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杨何宝, 胡美荣, 郑翔, 牟庆璇, 高沛汝
不同信号肽及分子伴侣对中性蛋白酶在枯草芽孢杆菌中分泌表达的影响
生物技术通报, 2018, 34(6): 134-140

YANG He-bao, HU Mei-rong, ZHENG Xiang, MOU Qing-xuan, GAO Pei-ru
Effects of Different Signal Peptides and Their Molecular Chaperones on the Secretion of Neutral Protease in Bacillus subtilis
Biotechnology Bulletin, 2018, 34(6): 134-140

文章历史

收稿日期:2017-11-17

不同信号肽及分子伴侣对中性蛋白酶在枯草芽孢杆菌中分泌表达的影响
杨何宝1, 胡美荣2, 郑翔1, 牟庆璇2, 高沛汝1     
1. 河北省微生物研究所,保定 071051;
2. 中国科学院微生物研究所 微生物生理与代谢工程重点实验室,北京 100010
摘要:通过筛选5个不同的信号肽基因(AmyE、AprE、NprE、SacB、YncM)代替对照质粒pHT43-npr上原始的信号肽基因,整合2个不同的分子伴侣(PrsA、DnaK)到pHT43-npr质粒上,构建重组质粒并转化到枯草芽孢杆菌WB800N中进行诱导表达。结果表明,构建了5株信号肽重组菌株,通过牛奶平板验证无明显水解圈,通过酶活性比较,5株重组菌株中性蛋白酶活性均显著低于对照菌株;成功构建了2株整合分子伴侣的重组菌株,通过牛奶平板验证有水解圈,通过酶活性比较,两株菌株均表达中性蛋白酶,其中重组菌株WB800N/pHT43-npr-PrsA产蛋白酶活性比对照菌株WB800N/pHT43-npr提高了23%,重组菌株WB800N/pHT43-npr-DnaK产蛋白酶活性比对照菌株提高了33%。
关键词中性蛋白酶    信号肽    分子伴侣    枯草芽孢杆菌    
Effects of Different Signal Peptides and Their Molecular Chaperones on the Secretion of Neutral Protease in Bacillus subtilis
YANG He-bao1, HU Mei-rong2, ZHENG Xiang1, MOU Qing-xuan2, GAO Pei-ru1     
1. Institute of Microbiology, Hebei Academy of Sciences, Baoding 071051;
2. Key Laboratory of Microbial Physiological and Metabolic Engineering, Institute of Microbiology, Chinese Academy of Sciences, Beijing 100010
Abstract: By screening five different signal peptides to replace the original signal peptide of the plasmid pHT43-npr and integrating two different molecular chaperones (PrsA and DnaK) to the plasmid pHT43-npr, we constructed recombinant plasmids and then transformed them to Bacillus subtilis WB800N to have induced expressions. As a result, five recombinant strains with new signal peptide were constructed, no hydrolyzed circles emerged via milk plate testing, and all the five strains' enzyme activities were obviously lower than that by control strain. We also successfully constructed two recombinant strains integrated the molecular chaperones, both of the two strains emerged hydrolyzed circles in milk plate testing. Both strains had neutral protease expressed, and the enzyme activity of recombinant strain WB800N/pHT43-npr-PrsA increased 23%, and the enzyme activity of recombinant strain WB800N/pHT43-npr-DnaK increased 33%, compared with control strain WB800N/pHT43-npr.
Key words: neutral protease     signal peptide     molecular chaperone     Bacillus subtilis    

传统的制革工艺会产生大量污染,其中,以脱毛环节产生的污染最为严重[1]。近年来研究的清洁脱毛工艺主要有酶法脱毛[2]、灰碱法基础上的保毛脱毛、有机胺脱毛、过氧化氢氧化脱毛等方法[3]。其中,蛋白酶法脱毛因条件温和,对真皮中角蛋白水解少,且毛可回收,是目前为止最有可能代替灰碱法实现清洁脱毛工业化的方法[4]。然而酶法脱毛也有一些缺点,如酶蛋白质量不稳定、纯度较低、专一性差等,会造成小毛脱不净或烂面、松面、毛孔扩大等问题,尤其是酶系中含有水解皮胶原的胶原蛋白酶,在大规模应用中如工艺控制不严会造成松面、烂皮现象[5]。因此酶脱毛在实际生产过程中的操作控制难度较大。但从环保角度出发,酶法脱毛仍然是未来脱毛技术清洁化的发展方向。

近年来,国内外的一些学者关于信号肽载体构建[6-10]和分子伴侣共表达[11-14]来提高外源蛋白在宿主菌中的表达做了很多研究。研究表明,针对不同的蛋白质应该选择合适的信号肽来实现有效的分泌表达。Nagarajan等[15]选择了4种不同的酶蛋白信号肽,以芽孢杆菌BE1510为宿主菌,分别表达重组链霉抗生物素蛋白(Streptavidin),结果中性蛋白酶信号肽的分泌效率最高;Brockmeier等[16]尝试了来源于枯草芽孢杆菌的173种信号肽对角质酶分泌表达的影响,其中有39种信号肽不能实现角质酶的分泌。研究表明,分子伴侣能够帮助蛋白正确折叠,提高蛋白的可溶性表达,减少包涵体的形成。Pfeffer等[17]E. coli表达目的蛋白的同时表达分子伴侣蛋白,提高了目的蛋白的可溶性表达比例;陈飞等[18]的研究表明,在摇瓶中,相对于无分子伴侣的菌株,单独整合分子伴侣PDI及同时整合分子伴侣Ero1、PDI菌株的CiP酶活分别提高了2.43和2.62倍,活力达到316 U/mL和340 U/mL。

鉴于此,本研究室前期构建了一株产中性蛋白酶的枯草芽孢杆菌菌株WB800N/pHT43-npr[19],酶法脱毛与传统的灰碱法效果相当,并且该菌株剔除了胶原蛋白酶基因,不表达胶原蛋白酶,不会造成松面、烂皮、毛孔扩大等问题。但是,该菌株中性蛋白酶几千的酶活表达能力较野生菌上万的酶活力还有很大差距,在实际应用中成本较高,难以实现规模化生产。因此,在原有研究的基础上,本研究拟通过筛选信号肽和整合分子伴侣来提高中性蛋白酶基因在枯草芽孢杆菌中的表达,有助于实现重组中性蛋白酶的工业化生产,进而促进清洁化脱毛工艺的推广。

1 材料与方法 1.1 材料 1.1.1 菌株与质粒

本实验所用菌株与质粒及其相关特性描述见表 1。大肠杆菌T1用于质粒的扩增和PCR片段的克隆。解淀粉芽孢杆菌AS1.398作为供体菌,WB800N作为宿主菌。

表 1 菌株与质粒
1.1.2 主要试剂和仪器

高保真DNA mix聚合酶,购自MCLAB公司;限制性内切酶Xma I、BamH I、高保真DNA组装预混液、胶回收试剂盒、质粒小提试剂盒购自NEB公司;DNA maker、Protein maker购自Thermo公司;IPTG购自天根公司;Yeast和Tryptone购自OXOID公司;其他为国产分析纯试剂;PCR仪购自东胜创新生物科技有限公司;核酸电泳仪购自北京六一公司;蛋白电泳仪购自君意公司;凝胶成像仪购自天能公司;引物合成和DNA测序由北京擎科生物科技公司完成。

1.1.3 培养基

LB培养基(L):10 g胰蛋白胨,5 g酵母粉,10 g NaCl,121℃灭菌20 min;固体培养基加20 g/L的琼脂粉。牛奶平板培养基(L):脱脂奶粉20 g,琼脂20 g,115℃灭菌20 min。

1.1.4 PCR引物

本实验所用PCR引物见表 2

表 2 引物序列
1.2 方法

常规分子生物学操作参照《分子克隆手册》[20]

1.2.1 不同信号肽重组质粒的构建

以pHT43-npr重组质粒为模版,设计特定引物QC-F和QC-R进行PCR,去除质粒上原有的信号肽基因,得到新的质粒命名为pHT43-npr-N;然后,采用Quick Change引物设计方法,设计5组信号肽引物(表 2,signal peptide primer),以pHT43-npr-N为模版进行PCR,得到5个重组质粒,分别为pHT43-npr-aprE、pHT43-npr-sacB、pHT43-npr-nprE、pHT43-npr-amyE、pHT43-npr-yncM。

1.2.2 不同分子伴侣重组质粒的构建

(1)克隆分子伴侣基因PrsA和DnaK:以枯草芽孢杆菌AS1.398基因组为模版,设计两组分子伴侣引物进行PCR(表 2,molecular chaperone primer),核酸电泳验证,使用胶回收试剂盒回收分子伴侣片段。(2)质粒酶切和新重组质粒的构建:对pHT43-npr质粒进行BamH I和Sma I双酶切,得到pHT43片段和npr片段;再以npr片段和分子伴侣片段为模版,设计连接引物进行PCR(表 2,connected primer),得到npr+分子伴侣片段;最后采用Gibson连接方法将pHT43片段和npr+分子伴侣片段进行连接,得到新的重组质粒。

1.2.3 重组质粒转化到大肠杆菌T1中

重组质粒采用热激法进行转化,然后涂布于LB固体平板(含100 μg/mL氨苄青霉素),37℃过夜培养。

1.2.4 菌液PCR初步鉴定

用移液抢挑取转化子单克隆至LB液体培养基中培养6-8 h后,进行菌液PCR。菌液PCR引物如表 2。反应结束后将PCR产物进行1%琼脂糖电泳检测验证,验证正确的菌落。

由于信号肽片段较短,无法通过此方法进行验证,所以直接测序验证。

1.2.5 重组质粒DNA测序及检验实验的正确性

将菌落PCR鉴定为阳性克隆的转化子进行5 mL LB液体试管培养12-16 h,并送往擎科生物(北京)股份有限公司进行DNA测序,测序引物如表 2(sequencing primer);将测序后获得的序列用DNAMAN软件进行比对以验证序列的正确性和该方法的可靠性。

1.2.6 转化枯草芽孢杆菌WB800N

将验证正确的菌株37℃培养8-12 h,用NEB公司Plamid Miniprep Kit试剂盒小量提取质粒,取10 μL质粒加入到400 μL枯草芽孢杆菌WB800N感受态中,37℃,220 r/min培养2 h;涂布于LB固体平板(含10 μg/mL氯霉素),37℃过夜培养。

1.2.7 牛奶平板初步验证

用移液枪挑取转化子于牛奶平板验证中性蛋白酶活性,37℃培养1-3 h,有水解圈生成的菌落即为阳性转化子。

1.2.8 重组菌株表达中性蛋白酶酶活性的测定及蛋白电泳分析

将对照菌株(WB800N/pHT43-npr)与重组菌株按4%的比例接种于10 μL/mL CmR的50 mL LB液体培养基中,37℃、180 r/min培养。当菌体OD600=0.5左右时,添加1‰IPTG诱导产酶,诱导24 h后取样,采用Folin-酚法测定中性蛋白酶酶活性,并对重组菌株表达的中性蛋白酶进行SDS-PAGE电泳分析。

2 结果 2.1 不同信号肽重组质粒的构建、验证、转化及诱导表达结果 2.1.1 pHT43-npr质粒中原有信号肽基因剔除的结果

以pHT43-npr质粒为模版,设计引物进行PCR剔除原有的信号肽序列,将PCR产物进行1%琼脂糖凝胶电泳,电泳结果(图 1)显示,pHT43-npr-N质粒的基因大小为9 428 bp,条带清晰,无杂带,与预期结果一致。

图 1 pHT43-npr-N质粒电泳分析 M:DNA maker;1:pHT43-npr-N质粒
2.1.2 不同信号肽重组质粒构建、转化大肠杆菌T1、酶切及测序结果验证

图 2可知,5个重组质粒经过双酶切电泳后,均有两条特异性条带,并且中性蛋白酶基因npr的条带位置正确;同时,测序结果用DANMAN进行比对,5个信号肽片段测序结果与实际序列完全重合,说明了重组质粒构建成功,并成功转化到大肠杆菌T1中。

图 2 不同信号肽重组质粒双酶切电泳验证 1:pHT43-npr-aprE;2:pHT43-npr-nprE;3:pHT43-npr-yncM;4:pHT43-npr-sacB;5:pHT43-npr-amyE;M:DNA maker
2.1.3 不同信号肽重组质粒转化枯草芽孢杆菌WB800N及牛奶平板验证结果

图 3可知,与对照菌株(WB800N/pHT43-npr)相比,5株重组菌株涂牛奶平板后虽有菌落生成,但均无水解圈生成,说明5株菌没有分泌中性蛋白酶。

图 3 不同信号肽重组菌株涂牛奶平板结果 1:WB800N/pHT43-npr;2:WB800N/pHT43-npr-sacB;3:WB800N/pHT43-npr-yncM;4:WB800N/pHT43-npr-aprE;5:WB800N/pHT43-npr-nprE;6:WB800N/pHT43-npr-amyE
2.1.4 不同信号肽重组菌株中性蛋白酶酶活验证结果

以LB液体培养基作为发酵培养基,通过添加诱导剂IPTG进行诱导产酶,24 h后测酶活性。由表 3可知,两株重组菌株的发酵酶活性均显著低于对照菌株(WB800N/pHT43-npr),3株重组菌株不表达中性蛋白酶。

表 3 不同信号肽重组质粒诱导发酵24 h酶活测定结果
2.2 不同分子伴侣重组质粒的构建、验证、转化及诱导表达结果 2.2.1 克隆分子伴侣基因PrsA和DnaK结果

分子伴侣PrsA片段基因长度为876 bp,DnaK片段长度为1 836 bp,两个分子伴侣位置条带正确(图 4)。

图 4 克隆分子伴侣片段电泳验证 1-5:PrsA片段位置;M:Maker;6-10:DnaK片段位置
2.2.2 构建新重组质粒并转化大肠杆菌T1酶切验证结果

npr+PrsA片段基因长度为2 352 bp,npr+DnaK片段基因长度为3 312 bp。由图 5可知,通过菌液PCR、核酸电泳验证,两条片段在相应位置均有特异性条带,且大小与预期相符。

图 5 菌液PCR验证电泳图 1、2:npr+PrsA片段3、4:npr+DnaK片段
2.2.3 不同分子伴侣重组质粒转化枯草芽孢杆菌WB800N及牛奶平板验证结果

图 6可以看出,牛奶平板有水解圈生成,说明菌落周围有中性蛋白酶存在。

图 6 不同分子伴侣重组菌株涂牛奶平板结果 1:WB800N/pHT43-npr 2:WB800N/pHT43-npr-PrsA 3:WB800N/pHT43-npr-DnaK
2.2.4 不同分子伴侣重组菌株中性蛋白酶酶活验证及蛋白电泳分析结果

图 7可知,两株重组菌株和对照菌株在30-40 kD之间均有一条特异性条带,说明两株重组菌株成功后表达了中性蛋白酶。与对照菌株相比,两株重组菌株发酵酶活都有所增加,分别增加了23%和33%(图 8)。

图 7 不同重组菌株中性蛋白酶SDS-PAGE结果 1:WB800N/pHT43-npr 2:WB800N/pHT43-npr-PrsA 3:WB800N/pHT43-npr-DnaK
图 8 不同重组菌株发酵酶活对比结果 A:WB800N/pHT43-npr;B:WB800N/pHT43-npr-PrsA;C:WB800N/pHT43-npr-DnaK
3 讨论

随着制革业对清洁化生产工艺的需求,酶法脱毛制革因酶制剂来源广泛、易获得、无毒害和污染小等优点成为替代传统灰碱法脱毛工艺的首选[21-22]。目前市场中的脱毛酶如1398中性蛋白酶和来源于其他枯草芽孢杆菌的中性蛋白酶,虽然可以完成脱毛工艺,但是酶制剂中有胶原蛋白酶的存在,会造成皮面烂面、毛孔粗大等问题,使得酶法脱毛很难在制革工艺中规模化推广。目前大多数研究集中在菌株发酵条件优化[23-24]、菌种诱变选育[25-26]和不同外源系统表达[27-28]等技术来提高中性蛋白酶的表达上。虽然这些技术能在一定程度上提高酶的产量,但利用信号肽和分子伴侣来提高中性蛋白酶的表达还罕见报道。枯草芽孢杆菌表达系统已经是一种成熟的外源蛋白表达系统,本研究选用的宿主菌为剔除胶原蛋白酶基因的枯草工程菌株WB800N,从源头上消除了胶原蛋白酶对皮胶原的影响。然而外源蛋白在进行分泌表达过程中往往水平较低,大量研究表明[15-18, 29-36],选择适合的信号肽和分子伴侣可以提高蛋白的表达。本文通过筛选信号肽和整合分子伴侣两种技术手段,来提高中性蛋白酶基因(npr)的胞外表达。构建的5株信号肽重组菌株虽然不能表达中性蛋白酶,但对以后的科研提供了一定的参考;成功构建的2株整合分子伴侣的重组质粒对中性蛋白酶的表达均有一定的提高,整合PrsA和整合DnaK使目的蛋白酶活分别提高了23%和33%,说明两个分子伴侣成功地帮助了中性蛋白酶基因进行更快速的折叠和组装。

本研究通过筛选信号肽和整合分子伴侣促进蛋白转运和正确折叠从而提高中性蛋白酶表达量,为该酶的工业化生产及应用打下基础,对促进其他外源蛋白在枯草芽孢杆菌中的分泌表达提供了新的思路和借鉴。本文通过研究信号肽和分子伴侣对中性蛋白酶分泌表达的影响,得到了一些有意义的结果,但仍有一下几方面有待进一步研究:

(1)重组菌株WB800/pHT43-npr-PrsA和WB-800/pHT43-npr-DnaK的发酵培养采用的是LB培养基,为了提高分泌量,可以对培养基成分及发酵条件进行优化;(2)本研究仅选取了5种信号肽来替换原始信号肽amyQ基因,得到的结果不理想。下一步研究可选取更多具有代表性的信号肽或者以高通量的手段建立载体库,系统化的分析在不同信号肽的引导下,具有不同结构蛋白质分泌效率的规律;(3)本研究只做了整合一种分子伴侣重组菌株的构建,对于整合两种或多种分子伴侣对目的蛋白的分泌表达的影响可作为将来的研究方向;(4)本文未对重组酶的酶学性质和应用做进一步研究,此可作为下一步的研究方向。

4 结论

通过筛选信号肽和整合分子伴侣到重组质粒上,成功构建了两株整合分子伴侣的重组菌株,中性蛋白酶发酵酶活比对照分别提高了23%和33%。

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