伪狂犬病病毒(pseudorabies virus，PRV)是一种神经性疱疹病毒，可感染多种哺乳动物，包括反刍动物、食肉动物和啮齿动物，导致易感动物中枢神经系统的疾病^[1-2]。猪是PRV的天然宿主，伪狂犬病(pseudorabies，PR)对养猪业危害性大，具有高度隐性感染的特点，耐过的母猪常呈潜伏感染。2011年以来，许多猪场发生了PR，主要表现为猪群PRV-gE抗体阳性率显著升高，普遍出现母猪流产、仔猪神经症状和死亡率高等临床情况^[3]。目前，该病在部分地区偶有发生，也还发现免疫PRV疫苗的养猪场发生伪狂犬病，并分离到PRV新的流行毒株^[4-7]。相关研究表明，新分离的PRV毒株出现了变异，而经典毒株的疫苗未能完全保护变异强毒力PRV的感染^[7-8]。PRV已发现11种功能性蛋白，其中，gC糖蛋白为囊膜蛋白，广泛分布于病毒颗粒的囊膜表面，能够诱导机体产生高水平的中和抗体^[9-10]。自2012年以来，大量关于PRV新分离毒株的研究表明，主要免疫保护基因(gB、gC、gD)均发生不同程度的变异，与疫苗Bartha毒株差异较大^[11-14]。因此，掌握猪群保护性抗体水平情况，在PR的预防中尤为重要。

本研究通过克隆表达变异PRV FJ-2012株gC基因，利用原核表达的gC重组蛋白以建立PRV-gC蛋白抗体ELISA检测方法，并对PR流行场和净化场进行检测，为猪场PR的防控提供依据，也为进一步开展变异PRV血清学研究奠定基础。

1 材料与方法 1.1 毒株和细胞

PK细胞、pCzn1质粒和Arctic express(DE3)感受态细胞由福建省农业科学院畜牧兽医研究所保存。2012年，从福建省免疫伪狂犬疫苗发生猪伪狂犬病的猪场分离到PRV，并命名为FJ-2012株^[4]，该毒株由本实验室保存。

1.2 试剂材料

限制性内切酶NdeI和XbaI购自宝生物工程(大连)有限公司，EasyPure^® Quick Gel Extraction Kit，EasyPure^® Plasmid MiniPrep Kit (EM101)，酶标记猪二抗均购自北京全式金有限公司。蛋白纯化的Ni-IDA亲和层析胶购自Novagen公司。PRV-gB糖蛋白ELISA抗体检测试剂盒购自西班牙海博莱公司。试验涉及相关的猪血清(包括PRV-gB/gE抗体均为阳性或者阴性的血清)由本实验室制备和保存。

1.3 pCzn1-gC重组质粒的构建

根据GenBank中登录的PRV参考毒株全基因组序列(ID：KM189913.1)，以gC蛋白的主要膜外区域(53 986—55 272)的片段序列设计gC基因的表达引物gC-F：5′-CATATGGGCACGACGCCCACCGGG-3′，gC-R：5′-TCTAGATTAGCTGGTCACGACGGGCCAGC-3′。引物由生工生物(上海)工程有限公司合成，预计扩增的片段大小为1 287 bp。以PRV FJ-2012株的DNA为模板进行扩增，将扩增的片段插入pCzn1载体上，构建重组质粒。将该重组质粒转入Arctic express(DE3)感受态细胞中，进行PCR和双酶切(Nde I、Xba I)验证，并将重组质粒送生工生物(上海)工程有限公司进行测序。

1.4 pCzn1-gC重组蛋白的表达及纯化

双酶切及PCR验证均正确的单克隆菌落，加入IPTG至终浓度为0.5 mmol·L^-1，37 ℃诱导表达目的蛋白。用12% SDS-PAGE和Western blot验证表达效果，以及使用Ni-IDA亲和层析纯化目的蛋白，BCA法测定目的蛋白浓度。

1.5 pCzn1-gC重组蛋白间接ELISA方法的建立

根据矩阵滴定法，确定间接ELISA方法的抗原包被浓度和血清稀释比例的最佳配比^[15]。通过检测40份PRV抗体阴性血清(gB和gE抗体均为阴性)，统计分析样品的OD_{650 nm}值的平均值(Mean)和标准方差(SD)，初步确定阴阳性判断标准。通过检测猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)抗体阳性血清、猪流行性腹泻病毒抗体(PEDV)阳性血清、猪圆环病毒2型抗体(PCV-2)阳性血清、猪瘟病毒抗体(CSFV)阳性血清、猪细小病毒抗体(PPV)阳性血清以及PRV抗体阳性血清(gB和gE抗体均为阳性)，验证该方法的特异性。利用批内重复和批间重复试验，验证该ELISA方法的重复性。对PRV抗体阳性猪血清(gB和gE抗体均为阳性)倍比稀释后，确定该ELISA方法的敏感性。最终确定建立PRV-gC抗体间接ELISA方法。

1.6 gC抗体检测分析

1.6.1 与gB抗体检测对比 　　用上述建立的方法，对若干个猪场随机抽取的120份猪血清进行检测，同时使用某品牌商品化试剂盒(竞争ELISA方法)检测gB抗体，将检测结果进行对比分析。

1.6.2 不同猪场gC抗体检测对比 　　用上述建立的方法，对来源于PRV野毒阳性猪场的80份猪血清，及来源于PRV完全净化猪场的血清80份进行检测，将检测结果进行对比分析。

2 结果 2.1 目的基因的扩增

以变异PRV FJ-2012株的核酸为模板，针对gC蛋白基因进行PCR扩增，目的条带约1 287 bp，将PCR产物送生工生物(上海)工程有限公司进行克隆测序，将序列与GenBank中的PRV对应序列进行比对确认扩增的片段为PRV病毒的gC蛋白基因。

2.2 gC蛋白表达载体构建

构建的pCzn1-gC重组质粒转化至Arctic express(DE3)表达菌，进行PCR和双酶切验证，PCR结果如图 1可见到明显的目的条带，与预期的条带(1 287 bp)大小一致；酶切后产物跑胶也可见预期的条带(1 287 bp)。将抽取的质粒送去测序，测序的结果与病毒扩增的gC片段序列相似性为100%，说明成功构建了变异PRV FJ-2012株的gC蛋白表达载体。

2.3 gC重组蛋白的诱导表达

将构建好的表达菌于IPTG终浓度为0.5 mmol·L^-1的LB培养基，37 ℃诱导表达4 h。收集细菌沉淀并裂解，SDS-PAGE胶显示在约47.5 ku处有一条明显的重组蛋白条带(图 2)，且Western blot试验也表明，在47.5 ku处有特异性条带。表明Arctic express(DE3)菌有表达出PRV-gC重组蛋白，并命名为“pCzn1-gC融合蛋白”。

2.4 gC重组蛋白间接ELISA方法

2.4.1 抗原包被最佳浓度和血清最佳稀释度 　　将纯化后的pCzn1-gC融合蛋白包被于ELISA板，采用矩阵法测试结果显示：当抗原包被浓度为10 μg·mL^-1，样品血清按1∶50稀释时，样品阳性OD_{650 nm}值较大，为0.816，且P/N值也最大，为2.22。因此，最佳抗原包被浓度为10 μg·mL^-1，最佳血清抗体稀释度为1∶50。

2.4.2 间接ELISA方法临界值的确定 　　参照本研究建立的方法，检测PRV-gB和PRV-gE抗体均为阴性的猪血清，初步确定gC蛋白抗体间接ELISA方法判定标准：被检样品OD₆₅₀值≥0.438判定为阳性，≤0.406判定为阴性，介于两者之间判定为可疑。

2.4.3 特异性验证 　　采用本研究建立的方法，对PRRSV、PEDV、PCV-2、CSFV和PPV的阳性血清检测结果都为阴性，仅PRV抗体阳性血清为阳性，因此该方法的特异性良好，对其他病原抗体无交叉反应。

2.4.4 重复性试验 　　采用本研究建立的方法，对样品批内重复检测结果显示：每个样品重复测试OD_{650 nm}值的方差为0.003~0.009，变异系数为0.5%~1.9%；批间重复检测结果显示：每个样品重复测试OD_{650 nm}值的方差为0.009~0.024，变异系数为2.0%~3.9%；因此，本研究建立的ELISA方法稳定可用，具有良好的重复性。

2.4.5 敏感性试验 　　对PRV抗体阳性猪血清(gB和gE抗体均为阳性)进行倍比(1∶2~1∶128) 稀释，用该方法检测结果表明：阳性血清以1∶32倍稀释后，再按1∶50进行稀释检测，即1 600倍稀释后仍能检测出阳性，表明本研究建立的ELISA方法具有较高的敏感度。

2.5 初步应用及符合率

用本研究建立的方法和商品化gB抗体检测试剂盒，对临床猪血清进行检测，结果显示：PRV-gC抗体阳性率为91.67%，PRV-gB抗体阳性率为95.00%，其中，商品化试剂盒测出阳性样品中的4份和可疑样品中的1份，本方法结果均判定为阴性，因此两种抗体检测结果的整体符合率为95.83%。结果表明，在猪群血清中，PRV的gC蛋白抗体和gB蛋白抗体的阳性率基本一致，该方法可用于临床检测，为PRV的疫苗免疫效果评价提供参考。

2.6 不同猪场gC抗体检测结果

用本试验建立的方法，对来源于PRV野毒阳性猪场的80份猪血清，及来源于PRV野毒净化猪场的80份血清进行检测，两种猪场均免疫伪狂犬基因缺失疫苗，gC抗体检测结果如表 1所示，PRV阳性猪场的gC抗体阳性率为96.25%(77/80)，而PRV野毒完全净化猪场的gC抗体阳性率仅为78.75%(63/80)。从不同猪场gC抗体检测结果发现，PRV野毒完全净化猪场的gC抗体阳性率明显低于PR不稳定猪场，也明显低于本场gB抗体的阳性率，表明经典PRV毒株基因缺失疫苗免疫产生的gC抗体与变异FJ-2012株的gC蛋白不能起完全的免疫反应。

3 讨论

酶联免疫吸附测定法(enzyme linked immune sorbent assay，ELISA)是在免疫酶技术的基础上发展起来的一种免疫测定技术，可分为直接法、间接法、竞争法、双抗体夹心法等，原理都是抗原与抗体的结合反应。间接ELISA方法是在固相载体包被抗原，加入待检样品，再加入酶标抗体，再进行显色和读数，根据建立的阴阳性临界值进行判定结果。该方法具有操作方便、重复性好、特异性强、灵敏度高等特点，便于临床检测使用，且样品直接作为一抗未经标记处理，保证样品的原有特征，仅通过酶标二抗增强其反应信号，因此更适用于血液中病毒或疫苗产生抗体的检测^[16]。目前市售PRV gB-ELISA抗体检测试剂盒多数是基于1~2个抗原表位建立的阻断ELISA方法^[16]，但流行的PRV变异株gB抗原位点出现了一定的漂移，因此阻断ELISA可能会出现一定比例的误判^[12]。本试验利用新分离的PRV变异毒株FJ-2012株的gC重组蛋白为包被抗原建立相应的ELISA检测方法，旨在提高ELISA检测方法的广谱性、特异性及敏感性，也基本能满足PRV血清学临床诊断的要求。

PRV基因组核苷酸碱基G+C含量高达75%，在所有糖蛋白中gB、gC和gD蛋白与宿主的免疫应答密切相关，是PRV感染诱导产生保护性免疫的主要免疫原性抗原^[17-18]。gC糖蛋白为PRV的囊膜蛋白，分布于病毒颗粒的囊膜表面，具有高度保守性，能够诱导机体产生高水平的中和抗体，是猪和小鼠细胞毒性T淋巴细胞的重要靶抗原，同时也是病毒与宿主细胞受体黏附的主要成分，被认为是一种有效的免疫反应诱导剂。有研究表明，利用变异伪狂犬病病毒gD和gC蛋白抗原表位串联体具有临床保护作用，有助于预防伪狂犬病病毒变异株的攻击^[18]。近几年，我国PRV新分离的毒株gC蛋白基因及对应氨基酸均发生不同程度变异，其中，gC蛋白63—69 aa出现7个氨基酸的插入，还有134—138 aa和143—153 aa区域都是gC蛋白重要的B细胞抗原线性表位^[12-13]。本研究检测结果也发现，存在感染PRV野毒的猪场gC抗体阳性率明显高于PRV野毒净化场，表明PRV变异毒株的gC蛋白抗原性有发生不同程度的改变，也验证了变异毒株gC蛋白基因序列和氨基酸序列变异在免疫学上的差异。

4 结论

从2011年下半年PR的再次流行，很多免疫疫苗的猪也发生PR，再次提醒要重视该病的监测和净化。临床上使用的PRV血清学检测试剂盒大部分都是针对gE和gB蛋白抗体的检测，而本研究利用新分离PRV流行毒株的gC蛋白，建立了特异性强、灵敏度高和重复性好的PRV-gC蛋白抗体间接ELISA检测方法，完全能满足PRV野毒流行的猪场和PRV野毒净化猪场猪群PRV-gC蛋白抗体血清学诊断要求；从不同猪场gC抗体检测结果表明，经典PRV毒株基因缺失疫苗免疫产生的gC抗体与变异FJ-2012株的gC蛋白不能起完全的免疫反应。