畜牧兽医学报  2020, Vol. 51 Issue (9): 2187-2196. DOI: 10.11843/j.issn.0366-6964.2020.09.016    PDF    
引用本文
萨茹丽, 杨斌, 格根哈斯, 钱琳娜, 赵世华. 手掌参多糖提取物对氧化应激舍饲肉羊生产性能、抗氧化机能及肉品质的影响[J]. 畜牧兽医学报, 2020, 51(9): 2187-2196.  
SA Ruli, YANG Bin, GE Genhasi, QIAN Linna, ZHAO Shihua. Effects of Gymnadenia Conopsea Polysaccharide Extract on Growth Performance, Antioxidant Function and Meat Quality of House-fed Mutton Sheep under Oxidative Stress[J]. Acta Veterinaria et Zootechnica Sinica, 2020, 51(9): 2187-2196.  
手掌参多糖提取物对氧化应激舍饲肉羊生产性能、抗氧化机能及肉品质的影响
萨茹丽1, 杨斌2, 格根哈斯3, 钱琳娜2, 赵世华2     
1. 内蒙古农业大学动物科学学院, 内蒙古自治区高校动物营养与饲料科学重点实验室, 呼和浩特 010018;
2. 内蒙古自治区农牧业科学院兽医研究所, 呼和浩特 010031;
3. 内蒙古自治区锡林郭勒盟正蓝旗旗委办公室, 锡林郭勒盟 027200
收稿日期：2020-02-17
基金项目：国家肉羊产业技术体系（CARS-38）；内蒙古农牧业创新基金项目（2019CXJJM10）
作者简介：萨茹丽(1986-), 女, 蒙古族, 内蒙古自治区兴安盟人, 讲师, 博士, 主要从事反刍动物营养研究, E-mail:qisaruli@126.com.
通信作者：杨斌, 主要从事家畜营养代谢病及应激性疾病防控研究, E-mail:yangbin@imaaahs.ac.cn; 赵世华, 主要从事家畜营养代谢病防控研究, E-mail:zhaoshihua8@163.com.
摘要：本试验旨在研究手掌参多糖提取物对氧化应激舍饲肉羊生长性能、肉品质及抗氧化应激作用的影响，为手掌参及其提取物的深入研究与开发提供依据。试验选用20只6月龄体重为（35.0±4.0）kg的健康雄性小尾寒羊，随机分为两组，每组10只羊，分别为试验组和对照组。整个试验期42 d，一共分为3个阶段，前15 d为空白期，中间15 d为处理期，后12 d为造模后观测期。处理期第1天开始，对照组饲喂基础日粮，试验组饲喂在基础日粮内添加30 mg·kg-1手掌参粗多糖提取物的颗粒饲料。在处理期第15天时，对各组试验羊只按体重（BW）一次性腹腔注射Diquat（敌草快）溶液10 mg·kg-1，制造氧化应激模型，进入造模后观测期。在整个试验期第1、15、30、33、36、39和42天晨饲前空腹称重并采血，分离血清，测定血清中的抗氧化指标（SOD、GSH-Px、T-AOC、MDA）。在试验期第42天，每组随机选取5只羊屠宰后采集肉样，检测肉品质相关指标。试验结果显示，舍饲肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物可显著提高肉羊平均日采食量（P＜0.05），且当机体遭受氧化应激时，日粮中添加手掌参多糖提取物的试验处理组平均日采食量、平均日增重以及抗氧化酶含量等指标恢复较快，羊肉滴水损失显著降低，羊肉剪切力显著提高（P＜0.05）。试验结果证明，手掌参多糖提取物可提高肉羊生产性能，且能缓解氧化应激造成的生产性能和抗氧化性能下降的问题，具有一定的抗氧化应激作用。
关键词：手掌参    氧化应激    生产性能    肉品质    
Effects of Gymnadenia Conopsea Polysaccharide Extract on Growth Performance, Antioxidant Function and Meat Quality of House-fed Mutton Sheep under Oxidative Stress
SA Ruli1, YANG Bin2, GE Genhasi3, QIAN Linna2, ZHAO Shihua2     
1. Inner Mongolia Key Laboratory of Animal Nutrition and Feed Science, College of Animal Science, Inner Mongolia Agricultural University, Hohhot 010018, China;
2. Institute of Veterinary Medicine, Inner Mongolia Academy of Agricultural and Animal Husbandry Sciences, Hohhot 010031, China;
3. Chinese Communist Party ZhengLan Banner Committee, Xilingol 027200, China
Corresponding author: YANG Bin, E-mail:yangbin@imaaahs.ac.cn; ZHAO Shihua, E-mail:zhaoshihua8@163.com.
Abstract: The purpose of this experiment was to study the effects of Gymnadenia conopsea polysaccharide (GCP) extract on growth performance, meat quality and antioxidant function house-fed mutton sheep under oxidative stress, so as to provide experimental basis for extensive research and development of Gymnadenia conopsea and its extracts. Twenty 6-month-old healthy male Small-Tailed Han sheep with body weight of (35.0 ±4.0) kg were randomly divided into two groups. The experimental group (n=10) and control group(n=10). The whole experiment lasted for 42 d and was divided into 3 periods: the first 15 days were the blank period; the middle 15 days were the treatment period; the last 12 days were the observation period ofter modeling. From the first day of the treatment period, the control group was fed with basal diet, and the experimental group was fed pellet basal diet containing 30 mg·kg-1 GCP extract. On the 15th day of the treatment period, the sheep in each group were intraperitoneally injected with 10 mg·kg-1 Diquat solution according to sheep body weight(BW), and then fed for another 12 days. On the 1 st, 15th, 30th, 33rd, 36th, 39th and 42nd morning of the whole experimental period, fasting weight and blood samples were collected before feeding. The serum was separated and the antioxidant indexes (SOD, GSH-Px, T-AOC, MDA) in serum were determined. On the 42nd day of the whole experimental period, 5 sheep randomly selected from each group were slaughtered and meat samples were collected to determine the meat quality. The results showed that the addition of GCP extract to the diet of the sheep could increase the average daily feed intake (P < 0.05). When the body was subjected to oxidative stress, the indexes of daily gain and antioxidant enzymes recovered rapidly on experimental group, the mutton drip loss decreased significantly, and the mutton sheer force increased significantly(P < 0.05). The results indicated that GCP extract could improve the growth performance of mutton sheep, and alleviated the decline of growth performance and antioxidant performance caused by oxidative stress, and had a certain effect of antioxidant stress.
Key words: Gymnadenia conopsea    oxidative stress    growth performance    meat quality    

随着社会的发展，集约化养殖或“牧区繁殖，农区育肥”等养殖模式已经成为我国肉羊养殖业的主要生产模式，也是保障畜产品供给的有效途径。但是饲养和运输过程中诸多的应激源对家畜机体产生的损害和对畜产品品质的影响不容忽视。当机体发生应激时，体内氧化和抗氧化系统功能发生紊乱，使氧化自由基(ROS)大量生成或(和)清除速率下降，进而造成机体损伤，通常也称其为氧化应激[1]。目前，氧化应激已成为制约养殖业健康快速发展的重要问题之一，生产者为减少氧化应激对畜禽的影响，主要采用在日粮中添加化学抗氧化剂的方式进行防治，但其效果甚微，且化学合成的抗氧化剂的残留问题尚需进一步研究。因此，研发天然的抗应激药物，开发安全有效的饲料添加剂，对促进畜禽养殖业的健康发展、保障公众食品安全具有重要意义。手掌参(Gymnadenia conopsea)，因其外形与手掌相似从而得名，又称手参、佛手参、掌参或手儿参等，属兰科植物手参或粗脉手参的块根，广泛生长在海拔3 000~ 4 000 m的高原地带，遍布于我国黑龙江、吉林、辽宁、内蒙古、四川、云南、西藏等地，根据现有报道，手掌参所含营养成分主要为糖类物质、粗纤维以及蛋白质，其中总糖含量可达39.27%，蛋白质组成中必需氨基酸含量占氨基酸总量的34.19%，药用氨基酸占总氨基酸的59.63%(均值)[2-3]。手掌参具有诸多的药用活性，在中药、蒙药、藏药中都是极为珍贵的药材，主要用于治疗肾虚、体虚、腰酸腿疼、机体疲劳等症状，而手掌参及其提取物在抗氧化、抗衰老、提高机体免疫力等方面的生物活性也逐渐被研究者们发现[4-5]。本试验在前期研究基础上，通过在集约化舍饲肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物，研究其对氧化应激舍饲肉羊生长性能、肉品质及抗氧化应激作用的影响，为手掌参及其提取物的深入研究与开发提供依据。

1 材料与方法 1.1 试验材料与仪器

Diquat购自Sigma公司，根据试验羊的体重分别称取相应质量的Diquat，将其溶于20 mL生理盐水中，于腹腔注射，制造氧化应激模型[6]。手掌参购自内蒙古呼和浩特市蒙中医院，试验用仪器包括全自动酶标仪(美国BIOTEK公司Synergy-HT型)、烘箱(上海博迅有限公司)、分析天平(杭州忠旺科技有限公司)、超低温冰箱(海尔集团股份有限公司)、高速台式离心机(Thermo Scientific)、嫩度仪、便携式pH计、全自动氨基酸分析仪(日本岛津)、

1.2 手掌参多糖提取物的制备

手掌参多糖提取物的提取参照余培芝[7]优化的水提醇沉法进行，料液比为1:75 (g·mL-1)、温度为97 ℃、提取时间为160 min，提取2次，合并两次提取液加入无水乙醇使其浓度为80%，沉淀即为手掌参多糖提取物[6]。按此方法提取所得多糖提取液含量达到了12.16%。将所得到的多糖提取物经过冷冻干燥处理之后即可得到粉状的手掌参多糖。

1.3 试验动物的饲养管理

选用20只6月龄体重(35.0±4.0) kg的健康雄性小尾寒羊，随机分为两组，每组10只羊，分别为手掌参多糖提取物组(以下称为试验组)和对照组。试验共42 d，分为3个阶段：前15 d为空白期，所有羊只均自由采食、饮水，同时记录采食情况，用于估测采食量和试验用料量，同时也为后续羊只应激之后恢复状态提供参照依据；中间15 d为处理期，处理期第1天开始，对照组饲喂基础日粮，试验组在基础日粮的基础上以30 mg·kg-1日粮的量添加手掌参多糖粉，制成颗粒饲料后饲喂。在处理期第15天对各组试验羊只采血后, 参照赵亚波[6]的方法对试验羊建立氧化应激模型，具体方法如下：以10 mg·kg-1BW的Diquat溶液腹腔注射制造舍饲肉羊氧化应激模型；最后12 d为造模后观测期。试验期每天06:00和18:00进行饲喂，先粗后精，自由饮水。基础日粮组成及营养水平见表 1。

表 1 基础饲粮组成及营养水平(风干基础) Table 1 Composition and nutrient levels of basal diets (air-dry basis) 
1.4 生产性能的测定

每天准确称量试验羊日粮的添加量及剩料量，计算平均日采食量(ADFI)。并在试验期开始后每7 d晨饲前进行空腹称重(延续到造模后21 d)，计算试验羊的平均日增重(ADG)。

1.5 抗氧化指标的测定

在整个试验期第1、15、30、33、36、39和42天晨饲前空腹称重并采血，分离血清，测定血清中抗氧化指标(SOD、GSH-Px、T-AOC、MDA)含量。超氧化物歧化酶(SOD)活性采用黄嘌呤氧化酶法测定，丙二醛(MDA)含量采用硫代巴比妥酸法测定，总抗氧化能力(T-AOC)采用Fe3+还原法测定，谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性采用比色法测定。指标测定所用试剂盒均购自南京建成生物工程研究所，测定仪器为全自动酶标仪(美国BIOTEK公司Synergy HT型)，具体操作步骤按试剂盒说明书进行。

1.6 肉品质的测定

屠宰结束后采集背最长肌样品用于测定羊肉常规营养成分及羊肉的失水率、熟肉率、嫩度剪切值、pH及氨基酸含量等，相关检测方法分别参照国标方法进行[8]。

失水率的测定：将背最长肌样品水平放置在洁净的橡皮片上，使用圆形取样器(直径为5 cm)在样品中心部分取厚约1 cm的肌肉后称重(感量0.01 g)，然后将肉样放在上下各12层的中速定性滤纸中，以35 kg的压力施压5 min后撤去压力，称量肉重，用以下公式计算失水率，失水率(%)=(失水前肌肉重量-施压失水后肌肉重量)/失水前肌肉重量×100。

熟肉率的测定：从背最长肌肉样中取约100 g的样品称重后放在蒸屉上，上水蒸煮45 min, 取出冷却至室温后称重，重复3次取平均值，用以下公式计算熟肉率，熟肉率(%)=蒸后重/蒸前重×100。

滴水损失率的测定：将背最长肌肉样修剪成1 cm×1 cm×3 cm的长条称重后用细铁丝悬挂，置于洁净的样品杯中，将肉样用清洁的细铁丝固定在杯盖上，扣上盖后使肉样自由悬挂在样品杯内，不能碰杯壁和底，杯中肉样不能受到挤压，所有的肉样在相同体积的封闭空间内，4 ℃静置24 h后取出肉样称重。用以下公式计算滴水损失，滴水损失(%)=(初始肉重-终末肉重)/初始肉重×100。

剪切值测定方法：取背最长肌样品，剔去肌肉表面的脂肪和筋膜后放于样品袋内15~16 ℃保存24 h，等肉样自行尸僵后，放置在4 ℃冰箱中熟化24 h后取出放至室温，然后将温度计插入样品中心部位，放在自封袋中密封，于80 ℃水浴锅中加热30 min, 取出后冷却至室温，按肌纤维垂直方向切成条状，用嫩度仪测其剪切力值，同一肉样测定3次，计算平均值。

pH：肉羊屠宰后，取背最长肌，21 ℃静置45 min后，用酸度计测定肉样的pH，继续放置24 h后, 再次测定肉样的pH，每个肉样测定3个不同部位，取平均值。

背最长肌氨基酸组成和含量的测定参照GB/T5009.124—2003，采用全自动氨基酸分析仪进行测定。

1.7 数据分析

试验数据使用Excel初步整理之后，采用SAS 9.2软件进行方差分析与perdiff多重比较，显著性分析结果P＜0.05视为差异显著，P＞0.05视为差异不显著。

2 结果 2.1 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊生产性能的影响

由图 1A可知，空白期内试验组与对照组采食量无显著差异，试验开始之后试验组肉羊ADFI显著高于空白期(P＜0.05)。在处理期，试验组ADFI显著高于对照组(P＜0.05)，由此得知，日粮中添加手掌参多糖提取物可显著提高舍饲肉羊ADFI。氧化应激模型建立之后，两组试验羊ADFI与同组空白期和处理期相比显著降低(P＜0.05)，但此时空白组与试验组之间差异不显著(P＞0.05)。随着时间的延长可以看出ADFI逐渐上升，到达造模后第14天时, 试验组ADFI显著高于同期对照组，到达造模后第21天时，对照组与试验组采食量逐渐恢复，且此时试验组的ADFI显著高于对照组(P＜0.05)。由图 1B可知，空白期对照组与试验组ADG无显著差异。处理期对照组的ADG显著低于试验组(P＜0.05)。造模第7天时对照组与试验组ADG呈负值且显著低于同组其他时期(P＜0.05)，证明氧化应激可造成机体体重迅速下降。造模后第14天时各组ADG逐渐恢复。综合以上结果可知，当机体遭受氧化应激时，肉羊ADFI和ADG会显著下降，而在日粮中添加手掌参多糖提取物的试验组羊只ADFI和ADG虽然同样下降，但随后恢复较快，证明手掌参多糖提取物在一定程度上起到了缓解氧化应激对舍饲肉羊ADFI和ADG的影响作用。

大写字母表示组内不同时期之间比较，小写字母表示同一时期不同处理组间比较，肩注相同字母者差异不显著(P＞0.05)，肩注不同字母者差异显著(P＜0.05)。下同 Uppercase letters indicate comparisons between different periods within a group, and lowercase letters indicate comparisons between different treatment groups during the same period. Values with the same letter superscripts mean no significant difference (P > 0.05), while with different letter superscripts mean significant difference (P < 0.05). The same as below 图 1 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊生产性能的影响 Fig. 1 Effect of GCP extracts on growth performance of mutton sheep under oxidative stress
2.2 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊抗氧化性能的影响

由图 2A可知，各组在造模前机体T-AOC含量无显著差异(P＞0.05)。造模第3天时对照组T-AOC含量相比于造模前显著降低(P＜0.05)。造模第6天时对照组T-AOC含量显著高于同组其他时期(P＜0.05)，随后逐渐下降，造模第12天时对照组T-AOC含量与空白期T-AOC含量无显著差异(P＞0.05)，证明机体逐渐恢复了正常状态。而试验组在造模开始前各时期内机体T-AOC含量无显著差异(P＞0.05)，造模第6天和第9天时试验组肉羊体内T-AOC含量显著高于同组其他时期(P＜0.05)，随后逐渐恢复正常。由此可知，对照组肉羊在进行氧化应激造模之后机体总抗氧化能力迅速降低，随后又迅速升高，随后逐渐恢复正常，而日粮中添加手掌参多糖提取物之后的试验组肉羊在经历氧化应激时机体总抗氧化能力不会出现较大的波动，且恢复较快。由图 2B可知，空白期各组GSH-Px活性差异不显著(P＞0.05)，进行试验处理后各组差异不显著(P＞0.05)。造模之后第3天时对照组GSH-Px活性显著下降(P＜0.05)，低于同组其他时期，造模第12天时对照组GSH-Px值恢复，与空白期差异不显著(P＞0.05)。造模之后第9天时试验组GSH-Px活性显著高于同一时期的对照组(P＜0.05)，与该组其他时期相比显著升高(P＜0.05)，随后下降，造模第12天时恢复正常。由图 2C可知，试验组与对照组SOD活性在空白期、处理期时无显著变化(P＞0.05)，制造应激模型注射Diquat后，第6天对照组SOD含量显著降低(P＜0.05)，试验组SOD活性在造模第3天后开始下降，在造模第6天时达到最低值，显著低于同组其他时期，显著低于对照组(P＜0.05)，随后逐渐上升。造模后第9天时对照组与试验组SOD活性显著升高(P＜0.05)，此时试验组SOD含量显著高于对照组(P＜0.05)，随后各组SOD活性逐渐恢复至常态。图 2D可知，在造模开始之前，各组机体MDA含量差异不显著(P＞0.05)，造模开始之后体内MDA含量逐渐上升，两组之间差异不显著(P＞0.05)，造模第6天之后试验组体内MDA含量开始下降，造模第9天时显著低于对照组，显著低于同组其他时期(P＜0.05)，随后逐渐恢复，造模第12天时试验组体内MDA含量与空白期比差异不显著，证明机体恢复至正常状态。对照组体内MDA含量在造模前期无显著变化(P＞0.05)，造模开始后体内MDA含量与该组前期相比呈显著上升趋势(P＜0.05)，造模第9天时达到最高值，显著高于同时期试验组(P＜0.05)，随后逐渐恢复。由以上结果综合推测，手掌参多糖提取物可提高机体抗氧化活性，具有一定的减少应激反应持续时间的作用，可使机体尽快恢复正常状态。

A.血清GSH-Px含量; B.血清MDA含量; C.血清SOD含量; D.血清T-AOC含量 A. The GSH-Px concentration of serum; B. The MDA concentration of serum; C. The SOD concentration of serum; D. The T-AOC concentration of serum 图 2 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊抗氧化性能的影响 Fig. 2 Effect of GCP extracts on antioxidant activity of mutton sheep under oxidative stress
2.3 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊肉品质的影响

由表 2可以看出，各组屠宰后羊肉的pH45 min和pH24 h均无显著差异(P＞0.05)。试验组羊肉的剪切力显著高于对照组(P＜0.05)。试验组滴水损失显著低于对照组(P＜0.05)。由此可知，在舍饲肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物可显著降低羊肉滴水损失(P＜0.05)，显著提高羊肉剪切力(P＜0.05)，改善肉品质。而对肉色、失水率、熟肉率和pH等指标无显著影响(P＞0.05)。由表 3可知，试验组与对照组相比背最长肌内总氨基酸含量无显著差异(P＞0.05)、必需氨基酸含量和比例均无显著差异(P＞0.05)，对照组组氨酸含量显著高于试验组(P＜0.05)。

表 2 手掌参多糖提取物对氧化应激肉羊肉品质的影响 Table 2 Effect of GCP extracts on the meat quality of mutton sheep under oxidative stress
表 3 手掌参多糖提取物为对氧化应激肉羊羊肉氨基酸含量的影响 Table 3 Effect of GCP extracts on the amino acid content in meat of mutton sheep under oxidative stress
3 讨论

生产过程中产生的氧化应激会使畜禽免疫力下降，生产性能降低，畜产品质量下降，甚至导致屠宰前牲畜和家禽的死亡，从而对养殖户和养殖企业造成巨大的经济损失。更重要的是，在集约化生产已经成为主流生产模式的今天，应激问题不可避免会长期存在，成为制约困扰畜牧业快速发展的主要限制因素之一。畜禽应激之后体内自由基含量陡增，此时，机体需要动用大量的能量以及营养储备用于抵抗应激[9]，依赖体内的非酶系统和酶系统来清除这些过多的自由基。非酶系统包括谷胱甘肽(GSH)、硒和部分维生素，如维生素C和E等；酶系统则包含多种抗氧化酶，如SOD、GSH-Px和CAT等，这些物质可最大限度地减少氧化自由基的过度蓄积[10]。因此，诸多研究认为，如超氧化物歧化酶，谷胱甘肽过氧化物酶、过氧化氢酶，以及一些非酶抗氧化剂，如还原型谷胱甘肽、维生素C和E、β-胡萝卜素、血浆铜蓝蛋白和胆红素、总抗氧化剂容量(TAC)和总氧化剂状态(TOS)等均可以用作反刍动物氧化应激状态的广泛标记[11]。除此之外，MDA作为脂质过氧化的最终产物之一，也可以与上述物质一起作为氧化应激的标志之一[12]。本试验结果显示，制造氧化应激模型开始之后，各组羊体内MDA含量均呈显著上升趋势，且均有一段维持时间，但日粮中添加手掌参多糖提取物的试验组羊体内这种高MDA含量的状态维持时间较短。研究发现，MDA作为脂质过氧化的最终产物，在机体产生应激反应之后其体内含量会显著增加，且在反刍动物血清内可以监测到此变化，而当应激反应在体内得到一定程度的缓解时，体内MDA含量有所降低和控制[13-14]。由此推测，本试验中手掌参多糖一定程度上具有缓解舍饲肉羊氧化应激的作用。在此基础上，试验观测到试验开始前各试验组羊只血清T-AOC、SOD、GSH-Px含量无显著差异，当机体遭受氧化应激刺激后，对照组羊体内SOD和GSH-Px含量会迅速降低，且维持较长时间，而试验组体内SOD和GSH-Px含量会在造模后较长时间出现降低，随之升高。因机体处于氧化应激状态下时，过高的ROS会促使机体产生更多的抗氧化酶，以消除过量的ROS从而保护机体细胞和组织结构的完整以及功能的完善[15]，这也是氧化应激后血清抗氧化能力的检测是衡量动物健康的关键因素之一[16]。结合本试验生产性能结果和抗氧化指标监测结果，可推测手掌参多糖能提高机体抗氧化活性，且具有一定的减少应激反应持续时间的作用，使机体尽快恢复正常状态。这一结果与诸多天然植物提取物抗应激相关的文献报道结果相一致[17-19]。

肉羊作为一种重要的肉用家畜，其肉品质是决定消费者偏好的重要因素，也是肉羊养殖业中产品质量管理的重点，消费者在购买羊肉时通常以肉色来判别肉质，而在生产中通常采用羊肉的熟肉率、剪切力、pH、持水能力和嫩度等指标来衡量其肉质的品质。熟肉率是指肌肉煮熟之后的重量与生肉的重量比率，熟肉率的高低与其系水力的强弱成正比，系水力越强，则熟肉率越高。肉的剪切力则间接反映肌纤维的直径以及肌原纤维的状态(伸缩、舒张或分解)。肉的pH是反映动物在屠宰后，肌肉中的糖原酵解速度，是判定生理正常或异常肉质的依据，也是判定PSE肉与DFD肉的一个有效指标[20]。研究表明，天然类胡萝卜素可改善肌肉持水能力，减少滴水损失，且其作用机理可能是由于肌肉抗氧化能力的提高所致[21]。还有研究证明，蛋白质的水解和氧化会直接影响肌肉组织的持水能力，增加其滴水损失[22]。机体应激之后会动用体内储存的大量蛋白质[23]，因此，有可能会使肌肉中的蛋白质流失，使其肌肉持水性降低。而剪切力的大小可反映出肌肉持水性的强弱。本试验结果显示，在舍饲肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物，可显著降低羊肉滴水损失，显著提高羊肉剪切力(P＜0.05)，而对肉色、失水率、熟肉率和pH等指标无显著影响，这也与诸多研究结果相一致[24]，表明肌肉抗氧化能力的提高可使其保水能力增加，从而增加其嫩度[25]。氨基酸检测结果显示，对照组与试验组氨基酸含量和必需氨基酸含量无显著差异(P>0.05)，仅对照组的组氨酸含量显著高于试验组。这也与研究报道所指出的应激过程中机体内组氨酸含量发生改变的结果相一致[26-27]，究其原因可能是组氨酸作为肌肽的组成部分参与机体抗氧化机能的发挥[24]，而肌肽作为体内较强的自由基清除剂，其结构中L-组氨酸残基上的咪唑环N原子和肽键N原子可以通过与金属离子螯合，抑制由金属离子引起的脂肪氧化[28]，从而起到抗氧化作用。因此，当机体遭受强烈的氧化应激刺激后，产生大量的氧化自由基，使机体胶原蛋白的合成量减少，金属蛋白酶-2的含量增加，对肉质产生一定的负面影响[29]。但在舍饲肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物后可缓解舍饲肉羊的氧化应激，减少机体自身蛋白质的分解，从而对羊肉品质具有一定的改善作用。当前，在养殖业全面禁抗的背景下，寻找绿色、环保、安全的畜禽免疫增强剂或抗应激剂正成为重点研究方向之一[30]，期望对手掌参有效成分或制药残渣的利用与开发能够为畜牧业发展提供新的思路或试验依据。

4 结论

本试验结果显示，肉羊日粮中添加手掌参多糖提取物可以显著提高舍饲肉羊ADFI，且当机体遭受氧化应激时可使羊只ADFI、ADG以及抗氧化酶含量等指标较快恢复，具有一定的提高肉羊生产性能和抗氧化应激的作用。

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