工作空间

文章信息

吴燕燕, 钱茜茜, 李来好, 杨贤庆, 马海霞. 2015
鱼类腌制品加工过程微生物群落多样性研究进展
生物技术通报,2015,31(7): 40-44

Wu Yanyan, Qian Xixi, Li Laihao, Yang Xianqing, Ma Haixia. 2015
Research Progress on Diversity of Microbial Community During the Pickled Processing of Salted Fish Products
Biotechnology Bulletin,2015,31(7): 40-44

文章历史

收稿日期:2014-10-20

鱼类腌制品加工过程微生物群落多样性研究进展
吴燕燕1, 钱茜茜1,2, 李来好1, 杨贤庆1, 马海霞1    
1.中国水产科学研究院南海水产研究所 农业部水产品加工重点实验室,广州 510300;
2.甘肃省肿瘤医院,兰州 730050
摘要:鱼类腌制品是中国的一种传统加工水产品,由于其易保存、风味特殊、营养丰富,深受大众喜爱。然而腌制加工过程中微生物种类复杂,对制品的品质有较大的影响。结合国内外最新研究阐述了传统腌制鱼和微生物发酵快速腌制鱼中的微生物群落变化、微生物多样性最新研究技术及应用,并在此基础上提出了鱼类腌制品加工过程微生物群落多样性的研究方向,为揭示影响鱼类腌制过程的微生物作用机制及生产优化控制提供理论依据。
关键词鱼类腌制品     微生物多样性     微生物群落     腌制加工    
Research Progress on Diversity of Microbial Community During the Pickled Processing of Salted Fish Products
Wu Yanyan1, Qian Xixi1,2, Li Laihao1, Yang Xianqing1, Ma Haixia1,     
1.Key Lab of Aquatic Product Processing,Ministry of Agriculture,South China Sea Fisheries Research Institute,Chinese Academy of Fishery Sciences,Guangzhou 510300;
2.College of Food & Technology,Shanghai Ocean University,Shanghai 201306
Abstract:Salted fish is one of traditional aquatic products in China. All along it has been received people’s favor due to its easy preservation, unique flavor and rich nutrition. However, microbial species in pickled processing are complex and have a significant effect on the quality of the products. Combining with the latest researches at home and abroad, here we expound the changes of microbial community in traditional salted fish and fast pickled fish by microbial fermentation, as well as the latest technology and application in microbial diversity researches. On this basis, we propose the research direction on diversity of microbial community during the salted fish processing, and provide the theoretical basis for the researches on microbial action mechanism in salted fish and its optimization control of production.
Key words: salted fish     microbial diversity     microbial community     pickled processing    

鱼类腌制品具有悠久历史,不仅原料利用率高,货架期长,而且具有香味浓郁,咸鲜相宜的风味特点,深受广大消费者喜爱。著名的鱼类腌制品有咸黄鱼,咸带鱼,咸鲱鱼和海蜇等[1],腌制过程有多种微生物参与,许多乳酸菌、微球菌及葡萄球菌能分泌蛋白酶、脂肪酶、氨基酸脱羧酶及硝酸盐还原酶等,蛋白酶和脂肪酶促进原料中的蛋白质分解为氨基酸和多肽,脂肪分解为短链的挥发脂肪酸和酯类物质[2],微生物的代谢产物和原料分解产物共同形成了鱼类腌制品特有的风味。此外,一些乳酸菌、微球菌和葡萄球菌通过产酸及抗菌素等途径能有效抑制鱼类腌制品中腐败菌及病原菌的生长[3]。但是,氨基酸脱羧酶和硝酸盐还原酶可将游离氨基酸分解为生物胺,硝酸盐转化为亚硝酸盐,过量的生物胺曾引发多起中毒事件[4, 5],亚硝酸盐可以经过多种途径合成N-亚硝基化合物,N-亚硝基化合物是致癌物质[6]。这两类物质是人们对水产品安全问题关注的热点[7]。研究发现,乳酸菌能在鱼肉的发酵过程中抑制生物胺和亚硝酸盐的生成,并且改善腌制品的品质,缩短腌制时间。由此可见,腌制品中风味物质及有害物质的生成与微生物群落结构密切相关,但是目前对腌制品中微生物的结构和组成缺乏全面而深入的了解,因此存在诸如产品安全性差、质量不稳定、生产周期长、难以实现工业化生产等问题[8]。本文主要对鱼类腌制品加工过程微生物群落多样性的研究现状进行阐述,并介绍最新的微生物群落多样性分析方法,为今后研究各阶段微生物种群结构组成,在鱼类腌制品品质特征形成中的作用,以及这些微生物在维持腌制品质量方面所担任的角色,如何更好地控制体系中有害微生物的生长,改善制品风味提供参考依据。 1 鱼类腌制品中微生物的分布及多样性

腌制过程中鱼肉在微生物及其产生的酶类的作用下逐渐失去原有的组织状态,肉质逐渐变软,氨基酸氮含量增加,形成鱼类腌制品特有的风味。鱼类腌制加工过程,有益微生物和有害微生物并存,了解鱼类腌制过程微生物的分布及其多样性,对于在加工过程如何促进有益微生物的生长,有效控制有害微生物的生长,保证产品的风味、品质和安全性至关重要。 1.1 传统腌制鱼中的微生物多样性

传统的鱼类腌制品主要通过自然发酵生成,发酵过程中,微生物起到了至关重要的作用,与腌制品的风味物质和食用安全性息息相关。曾令彬等[9]研究了腊鱼加工过程中微生物的变化,结果发现,乳酸菌、微球菌、葡萄球菌和酵母菌是腊鱼加工中的优势菌群。梁慧等[10]从传统腊鱼中分离筛选出季也蒙毕赤酵母(Pichia guilliermondii)和近平滑假丝酵母(Candida parapsilosis)两株产香酵母,这两株菌在代谢过程中主要产生醇类和酯类,提高了腌制品的风味。陈学云等[11]从盐干带鱼中分离得到20株葡萄球菌,其中松鼠葡萄球菌和木糖葡萄球菌可以降解蛋白质和脂肪,改善带鱼风味。Mah等[12]还发现木糖葡萄球菌可以抑制生物胺在鱼类腌制品体内的产生。吴燕燕等[13, 14]利用从传统腌制鱼中分离纯化得到的植物乳杆菌和戊糖片球菌建立了一种有效降低亚硝酸盐的方法,提高了腌制鱼的可食用安全性。并且对戊糖片球菌产亚硝酸盐还原酶的条件进行了优化,得出了在接种量4%,pH为6,培养温度为35℃,培养时间为48 h的条件下,酶活性可以提高66%的结论[15]。曾雪峰等[16]研究了传统湘西酸鱼中乳酸菌的多样性,结果表明在发酵的初始阶段,明串珠菌是优势菌,抑制了不耐酸好氧菌及其他微生物的生长,后来由于pH值的降低,耐酸的植物乳杆菌和戊糖片球菌成了酸鱼的主要优势菌群。综上所述,鱼类腌制品中的乳酸菌,酵母菌等微生物可改善腌制品的品质,提高可食用安全性,可以作为菌种发酵剂的来源广泛应用于食品行业中,但是,在腌制过程中还发现了Citrobacter spp.Staphylococcu spp.Bacillus spp.等,这些菌株能产生组氨酸脱羧酶,将组氨酸分解为组胺[17],组胺是毒性最强的生物胺。并且有研究发现生物胺的积累与微生物种类有密切联系[18]1.2 微生物发酵辅助腌制鱼中微生物多样性

乳酸菌是肉制品发酵剂中研究最早的菌种,在西式火腿[19]、香肠[20]、侗族酸肉[21]和发酵鱼肉[22]等肉制品风味形成中起着重要的作用。乳酸菌也是发酵过程中的优势微生物,并能促进发酵鱼制品的风味形成[23]。有报道显示,将乳酸菌人工接种到发酵鱼中,可以明显改善腌制鱼的质量和风味[24, 25],缩短腌制时间[26]。当前利用的发酵剂有单一菌种发酵剂和混合发酵剂,研究表明单一菌种发酵效果不如混合菌种发酵好[27]。所以混合菌种发酵剂将成为今后鱼类腌制品发酵剂的发展方向。王乃富等[28, 29]研究了乳酸菌辅助发酵对鳙鱼肉糜菌相的影响,结果显示,鳙鱼肉糜接种乳酸菌后,细菌总数和乳酸菌数明显高于对照组,肠杆菌和假单胞菌数则显著低于对照组。谢城等[30]利用混合菌种接种草鱼发现,实验组的大肠菌群数明显低于对照组,而且没有检出芽孢菌落。蔡敬敬等[31]接种混合乳酸菌对鲢鱼进行发酵,结果发现在发酵初期,细菌和乳酸菌总数都逐渐增多,细菌是优势菌。发酵第5天时,乳酸菌成为了优势菌,除产生乳酸外,还形成了一些抑菌物质,有效地控制了细菌及腐败菌的生长。发酵后期,乳酸菌总数有所减少。此结果与国外研究者Yin和Saithong等[32, 33]接种混合乳酸菌对鱼肉进行发酵所得到的结论基本一致。但是目前对微生物发酵辅助腌制鱼加工过程中生物胺产生菌的报道极少,筛选出产生物胺菌株,并对其生长特性进行研究,从而更好地抑制此类菌的生长,进一步提高鱼类腌制品的可食用安全性,是今后研究的重点。 2 腌制食品中微生物群落多样性研究技术

目前对腌制食品中微生物的研究主要还是应用传统的分离、纯化、鉴定方法以及进行一系列繁琐的生理生化实验,但是这种方法并不能对分离物进行精确鉴定,不能反映出分离物间的系统发育关系,无法获得微生物多样性的真正概貌[34]。并且实验室能够培养分离出的微生物仅占总量的1%左右[35],因此免培养的分子生物学手段,如变性梯度凝胶电泳(denatured gradient gel electrophoresis,DGGE)近年来被广泛地应用于发酵鱼[36]、土壤[37]以及水体环境[38]中微生物群落的结构和多样性分析中。但DGGE技术也存在其缺陷,如无法检测环境中丰度较低的微生物,也难以区分相似度较高的物种[39]。其他的分子生态学技术如限制性片段长度多态性(restriction fragment length polymorphism,RFLP)、限制性片段多态性(restriction fragment length polymorphism,RFLP)扩增片段长度多态性(Amplified restriction fragment polymorphism,AFLP)等,虽然结果具有直观、可视化的优点,但是操作步骤繁多,需要进行DNA多种酶切,无法全面检测出样品中大量尤其是低丰度的微生物。随着高通量测序技术的快速发展,通过对样品中微生物基因序列进行分析,可很快地确定其中微生物的种类和丰度,同时衍生出了一门新的学科--宏基因组学。1998年,Handelsman等[40]首次提出宏基因组概念:是指在特定环境样品中基因组的总和,包含细菌基因组和真菌基因组。宏基因组学采用新一代的高通量测序技术直接对样品中微生物总DNA进行测序,不需要对微生物进行分离培养,不仅可以检测到低丰度的微生物,而且速度快,结果准确。目前已广泛应用于海洋微生物[41],土壤微生物[42]和病毒[43]等方面的研究。宏基因组技术对于微生物群落的分析主要利用16S rDNA序列,有研究表明16S rDNA高变区序列得到的物种信息与全序列所得结果差异不大[44],且高变区序列片段更短,在分析大量数据时比较可以提高效率,而且降低了成本。在腌制食品微生物群落多样性研究方面,基于16S rDNA基因V3区的宏基因组分析已经用于天津传统食醋发酵过程微生物群落组成和多样性的研究,结果清晰地揭示了食醋这一传统发酵食品酿造过程中丰富的微生物多样性以及与代谢产物之间的联系[45]。但应用宏基因组学技术研究鱼类腌制品中微生物群落多样性的分析却未见报道。 3 展望

鱼类腌制品是传统且大众喜爱的水产加工食品,由于传统的加工技术较落后,产品存在一些安全隐患,如何应用现代加工新技术来革新鱼类腌制品的加工技术,使其在保证传统风味的基础上,工艺先进且能实现工业化生产,产品品质保证且质量安全,已成为当前科研工作人员研究的热点。纵观已有文献报道,以往的研究主要侧重加工工艺的优化、挥发性成分及乳酸菌的功能特性,对鱼类腌制品的微生物群落多样性及其对产品品质特征形成规律的影响等缺乏研究,特别是如何运用一种有效的微生物检测方法来研究腌制体系中以乳酸菌为主的微生物群落结构及在腌制过程中的变化,阐明各阶段微生物种群结构组成以及这些微生物在维持腌制品质量方面所担任的角色,从而更好地控制体系中有害微生物的生长,改善制品风味,也为工艺优化提供理论依据。因此今后研究的重点为: 3.1 探明影响鱼类腌制品风味品质和安全性的微生物种类和分布特点

在鱼类腌制品风味研究方面,各种鱼类腌制品中挥发性成分研究已比较透彻,鱼类腌制品在后熟阶段通过微生物和酶的作用促进鱼体挥发性物质和前体转化成腌制品中的特征风味物质。但是,哪些微生物在起这个作用,这些微生物与一些腐败微生物之间的一个竞争关系,如何促进我们需要的有益微生物在整个加工过程成为优势菌,并抑制腐败微生物的生长是当前急需解决的问题。

目前,也有很多学者致力于将乳酸菌等有益菌接种到鱼体中来加速发酵的过程,那么这个过程这些有益菌的生长变化情况,以及代谢产物对产品的品质和安全性的影响也是需要了解的问题。另一方面,对鱼类腌制品中产生的亚硝基化合物、生物胺等有害物质的控制,这些有害物质的产生是哪一类微生物起主要作用及如何抑制,仍然是研究的重点。 3.2 加强宏基因组技术在微生物多样性分析中的应用研究

传统的微生物群落鉴别需要经过一系列的分离、纯化和繁琐的生理生化鉴定,时间较长,工作量大。随着微生物分析鉴定技术的发展,特别是高通量测序技术的快速发展,通过对样品中微生物基因序列进行分析,可很快地确定其中微生物的种类和丰度。但此技术也存在一些问题,如在样品DNA制备方面,目前的DNA提取方法还不能获得样品中所有未能培养微生物的全部基因组信息,这直接影响基因组文库的构建。另外,庞大的DNA序列信息也向我们提出了巨大的挑战,而生物信息学的出现则给我们带来了极大的便利,在接下来的研究中,我们需要完善宏基因组学和生物信息学的结合,进而更好地分析宏基因组文库中的巨大数据。截至今日,人们对于微生物基因资源的多样性研究还处于初步阶段,应用分子生物学技术结合传统微生物分析方法对鱼类腌制品中微生物资源进行研究势在必行。

参考文献
[1] 赵改名,周光宏,柳艳霞,等.肌肉非蛋白氮和游离氨基酸在金华火腿加工过程中的变化[J].食品科学, 2006(2):33-37.
[2] 张会丽.风鱼腌制风干成熟工艺及其蛋白质水解规律的研究[D].南京:南京农业大学, 2009.
[3] 曾令彬.腊鱼加工中微生物菌群、理化特性及挥发性成分的研究[D].武汉:华中农业大学, 2008.
[4] Lee Y, Huang T, Lin C, et al. Determination of histamine and histamine-forming bacteria in striped marlin fillets(Tetrapturus audax)implicated in a food-borne poisoning[J]. Toxicon, 2012, 60(2):161-162.
[5] Wilson BJ, Musto RJ, Ghali WA. A case of histamine fish poisoning in a young atopic woman[J]. Journal of General Internal Medicine, 2012, 27(7):878-881.
[6] 吴燕燕,刘法佳,李来好,等.改良离子色谱法测定咸鱼中亚硝酸盐的研究[J].南方水产科学, 2011, 7(6):1-6.
[7] 魏涯,吴燕燕,李来好,等.船上加工日本鳀的质量安全管理研究[J].南方水产科学, 2011(2):61-67.
[8] 舒畅,吴春生,钟慈平,等.发酵食品微生物多样性研究方法进展[J].食品科学, 2013, 34(15):397-402.
[9] 曾令彬,谭汝成,熊善柏,等.腌腊鱼加工中优势乳酸菌的分离与鉴定[J].食品工业科技, 2007, 28(1):115-119.
[10] 梁慧,马海霞,李来好.腊鱼产香酵母菌的筛选及其发酵产香特性初步研究[J].食品工业科技, 2011(12):213-217.
[11] 陈学云,候鲁娜,丁玉庭,等.盐干带鱼中葡萄球菌的分离鉴定及其特性研究[J].肉类工业, 2010(5):34-38.
[12] Mah J, Hwang H. Inhibition of biogenic amine formation in a salted and fermented anchovy by Staphylococcus xylosus as a protective culture[J]. Food Control, 2009, 20(9):796-801.
[13] Wu YY, Liu FJ, Li LH, et al. Isolation and identification of nitritedegrading lactic acid bacteria from salted fish[J]. Advanced Materials Research, 2012, 393 :828-834.
[14] 刘法佳,吴燕燕,李来好,等.降解咸鱼中亚硝酸盐的乳酸菌降解特性研究[J].广东农业科学, 2012(1):94-97.
[15] 吴燕燕,王雅楠,李来好,等.咸鱼中戊糖片球菌产亚硝酸盐还原酶的条件优化[J].食品工业科技, 2013, 34(24):195- 198.
[16] 曾雪峰,夏文水.湘西传统酸鱼中乳酸菌的分离及特性研究[J].食品与发酵工业, 2012(12):40-44.
[17] Hsu H, Chuang T, Lin H, et al. Histamine content and histamineforming bacteria in dried milkfish(Chanos chanos)products[J]. Food Chemistry, 2009, 114(3):933-938.
[18] 谢城,刘忠义,周宇峰,等.鳙鱼糜发酵过程中生物胺的测定[J].食品工业科技, 2010, 31(7):349-351.
[19] Hugas M, Monfort JM. Bacterial starter cultures for meat fermentation[J]. Food Chemistry, 1997, 59(4):547-554.
[20] 马德功,王成忠,崔文文,等.发酵香肠乳酸菌发酵剂筛选标准[J].肉类研究, 2007(12):31-33.
[21] 章德法,徐为民,徐幸莲.侗族发酵酸肉中乳酸菌的筛选及鉴定[J].江苏农业学报, 2008, 24(6):986-988.
[22] Sanni AI, Asiedu M, Ayernor GS. Microflora and chemical composition of momoni, a ghanaian fermented fish condiment[J]. Journal of Food Composition and Analysis, 2002, 15(5):577- 583.
[23] Paludan-Müller C, Madsen M, Sophanodora P, et al. Fermentation and microflora of plaa-som, a Thai fermented fish product prepared with different salt concentrations[J]. International Journal of Food Microbiology, 2002, 73(1):61-70.
[24] 吴燕燕,游刚,李来好,等.低盐乳酸菌法与传统法腌干鱼制品的风味比较[J].水产学报, 2014, 38(4):600-610.
[25] 张婷,吴燕燕,李来好,等.腌制鱼类品质研究的现状与发展趋势[J].食品科学, 2011, 32(S1):149-155.
[26] 周长艳,黄泽元.乳杆菌在腌制腊鱼制品中的应用[J].食品科学, 2012, 33(1):215-218.
[27] 陈韵,胡萍,湛剑龙,等.我国传统发酵肉制品中乳酸菌生物多样性的研究进展[J].食品科学, 2013, 34(13):302-306.
[28] 王乃富,李春阳,阎征,等.乳酸菌发酵对鳙鱼肉糜菌相与品质的影响[J].食品科学, 2011, 32(7):92-96.
[29] 王乃富,李春阳,阎征,等.乳酸菌发酵对鳙鱼肉糜抗氧化活性的影响[J].农产品加工, 2010(8):8-14.
[30] 谢诚,刘忠义,周宇峰,等.混合菌种发酵对草鱼肉微生物和生物胺变化的影响[J].西北农林科技大学学报, 2010, 38(3): 167-172.
[31] 蔡敬敬,徐宝才.乳酸菌发酵鱼的研制[J].肉类工业, 2008 (11):22-24.
[32] Yin L, Pan C, Jiang S. Effect of lactic acid bacterial fermentation on the characteristics of minced mackerel[J]. Journal of Food Science, 2002, 67(2):786-792.
[33] Saithong P, Panthavee W, Boonyaratanakornkit M, et al. Use of a starter culture of lactic acid bacteria in plaa-som, a thai fermented fish[J]. Journal of Bioscience and Bioengineering, 2010, 110(5): 553-557.
[34] 谢科,余晓峰,郑海松,等.传统分离培养结合PCR_DGGE技术分析广式腊肠中优势菌[J].食品科学, 2013, 34(4): 157-160.
[35] Amann RI, Ludwig W, Schleifer KH. Phylogenetic identification and in situ detection of individual microbial cells without cultivation[J]. Microbiological Reviews, 1995, 59(1):143- 169.
[36] An C, Takahashi H, Kimura B, et al. Comparison of PCR-DGGE and PCR-SSCP analysis for bacterial flora of Japanese traditional fermented fish products, aji-narezushi and iwashi-nukazuke[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2010, 90(11): 1796-1801.
[37] Wenhui Z, Zucong C, Lichu Y, et al. Effects of the long-term application of inorganic fertilizers on microbial community diversity in rice-planting red soil as studied by using PCR-DGGE[J]. Acta Ecologica Sinica, 2007, 27(10):4011-4018.
[38] 兰兰,刘广峰,王江勇,等.湛江官渡近江牡蛎养殖水细菌群落的DGGE指纹分析[J].南方水产科学, 2012, 8(5):31- 38.
[39] 聂志强,王敏,郑宇. 3种分子生物学技术在传统发酵食品微生物多样性研究中的应用[J].食品科学, 2012, 33(23): 346-350.
[40] Handelsman J, Rondon MR, Brady SF, et al. Molecular biological access to the chemistry of unknown soil microbes :a new frontier for natural products[J]. Chemistry & Biology, 1998, 5(10): 245-249.
[41] Cristian G, Jörn P. Metagenomic approaches to identify and isolate bioactive natural products from microbiota of marine sponges[. J]. Methods in Molecular Biology, 2010, 668 :247-264.
[42] Steven B, Gallegos-Graves LV, Starkenburg SR, et al. Targeted and shotgun metagenomic approaches provide different descriptions of dryland soil microbial communities in a manipulated field study[J]. Environmental Microbiology Reports, 2012, 4(2): 248-256.
[43] Dayaram A, Galatowitsch M, Harding JS, et al. Novel circular DNA viruses identified in Procordulia grayi and Xanthocnemis zealandica larvae using metagenomic approaches[J]. Infection, Genetics and Evolution, 2014, 22 :134-141.
[44] Huse SM, Dethlefsen L, Huber JA, et al. Exploring microbial diversity and taxonomy using SSU rRNA hypervariable tag sequencing[J]. PLoS Genetics(Online), 2008, 4(11): e1000255.
[45] 聂志强,韩玥,郑宇,等.宏基因组学技术分析传统食醋发酵过程微生物多样性[J].食品科学, 2013, 34(15):198-203.