2. 河北省兽医生物技术创新中心, 保定 071001
2. Hebei Veterinary Biotechnology Innovation Center, Hebei Agricultural University, Baoding 071001, China
2014年下半年以来,在我国樱桃谷鸭群中报道了一种宿主范围改变的鹅细小病毒(goose parvovirus,GPV)变异毒株,被命名为NGPV[1-2]。其临床症状主要为雏鸭个头矮小、发育迟缓、喙萎缩、舌头外伸、跛行瘫痪、腹泻、胫骨变短、易骨折,被称为鸭短喙与侏儒综合征(short beak and dwarfism syndrome,SBDS)[3]。主要感染小日龄雏鸭群,发病率随年龄增长而降低[4],患病鸭淘汰率高,给养鸭业造成巨大的经济损失。
目前,对于NGPV的研究更多集中于病原分离与鉴定、病毒的基因序列分析及PCR方法建立等方面,关于该病毒与宿主细胞相互作用的分子致病机制尚不清楚。基于此,本研究通过建立NGPV感染雏鸭的动物模型,采用转录组测序技术,分析感染后雏鸭肝、胸腺、回肠的基因转录表达谱差异, 寻找参与感染发生的相关基因及其信号通路,为探究NGPV致病机制奠定基础。
1 材料与方法 1.1 病毒及动物新型鹅细小病毒SD株(EID50:10-4.3·0.2 mL-1;GenBank登录号:KY511124),3日龄樱桃谷鸭。
1.2 仪器/耗材Nanodrop紫外定量设备购自Thermo Scientific;2100生物分析仪、RNA 6000 nano kit均购自Agilent公司;电泳仪购自北京六一公司;凝胶成像系统购自北京百晶公司;Agarose购自Invitrogen公司;Marker购自TaKaRa公司;
1.3 样本的采集将6只雏鸭随机分为对照组和感染组。对照组肌肉注射生理盐水0.2 mL·只-1,感染组肌内注射NGPV SD株0.2 mL·只-1。在处理后14 d, 采集两组雏鸭肝、胸腺和回肠,-80 ℃保存。
1.4 转录组测序提取雏鸭肝、胸腺和回肠的总RNA,RNA质量检测,纯化mRNA,将mRNA片段化并反转录为cDNA,文库构建,Illumina平台上机测序(由上海派森诺公司完成)。
2 结果 2.1 表达差异分析结果显示(图 1):感染组回肠中上调基因有78个,下调基因有31个;感染组胸腺中上调基因有111个,下调基因有78个;感染组肝中上调基因有128个,下调基因有313个。
GO富集分析涵盖3个方面,分别描述基因的分子功能(molecular function,MF)、细胞的组分(cellular component,CC)、参与的生物学过程(biological process,BF)。
回肠差异基因在免疫反应调节、核苷结合、抗原结合、细胞因子活性、碳水化合物衍生物等BF和MF中显著富集(P<0.05)。
胸腺差异基因在免疫效应过程、淋巴细胞介导的免疫、补体激活、白细胞介导的免疫、免疫应答的调节、免疫应答的激活、细胞黏附等BF显著富集(P<0.05)。
肝差异基因在异源生物跨膜转运蛋白活性、生物黏附、细胞表面受体信号通路、己糖激酶活性、葡萄糖结合、神经酰胺代谢过程等BF和MF中显著富集(P<0.05)。
2.3 KEGG富集分析回肠中差异基因在Toll样受体信号通路、ECM-受体相互作用、JAK-STAT信号通路、细胞因子-细胞因子受体相互作用、Th1和Th2细胞分化、炎症介质对色氨酸通道的调节等过程显著富集(P<0.05)。
胸腺中差异基因在NF-κB信号通路、细胞因子-细胞因子受体相互作用、FcεRI信号通路、FcγR介导的吞噬作用、PI3K-Akt信号通路、抗原处理和提呈、Apelin信号通路等过程有显著富集(P<0.05)。
肝差异基因在Rap1信号通路、Ras信号通路、MAPK信号通路、PI3K-Akt信号通路、HIF-1信号通路、淀粉和蔗糖代谢、抗原处理和提呈等过程显著富集(P<0.05)。
3 讨论本研究中,建立了NGPV感染雏鸭动物模型,通过PCR检测感染组组织均为阳性,对照组组织均为阴性。
NGPV具有组织泛嗜性,有人推测禽类细小病毒感染后最早在肠壁发生复制,再通过血液达到次级靶器官[5]。但对于NGPV感染后病毒载量分布情况目前没有统一的研究结论,研究显示,NGPV感染后在肠道、肝、胸腺的病毒载量相对较高[6-8]。所以,本研究对感染NGPV雏鸭的胸腺、回肠和肝进行转录组测序,探究NGPV的感染对雏鸭组织的基因转录水平的影响。
NGPV感染后,回肠差异表达基因参与多个免疫相关生物学过程;差异表达基因涉及Toll样受体信号通路、JAK-STAT信号通路、Th1和Th2细胞分化。其中,Toll样受体信号通路和JAK-STAT信号通路都是重要的抗病毒信号通路,Toll样受体信号通路可通过多种途径激活多种免疫细胞,启动天然免疫应答[9];NGPV感染可以激活TLR3受体触发有效的抗病毒天然免疫应答[10]。差异表达基因OASL上调7.82倍,OASL表达可通过JAK-STAT信号通路途径发挥抗病毒活性[11],在抗病毒过程起重要作用。
NGPV感染后,胸腺差异表达基因也参与多个免疫相关生物学过程,差异表达基因涉及NF-κB信号通路、B细胞受体信号通路、FcεRI信号通路等多个通路。其中,上调基因CCL19参与NF-κB信号通路、细胞因子相互作用、趋化因子信号通路等,在炎症形成过程中起重要作用[12]。
肝感染NGPV后差异表达基因在MAPK信号通路、PI3K-Akt信号通路、HIF-1信号通路多条信号转导通路富集。研究表明,PI3K-Akt、HIF-1信号通路与某些病毒复制有关[13-15]。差异上调基因中EPSPI1、OASL、IFITM2均在抗病毒免疫中起重要作用[11, 16]。
4 结论NGPV感染雏鸭后,肝、胸腺、回肠差异表达基因参与多个免疫相关生物学过程,并在PI3K-Akt信号通路、NF-κB信号通路、Toll样受体信号通路、JAK-STAT信号通路等多个经典信号通路富集,提示NGPV感染宿主后激活了宿主免疫反应及相关抗病毒信号通路,从而对抗病毒感染。
[1] |
CHEN H, DOU Y G, TANG Y, et al. Isolation and genomic characterization of a duck-origin GPV-related parvovirus from Cherry Valley ducklings in China[J]. PLoS One, 2015, 10(10): e0140284. DOI:10.1371/journal.pone.0140284 |
[2] |
LI P, LIN S, ZHANG R, et al. Isolation and characterization of novel goose parvovirus-related virus reveal the evolution of waterfowl parvovirus[J]. Transbound Emerg Dis, 2018, 65(2): e284-e295. DOI:10.1111/tbed.12751 |
[3] |
PALYA V, ZOLNAI A, BENYEDA Z, et al. Short beak and dwarfism syndrome of mule duck is caused by a distinct lineage of goose parvovirus[J]. Avian Pathol, 2009, 38(2): 175-180. DOI:10.1080/03079450902737839 |
[4] |
CHEN S L, WANG S, CHENG X X, et al. Isolation and characterization of a distinct duck-origin goose parvovirus causing an outbreak of duckling short beak and dwarfism syndrome in China[J]. Arch Virol, 2016, 161(9): 2407-2416. DOI:10.1007/s00705-016-2926-4 |
[5] |
KAPGATE S S, KUMANAN K, VIJAYARANI K, et al. Avian parvovirus: classification, phylogeny, pathogenesis and diagnosis[J]. Avian Pathol, 2018, 47(6): 536-545. DOI:10.1080/03079457.2018.1517938 |
[6] |
刘荣昌, 黄瑜, 卢荣辉, 等. "短喙侏儒综合征"半番鸭病原学检测及病理组织学特征[J]. 中国兽医学报, 2018, 38(1): 51-58. LIU R C, HUANG Y, LU R H, et al. Aetiology detection and histopathological features of "short beak dwarf syndrome" in mule ducks[J]. Chinese Journal of Veterinary Science, 2018, 38(1): 51-58. (in Chinese) |
[7] |
LIU H M, YANG C C, LIU M M, et al. Pathological lesions in the immune organs of ducklings following experimental infection with goose parvovirus[J]. Res Vet Sci, 2019, 125: 212-217. DOI:10.1016/j.rvsc.2019.06.002 |
[8] |
陈兵, 徐婧, 罗启慧, 等. 感染鸭源小鹅瘟病毒QH-L01株樱桃谷雏鸭病理学研究[J]. 浙江农业学报, 2018, 30(6): 932-938. CHEN B, XU J, LUO Q H, et al. Pathological study on duck-origin goose Parvovirus strain QH-L01 infection of Cherry Valley duck[J]. Acta Agriculturae Zhejiangensis, 2018, 30(6): 932-938. DOI:10.3969/j.issn.1004-1524.2018.06.07 (in Chinese) |
[9] |
MOGENSEN T H. Pathogen recognition and inflammatory signaling in innate immune defenses[J]. Clin Microbiol Rev, 2009, 22(2): 240-273. |
[10] |
CHEN S L, FANG T H, XIAO S F, et al. Duckling short beak and dwarfism syndrome virus infection activates host innate immune response involving both DNA and RNA sensors[J]. Microb Pathog, 2020, 138: 103816. DOI:10.1016/j.micpath.2019.103816 |
[11] |
LIAO X Z, XIE H, LI S L, et al. 2', 5'-oligoadenylate synthetase 2 (OAS2) inhibits Zika virus replication through activation of type Ι IFN signaling pathway[J]. Viruses, 2020, 12(4): 418. DOI:10.3390/v12040418 |
[12] |
昝晓燕, 吴贻刚. 趋化因子配体19和趋化因子受体7在肥胖脂肪组织慢性炎症中的作用及有氧运动对其影响的研究进展[J]. 吉林大学学报: 医学版, 2017, 43(3): 659-662. ZAN X Y, WU Y G. Research progress in role of CCL19 and CCR7 in adipose tissue chronic inflammation and influence of aerobic exercise in CCL19-CCR signal[J]. Journal of Jilin University: Medicine Edition, 2017, 43(3): 659-662. (in Chinese) |
[13] |
任乐豪. 甲型H1N1流感病毒激活宿主HIF-1信号通路促进病毒自身复制的机制研究[D]. 上海: 上海交通大学, 2019. REN L H. Study on the mechanism of activating host HIF-1 signaling pathway to promote virus replication by H1N1 virus[D]. Shanghai: Shanghai Jiaotong University, 2019. (in Chinese) |
[14] |
DUETTE G, GERBER P P, RUBIONE J, et al. Induction of HIF-1α by HIV-1 infection in CD4+ T cells promotes viral replication and drives extracellular vesicle-mediated inflammation[J]. mBio, 2018, 9(5): e00757-18. |
[15] |
HSIEH Y C, CHEN Y M, LI C Y, et al. To complete its replication cycle, a shrimp virus changes the population of long chain fatty acids during infection via the PI3K-Akt-mTOR-HIF1α pathway[J]. Dev Comp Immunol, 2015, 53(1): 85-95. DOI:10.1016/j.dci.2015.06.001 |
[16] |
MENG X H, YANG D R, YU R, et al. EPSTI1 is involved in IL-28A-mediated inhibition of HCV infection[J]. Mediators Inflamm, 2015, 2015: 716315. |
(编辑 白永平)