畜牧兽医学报  2022, Vol. 53 Issue (12): 4501-4506. DOI: 10.11843/j.issn.0366-6964.2022.12.035    PDF    
助产对奶牛产后子宫菌群的影响
宁心暖, 李洁, 房辉, 余思源, 梁家禧, 张璐, 靳亚平, 周栋     
西北农林科技大学动物医学院 农业部动物生物技术重点实验室,杨凌 712100
摘要:在奶牛养殖业中,难产是奶牛临床上的常发病,助产是处理难产的常用手段。助产的发生会导致母牛受胎率降低、冻精使用量增加、空怀时间增加和首次配种时间后移等繁殖问题。本研究从细菌学角度分析助产对奶牛产后子宫菌群的影响,以期为提高牧场受胎率提供数据参考。在宁夏地区某大型奶牛场,以助产和非助产奶牛为研究对象,在产后45 d进行子宫灌洗,采集灌洗液样本共7份。通过细菌分离培养、16S rRNA测序等方法分离细菌。结果共分离出10个细菌属,12种细菌,其中,非助产奶牛子宫冲洗液中分离出链霉菌属、链球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、气球菌属5个属的细菌;助产奶牛子宫冲洗液分离出志贺菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、棒状杆菌属、芽胞杆菌属、气球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、链球菌属等9个属的细菌。本研究的结果表明,助产和非助产奶牛子宫菌群差异显著,助产导致子宫内菌群多样性增加。
关键词奶牛    助产    子宫灌洗液    菌群    
Effect of Assisted Calving on Postpartum Uterine Flora of Dairy Cow
NING Xinnuan, LI Jie, FANG Hui, YU Siyuan, LIANG Jiaxi, ZHANG Lu, JIN Yaping, ZHOU Dong     
Key Laboratory of Animal Biotechnology of the Ministry of Agriculture and Rural Affairs, College of Veterinary Medicine, Northwest A & F University, Yangling 712100, China
Abstract: Dystocia is a common clinical disease of dairy cows, and assisted calving is a common method to deal with it. The assisted calving can lead to the reduction of conception rate, the increase of frozen sperm use, the increase of empty pregnancy days and the delay of the first mating time. This study aims to analyze the effect of assisted calving on postpartum uterine microbiota of dairy cow, and to provide data reference for improving the conception rate in pasture. In a large dairy farm in Ningxia, a total of 7 samples of lavage fluid were collected from both unassisted and assisted calving cows at 45 days after delivery. Bacteria were isolated, cultured, and sequenced by 16S rRNA sequencing. A total of 10 bacterial genera and 12 kinds of bacteria were isolated, among which 5 genera of bacteria including Streptomyces, Streptococcus, Enterobacter, Staphylococcus and Aerococcus were isolated from the uterine washing fluid of non-assisted calving cows. Nine genera of bacteria such as Shigella, Acinetobacter, Pseudomonas, Corynebacterium, Bacillus, Aerococcus, Enterobacter, Staphylococcus and Streptococcus were isolated from the uterine washing fluid of assisted calving cows. Our results showed that the uterine microbiota of assisted calving and non-assisted calving cows were significantly different. Assisted calving resulted in increased diversity of uterine microflora in cows.
Key words: cow    assisted calving    uterine lavage fluid    microbiome    

根据奶牛分娩过程中的生理及产道变化、胎儿及胎衣在产道中的运行特点等,可将奶牛的正常分娩过程分为3个阶段,即子宫颈口开张期、胎儿产出期、胎衣排出期。在奶牛分娩时,胎儿在奶牛努责2~4 h后仍未被排出即可判定发生难产[1]。难产由多种因素引起[2],会增加母牛淘汰率,严重者甚至引起母牛死亡,严重影响奶牛繁育工作[3-5]。在牧场产房接产数据记录中,一般用4分制来记录产犊的难易程度[6]。产犊评分2分及以上为辅助产犊,即助产。助产是当母牛不能够完成自然分娩时,需要进行的人工辅助产犊措施,而在产犊过程中,助产的发生非常普遍。产后健康的子宫在以前通常被认为是无菌的[7],但最近的研究表明,子宫并非无菌的,并有特定的微生物群[8-9]。Moore等[10]在未受精的青年牛和怀孕母牛子宫内均检测到了微生物,且证实了建立和维持妊娠需要有菌坏境。Serrano等[11]发现绵羊生殖道的微生物组成是导致人工输精成败的主要原因。近年来,国内外学者对奶牛难产的研究有所增加,随着基因序列和功能基因筛选以及高通量测序等技术的进步,对于子宫健康和疾病相关的微生物组有了进一步的认识[12-13]。临床奶牛子宫内膜炎发病与化脓隐秘杆菌(Truperella pyogenes)关系密切,病例中也常分离到大肠杆菌(Escherichia coli)、坏死梭杆菌(Fusobacterium necrophorum)、产黑素普氏菌(Prevotella melaninogenica)、拟杆菌(Bacteroides spp)等;而健康奶牛在产后10 d内,从奶牛子宫中分离率最高的细菌种类是链球菌属(Streptococcus spp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus spp.)和芽胞杆菌属(Bacillus spp.),这些菌种的出现,通常不会引起奶牛发生具有明显临床症状的产后子宫疾病[14]

大量研究表明,采用助产方法会导致母牛受胎率降低、冻精使用量增加、空怀时间增加和首次配种时间后移等繁殖问题[15-16]。推测与子宫内菌群的改变、子宫免疫屏障的损伤有关,但具体机制尚未阐述清楚。本研究以助产和非助产奶牛为研究对象,通过子宫灌洗液细菌的分离培养、16S rRNA测序等方法,以期从细菌学角度,分析助产导致繁殖和生产性能降低的原因,为牧场产房和新产牛管理提供指导性的建议。

1 材料与方法 1.1 材料

1.1.1 实验动物   根据产犊难易程度分为1~4级:1级为顺产,2级为牵拉助产,3级为器械助产,4级为剖腹产。产犊难度评分1的为顺产(非助产),产犊难度评分2~4的为难产(助产)。

本试验在2021年挑选无产道撕裂、阴道、宫颈损伤、剖宫产史、患子宫炎、子宫内膜炎、子宫积脓、胎衣不下、乳房炎等产科疾病,无酮病、蹄病、真胃变位等常见疾病,且体温低于39.5 ℃的奶牛。记录牛号、产犊时间、是否助产以及用药等情况。奶牛产犊后45 d,剔除因疾病接受药物治疗的奶牛。根据有无助产的情况,随机采集4份助产(产犊评分3分)和3份非助产(产犊评分1分)奶牛的子宫灌洗液样本,放入装有冰袋的保温箱,立即送回实验室,进行后续试验。

1.1.2 主要试剂   无菌生理盐水、绵羊血琼脂平板、LB培养基,青岛科源生物科技有限公司产品;2×Taq Starmix、DNA ladder 2 000,大连TaKaRa公司产品。

1.1.3 主要仪器   普通生物显微镜,日本Nikon公司产品;PCR仪,Bio-RAD公司产品,细菌培养恒温摇床,上海智诚分析仪器有限公司产品;凝胶成像仪,syngene公司产品;微量加样枪,Eppendorf公司产品。

1.2 方法

1.2.1 奶牛子宫灌洗液的采集   随机选取助产奶牛和非助产奶牛,在产后45 d利用无菌的子宫冲洗液导管进行子宫灌洗液采集。奶牛保定完全后,消毒奶牛阴门,经直肠把握子宫颈后,将套有输精枪外套的子宫冲洗导管经奶牛阴门伸入到子宫颈,隔绝产道污染。当导管尖端到达子宫后,去掉输精枪外套,导管注入空气进行固定,拔出探针后,经导管口注入50 mL无菌生理盐水,经直肠按摩子宫后,回抽子宫灌洗液。将获得的灌洗液快速无菌转入到50 mL离心管,放入装有冰袋的保温箱,立即送回实验室,进行细菌分离培养。

1.2.2 细菌的分离培养   将子宫灌洗液颠倒混匀后,用无菌棉棒蘸取灌洗液,均匀地涂布于血琼脂平板,倒置于37 ℃培养箱中进行培养,经16~24 h后,观察血平板细菌菌落形态,选择形态单一的菌落,继续在LB琼脂平板上划线纯化培养,选取单菌落进行镜检,确定纯度后接种于LB液体培养基,过夜培养,保存菌种后进行后续试验。

1.2.3 16S rRNA测序   利用上述培养的细菌为模板,进行菌体PCR扩增16S rRNA。引物序列:F-5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′、R-5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′,预期克隆片段长度为1 492 bp;PCR反应体系:12.5 μL 2 ×Taq Starmix,上、下游引物各0.5 μL,1.0 μL模板,10.5 μL ddH2O。同时设置阴性对照,反应条件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,50 ℃,30 s,72 ℃ 2 min,30个循环;72 ℃延伸10 min。取5 μL产物通过1%琼脂糖凝胶电泳观察结果后,剩余产物进行测序,测序结果与NCBI数据库进行比对,确定细菌种属。

2 结果 2.1 冲洗液培养结果

4份助产(产犊评分3分)和3份非助产(产犊评分1分)奶牛子宫灌洗液样本,经血琼脂平板分离培养,结果显示助产组分离出14株细菌,非助产组分离出6株细菌,其中,有9株细菌有溶血环,11株无溶血环。按镜检结果及血平板形态,革兰阳性菌的主要为气球菌、葡萄球菌、棒状杆菌和链球菌,革兰阴性菌以肠杆菌属为主。气球菌菌落主要为乳白、针尖大小,圆形,α溶血;葡萄球菌菌落直径1~3 mm,乳白色或黄色,不透明,边缘整齐,不溶血;棒状杆菌菌落直径1~2 mm,乳白色,不溶血;链球菌在血琼脂平板上菌落光滑,乳白色,α溶血。革兰阴性杆菌肠杆菌菌落边缘整齐,圆形,乳白色,直径3~5 mm,α溶血或不溶血。

2.2 16S rRNA测序结果及分析

对分离得到的20株微生物进行16S rRNA测序。经PCR检测,各株细菌均能扩增出阳性条带,大小为1 492 bp,符合预期,部分菌株的电泳结果见图 1

M. DNA相对分子质量标准;1~14.细菌菌株 M. DNA marker; 1-14. Bacteria strains 图 1 部分细菌16S rRNA PCR产物电泳结果 Fig. 1 Electrophoresis results of 16S rRNA PCR products of some bacteria

测序结果经与NCBI数据库进行比对,结果显示共分离到10个属的细菌,包括棒状杆菌属、气球菌属、志贺菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、芽胞杆菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、链球菌属和链霉菌属等10个细菌属,12种细菌组成,详见表 1

表 1 子宫冲洗液分离鉴定微生物结果 Table 1 Results of isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid

其中,非助产奶牛子宫冲洗液分离出链霉菌属(16.67%)、链球菌属(16.67%)、肠杆菌属(33.33%)、葡萄球菌属(16.67%)、气球菌属(16.67%)5个属的细菌,分别为吖啶霉素链霉菌、多动物链球菌、费格森埃希菌、沃氏葡萄球菌、脲气球菌,见表 2

表 2 非助产奶牛子宫冲洗液微生物分离鉴定结果 Table 2 Isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid of unassisted calving cows

助产奶牛子宫冲洗液分离出志贺菌属(7.14%)、不动杆菌属(7.14%)、气球菌属(28.58%)、假单胞菌属(7.14%)、棒状杆菌属(21.43%)、芽胞杆菌属(7.14%)、肠杆菌属(7.14%)、葡萄球菌属(7.14%)、链球菌属(7.14%)9个属的细菌,共10种细菌,分别为宋内氏志贺菌、不动杆菌、绿色气球菌、脲气球菌、摩氏假单胞菌、银色棒状杆菌、地衣芽胞杆菌、费格森埃希菌、表皮葡萄球菌、多动物链球菌,详见表 3

表 3 助产奶牛子宫冲洗液微生物分离鉴定结果 Table 3 Isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid of assisted calving cows
3 讨论

大量研究表明,奶牛正常子宫内并非无菌,而是由特定的需氧、兼性厌氧和专性厌氧微生物群组成[3, 17]。产后2周内,90%以上的奶牛子宫内受到不同程度的细菌污染[18],在之后的45 d内,大多数的污染会被子宫清除,但仍会有10%左右的奶牛子宫内存留不同致病菌,这主要是由于子宫内细菌种类、产后奶牛饲养管理、免疫状态、激素水平等造成,但助产是否影响子宫内菌群变化仍未阐述清晰。

奶牛助产是牧场处理难产的常用手段,但助产增加子宫、生殖道的损伤及微生物的污染,导致母牛受胎率降低、冻精使用量增加、空怀时间增加和首次配种时间后移等繁殖问题[15-16],闫明涛[19]发现难产级别和产后疾病的发病率呈现正相关,且产后疾病对21 d怀孕率影响显著,辅助分娩的奶牛更容易感染坏死梭状芽胞杆菌和化脓性链球菌[20-21]。在本研究中,作者以助产和非助产奶牛为研究对象,分离培养母牛分娩45 d后的子宫灌洗液。结果表明,非助产奶牛分离出链霉菌属、链球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、气球菌属等5个属的细菌,助产奶牛分离出志贺氏菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、棒状杆菌属、芽胞杆菌属、链球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、气球菌属等9个属的细菌。在种的水平上,助产组奶牛增加了宋内氏志贺菌、不动杆菌、绿色气球菌、摩氏假单胞菌、银色棒状杆菌、地衣芽胞杆菌和表皮葡萄球菌。助产组奶牛子宫内微生物多样性明显多于非助产组。但据文献估计,实验室中可培养的细菌不到1%[22],因此推断实际的助产组奶牛子宫中生物多样性更加显著。人们普遍认为健康动物的子宫在妊娠期间处于无菌状态,而产后子宫极易受到细菌的污染[23]。这主要是由于产中及产后阴门、阴道和子宫颈口的扩张,利于细菌的入侵,加之产后初期子宫内营养物和温度适合细菌的生长,为侵入细菌的繁殖提供了适宜的条件。正常情况下,机体依靠自身的防御机能,能够将子宫内的污染自动清除;如果机体自身体质弱、防御系统不健全,特别是助产引起生殖道损伤及污染,造成致病菌净化困难,致使病原菌的大量繁殖。在难产引起的损失中,因繁殖问题引起的损失占比达30%[24]。助产导致严重的繁殖问题,主要是由于助产造成损伤及子宫内菌群多样性增多,引起子宫内膜组织复旧时间延长等。此外,细菌产物或炎症产物可抑制垂体促黄体素的分泌,干扰产后卵巢的功能和卵泡的生长,中断排卵,从而影响卵巢排卵的正常周期[24]。因此提示,助产造成的子宫微生物多样性增加,导致其产物引起生殖激素分泌失衡、子宫内膜及卵巢功能紊乱,致使奶牛妊娠率降低,配种次数增加等问题[25]

综上所述,助产和非助产奶牛子宫菌群差异显著,助产导致子宫内菌群多样性增加。产后子宫内持续性的细菌存在,是造成助产奶牛繁殖问题的原因之一,而其中的机制还需进一步探索。

4 结论

助产能够造成奶牛产后子宫内长时间的菌群多样性增加。

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(编辑   白永平)