MELCHIOTTI E, et al. A case of coccygeal chondroid chordoma in a cat: morphological and immunohistochemical features[J]. J Vet Diagn Invest, 2008, 20(5): 679-681. DOI:10.1177/104063870802000529 |
[13] |
ISHIDA T, DORFMAN H D. Chondroid chordoma versus low-grade chondrosarcoma of the base of the skull: can immunohistochemistry resolve the controversy?[J]. J Neurooncol, 1994, 18(3): 199-206. DOI:10.1007/BF01328954 |
[14] |
HEALEY J H, LANE J M. Chordoma: a critical review of diagnosis and treatment[J]. Orthop Clin North Am, 1989, 20(3): 417-426. |
[15] |
SUNDARESAN N, GALICICH J H, CHU F C H, et al. Spinal chordomas[J]. J Neurosurg, 1979, 50(3): 312-319. DOI:10.3171/jns.1979.50.3.0312 |
[16] |
FLETCHER C D M, BRIDGE J A, HOGENDOORN P, et al. WHO classification of tumours of soft tissue and bone[M]. 5th ed. Lyon: International Agency for Research on Cancer, 2020.
|
[17] |
KARELE E N, PAZE A N. Chordoma: to know means to recognize[J]. Biochim Biophys Acta Rev Cancer, 2022, 1877(5): 188796. DOI:10.1016/j.bbcan.2022.188796 |
[18] |
ULICI V, HART J. Chordoma: a review and differential diagnosis[J]. Arch Pathol Lab Med, 2022, 146(3): 386-395. DOI:10.5858/arpa.2020-0258-RA |
[19] |
VUJOVIC S, HENDERSON S, PRESNEAU N, et al. Brachyury, a crucial regulator of notochordal development, is a novel biomarker for chordomas[J]. J Pathol, 2006, 209(2): 157-165. DOI:10.1002/path.1969 |
[20] |
GEORGE B, BRESSON D, HERMAN P, et al. Chordomas: a review[J]. Neurosurg Clin North Am, 2015, 26(3): 437-452. DOI:10.1016/j.nec.2015.03.012 |
(编辑 白永平)