2. 西昌学院动物科学学院,西昌 615013
2. School of Animal Science of Xichang University, Xichang 615013, China
痒螨病是由绵羊痒螨(Psoroptes ovis,P. ovis)寄生于多种家养动物和野生动物皮肤表面的常见外寄生虫病,患病动物以消瘦、瘙痒、结痂、脱毛和皮肤增厚等为主要症状,患病严重病例可终因消瘦而死亡[1]。该病具有高度传染性,可降低动物生产性能和增加饲养成本,严重损害动物福利,给家养动物养殖业带来严重的经济损失,同时威胁野生动物的生存[2]。
P. ovis在宿主体表完成其整个生活史过程,其在皮肤表面寄生时摩擦表皮层,并分泌抗原分子引发皮肤损伤[1]。研究发现,P. ovis人工感染病例和临床感染病例皮损区均呈现以大量嗜酸性粒细胞(eosinophil,EOS)聚集为主要特征的病理变化[3-4],且皮损区聚集的EOS数量与痒螨病严重程度以及宿主易感性有关[3, 5];而皮损区内聚集的大量EOS及其聚集后引发的炎性效应可为P. ovis提供食物利于其生长和繁殖[6],随P. ovis数量增多,病灶不断扩大,最终造成病程持续性发展。上述研究表明,皮肤中聚集的EOS在P. ovis感染致病中具有重要作用。另外,P. ovis虫体提取蛋白可引起注射部位皮肤大量的EOS聚集[7],同时还可在体外促进EOS的迁移[8]。由此可见,P. ovis中含有可引起皮肤EOS聚集的抗原成分,但哪些P. ovis抗原分子可促进皮肤EOS聚集,尚未见相关研究报道。
精氨酸激酶(arginine kinase,AK)被验证是一种过敏原,广泛存在于家蚕、虾、屋尘螨等物种[9]。组学分析揭示,P. ovis整个生命周期阶段中均有AK基因的表达,且表达量较高[10],本课题组前期发现P. ovis的不同发育阶段均有AK基因的表达,同时发现P. ovis的AK(PsoAK)可作为痒螨病的血清学诊断抗原,除此外尚未见其他研究报道。氨基酸同源性分析发现,PsoAK与屋尘螨的AK具有82.48%的相似性[11],而屋尘螨AK被证实可导致小鼠肺过敏性炎症并引起肺组织中大量的EOS聚集[12],故推测PsoAK也有类似引起EOS聚集的作用。P. ovis终生寄生于宿主皮肤表面且不穿透表皮的角质层,因此表皮中的主要构成细胞——角质形成细胞是P. ovis与宿主接触的重要靶细胞[1],且这类细胞具有表达和分泌细胞因子与趋化因子的功能,促进白细胞迁移至皮肤[13];而人永生化角质形成细胞系(HaCaT)常作为研究角质形成细胞的体外模型[14]。因此,本研究拟通过HaCaT和痒螨致敏兔分别为体外模型和体内模型探究PsoAK是否促进EOS聚集,为进一步了解痒螨病的发病机制奠定理论基础。
1 材料与方法 1.1 所用细胞及动物HaCaT细胞购自浙江美森细胞科技有限公司,在含有1%青霉素-链霉素和10%胎牛血清的DMEM高糖培养基中,并置于5% CO2、37 ℃恒温二氧化碳培养箱中进行培养。
痒螨病患兔来源于四川省成都市具有痒螨病流行史的某兔场,取兔外耳道内结痂经实验室镜检到P. ovis虫体,此类兔即确定为痒螨病患兔。动物试验方案经四川农业大学动物实验伦理委员会(许可证号SYXK(川)2019-187)批准。
含pET32a-PsoAK重组质粒的BL21(DE3)感受态细胞由四川农业大学动物寄生虫病中心提供。
1.2 主要材料BL21(DE3)感受态细胞购自北京金沙生物科技有限公司,异丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG)、SDS-PAGE试剂盒、氨苄青霉素(Amp)和青霉素-链霉素购自北京索莱宝生物科技有限公司,LB培养基购自青岛海博生物技术有限公司,HiTrap Streptavidin HP纯化柱和DMEM高糖培养基购自美国Cytiva公司,透析袋购自美国Millipore公司,Endotoxin Removal Beads试剂盒购自常州天地人和生物有限公司,CCK-8试剂盒购自大连美仑生物技术有限公司,胎牛血清购自Newzerum公司,细胞总RNA提取试剂盒、动物组织总RNA提取试剂盒、RT EasyTMⅡ反转录试剂盒和Real Time PCR EasyTM-SYBR Green Ⅰ均购于成都福际生物技术有限公司。
1.3 rPsoAK的表达、纯化与内毒素去除按照课题组Gu等[11]建立的方法表达和纯化rPsoAK。取-80 ℃保种的含pET32a-PsoAK重组质粒的大肠杆菌BL21(DE3)复苏后扩大培养,加入终浓度为0.5 mmol·L-1 IPTG于16 ℃诱导7 h,收集菌液离心,沉淀中加入适量0.05 mmol·L-1 Tris-HCl重悬,经超声破碎仪处理后离心收集上清,经HiTrap Streptavidin HP纯化柱纯化蛋白,经超滤管超滤浓缩后用10% SDS-PAGE凝胶检测,最后经Endotoxin Removal Beads试剂盒去除内毒素获得rPsoAK蛋白,备用。
1.4 CCK-8法检测rPsoAK对HaCaT细胞活性的影响使用CCK-8试剂盒检测rPsoAK对HaCaT细胞活性的影响。以5×103·mL-1 HaCaT细胞的密度接种于96孔细胞培养板,放置于37 ℃、5%CO2的条件下培养至细胞融合80%以上,每孔加入终浓度为0.1、1、10 μg·mL-1 rPsoAK蛋白刺激24 h(每组设置3个生物学重复),同时设置培养基作为对照组。刺激后各孔加入10 μL CCK-8试剂,避光孵育1 h,使用酶标仪测量每孔在450 nm处的光密度值(OD450 nm)。
1.5 HaCaT细胞总RNA的提取和实时荧光定量PCR (qPCR)分析以5×103·mL-1 HaCaT细胞的密度接种于24孔细胞培养板,在37℃、5% CO2培养至细胞融合80%以上,每孔加入“1.4”中筛选出的最佳浓度的rPsoAK蛋白刺激24 h,收集细胞。设置培养基空白对照组和pET32a空载蛋白(与刺激蛋白同浓度)为对照组。使用细胞总RNA提取试剂盒提取收集细胞的总RNA,并用RT EasyTM Ⅱ反转录合成cDNA。根据GenBank中的相应基因序列,利于用Primer Premier 5.0设计YWHAZ、TSLP、IL-25、IL-33、IL-4、IL-5、IL-13、CCL5、CCL11的引物(表 1),由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,其中,YWHAZ为内参基因[15],并通过qPCR检测上述基因mRNA的相对转录水平。反应体系(20 μL):EasyTM-SYBR Green Ⅰ 10 μL,cDNA 2 μL,DNA-free ddH2O 6.4 μL,上下游引物各0.8 μL。扩增条件:95 ℃预变性3 min;95 ℃ 30 s,60 ℃ 45 s,40个循环;95 ℃ 5 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 1 s得到熔解曲线。
参考Shen等[16]的方法建立痒螨致敏兔模型。自然感染痒螨病较为严重的患兔(n=3)皮下注射0.1 mL·kg-1伊维菌素,治疗后1个月兔治愈,此类兔即为致敏兔。试验前1 d用剃毛器剃去致敏兔背部的毛,每只致敏兔用标记笔在剃毛后的部位标记3个注射部位(点之间间隔>3 cm),每个注射点分别注射100 μL PBS、pET-32a载体蛋白(1 mg·mL-1)或rPsoAK(1 mg·mL-1)。注射后12 h安乐死处死致敏兔,用直径为8 mm的环形皮肤采样器以注射点为中心采集皮肤样本(去除皮下脂肪),将样品一分为二,一部分样品保存于4%多聚甲醛固定液中,用于后续的嗜酸性粒细胞计数,另一部分样品保存于液氮中用于后续qPCR检测。
1.7 兔皮肤中嗜酸性粒细胞的计数将“1.6”多聚甲醛中保存的兔皮肤样品经石蜡包埋后中,切成6 mm的切片,经脱蜡、脱水处理后,参照Song等[17]的方法进行嗜酸性粒细胞特殊染色(变色酸2R染色)和计数,切片封片后,用奥林巴斯数字病理扫描仪VS120-S6-W(奥林巴斯,德国)扫描切片,使用Image-Pro Plus软件对每张切片的至少7个视野中计数嗜酸性粒细胞。
1.8 兔皮肤总RNA提取和qPCR分析使用动物组织总RNA提取试剂盒提取“1.6”液氮中保存的兔皮肤样品的总RNA,并经RT EasyTM Ⅱ反转录试剂盒合成cDNA。根据GenBank中兔的相应基因序列,利用Primer Premier 5.0设计β-actin、TSLP、IL-25、IL-33、IL-4、IL-5、IL-13、CCL5、CCL11、IL-4 Receptor(IL-4R)的引物(表 2),由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,其中,β-actin为内参基因,并通过qPCR检测上述基因mRNA的相对转录水平。反应体系与扩增条件参照“1.5”。
本试验涉及的qPCR试验均每组设置3个生物学重复,采用2-ΔΔCt法计算基因的相对表达量。数据表示为“平均数±标准误(x±sx)”,并使用GraphPad prism 8通过单因素方差分析(One-way ANOVA)进行检验显著性。P<0.05表示差异显著,P<0.01表示差异极显著,无标注表示两两比较不显著。
2 结果 2.1 rPsoAK对HaCaT细胞活性的影响CCK-8结果显示,随着rPsoAK浓度的升高,HaCaT细胞活性下降。与培养基空白对照组(control)相比,0.1 μg·mL-1 rPsoAK组的细胞活性无显著差异(P>0.05),而1、10 μg·mL-1 rPsoAK组的细胞活性极显著下降(P<0.01,P<0.001)(图 1),可见高浓度rPsoAK对HaCaT细胞有毒性作用。因此,试验选取无细胞毒性的0.1 μg·mL-1 rPsoAK用于后续试验。
以HaCaT细胞作为体外模型探究rPsoAK对EOS聚集相关因子mRNA水平的影响。qPCR结果显示,与培养基空白对照组(control)和pET32a载体对照组(vector)相比,0.1 μg·mL-1 rPsoAK可极显著上调上皮细胞衍生因子中IL-33 mRNA水平(P<0.01),而对TSLP和IL-25 mRNA水平无影响(P>0.05);0.1 μg·mL-1 rPsoAK可极显著上调Th2型细胞因子中IL-13 mRNA水平(P<0.01),而对Th2型细胞因子中的IL-4、IL-5 mRNA水平无影响(P>0.05);0.1 μg·mL-1 rPsoAK可极显著上调嗜酸性粒细胞趋化因子CCL5和CCL11 mRNA水平(P<0.01)(图 2)。
以痒螨病致敏兔为在体模型探究rPsoAK是否能诱导皮肤组织中EOS的聚集。qPCR结果显示,与PBS对照组和载体蛋白对照组(vector)相比,rPsoAK可以极显著促进兔皮肤内IL-4R和CCL5转录水平的增加(P<0.01,P<0.001,图 3),对上皮细胞衍生因子TSLP、IL-25、IL-33和Th2型细胞因子IL-4、IL-5、IL-13以及趋化因子CCL11的转录水平无显著影响(P>0.05,图 3);变色酸2R染色结果显示,与对照组相比,rPsoAK可引起兔皮肤真皮层中大量的EOS聚集,且聚集的EOS数量呈极显著增加(P<0.01,图 4)。
痒螨病作为家养动物和野生动物的皮肤表面外寄生虫病,其病理学组织学变化以皮损区聚集大量的EOS为主要特征,但目前可引起皮损区EOS聚集的痒螨抗原成分仍不清楚。研究发现,过敏原可引起肺、皮肤等组织中大量EOS的异常聚集[18],而组学分析发现P. ovis虫体中存在多种尘螨的过敏原同系物[10],其中,AK基因已被证实在P. ovis的幼螨、若螨、成螨各阶段均有转录,且PsoAK基因的氨基酸序列与屋尘螨AK有高达82.48%的相似性[11],因此本研究通过HaCaT细胞的离体模型和痒螨病致敏兔的在体模型来探究PsoAK在皮肤中EOS聚集的作用。本研究结果发现,PsoAK可诱导兔皮肤中EOS的大量聚集。
3.1 rPsoAK对组织中EOS聚集相关因子的影响嗜酸性粒细胞(EOS)在健康状态下不会出现于胃肠道黏膜之外的其他组织,但疾病状态下可选择性地异常聚集在身体的任何组织[19]。EOS起源于骨髓中嗜酸性粒细胞系祖细胞,并在骨髓中增殖、分化并发育为成熟EOS,这些成熟EOS从骨髓释放至外周血,经跨血管内皮从血管迁移至组织[20]。上述EOS从骨髓生成到迁移至组织的过程受到一系列因子的调控,其中,IL-5可调控EOS增殖、分化、迁移、激活和存活一系列过程[20],但在本次离体试验和在体动物试验中均未检测到IL-5表达水平的显著增加(P>0.05,图 2和3),表明IL-5可能并不参与PsoAK所诱导的皮肤EOS聚集过程,而这种类似的结果在痒螨易感动物——比利时蓝牛感染P. ovis的皮肤中也得到证实,发现感染P. ovis的牛皮肤内聚集大量EOS,而皮肤中IL-5 mRNA无显著变化[5]。综上,作者推测IL-5并不直接参与P. ovis感染引起的局部皮肤EOS聚集。
EOS从骨髓产生到进入组织的过程涉及细胞黏附和趋化性共同作用。其中, IL-4和IL-13作为Th2型免疫反应的代表性细胞因子可以促进内皮细胞黏附因子的增加,从而使外周血中循环的EOS黏附到血管内皮,从而完成EOS跨血管内皮过程[21]。在本次离体HaCaT和在体动物试验上均未检测到IL-4的显著变化(P>0.05)(图 2和3),表明IL-4可能对PsoAK引起的皮肤EOS聚集中并不发挥重要作用;IL-13虽在离体HaCaT细胞中有极显著增加(P<0.01)(图 2),但在体动物试验中没有显著变化(P>0.05)(图 3),具体原因还有待进一步证实。研究发现,IL-4R参与寄生虫感染引起的EOS聚集过程[22],而IL-13可与IL-4R结合促进EOS聚集。此次在体试验发现,PsoAK可引起皮肤内IL-4R mRNA转录水平极显著增加(P<0.01)(图 3),而角质形成细胞中增加表达的IL-13可能与IL-4R结合促进皮肤中EOS的聚集[23-24]。
除了Th2型细胞因子,EOS聚集到局部组织的过程还受上皮细胞衍生因子的影响,如胸腺基质淋巴细胞生成素(TSLP)、IL-25和IL-33的调控[25-26]。多数情况下这类因子通过促进细胞因子的释放间接促进EOS的聚集,比如IL-33可以刺激IL-13分泌从而促进小鼠食管EOS的聚集[27]。此外,它们也可以直接激活EOS并通过放大Th2免疫反应进一步促进EOS聚集。本次离体试验发现,rPsoAK可引起HaCaT细胞中IL-33 mRNA的显著增加(P<0.01),增加的IL-33不仅可以促进EOS的组织聚集,且还可直接靶向激活EOS,并调节其生物学、存活、活化和黏附[28-29]。EOS进入组织的趋化过程主要由EOS上的CCR3受体的配体介导,包括CCL5和CCL11,可强烈引导EOS至病变部位[21]。本次HaCaT离体试验和动物试验均发现,EOS趋化因子CCL5 mRNA极显著上调(P<0.01),而CCL11在在体动物中无显著变化(P>0.05),推测CCL5可能在PsoAK引起的皮肤EOS聚集中起重要作用,并非CCL11。
3.2 皮肤中聚集的EOS在P. ovis感染致病中的可能作用研究发现,痒螨病皮损区大量聚集EOS的区域呈现大量的P. ovis虫体聚集[30],且从患痒螨病的绵羊结痂中分离获得的P. ovis肠道中发现EOS,表明EOS可能作为P. ovis的食物来源[1],因此,rPsoAK引起的皮肤中大量聚集的EOS可能为P. ovis提供充足的食物来源,从而利于其在宿主体表的种群繁殖,繁殖的大量虫体引起更大范围的病变,从而利于痒螨病病程的发展。此外,这些皮肤中聚集的EOS被激活后脱颗粒,释放碱性蛋白(MBP)、阳离子蛋白(ECP)、细胞因子等炎性效应因子[3],从而加重和维持皮肤局部炎症[31],进一步营造利于P. ovis繁殖和生存的皮肤微环境;加之痒螨病皮损区的皮肤屏障被破坏,皮肤渗透性增加[32],导致炎性部位的炎性液体和红细胞渗出增多,而这些物质可作为P. ovis的食物来源引起螨虫数量指数式增加[33-34],随着P. ovis数量增多,小病灶变大,逐渐连成一片,并继续向周围健康部位扩散,最终造成病程持续性发展。
PsoAK引发的皮损区EOS聚集可为P. ovis提供大量食物来源[1, 34],从而利于P. ovis的存活和繁殖,而类似的EOS利于寄生虫存活的现象在旋毛虫中亦得到证实,发现EOS可通过促进Th2细胞聚集和阻止巨噬细胞和中性粒细胞中iNOS的诱导来支持旋毛虫的生长和存活[35],但也有得到相反结论的研究,发现EOS可黏附在捻转血矛线虫幼虫上经释放颗粒发挥杀虫作用[36];由此可见,EOS对寄生虫的存活和杀灭具有“双重”作用。综上,PsoAK可促进皮肤中EOS的聚集,加重皮肤局部炎症,但皮肤中聚集的EOS以及EOS激活释放的颗粒蛋白等物质是利于P. ovis繁殖或P. ovis清除,从而导致的是痒螨病病程的恶化或好转仍需要进一步的研究。
4 结论rPsoAK能够促进HaCaT细胞中IL-13、IL-33、CCL5、CCL11和兔皮肤内IL-4R和CCL5 mRNA水平的显著增加,并诱导兔皮肤嗜酸性粒细胞的聚集,表明PsoAK是引发痒螨病皮损区嗜酸性粒细胞聚集的抗原成分,其参与了绵羊痒螨感染的致病过程。
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(编辑 白永平)