2.贵州省生猪健康养殖工程技术研究中心,贵阳 550025;
3.贵州省畜牧兽医学校,贵阳 550018
2.Guizhou Engineering Technology Research Center for Healthy Pig Breeding,Guiyang 550025;
3.Guizhou Husbandry Animal Science Vocational School,Guiyang 550018
猪肉品质已经被列入猪的品种选育的重要技术指标,劣质猪肉表现为PSE (Pale,soft,exudative)肉和DFD (Dark,firm,dry)肉猪。自1953年Ludvigsen首次提出PSE猪肉概念以来,在世界各地均有类似报道[1]。美国PSE猪肉发生率为5%-20%,日本为8.5%-11.5%[2],丹麦为10%-15%[3]。我国各地PSE猪肉发生率在10%-30%之间,个别地区高达60%-70%。猪骨骼肌兰尼定受体(Ryanodine receptor 1,RYR1)基因的有害突变型为氟烷基因(halothane,Haln),是导致猪应激综合征(Porcine stress syndrome,PSS)、发生恶性高温综合症状(malignant hyperthermia syndrome,MHS)、产生PSE肉或DFD肉的遗传基础[4],由于兰尼定受体cDNA的C1843 → T1843突变使兰尼定受体蛋白结构和功能的改变,导致了劣质猪肉的产生[5]。现大量研究表明,氟烷有害基因还对猪的繁殖力有影响,Haln型相对于HalN型在繁殖性能上表现为一定的劣势[6]。在我国大多数地方猪种未见报道有Haln基因[7, 8, 9],仅少数品种有Haln基因存在,如民猪Haln基因频率为15.62%[9]。随着人们生活水平的不断提高,消费者对肉质提出了更高的要求,猪肉不仅要卫生,而且还要瘦肉率高、口感好,生产优质猪肉已迫在目睫。因此,对猪进行基因诊断,对PSE猪肉和DFD猪肉的形成机理进行探讨,找出有效的防控措施,建立"抗应激敏感基因专门化品系",具有重要的经济价值和实际意义。本研究针对贵州省5个地方猪种及较为普及的三元商品猪生产基地进行氟烷基因检测研究,旨为贵州地方猪种"抗应激敏感基因专门化品系的培育提供技术支撑。 1 材料与方法 1.1 材料
白洗猪36份血样采集于贵州省施秉县,地方猪种DNA样黔北黑猪14份、糯谷猪22份、宗地花猪31份、从江香猪29份皆为本实验室保存样,三元商品猪19份血样采集于贵阳市某种猪场。
血液基因组柱式小量提取试剂盒与2×Es Taq MasterMix购于康为世纪生物科技公司,限制性内切酶Hha I购于宝生生物工程(大连)有限公司,DNA Marker购于生工生物工程(上海)有限公司,引物合成由生工生物工程(上海)有限公司完成。 1.2 方法 1.2.1 PCR扩增
按血液基因组柱式小量提取试剂说明书提取DNA后,扩增RYR1基因的DNA片段。引物设计[5],上游引物:5'-TCCAGTTTGCCACAGGTCCTACCA-3';下游引物:5'-ATTCACCGGAGTGGAGTCTCTGAG-3'。欲扩增产物是含RYR1基因cDNA第1 843位点长度为660 bp的片段。PCR反应体系20 μL:2×Es Taq MasterMix 10 μL,上、下游引物各0.8 μL (10 μmol/L),基因组DNA模板2 μL,加灭菌水至终体积20 μL。PCR扩增条件:95℃预变性5 min,95℃变性30 s,55-65℃退火30 s,72℃延伸30 s,35个循环;72℃延伸7 min,4℃保存。扩增产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测。 1.2.2 酶切反应
酶切反应体系50 μL:10×Quick Cut Green Buffer 3 μL,10 μL PCR产物,限制性内切酶Hha I 1 μL,加灭菌水至终体积30 μL。混匀试剂后瞬时离心,37℃水浴酶切10 min。酶切产物经1%琼脂糖凝胶电泳检测。 2 结果 2.1 PCR反应条件优化
通过DNA池技术摸索最佳PCR反应条件,RYR1基因cDNA含第1 843位点长度为660 bp (全序列17 721 bp-18 381 bp片段)的片段在20 μL PCR反应体系中,退火温度63℃反应条件下扩增良好。对各样分别进行PCR扩增,扩增出660 bp的目的条带(图 1)。
2.2 RYR1基因RFLP分析Hha I内切酶的识别位点为5'-GCG↓C-3'。PCR扩增产物是含RYR1基因cDNA第1 843位点长度为660 bp的片段,根据电泳图谱中的带型判断氟烷基因型。如果猪的基因型为HalNN,由于胞嘧啶未突变成胸腺嘧啶,扩增产物被酶切为494 bp和166 bp,因此电泳形成两条带;如果基因型为Halnn时,发生基因突变的酶切位点消失,Hha I内切酶不能识别,对PCR产物不能酶切,所以只能看到660 bp 1条带;如果猪的基因型为HalNn杂合子,扩增产物则可以电泳形成660 bp、494 bp和166 bp 3条带[11]。酶切产物经1%琼脂糖凝胶电泳,可以观察到RYR1基因的DNA酶切片段(图 2)。经检验,三元商品猪19份样品中检测出10份样品RYR1基因型为HalNn、9份样品为HalNN、无Halnn。
2.3 RYR1基因C1843→T1843突变的基因型频率和基因频率对白洗猪、黔北黑猪、宗地花猪、糯谷猪及从江香猪5个贵州省地方猪种132份样品进行了检测,全为RYR1基因抗应激敏感HalNN型,三元商品猪19份样品中检测到两种基因型,应激敏感基因隐性携带型HalNn与抗应激敏感HalNN型,未检测出应激敏感基因型Halnn,RYR1基因cDNA C1843 → T1843突变的基因型频率和基因频率,如表 1所示。
3 讨论 3.1 氟烷基因检测在生产中的引物设计氟烷基因检测技术在指导生产过程中引物设计至关重要,引物设计可根据GenBank中的猪RYR1基因序列进行设计,亦可参考已发表研究报告中提供的参考序列。常见的氟烷基因3个引物设计序列见表 2,本研究采用Fujii等[5]设计的引物,引物在PCR扩增体系中最适温度条件为63℃。
3.2 RYR1基因型频率和基因频率对比在近年的研究报道中,国外引进猪种n型等位基因频率较高,皮特兰猪、英国大白猪、台湾杜洛克猪、丹麦杜洛克、迪卡猪C系、迪卡猪F系的Haln型等位基因频率分别为100%、12.5%、5.3%、4.6%、8.3%及4.2%[13]。本实验对5个贵州省地方猪种及三元商品猪共151份样本的RYR1基因限制性内切酶片段长度多态性进行了检测。结果表明,5个贵州省地方猪种中全为抗应激敏感基因HalNN型,三元商品猪群中检测到10例应激敏感基因隐性携带型HalNn,占猪群体的52.63%(n=19),Haln型等位基因频率为26.32%。结果中三元商品猪Haln型等位基因与国外猪种相比,国外种猪Haln型等位基因频率保持较高水平;与朱锋钊[14]报道的外三元猪群RYR1基因HalNn型比例为11.11%、Haln型等位基因频率为5.56%相比,HalNn型基因比例上升了41.52%,Haln型等位基因频率上升了27.62%,HalNn型基因在试验三元商品猪群中的比例呈明显上升趋势;本实验5个贵州本地猪种检测全为抗应激敏感基因HalNN型,与朱锋钊[14]报道相同,且首次对贵州省优良地方猪种白洗猪、黔北黑猪进行了RYR1基因检测,二者皆为抗应激敏感基因HalNN型。 3.3 RYR1基因对肉质的影响
近来的研究表明,Haln等位基因的出现与欧洲猪种的高瘦肉率选育直接相关[15],RYR1基因HalNn型猪与HalNN型比较,HalNn型猪骨骼肌应激敏感性高,应激易使肌细胞肌浆网终池中的钙离子大量快速地释于肌浆,引起肌细胞快速收缩,随着ATP降解供能,钙离子又被泵回肌浆网终池,肌浆内钙离子浓度下降,肌细胞转入静息期。含Haln型等位基因猪遇到应激时,如此反复刺激肌细胞并促使其生长,肌肉生长的需求增加致使Haln型猪对饲料转化成瘦肉的需求增加,瘦肉比重亦随之增大,故Haln型猪比正常猪肌肉更为发达。RYR1基因的n型等位基因与高瘦肉率正相关,但也具高的PSE发生率。据研究,RYR1基因Halnn型猪即使采用最优处理,其产生PSE肉的比率也高达80%以上,RYR1基因HalNn型猪产生各种劣质肉的比率达到36.8%,显著高于HalNN型猪22.5%的水平[16]。 3.4 RYR1基因对繁殖力的影响及效益分析
杜立新等[17]报道,HalNn型母猪的产活子数比Halnn型多1.74头。Stalder等[18]对某应激敏感合成系研究表明,HalNN型的21日龄成活率则比HalNn型高出9.33%(P < 0.05)。蒋思文等[19]报道,HalNN型和HalNn型猪的窝总产仔数、窝产活仔数、初生窝重及育成数、断奶窝重均极显著高于Halnn型猪(P < 0.01),断奶头数HalNN显著高于Halnn型(P < 0.05)。刘月环[20]报道,HalN基因对总产仔数、20日龄仔猪成活率、断奶前后仔猪的生长效应显著(P < 0.05)。总的来说,Halnn型相对于HalNN和HalNn型在繁殖性能上表现出一定的劣势。刘桂琼等[12]研究表明,Haln基因对产仔数的遗传效应影响较大,凡带有RYR1基因Haln型的母猪,其产仔数、产活仔数比纯合HalNN母猪少,从头3胎总平均数看,Halnn母猪比HalNN母猪窝产仔数、产活仔数、断奶仔数少1.92、1.72和1.57头,HalNn母猪比HalNN母猪少0.80、0.84和0.72头。本研究商品群体中HalNn、HalNN、Halnn型比例为52.63%、47.37%和0。根据孟德尔遗传定律可测算出该商品猪群父母代猪群基因型为HalNN、HalNn、Halnn,基因型比例阈值为0-47.37%、0-94.74%、5.26%-52.6%,按试验场300头基础母猪,利用年限8胎次,可计算出该场仅因RYR1基因对繁殖性能的影响,至少损失808.55头猪仔。若对该场300头基础母猪及公猪进行RYR1基因检测,约花费检测成本0.5万元,对该场进行氟烷基因筛选投资回报可观。 3.5 猪场氟烷基因型的净化
氟烷有害基因Haln型等位基因属氟烷敏感基因,Fujii等[5]对氟烷基因的克隆分析和比较正常猪与应激猪兰尼定受体cDNA序列发现,兰尼定受体cDNA的C1843 → T1843突变使兰尼定受体蛋白结构和功能的改变。这种改变导致劣质猪肉的产生[4]。氟烷基因一方面导致肌细胞肥大,提高胴体瘦肉率,另一方面易诱导发生恶性高热综合征产生PSE肉,降低肌肉品质,随氟烷基因n型频率的增加,猪的肉质性状、生长发育性状和繁殖性状都逐渐变劣[21],已给世界养猪生产造成了巨大损失。在常规育种过程中,只是淘汰掉有应激综合征表现的隐性纯合个体,而让杂合体自由繁殖,那么隐性基因频率在选育前几年降低很快,以后则越来越缓慢,难以完全消除,而氟烷基因杂合子猪在生产性能和体型外貌上具有杂合优势,通过常规选种技术更易被选作种用[10]。本研究对三元商品猪19份样本的RYR1基因多态性检测结果说明,在猪群的父母代种猪中一定含有RYR1基因HalNn型猪、HalNN型和Halnn型。从整个养猪生产综合来看,Haln等位基因具降低产出的效应,因此有必要应用目前各种检测手段指导实际生产,消除氟烷隐性及杂合有害基因,在种猪群中淘汰这一基因,建立"抗应激敏感基因专门化品系",达到猪场氟烷应激敏感基因型的净化,最终生产出优质的猪肉。 4 结论
本实验利用PCR-RFLP法对白洗猪、黔北黑猪、宗地花猪、糯谷猪、从江香猪5个地方猪种及三元商品猪共151份样本进行了RYR1基因检测,首次对黔北黑猪和白洗猪RYR1基因检测进行报道,5个地方猪种均不含氟烷敏感Haln型等位基因。本实验三元商品猪群中HalNn基因型占猪群体的52.63%(n=19),Haln型等位基因频率为26.32%,HalNn基因型在实验猪群中的比例较大。建议运用PCRRFLP法对基础母猪RYR1基因型净化,在种猪群淘汰RYR1基因Haln型等位基因,最终建立"抗应激敏感基因专门化品系"。
[1] | 丁玉庭, 刘化章, 周晓云. 猪PSE 肉与正常肉的肌原纤维形态 学比较研究[J]. 中国食品学报, 2005, 5(2):28-33. |
[2] | 韩杰, 边连全, 曹新民. PSE 猪肉的发生机制及调控措施[J]. 黑龙江畜牧兽医, 2011, 4 :33-34. |
[3] | 李建颖. 上海地区种猪氟烷基因的检测[D]. 杭州:浙江大学, 2006. |
[4] | 帅素容, 李学伟, 赵秀娟, 朱砺. 中国6 个地方猪种与3 个外 种猪氟烷基因PCR 产物序列比较研究[J]. 中国畜牧杂志, 2005, 2 :14-17. |
[5] | Fujii J, Otsu K, Zorzato F, et al. Identification of a mutation in porcine ryanodine receptor associated with malignant hyperthermia[J]. Science, 1991, 253(5018):448-451. |
[6] | 赵中权. 藏猪氟烷基因, 雌激素受体基因和生长激素基因PCRRFLP 分析[D]. 雅安:四川农业大学, 2005. |
[7] | 陈蕴颖, 步宏, 李幼平, 等. 中国内江猪的氟烷基因型[J]. 华 西医科大学学报, 1999, 2 :5-7. |
[8] | 方美英, 姜志华, 刘红林, 等. 不同猪种中氟烷基因频率调查分 析[J]. 浙江农业学报, 1999, 3 :39-41. |
[9] | 李来记, 张沅, 李宁. 猪恶性高热综合征(MHS)基因群体检 测及部分片段DNA 序列研究[J]. 中国兽医学报, 1996, 16(6): 540-545. |
[10] | 孙敬礼, 武磊, 李大全, 等. 新疆某规模化猪场氟烷基因的检 测[J]. 猪业科学, 2011, 1 :96-98. |
[11] | 张金玲, 吴海洪, 钱永华, 等. PCR-RFLP 技术检测新嘉兴黑 猪氟烷基因[J]. 中国畜牧兽医, 2008, 09 :133-134. |
[12] | 刘桂琼, 丁家桐, 姜勋平, 张牧. RYR1 基因对母猪繁殖性能 的影响[J]. 中国兽医学报, 2002, 22(4):392-394. |
[13] | 姚德标, 廖波, 谢丕雄, 等. 引进种猪氟烷敏感基因检测结果 报告[J]. 养猪, 2002, 4 :30. |
[14] | 朱锋钊. 七种贵州地方猪品种的三种遗传缺陷主效基因多态 性研究[D]. 贵阳:贵州大学, 2009. |
[15] | Čechová M, Wolf J, Trčka P. Impact of RYR1 genotype of Piétrain boars on litter traits of Czech Large White×Czech Landrace crossbred sows[J]. Journal of Animal Breeding and Genetics, 2007, 124(2):86-93. |
[16] | Christian L. Clarifying the impact of the stress gene[J]. Natl Hog Farmer, 1995, 40(6):44-46. |
[17] | 杜立新, 王爱华, 姜运良, 张金花. 猪RYR1 基因的检测及其 对生产性能的遗传效应[J]. 畜牧兽医学报, 2001, 32(6): 481-486. |
[18] | Stalder KJ. Effects of porcine stress syndrome genotype on maternal traits in swine[D]. Iowa State University, 1995. |
[19] | 蒋思文, 邓昌彦, 熊远著, 汪绍南. 氟烷敏感性与繁殖性能关 系的研究[J]. 中国畜牧杂志, 1995, 31(5):20-21. |
[20] | 刘月环. 氟烷基因与 FUT1 基因对猪生产性能效应的研究[D]. 杭州:浙江大学, 2001. |
[21] | 徐小波, 刘铁铮, 许康朴, 葛云山. 苏钟Ⅰ系和Ⅱ系猪的氟烷 基因及其对产肉性能的影响[J]. 中国兽医学报, 2000, 20(4): 397-400. |