根据奶牛分娩过程中的生理及产道变化、胎儿及胎衣在产道中的运行特点等,可将奶牛的正常分娩过程分为3个阶段,即子宫颈口开张期、胎儿产出期、胎衣排出期。在奶牛分娩时,胎儿在奶牛努责2~4 h后仍未被排出即可判定发生难产[1]。难产由多种因素引起[2],会增加母牛淘汰率,严重者甚至引起母牛死亡,严重影响奶牛繁育工作[3-5]。在牧场产房接产数据记录中,一般用4分制来记录产犊的难易程度[6]。产犊评分2分及以上为辅助产犊,即助产。助产是当母牛不能够完成自然分娩时,需要进行的人工辅助产犊措施,而在产犊过程中,助产的发生非常普遍。产后健康的子宫在以前通常被认为是无菌的[7],但最近的研究表明,子宫并非无菌的,并有特定的微生物群[8-9]。Moore等[10]在未受精的青年牛和怀孕母牛子宫内均检测到了微生物,且证实了建立和维持妊娠需要有菌坏境。Serrano等[11]发现绵羊生殖道的微生物组成是导致人工输精成败的主要原因。近年来,国内外学者对奶牛难产的研究有所增加,随着基因序列和功能基因筛选以及高通量测序等技术的进步,对于子宫健康和疾病相关的微生物组有了进一步的认识[12-13]。临床奶牛子宫内膜炎发病与化脓隐秘杆菌(Truperella pyogenes)关系密切,病例中也常分离到大肠杆菌(Escherichia coli)、坏死梭杆菌(Fusobacterium necrophorum)、产黑素普氏菌(Prevotella melaninogenica)、拟杆菌(Bacteroides spp)等;而健康奶牛在产后10 d内,从奶牛子宫中分离率最高的细菌种类是链球菌属(Streptococcus spp.)、葡萄球菌属(Staphylococcus spp.)和芽胞杆菌属(Bacillus spp.),这些菌种的出现,通常不会引起奶牛发生具有明显临床症状的产后子宫疾病[14]。
大量研究表明,采用助产方法会导致母牛受胎率降低、冻精使用量增加、空怀时间增加和首次配种时间后移等繁殖问题[15-16]。推测与子宫内菌群的改变、子宫免疫屏障的损伤有关,但具体机制尚未阐述清楚。本研究以助产和非助产奶牛为研究对象,通过子宫灌洗液细菌的分离培养、16S rRNA测序等方法,以期从细菌学角度,分析助产导致繁殖和生产性能降低的原因,为牧场产房和新产牛管理提供指导性的建议。
1 材料与方法 1.1 材料1.1.1 实验动物 根据产犊难易程度分为1~4级:1级为顺产,2级为牵拉助产,3级为器械助产,4级为剖腹产。产犊难度评分1的为顺产(非助产),产犊难度评分2~4的为难产(助产)。
本试验在2021年挑选无产道撕裂、阴道、宫颈损伤、剖宫产史、患子宫炎、子宫内膜炎、子宫积脓、胎衣不下、乳房炎等产科疾病,无酮病、蹄病、真胃变位等常见疾病,且体温低于39.5 ℃的奶牛。记录牛号、产犊时间、是否助产以及用药等情况。奶牛产犊后45 d,剔除因疾病接受药物治疗的奶牛。根据有无助产的情况,随机采集4份助产(产犊评分3分)和3份非助产(产犊评分1分)奶牛的子宫灌洗液样本,放入装有冰袋的保温箱,立即送回实验室,进行后续试验。
1.1.2 主要试剂 无菌生理盐水、绵羊血琼脂平板、LB培养基,青岛科源生物科技有限公司产品;2×Taq Starmix、DNA ladder 2 000,大连TaKaRa公司产品。
1.1.3 主要仪器 普通生物显微镜,日本Nikon公司产品;PCR仪,Bio-RAD公司产品,细菌培养恒温摇床,上海智诚分析仪器有限公司产品;凝胶成像仪,syngene公司产品;微量加样枪,Eppendorf公司产品。
1.2 方法1.2.1 奶牛子宫灌洗液的采集 随机选取助产奶牛和非助产奶牛,在产后45 d利用无菌的子宫冲洗液导管进行子宫灌洗液采集。奶牛保定完全后,消毒奶牛阴门,经直肠把握子宫颈后,将套有输精枪外套的子宫冲洗导管经奶牛阴门伸入到子宫颈,隔绝产道污染。当导管尖端到达子宫后,去掉输精枪外套,导管注入空气进行固定,拔出探针后,经导管口注入50 mL无菌生理盐水,经直肠按摩子宫后,回抽子宫灌洗液。将获得的灌洗液快速无菌转入到50 mL离心管,放入装有冰袋的保温箱,立即送回实验室,进行细菌分离培养。
1.2.2 细菌的分离培养 将子宫灌洗液颠倒混匀后,用无菌棉棒蘸取灌洗液,均匀地涂布于血琼脂平板,倒置于37 ℃培养箱中进行培养,经16~24 h后,观察血平板细菌菌落形态,选择形态单一的菌落,继续在LB琼脂平板上划线纯化培养,选取单菌落进行镜检,确定纯度后接种于LB液体培养基,过夜培养,保存菌种后进行后续试验。
1.2.3 16S rRNA测序 利用上述培养的细菌为模板,进行菌体PCR扩增16S rRNA。引物序列:F-5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′、R-5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′,预期克隆片段长度为1 492 bp;PCR反应体系:12.5 μL 2 ×Taq Starmix,上、下游引物各0.5 μL,1.0 μL模板,10.5 μL ddH2O。同时设置阴性对照,反应条件:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,50 ℃,30 s,72 ℃ 2 min,30个循环;72 ℃延伸10 min。取5 μL产物通过1%琼脂糖凝胶电泳观察结果后,剩余产物进行测序,测序结果与NCBI数据库进行比对,确定细菌种属。
2 结果 2.1 冲洗液培养结果4份助产(产犊评分3分)和3份非助产(产犊评分1分)奶牛子宫灌洗液样本,经血琼脂平板分离培养,结果显示助产组分离出14株细菌,非助产组分离出6株细菌,其中,有9株细菌有溶血环,11株无溶血环。按镜检结果及血平板形态,革兰阳性菌的主要为气球菌、葡萄球菌、棒状杆菌和链球菌,革兰阴性菌以肠杆菌属为主。气球菌菌落主要为乳白、针尖大小,圆形,α溶血;葡萄球菌菌落直径1~3 mm,乳白色或黄色,不透明,边缘整齐,不溶血;棒状杆菌菌落直径1~2 mm,乳白色,不溶血;链球菌在血琼脂平板上菌落光滑,乳白色,α溶血。革兰阴性杆菌肠杆菌菌落边缘整齐,圆形,乳白色,直径3~5 mm,α溶血或不溶血。
2.2 16S rRNA测序结果及分析对分离得到的20株微生物进行16S rRNA测序。经PCR检测,各株细菌均能扩增出阳性条带,大小为1 492 bp,符合预期,部分菌株的电泳结果见图 1。
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M. DNA相对分子质量标准;1~14.细菌菌株 M. DNA marker; 1-14. Bacteria strains 图 1 部分细菌16S rRNA PCR产物电泳结果 Fig. 1 Electrophoresis results of 16S rRNA PCR products of some bacteria |
测序结果经与NCBI数据库进行比对,结果显示共分离到10个属的细菌,包括棒状杆菌属、气球菌属、志贺菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、芽胞杆菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、链球菌属和链霉菌属等10个细菌属,12种细菌组成,详见表 1。
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表 1 子宫冲洗液分离鉴定微生物结果 Table 1 Results of isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid |
其中,非助产奶牛子宫冲洗液分离出链霉菌属(16.67%)、链球菌属(16.67%)、肠杆菌属(33.33%)、葡萄球菌属(16.67%)、气球菌属(16.67%)5个属的细菌,分别为吖啶霉素链霉菌、多动物链球菌、费格森埃希菌、沃氏葡萄球菌、脲气球菌,见表 2。
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表 2 非助产奶牛子宫冲洗液微生物分离鉴定结果 Table 2 Isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid of unassisted calving cows |
助产奶牛子宫冲洗液分离出志贺菌属(7.14%)、不动杆菌属(7.14%)、气球菌属(28.58%)、假单胞菌属(7.14%)、棒状杆菌属(21.43%)、芽胞杆菌属(7.14%)、肠杆菌属(7.14%)、葡萄球菌属(7.14%)、链球菌属(7.14%)9个属的细菌,共10种细菌,分别为宋内氏志贺菌、不动杆菌、绿色气球菌、脲气球菌、摩氏假单胞菌、银色棒状杆菌、地衣芽胞杆菌、费格森埃希菌、表皮葡萄球菌、多动物链球菌,详见表 3。
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表 3 助产奶牛子宫冲洗液微生物分离鉴定结果 Table 3 Isolation and identification of microorganisms in uterine lavage fluid of assisted calving cows |
大量研究表明,奶牛正常子宫内并非无菌,而是由特定的需氧、兼性厌氧和专性厌氧微生物群组成[3, 17]。产后2周内,90%以上的奶牛子宫内受到不同程度的细菌污染[18],在之后的45 d内,大多数的污染会被子宫清除,但仍会有10%左右的奶牛子宫内存留不同致病菌,这主要是由于子宫内细菌种类、产后奶牛饲养管理、免疫状态、激素水平等造成,但助产是否影响子宫内菌群变化仍未阐述清晰。
奶牛助产是牧场处理难产的常用手段,但助产增加子宫、生殖道的损伤及微生物的污染,导致母牛受胎率降低、冻精使用量增加、空怀时间增加和首次配种时间后移等繁殖问题[15-16],闫明涛[19]发现难产级别和产后疾病的发病率呈现正相关,且产后疾病对21 d怀孕率影响显著,辅助分娩的奶牛更容易感染坏死梭状芽胞杆菌和化脓性链球菌[20-21]。在本研究中,作者以助产和非助产奶牛为研究对象,分离培养母牛分娩45 d后的子宫灌洗液。结果表明,非助产奶牛分离出链霉菌属、链球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、气球菌属等5个属的细菌,助产奶牛分离出志贺氏菌属、不动杆菌属、假单胞菌属、棒状杆菌属、芽胞杆菌属、链球菌属、肠杆菌属、葡萄球菌属、气球菌属等9个属的细菌。在种的水平上,助产组奶牛增加了宋内氏志贺菌、不动杆菌、绿色气球菌、摩氏假单胞菌、银色棒状杆菌、地衣芽胞杆菌和表皮葡萄球菌。助产组奶牛子宫内微生物多样性明显多于非助产组。但据文献估计,实验室中可培养的细菌不到1%[22],因此推断实际的助产组奶牛子宫中生物多样性更加显著。人们普遍认为健康动物的子宫在妊娠期间处于无菌状态,而产后子宫极易受到细菌的污染[23]。这主要是由于产中及产后阴门、阴道和子宫颈口的扩张,利于细菌的入侵,加之产后初期子宫内营养物和温度适合细菌的生长,为侵入细菌的繁殖提供了适宜的条件。正常情况下,机体依靠自身的防御机能,能够将子宫内的污染自动清除;如果机体自身体质弱、防御系统不健全,特别是助产引起生殖道损伤及污染,造成致病菌净化困难,致使病原菌的大量繁殖。在难产引起的损失中,因繁殖问题引起的损失占比达30%[24]。助产导致严重的繁殖问题,主要是由于助产造成损伤及子宫内菌群多样性增多,引起子宫内膜组织复旧时间延长等。此外,细菌产物或炎症产物可抑制垂体促黄体素的分泌,干扰产后卵巢的功能和卵泡的生长,中断排卵,从而影响卵巢排卵的正常周期[24]。因此提示,助产造成的子宫微生物多样性增加,导致其产物引起生殖激素分泌失衡、子宫内膜及卵巢功能紊乱,致使奶牛妊娠率降低,配种次数增加等问题[25]。
综上所述,助产和非助产奶牛子宫菌群差异显著,助产导致子宫内菌群多样性增加。产后子宫内持续性的细菌存在,是造成助产奶牛繁殖问题的原因之一,而其中的机制还需进一步探索。
4 结论助产能够造成奶牛产后子宫内长时间的菌群多样性增加。
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(编辑 白永平)